CC BY
9
Решающее значение в сохранении высокого качества молока, как известно, имеет материально-техническая оснащенность молочно-товарных ферм, обеспеченность их соответствующими помещениями, лабораторным, технологическим, холодильным и другим оборудованием. Пока что потребность колхозов и совхозов в этом удовлетворяется не полностью. Некоторые хозяйства испытывают трудности в приобретении молочной посуды, доильных аппаратов, фильтрующих материалов, дезинфицирующих средств. Но даже при имеющихся возможностях, умело используя материальные ресурсы, соблюдая высокую дисциплину труда и культуру производства, можно добиться относительно хороших показателей. В Латвийской СсР, например, в 1975 г. холодильные установки имелись лишь на 1638 из 5030 ферм, не хватало другого оборудования. Тем не менее колхозы республики поставляют государству в значительной части молоко высокого качества. Колхоз «Родина» Егорлыкско-го района Ростовской области при аналогичных условиях^сдает более 80% продукции первого сорта.
В некоторых хозяйствах для улучшения качества молока существующие возможности не используются. В животноводческих фермах нередко не соблюдаются элементарные ветеринарно-санитарные правила и технология производства, осуществление которых не связано с крупными материальными затратами. С нарушением установленных требований нередко моются доильные ведра и фляги, не созданы условия для соблюдения доярками личной гигиены (отсутствуют умывальники, мыло, полотенца, дезинфицирующие растворы для мытья рук и др.). В частности, хозяйства Астраханской области, вследствие пренебрежения ветеринарно-санитарнымн правилами, низкой культуры производства молочно-товарных ферм, в 1974 г. сдавали до 80% несортового молока. Даже в некоторых колхозах и совхозах Латвийской ССР, например в Екабпилсском, Валкском, Лимбашском и Рязенкенском районах, при примерно равных материальных возможностях государству нередко сдается молоко второго сорта и несортовое. Наряду с созданием материальной базы, повышением дисциплины труда и культуры производства в борьбе за получение высокосортного молока первостепенное значение имеет улучшение эффективности и качества текущего санитарного надзора на всех этапах молочного производства, в том числе на молочно-товарных фермах.
Выводы
1. В механизме передачи кишечных инфекций видное место занимает пищевой, главным образом молочный фактор. Его активность в значительной мере зависит от качества первичной обработки молока в колхозах и совхозах.
2. Качество молока, получаемого в. колхозах и совхозах, связано не только с материально-технической оснащенностью молочно-товарных ферм, но и с дисциплиной труда, культурой производства, соблюдением ветеринарно-санитарных правил.
ЛИТЕРАТОРА. Алехсеенко В. В. —fB кн.: Материалы Всесоюз. конференции и расширенного пленума Всесоюз. о-ва эпидемиологов, микробиологов и иммунологов им. И. И. Мечникова по проблеме кишечных инфекций. М., 1968, с. 111—113. — Денисов К- А-, Б о л д ы р е в Е. Н , Д ю б и н В. В. и др. — В кн.: Кишечные инфекции. Вып. 6. Киев, 1973, с. 91—93. —Мельник М. Н. — В кн.: Кишечные инфекции. Киев, 1972, с. 4—7. — Сабирова М. Г- — Тезисы докладов 43-й итоговой научной конференции Алма-Атинск. мед. нн-та. Алма-Ата, 1971, с. 93—94.—Сады-к о в М. Ш., Рахимов А. Р., Абдусаматов А. Г. и др. — Вкн.: Материалы 3-го съезда гигиенистов, санитарных врачей, эпидемиологов, микробиологов и инфекционистов Узбекистана. Ташкент, 1973, с. 165—166.
Поступила I0/XII 1975 г.
УДК 616-002.828-02:628.312:582.232.123] : 628.36
О. Г. Бобров
ОПАСНОСТЬ ИНФИЦИРОВАНИЯ ПЛЕСНЕВЫМИ ГРИБАМИ ПРИ ЭКСПЛУАТАЦИИ СООРУЖЕНИЙ БИОЛОГИЧЕСКОЙ ОЧИСТКИ
СТОЧНЫХ вод
За последние десятилетия во всем мире участились случаи поражений легких, желудочно-кишечного тракта и других внутренних органов, а также кожи, ее придатков и слизистых оболочек аспергиллами — плесневыми грибами рода Aspergillus (В. М. Лещенко, 1973). Являясь энергичными минерализаторами органических веществ, плесневые грибы в огромных количествах могут развиваться в сооружениях биологической очистки сточных вод, загрязненных органическими кислотами, спиртами и углеводородами (И. В. Вольф и соавт.; Cooke; Feldman).
Однако до настоящего времени биоценозы сооружений биологической очистки мало-изучены в санитарно-гигиеническом отношении. Сведения об опасности инфицирования аспергиллами человека при эксплуатации сооружений биологической очистки в литературе нами не найдены. Известно (В. М. Лещенко), что в качестве наиболее достоверных возбуди-
телей аспергиллеза человека и животных, по мнению большинства исследователей, являются виды Aspergillus fumigatus, Aspergillus niger, Aspergillus clavatus, Aspergillus fla-vus, Aspergillus Candidus, Aspergillus nigulans, Aspergillus glaucus и Aspergillus versicolor. Инфицирование происходит почти исключительно ингаляционным и отчасти алиментарным путем, лишь изредка — вследствие непосредственного контакта со спорами гриба, при повреждении и мацерации кожи и слизистых оболочек, а также путем аутоинфекции.
На присутствие в биоценозе биофильтров, очищающих сточные воды производства салициловой кислоты, грибов рода Aspergillus указывалось нами ранее (О. Г. Бобров и М. М. Камшилов). Культуры плесневых грибов Aspergillus niger были выделены из биофильтров Лоуренсовской экспериментальной станции очистки сточных вод в США (Feldman).
Мы изучали микотическое обсеменение воздуха, стен, оборудования и кожи рук сотрудников лаборатории спорами Aspergillus в лабораторной комнате (12 м1), где установлено 4 лабораторных аэробиофильтра (объем 12 л, высота 1,5 м), очищающих сточные воды производства салициловой кислоты, и лабораторную иловую площадку (поверхность 1 м2) с подсыхающим сброженным осадком избыточной биопленки. Пробы воздуха брали аппаратом Кротова. При постоянном вращении чашки Петри с агаром Чапека в щель всасывался воздух рядом с поверхностью аэрофильтров и иловой площадки. Ударная струя бактериального аэрозоля равномерно обдувала поверхность питательной среды. Чашки в течение 2 нед инкубировали при 16—18° и через день просматривали под микроскопом. Появляющиеся колонии отсевали для получения чистой культуры и идентификации. Пробу с поверхности брали ватным тампоном (примерно с площади 1 м-), увлажненным физиологическим раствором. Затем помещали в стерильные колбы со стеклянными бусами, содержащие по 5 мл жидкой среды Сабуро, встряхивали 5—10 мин и высевали 0,1 мл из каждой колбы на чашки со средой Чапека. Чашки инкубировали в термостате при 16—18°. Идентификацию и изучение выделенных колоний Aspergillus проводили по определителям (Л. И. Курсанов; Raper и Fennell, и др.).
Установлено, что в воздухе, на стенах и оборудовании лабораторной комнаты находятся споры аспергиллов, в основном относящиеся к группе Aspergillus niger. Наиболее сильное обсеменение воздуха в комнате наблюдалось во время массового развития этого гриба на подсохших иловых площадках. Значительное количество спор грибов Aspergillus niger, Fusarium sp., Aspergillus и др. распространялось воздухом, подаваемым в верхнюю часть аэрофильтров при длительных нарушениях подачи сточных вод, в результате резкого ухудшения условий для вегетативного роста плесневых грибов. Колонии Aspergillus niger обнаружены и на подсыхающих пробах (влажность^50%) термофильно сброженного осадка, взятых с промышленных сооружений биологической очистки сточных вод.
ЛИТЕРАТУРА. Бобров О. Г., Камшилов М- М. — «Информ. бюлл. Ин-та биологии внутренних вод АН СССР», 1974, № 23, с. 46. — Вольф И. В., Т к а -ч е н к о Н. И. Химия и микробиология природных и сточных вод. Л-, 1973. — К у р -санов Л- И. Пособие по определению грибов рода Аспергиллис и Пенициллиум. М., 1947.—Лещенко В. М. Аспергиллез. М., 1973.—Cooke W.B.—«Sewage in-dustr. Wastes.», 1954, v. 36, p. 538. —Feldman A- E. — Ibid., 1955, v. 27, p. 1243. — Raper K- B , Fennel 1 D. I. The Genus Aspergillus. Baltimore, 1965.
Поступила II/VIII 1975 г.
УДК 614.777-074+628.191] :546.175
Б. И. Фрадкин ОПРЕДЕЛЕНИЕ НИТРАТОВ В ВОДЕ
Медногорская санэпидстанция
Для количественного определения нитратов в воде применяют фотометрические методы, основанные на нитровании или окислении соответствующих органических реагентов (часто типа фенола) с образованием окрашенных соединений (Г. Шарло), восстановлением ионов К'ОГдо N0^" мли ¡^Н3. (3. Марченко; О. А. Алексин и соавт.). Эти методы отличаются значительной трудоемкостью, длительностью проведения анализа и недостаточной чувствительностью.
Нами предлагается вариант метода восстановления нитратов до нитритов с последующим их определением реактивом Грисса. Окрашенное соединение фотометрируют.
Для построения калибровочного графика готовят стандартный раствор азотнокислого калия с содержанием азота нитратов, равным 0,1 мг/мл, растворяя 0,7218 г азотнокислого калия в 1 л дистиллированной воды.
Из основного раствора готовят рабочий стандартный раствор (0,001 мг/мл).
Шкалу стандартов строят в интервале от 0,01 до 40 мкг. К 10 мл охлажденной до 7° дистиллированной воды, содержащей заданные количества азота нитратов, добавляют 0,2 мл 85% муравьиной кислоты, цинковой пыли (по 20 мг), сухого реактива Грисса (по 15 мг), перемешивают и через 15 мин центрифугируют содержимое пробирок. Фотометри-
