CC BY
5
все показатели массы печени. В данном случае оценка изменений массы печени затруднений не вызывает. Но видно, что оценка изменений по абсолютному показателю массы без учета различий в массе тела животных явно занижена. Иначе обстоит дело с оценкой изменений массы сердца. Как видно из табл. 2, у крыс опытной группы существенно снижен (Р<0,01) абсолютный показатель массы сердца при отсутствии различии в коэффициентах массы. Можно предположить, что различия по абсолютному показателю массы сердца связаны с различиями в массе тела животных. Однако оценка по показателю Т обнаружила достоверное (Р<0,05) снижение массы сердца животных опытной группы. Следовательно, оценка изменений массы сердца без учета различий в массе тела животных по абсолютному показателю массы привела к гипердиагностике, а по коэффициентам массы — к искажению объективной информации. Представленные результаты подтверждают мне-
ние М. М. Ратпан и соавт. о целесообразности использования в качестве критерия вредности при решении вопроса об органотропности действия яда абсолютных показателей массы органов. В случаях, когда масса тела животных сравниваемых групп различна, оправдано сопоставление не абсолютных показателей массы, а показателей Т (процентное отношение фактической массы органов к расчетной) органов животных контрольной и опытной группы. При этом следует учитывать, что коэффициенты уравнений регрессии (масса тела животных — масса органов) могут различаться в зависимости от условий содержания животных и способов выделения органов.
Литература. Ратпан М. М., Кордыш Э. А., Еремеева Л. С. — Гиг. и сак., 1978, № 6, с. 63—65. Рылова М. Л. Методы исследования хронического действия
вредных факторов среды в эксперименте. Л., 1964. Урбах В. Ю. Биометрические методы. М„ 1964.
Поступила 10.09.80
УДК в 13.632:546.1 в]-07:612.015.31:5-16.16
Т. Л. Радовская, Н. В. Круглова, Т. К. Казюнь, Л. А. Немешаева ОПРЕДЕЛЕНИЕ ФТОР-ИОНА В БИОЛОГИЧЕСКИХ ТКАНЯХ
Свердловский НИИ гигиены труда и профзаболеваний
При гигиенической оценке фтористых соединений важной задачей является определение уровня накопления фтора в биологических тканях. Отсутствие унифицированного метода анализа фтора в указанном объекте затрудняет выбор надежного и производительного метода определения среди современной информации.
Для определения фтора в мягких и твердых тканях известны различные способы подготовки пробы, выделения фтор-иона и методы его индикации; однако многие из них длительны и трудоемки. Основными критериями при выборе метода служат быстрота и наименьшая трудоемкость. С этой точки зрения наиболее приемлемы методы анализа, включающие диффузионное выделение фтора и его фотометрическое опреде^
ление, используемые как для мягких, так и для твердых тканей, а также потенциометрический с фторселективным электродом для твердых тканей.
Нами испытано диффузионное выделение фтор-иона в многокамерном диффузионном приборе (М. М. Голутвина и соавт.) по модифицированной методике (Т. Л. Радонская и соавт.). Для потенцнометрических измерений использован фторселективный электрод (ФСЭ) марки ЭГ-У1, изготовленный опытным заводом УНИХИМ (Свердловск) в паре с вспомогательным хлорсеребряным электродом ЭВЛ-1М1 в комплекте с высокоомным измерительным преобразователем рН-121. Крутизна характеристики электрода при 20±2°С составляла 56±ЗмВ/рР.
Таблица 1
Содержание И- в твердом биоматериале, найденное диффузионно-фотометрическим и потенциометрическим методами (в мг/г)
Метод
Анализируемая ткань днффули- ОПНО'фО- тометри-ческий потснциометрнчоскн Л
0.25 н. НС1, ацетатный буфер рН 1.7 3 н. НС.1. нитратный буфер рН 5.5 3 и. НС1 фосфатный буфер рН Б.9 1.5 и. НС1, фосфорнокислый буфер рН 1.0 4 п. НК'О,. нитратный буфер рИ П.5 2 н. Н[\!0, фосфорнокислый 0v-фер рН 1.0
Костная № 7 » № 8 Зубная № 12 » № 15 Костная № 9 Зубная № 19 0,14 0,13 0,30 0,28 0,13 0,22 0,20 0,10 0,48 0,42 0,20 0,36 0,26 0,14 0,48 0,44 0,22 0,35 0.14 0.40 0,20 0,38 0,12 0,42 0,23 0,34 0,12 0,44 0,24 0.38 0.10 0.40 0.24 0.34
Таблица 2
Содержание Р— в твердом биоматериале, найденное способом варьирования навесок (в иг/г)
Таблица
Содержание F-, найденное способом добавок в твердом биоматериале
Анализируема» ткань Навеска, мг Метод анализа
25 50 100 200
Костная № 23 0,11 0,14 0,13 0,151 Днффузиошю-
Зубная № 34 0,07 0,08 0,09 0,10 фотометриче-
ский
Костная № 27 0,10 0,16 0,16 0,19 Потснцномет-
Зубная № 33 0,14 0,20 0,21 0,21 рическии
Анализ потенциометрическнм методом проводили по способам Irlweck, Singer и Armstrong, которые употребляли для растворения ткани соляную кислоту. Мы применяли азотную кислоту в сочетании с буферными растворами разного состава. При выполнении анализа диффузионно-фотометрическим методом иавеску ткани, содержащую мкг F-, помещали в кольцеобразную часть камеры ячейки. В центральный резервуар ячейки, покрытой щелочью, добавляли 3 капли биднстнллята и поступали, как указано в работе Т. Л. Радовской и соавт.
При анализе твердых тканей потенциометриче-ский метод независимо от природы и концентрации кислоты и состава буферного раствора дает результаты в 1,6—1,8 раза выше, чем диффузи-онно-фотометрический (табл. 1). Проверка этих методов способами варьирования навесок и стандартных добавок свидетельствует о надежности методов (табл. 2, 3). Использованные методы достоверно характеризуют уровень содержания ([угора в анализируемом объекте. Оба метода надежны при оценке накопления фтора в твердых тканях.
Статистическая обработка результатов эли-за проб (табл. 4) позволяет сделать вывод о большей воспроизводимости —1/Sr — потенцио-метрического метода, поскольку он состоит лишь в растворении ткани и фиксировании потенциала раствора, в то время как диффузнонно-фотометрический метод включает растворение, диффузию, извлечение сорбированного HF и проведение фотометрической реакции. Оба метода одинаково производительны. При использовании 3 стандартных панелей диффузионного при-
Обнаружено » Введено, НаЛдсио, Д мкг Метод
ткаин. мкг F- мкг F- мкг К- анализа
Костная, 9,8 5 15,2 +0,4 +4.2 Днффузиои-
10 24 но-фото-
15 26,4 + 1,4 метрнче-
Зубная, 10,0 5 16 + 1,0 скнй
10 15 23 25,6 +3,0 +0,6
Костная, 13,0 5 18 +0,0 Потсншю-
10 22 —1.0 мстриче-
20 30 —3,0 ский
Зубная, 10 5 10 20 15 21 28 + 0,0 + 1.0 —2,0
бора (27 ячеек) за 2 дня можно проанализировать 24 пробы. Не больше можно сделать и по-тенциометрически, так как после измерения каждой пробы необходимо 5—10 мин промывать ФСЭ в растворе буфера и ежедневно строить калибровочную шкалу. Однако потенциометри-ческий метод менее трудоемок, чем диффузионно-фотометрический.
Указанными методами можно анализировать непосредственно твердую ткань, высушенную при 105 °С до постоянного веса. Анализировать золу ткани на фтор-ион нецелесообразно из-за длительности процесса озоления (на озоление пробы до постоянного веса при 550°С требуется 5— 6 дней) и мгновенного растворения золы в хлорной кислоте при диффузионно-фотометрическом методе, что часто сопровождается потерей фтора. При высушивании зубной и костной ткани как при 105 °С, так и до золы, потерь фтора не обнаружено. При высушивании сырых органов (селезенки, плода, плаценты) при Ю5°С происходит потеря фтористых соединений. Поэтому эти ткани надо анализировать в сыром растертом виде. Сырая ткань печени и мозга плохо растворяется в хлорной кислоте, в среде которой происходит диффузия HF, а высушенная при 105°С вскрывается количественно. Потерь фтора при высушивании не происходит.
Таблица 4
Статистические характеристики, полученные при определении F— в твердом биоматериале диффузионно-фотометрическим и
потенциометрическнм методами (л— 8)
Статистическая характеристика Диффузионно-фотометричсскиП метод, ткань Потенцнометрический метол, ткань
костная № 60 зубная Nf 71 костная Кг G4 вубная Я» 72
S х+е<х=0,95 Sr 1/Sr C8.5-I0-2 7.75+0.57 8,8- 10~г 11.3 79.5-10—s 8,58+0.66 9,25- 10-г 10.8 10,4-Ю-1 18,7+0.88 5,5- 10-г 18 13,1-Ю-1 35,5+1,09 3,7-10-» 27
Для определения фтора в растворе мягких тканей мы использовали диффузионно-фотометрический метод.
Содержание фтора в селезенке составляло 0,004—0,007 мг/г сырого веса, в плаценте — 0,002—0,004 мг/г сырого веса, в плоде — 0,002— 0,004 мг/г сырого веса, в голени — 0,07— 0,13 мг/г высушенного при 105°С до постоянного веса, в зубной ткани — 0,06—0,09 мг/г, в печени — 0,03—0,07 мг/г, в мозге —0,008— 0,02 мг/г высушенного при 105 °С до постоянного веса.
Таким образом, в токсикологогигиеническнх исследованиях для определения фтора в мягких
тканях целесообразно применять диффузионно-фотометрический метод с учетом указанных рекомендаций по подготовке проб. Для определения фтора в твердых тканях одинаково надежны как диффузионно-фотометрический, так и потен-циометрический метод анализа.
Литература. Голутвина М. М, Кононыкина Н. Н.,
Рябикин В. П. — Гиг. и сан., 1971, № 5, с. 101 — 103. Радовская Т. Л., Круглова Н. В., Казюнь Т. К. — Гиг. и
сан., 1980, Л« 8, с. 47. Jrlweck К., Sorantin И. — Mikrochim. Acta, 1977, Bd 2. S. 25—31.
Singer L., Armstrong W. D. — Analyt. Clicm., 1968. v. 40, ■ p. 613—614.
Поступила 05.08.80
УДК 614.805.5:625.08
Т. Л. Соснова, Е. И. Лосева, И. М. Соломатина
ЦВЕТОВАЯ ШКАЛА ДЛЯ ОБЪЕКТИВНОЙ ОЦЕНКИ СИГНАЛЬНОЙ СПЕЦОДЕЖДЫ ПО ВИДИМОСТИ
ВНИИ железнодорожной гигнепы МПС СССР, Москва
Для повышения безопасности труда и снижения числа наездов на лиц, занятых ремонтно-путевымн работами, широкое распространение получили сигнальные жилеты оранжевого цвета. Однако в процессе эксплуатации они загрязняются, выцветают, подвергаются атмосферному старению, в результате чего утрачивают свои сигнальные свойства. А это снижает безопасность труда рабочих, занятых ремонтом железнодорожных путей и дорог в городском хозяйстве, и вызывает рост травматизма.
Ранее нами были установлены допуски на цветовые характеристики исходных материалов, используемых для сигнальной спецодежды (Т. Л. Соснова и соавт.), которые не учитывали допустимых изменений цвета жилетов, возникающих в процессе их эксплуатации. Вместе с тем необходимо иметь четкие представления относительно сохранности и восстановления сигнальных свойств спецодежды в процессе ее использования.
С этой целью было проведено изучение видимости бывших в эксплуатации сигнальных жилетов с одновременным определением их цветовых характеристик.
Критерием оценки сигнальных свойств жилетов служила их видимость, которую определяли с помощью сенситометрического клина, пред-■ ставляющего собой оптическую пластину со ступенеобразно изменяющимся коэффициентом пропускания. Показатель видимости устанавливали по моменту обесцвечивания объекта.
В качестве объектов наблюдения использовали образцы из исходной ткани и жилетов, • находившихся в эксплуатации различные сроки. Угловой размер объектов, равный 3', соответст-
вовал угловому размеру сигнальных жилетов, рассматриваемых с расстояния 600 м.
Исследования проводили при естественной освещенности объекта, равной 150 лк. Цветовые характеристики определяли по спектральным кривым отражения исследуемых образцов, снятым на спектрофотометре СФ-10.
У 30 человек в возрасте от 18 до 40 лет с остротой зрения 0,8—1,0 и нормальным цветоощущением проведено более 600 исследований. До их начала все испытуемые предварительно адаптировались к белому фону, после чего им предъявлялись изучаемые образцы на желто-сером фоне. Данный фон ввиду его малого контраста с тест-объектом создавал наихудшие условия видимости.
Установлено, что лучшей видимостью обладают сигнальные жилеты с цветовыми характеристиками в следующих пределах: длина волны 585—595 нм, насыщенность 73—87 %, коэффициент отражения 30—50%.
Однако жилеты обеспечивают достаточно хорошую видимость, если в процессе их эксплуатации цветовой тон (Я) изменяется до 582 нм, а чистота цвета (Р) —до 60%.
Изменение коэффициента отражения (р) в сторону уменьшения при загрязнении жилетов допустимо до 27 %, а в сторону увеличения при их выцветании — до 55%. Поскольку цвет определяется тремя характеристиками (длиной волны, чистотой цвета и коэффициентом отражения), границы допустимых цветов обусловлены совокупностью этих величин (Я, Р, р), которые могут находиться в различных сочетаниях.
Как видно из изложенного, оценка цвета в широкой практике весьма затруднена. Наиболее
