CC BY
5
Как видно из таблицы, процент абберантных клеток у контрольных животных, находившихся в условиях разных температурных режимов, был практически одинаков (4,0± ±0,62 и 3,8±0,60; Р > 0,05). Анализ клеток костного мозга животных, подвергавшихся хроническому круглосуточному ингаляционному воздействию хлористого винила, свидетельствует о том, что в условиях нормальной температуры лишь самая минимальная из 3 изученных концентраций газа (0,15 мг/м3) не вызывала достоверного увеличения процента анафаз с перестройками. При этом удельный вес фрагментов у животных 3-й группы (0,15 мг/м3) не отличался статистически достоверно от такового контрольных животных, в то время как процент хромосомных мостов превышал спонтанный уровень более чем в I1/, раза, а удельный вес хроматидных мостов резко (в 12 раз) снизился по сравнению с контролем. Концентрации 10 и 0,4 мг/м3 обусловили у подопытных животных достоверное повышение уровня анафаз с хромосомными аберрациями более чем в Р/2 раза (Р < 0,05). Что касается соотношения типов перестроек у животных этих 2 групп, то нужно отметить, что по всем видам нарушений обе концентрации вызывали достоверные абсолютные и относительные изменения. Исследование влияния хлористого винила в сочетании с высокой температурой воздуха показало, что концентрация 0,07 мг/м3 не вызывает у животных заметного увеличения уровня аберрантных клеток, хотя изменения удельного веса отдельных типов перестроек достоверны. Концентрация 0,15 мг/м3 в условиях высокой температуры вела к повышению количества аберрантных клеток более чем в I1/2 раза, обусловив при этом и изменения в структуре перестроек. Эти данные позволяют сделать вывод о том, что сама по себе концентрация хлористого винила 0,15 мг/м3 в условиях температуры воздуха 22°С не вызывает увеличения аберрантных клеток, однако та же концентрация в сочетании с высокой температурой (35°С) является явно мутагенной, поскольку ее воздействие на подопытных крыс приводит к увеличению удельного веса с нарушениями, с о дней стороны, и изменениям в соотношении типов хромосомных повреждений — с другой. Кроме того, у животных этой группы, по-видимому, химический и температурный факторы воздействуют на репаративные системы клеток, о чем свидетельствует то, что удельный вес фрагментов у подопытных животных возрос, в то время как уровень хромосомных мостов достоверно снизился.
Резюмируя изложенное, можно заключить, что концентрация хлористого винила 0,07 мг/м3 не вызывает увеличения уровня аберрантных клеток в костномозговой ткани подопытных животных, в то время как остальные концентрации (10, 0,4 и 0,15 мг/м3) при тех или иных температурных условиях генетически опасны.
Поступила 11/УШ 1977 г.
УДК 613.32:628.162.51-074
Кандидаты хим. наук Л. А. Христианова и Н. И. Удальцова,
С. С. Солдатова
ОПРЕДЕЛЕНИЕ ОСТАТОЧНЫХ КОЛИЧЕСТВ ФЛОККУЛЯНТА ВА-2
В ПИТЬЕВОЙ ВОДЕ
Научно-исследовательский институт коммунального водоснабжения и очистки воды Академии коммунального хозяйства им. К. Д. Памфилова, Москва
Катионный полиэлектролит ВА-2 (поли-4-винил-М-бензил-триметиламмонийхлорид) рекомендован в качестве флоккулянта при очистке питьевой воды. В воде водоемов санн-тарно-бытового водопользования установлена его ПДК, равная 0,5 мг/л, однако возникает необходимость в контроле за содержанием его остаточных количеств. Для количественного определения ВА-2 в питьевой воде Р. М. Стернна предложила взаимодействие его с красителем бромкрезоловым пурпурным, но чувствительность этого метода (порядка 1,5 мг/л) недостаточна.
Мы испытали ряд реагентов типа кислотных красителей для определения ВА-2, наилучшие результаты были получены с эозином-Н, который, являясь динатриевой солью тетра-бромфлюоросцеина, образует в растворе двухзарядный анион, способный взаимодействовать с функциональной группой четвертичного аммония, входящей в состав ВА-2, с образованием окрашенного соединения. Были найдены оптимальные условия определения ВА-2. Измерение интенсивности окраски образующегося соединения следует проводить при длине волны 520—550 нм. Оптимальное рН исследуемого раствора — 5±0,5 (для работы используют ацетатный буферный раствор с рН 5). Окраска образующегося соединения эозина с ВА-2 происходит довольно быстро (через 10 мин) и сохраняется в течение 40—50 мин; измерение оптической плотности раствора целесообразно проводить через 15—20 мин (но не позднее 40 мин) после введения всех реагентов.
Присутствие солей и в тех количествах, в которых они могут встречаться в питьевых водах, мало влияет на определение ВА-2. Мешающее влияние могут оказывать большие количества остаточного активного хлора (более 0,8 мг/л), поскольку хлор может разрушать эозин. Когда содержание остаточного хлора в воде превышает 0,8 мг/л, его влияние устраняют добавлением тиосульфата натрия; избыток тиосульфата до концентрации 10 мг/л не мешает определению ВА-2.
Мешающее влияние могут оказать также органические основания, содержащие группу четвертичного аммония, цветность воды более 30°, а также мутность более 2 мг/л. которую следует снимать фильтрованием или центрифугированием раствора. Чувствительность метода 0,1 мг/л ВА-2. Ошибка определения количеств ВА-2 от 0,15 до 4 мг/л (при большом содержании следует брать на анализ меньший объем £ воды) составляет ±10— 15отн.%. Производительность метода до 10 проб за 30—40 минут. * у
Для работы приготовляют стандартный раствор ВА-2. Основной раствор с концентрацией 1 мг ВА-2 в 1 мл готовят растворением 1 г сухого ВА-2 (молекулярная масса~ 50 000) в 1 л дистиллированной воды, рабочий раствор с концентрацией 10 мкг ВА-2 в 1 мл — разбавлением дистиллированной водой основного раствора в 100 раз (непосредственно перед работой). Для приготовления ацетатного буферного раствора с рН 5 смешивают 74 мл 1 н раствора уксусной кислоты с 50 мл 1 н. раствора МаОН и разбавляют до 500 мл дистиллированной водой. Для получения 0,004% раствора эозина-Н сначала готовят 0,04% раствор эозина-Н растворением 0,2 г последнего в 500 мл дистиллированной воды, затем этот раствор разбавляют в 10 раз дистиллированной водой.
Солевой состав водопроводной воды незначительно влияет на определение ВА-2. Однако для получения надежных результатов при построении калибровочного графика в стандартные растворы следует вносить такое количество водопроводной воды (полученной по обычной схеме очистки без применения ВА-2), какое берется при анализе испытуемой пробы. Поэтому при построении калибровочного графика в мерные колбы емкостью 50 мл вливают от 4 до 90 мкг ВА-2 в виде рабочего стандартного раствора, добавляют 25 мл водопроводной воды, полученной по схеме очистки с алюминиевым коагулянтом, затем — 5 мл буферного раствора, 5 мл 0,004% раствора эозина, перемешивают, доводят объем дистиллированной водой до метки, перемешивают и через 20 мин измеряют оптическую плотность раствора на фотоколориметре при длине волны 520—540 нм (на ФЭК-56 со светофильтром № 6) в кювете с толщиной слоя 50 мм относительно раствора контрольного опыта. Для приготовления раствора контрольного опыта в мерную колбу емкостью 50 мл наливают 25 мл водопроводной воды, полученной по схеме очистки с алюминиевым коагулянтом, приливают 5 мл буферного раствора, 5 мл 0,004% раствора эозина, доводят объем дистиллированной водой до метки и перемешивают. Строят калибровочный график в координатах оптическая плотность — содержание ВА-2 в микрограммах.
Пробы воды нужно исследовать в день взятия. В мерную колбу емкостью 50 мл вносят 25 мл анализируемой воды (если содержание ВА-2 более 4 мг/л, то берут меньший объем), приливают 5 мл буферного раствора, 5 мл 0,004% раствора эозина, перемешивают, доводят объем дистиллированной водой до метки, еще раз перемешивают и через 20 мин измеряют оптическую плотность раствора по длине волны 520—640 нм в кювете с толщиной слоя 50 мм относительно раствора контрольного опыта.
Содержание ВА-2 в пробе находят по калибровочному графику, а концентрацию ВА-2 в анализируемой воде рассчитывают по формуле:
С
а = ^г
где а — концентрация ВА-2 в воде (в мг/л); С — количество ВА-2, найденное в пробе по калибровочному графику (в мкг); V — объем пробы воды (в мл).
Методика утверждена Министерством здравоохранения СССР.
ЛИТЕРАТУРА. Стерина Р. М. — Науч. труды Акад. коммун, хоз-ва, 1974, вып. 97, с. 93—95.
Поступила 21/Х 1977 г.
УДК 613.62-078.7:636.4
А. И. Олефир, В. А. Чернобай
ИССЛЕДОВАНИЕ ЕСТЕТСВЕННОЙ РЕЗИСТЕНТНОСТИ У ОПЕРАТОРОВ КРУПНОГО СВИНОВОДЧЕСКОГО КОМПЛЕКСА
Киевский научно-исследовательский институт гигиены труда и профзаболеваний, лаборатория Калитянского совхоза-комбината им. 50-летия СССР
Обследованы операторы одного из крупнейших в нашей стране свиноводческих комплексов — Калитянского, рассчитанного на одновременное содержание 108 000 свиней. Из 40 обследованных 10 были заняты на участке откорма, 20 — на участке содержания по-росят-отъемышен и 10 — на участке содержания хряков-производителей. Большинство рабочих женщины в возрасте от 25 до 40 лет со стажем от I года до 3 лет.
Об уровне естественной резистентности организма операторов судили по результатам исследования поглотительной и переваривающей способности нейтрофилов по отношению к стафилококку штамм 209-Р (использовали модифицированную нами методику А. И. Иванова и Б. А. Чухловнна), содержание лизоцима в сыворотке и слюне с контрольным вы-
