CC BY
5
сред дали положительный результат. Количество высеянных клеток при варианте без селенита равнялось 46 000, а при варианте с селенитом — 8780 на 1 г почвы (разница существенна). Через 1 нед при использовании варианта без селенита все образцы также дали положительный результат; количество клеток равнялось 1790 на 1 г, при варианте с селенитом 2 образца дали отрицательный результат, а количество клеток составляло 850 на 1 г почвы. Через 3 нед при варианте без селенита положительными оказались 12 образцов с средним содержанием 26 клеток в 1 г почвы, а при варианте с селенитом — соответственно 3 положительных образца с содержанием 12 клеток в 1 г почвы. Через 5 нед сальмонеллы не выделялись ни на одном варианте среды. Опыт показывает, что вариант среды без селенита приводит не только к лучшей высеваемости, но и к более длительному выделению сальмонелл из почвы, что имеет важное эпидемиологическое значение.
Диагностические питательные среды, в частности селенитовые, используемые для бактериологической диагностики кишечных инфекций, проявляют сильный ингибирующий эффект по отношению к посторонней микрофлоре, в первую очередь к кишечной палочке. В связи с этим возникла необходимость проверки влияния загрязнения почвы кишечной палочкой на высеваемость сальмонелл. Для этого в 14 вегетационных сосудов одновременно вносили культуру сальмонелл и в 100— 1000 раз больше культуры кишечной палочки, затем периодически производили отбор проб и их исследование на количество кишечной палочки и сальмонелл на среде с селенитом и без селенита. Результаты оказались прежними: при варианте без селенита высеваемость сальмонелл была лучшей.
Поступила IO/X1 1974 г.
УДК 614.76:547.56
J1. П. Козицкая, И. Ф. Казаринова
ОБ ОПРЕДЕЛЕНИИ ФЕНОЛОВ СЛАНЦЕВОЙ СМОЛЫ В ПОЧВЕ И РАСТИТЕЛЬНОМ МАТЕРИАЛЕ
Всесоюзный научно-исследовательский институт гигиены и токсикологии пестицидов, полимерных и пластических масс, Киев
В литературе мы не нашли работ, посвященных описанию группового метода анализа фенолов сланцевой смолы в почве и растительных продуктах. Ввиду потребности в методах анализа, позволяющих контролировать содержание фенолов, нами был разработан колориметрический способ определения их в почве и растительных продуктах (зерне ржи, пшенице и арбузах).
В основу определения положена цветная реакция с 4-аминоанти-пирином 1 (Б. Ершов и Ф. Борисов; В. Каплин; В. Каплин и Н. Фесен-ко), в результате которой образуются продукты реакции, окрашенные в сиренево-розовые цвета.
Методика определения. Навески почвы (100—200 г) и растительного материала2 (20 г зерна, 50 г арбуза) экстрагировали дистиллированной водой путем взбалтывания в шюттель-аппарате в течение 30 мин
1 Сравнение результатов анализа исследуемых объектов при применении реакций с диазореактивами и 4-аминоантипнрином показало преимущества последнего. Например, окраска продуктов реакции контрольной пробы почвы с 4-аминоантипирином соломенно-желтая при сиренево-розовой окраске проб, при реакции же с диазореактивами (диа-зосульфаниловая кислота, диазотированный п-нитроанилин) — светло-коричневая при оранжево-красных тонах окраски проб.
2 Подготовка образцов к анализу заключалась в следующем. Образцы почвы измельчали, перемешивали и освобождали от посторонних включений; зерно размалывали на ручной кофейной мельнице (грубый помол); арбузы освобождали от корки и измельчали.
трижды с новыми порциями дистиллированной воды (для почвы — 350 мл, для зерна и арбузов — 200 мл). Экстракты объединяли и фильтровали через бумажные фильтры. Из объединенного экстракта отбирали 50—60 мл и центрифугировали при 9000—10000 об/мин в течение 5—10 мин (до прозрачности). К 50 мл центрифугата приливали 0,5 мл концентрированного аммиака и 0,3 мл 2% водного раствора 4-аминоантипирина. Половину полученного раствора использовали в качестве раствора сравнения, ко второй половине приливали 0,5 мл 20% водного раствора персульфата аммония или 0,5 мл 10% водного раствора Кз[Ре(СЫ)6]. При наличии в пробе фенолов вытяжка окрашивалась в розовый цвет. Интенсивность окраски растворов измеряли на фотоэлектроколориметре ФЭК-М3 с синим светофильтром. Для количественной оценки полученных результатов использовали калибровочную кривую для фенола.
Построение калибровочной кривой. В конические колбы с 50 мл дистиллированной воды вносили 0, 10, 20, 40, 50, 80 и 100 мкг стандартного водного раствора фенола концентрации 100 мкг/мл, приливали 0,5 мл концентрированного раствора аммиака и 0,3 мл 2% водного раствора 4-аминоантипирина. Объемы в колбах делили на 2 половины: одна из них служила контролем при измерении, ко второй приливали 0,5 мл 20% раствора персульфата аммония или 0,5 мл 10% раствора Кг[Ре(СЫ)6]. Окрашенные растворы измерялись на ФЭК-М в кюветах 5 мл.
Расчет содержания количества фенолов сланцевой смолы производили по формуле:
1-у. 100-1000-100___/-Р-200
ф = 50(100—1000 а- (100 — Щ В а •
где: Ф — искомое количество фенолов сланцевой смолы (в мг на 1 кг исследуемого продукта); \ — найденное по калибровочной кривой количество фенола в колориметрируемом объеме (в мг); и — объем пробы (в мл); В — навеска исследуемой пробы (в г); ущ—(в кг); № —
]00_Ц7
влажность почвы (в %); —¡^-коэффициент пересчета на абсолютное сухое вещество почвы; а — экспериментально установленный коэффициент4 — процент определения фенола по отношению к внесенному количеству фенолов сланцевой смолы.
3 Или другой марки, соответственно построив калибровочную кривую для применяемого прибора". Можно использовать спектрофотометр; мерить при длине волны 510 нм.
4 Коэффициент а определяли следующим образом. Навески фенолыюй фракции сланцевой смолы 5, 10, 50, 100 и 150 мг вносили в навески почвы и экстрагировали дистиллированной водой, как описано выше. Найденное в результате анализа количество ■фенола относили к внесенному количеству фенолов сланцевой смолы. Определенный таким способом коэффициент использовали для пересчета фенола в фенолы сланцевой •смолы.
Например, внесено 100 мг фенолов сланцевой смолы—найдено а (в мг фенола); внесено Ф (в мг) фенолов сланцевой смолы — найдено К (в мг фенола),
f. р.100-1000___f-v-2
где К = 50(100 — W)-В-1000 = (100— W)B-
Подставляя значение К в пропорцию, находим:
_ /С-100 f-v-2-100 ф= а ~ (100 — W) B
Значения экспериментального установленного коэффициента а
Навеска фе-
нолыюй фрак- Навеска по«- Коэффициент
ции сланцевой вы (в г) а (в %)
смолы (в мг)
5—^0 50 2,5
50—150 50 1,8
50—150 200 1 2
Значения экспериментально установленного коэффициента при разном количестве внесенных фенолов и использовании разных навесок почвы представлены в таблице.
Чувствительность определения — 0,004 мг/кг почвы и 1—2 мг/кг растении.
ЛИТЕРАТУРА. Ершов Б., Борисов Ф, — «Пластич. массы», 1960, № 6, с. 66—68. — Каплин В.— «Гиг. и сан.», 1960, № 8, с. 41—43. — К а п л и н В., Фе-сенко Н. — В кн.: Современные методы анализа природных вод. М., 1962, с. 131—135.
Поступила 14/1 1975 г.
УДК 615.451.3.099.07
Канд. биол. наук В. И. Тимохина, канд. мед. наук В. Г. Лаппо, В. Д. Проскурина
НЕКОТОРЫЕ МЕТОДИЧЕСКИЕ ПОДХОДЫ К ИЗУЧЕНИЮ ТОКСИЧЕСКИХ СВОЙСТВ ПОЛИМЕРОВ ЦИАНАКРИЛОВОГО РЯДА, ПРИМЕНЯЕМЫХ В КАЧЕСТВЕ МЕДИЦИНСКИХ КЛЕЕВ
Всесоюзный научно-исследовательский и испытательный институт медицинской техники, Москва
Нами была предпринята попытка выделить наиболее важные в теоретическом и практическом отношении аспекты исследования клеев медицинского назначения, а также создать принципиальную методическую схему их токсикологического изучения. Подходя к разработке этих вопросов, мы исходили как из общегигиенических принципов оценки потенциальной опасности химических веществ, так и из особенностей применения данной группы соединений (способа применения, степени и продолжительности их контакта с организмом). Прежде всего следует обратить внимание на то, что клеи являются многокомпонентными системами, токсикологические характеристики ингредиентов которых чаще всего неизвестны. Это вызывает необходимость изучения токсичности каждого из них. Компоненты могут находиться в композиции в виде физической смеси, реже они связаны между собой химически. Этим, очевидно, определяется возможность их миграции из клеевой массы в процессе рассасывания. При этом можно ожидать как их вымывания в неизмененном виде, так и поступления в ткани в виде комплексных соединений с другими продуктами деструкции, токсикологическая опасность которых неизвестна. Поэтому даже при наличии сведений о токсических свойствах отдельных ингредиентов композиций нельзя ограничиваться лишь их изучением; необходимо проводить исследование токсических свойств клея в целом.
На токсические свойства клеев может влиять не только активность компонентов, но и остаточное количество технологических добавок, применяемых при синтезе исходных соединений (катализаторов, инициаторов и др.), которые в большинстве случаев являются высокотокснч-ными веществами. Их определение в конечном продукте и оценка возможного неблагоприятного действия являются необходимым этапом оценки клеевых композиций.
Особенность всех клеев медицинского назначения заключается в их способности рассасываться в организме и постепенно выводиться из него. В отношении цианакрилатных клеев имеются данные о 2 путях их удаления из тканей. Первый путь — это фагоцитоз клеевых фрагментов клеточными элементами, второй путь — химические превращения, приводящие к образованию новых химических продуктов, которые могут оказывать на организм определенное воздействие. Исходя из этого, весьма важны исследования процессов взаимодействия клея и
