CC BY
88
Новый возбудитель бактериоза картофеля атакует российские поля
А.М. ЛАЗАРЕВ,
старший научный сотрудник ВИЗР
Причиной серьезных потерьурожая картофеля в Российской Федерации может оказаться возбудитель Dic-keya dianthicola (син. Erwinia chrysanthemi), распространение которого на территории страны с каждым годом расширяется. Приоритет его обнаружения в нашей стране принадлежит группе авторов ряда столичных научных учреждений (Карлов и др., 2010, 2011), которые внесли значительный вклад в изучение микроорганизмов Dickeya spp.
В Российской Федерации к настоящему времени этот бактериоз выявлен специалистами ВНИИ фитопатологии и МСХА в ряде регионов страны, в том числе в Воронежской, Московской и Нижегородской областях. Как и московские ученые (Игнатов, www.zizh.ru), автор статьи придерживается точки зрения, что погодные условия вегетационных сезонов 20082010 гг. могли спровоцировать проявление новой формы «черной ножки», а затем способствовать ее широкому распространению.
В 2009 г. в результате анализа пораженных черной ножкой и мокрой гнилью образцов картофеля из Липецкой области отечественными специалистами впервые были выделены патогенные штаммы, которые были идентифицированы как D. dianthicola.
Симптоматика бактериоза. Признаки нового бактериоза картофеля в значительной мере аналогичны симптомам общеизвестной болезни этой культуры - черной ножке стеблей и мягкой гнили клубней, вызываемой Erwinia carotovora. До недавнего прошлого в нашей стране принято было считать, что только E. carotovora вызывает эти типичные хорошо знакомые всем картофелеводам признаки бактериоза. Патоген поражает ог-
ромное количество как культурных, так и дикорастущих растений и имеет две разновидности: условно называемую «стеблевую» форму (ECA) -subsp. atroseptica (van Hall, 1902) Dye, 1969 и «клубневую» (ECC) - subsp. carotovora (Jones, 1901) Berqey, Harrison, 1923; проявляется в виде увядания и загнивания стеблей и мягкой гнили клубней. Предвсходовое развитие бактериальной клубневой инфекции или раннее послевсходо-вое проявление обычно сопровождаются обширным загниванием материнского (семенного) клубня и ведет, как правило, к выпадению кустов. Более позднее обнаружение черной ножки фиксируют в фазе цветения. Симптомы проявления на всходах выражаются в резком отставании в росте, листья желтеют, становятся мелкими, жесткими и закручиваются вдоль средней жилки. Побеги располагаются под острым углом к стеблю и тянутся кверху. Нижняя часть стебля на уровне почвы размягчается и загнивает, приобретая различные оттенки от желто-коричневого до темного (отсюда название «черная ножка»). Пораженные растения легко выдергиваются из почвы, многие из них погибают. Через столоны бактерия проникает в клубни, часть которых загнивает и превращается в мягкую кашицеобразную слизистую массу (мокрая гниль), позже при участии сапрофитных и полусапрофитных организмов клубни полностью разлагаются, приобретая резкий неприятный запах. Часто болезнь на клубнях протекает незаметно (инфекция находится в скрытом виде, в основном в столонной части). Количество молодых клубней со скрытой формой инфекции зависит от степени проявления черной ножки на растениях в вегетационный период. В отдельные годы до 75 % клубней под больным кустом являются носителями фитопа-
тогенных бактерий. При отсутствии благоприятных погодных условий болезнь не развивается, бактерии из посадочного клубня через растение и столоны без видимых признаков проникают в дочерние клубни.
Систематическое положение патогена. История всестороннего изучения E. carotovora насчитывает более века. Сам род Erwinia был сформирован в 1917 г, в него впоследствии включили все виды семейства Enterobacteriaceae, патогенные для растений, в том числе бактерии пек-толитические, то есть разлагающие растительную ткань (например, E. са-юоот и Е. chrysanthemi) и непекто-литические (Е. amylovora). За последние полвека бактерия E. саrоtоvоrа получила немало синонимов по различным систематическим положениям: Pectobacterium carotovorum var. atrosepticum, E. phytophthora, E. aro-ideae, P. carotovorum subsp. atrosepticum, P. atrosepticum и др.
Основываясь на ряде биохимических свойств пектолитических видов Erwinia, Waldee E.L. (1945) предложил для них организовать новый род Pectobacterium. С этого момента фи-тобактериологи разделились, образно говоря, на два лагеря, обозначая родовое название этого патогена двояко, хотя в научной литературе все эти годы в значительной мере доминировало название E. сarotovora. Обширные дополнительные исследования на основе анализа 16S рДНК склонили мнение большинства научного сообщества к необходимости восстановления прежнего родового названия - Pectobacterium (Waldee, 1945; Hauben et al., 1998) (табл. 1).
Свое название вид E. chrysanthemi (Burkholder et al., 1953) получил как возбудитель бактериоза хризантемы. Дальнейшие исследования большого набора его штаммов выявили, что эти микроорганизмы являются причиной заболевания очень широкого круга растений-хозяев (более 16 двудольных и 10 однодольных семейств) (Lelliott, Dickey, 1984; Самсон et al., 2005; Ма et al., 2007). В связи с этим систематики Lelliott R.A. и Dickey R.S. (1984) разделили вид на 6 разно-
3 Защита и карантин растений № 6, 2013
Таблица 1
Старое название
Новое название
E. carotovora P. atrosepticum subsp. atroseptica
E. carotovora P. carotovorum subsp. carotovora
E. chrysanthemi
Dickeya spp.: D. chrysanthemi, D. dadantii, D. dianthi-cola, D. zeae, D. solani
видностей «патоваров» - «chrysanthemi», «dianthicola», «dieffenbachiae», «paradisiaca», «parthenii» и «zeae», основываясь на специфичности их растений-хозяев. Применение анализа рДНК-гибридизации и широкое изучение биохимических характеристик пектолитических бактерий подтолкнуло научное сообщество к тому, чтобы виды группы «chrysanthemi» полностью отделить от группы-рода Erwinia и дать им новое родовое название Dickeya (саму группу этих патоваров именовать Dickeya ssp.) в честь выдающегося микробиолога Dickey R.S. (Samson et al., 2005; Ма et al., 2007; Toth et al., 2011).
Первое появление нового патогена
D. dianthicola (еще под названием
E. сhrysanthemi) на картофеле зафиксировано в Нидерландах в 1972 г. (тогда эту бактерию, в основном, связывали с болезнями декоративных культур). Позднее бактерию выявили на полях многих европейских государств. Интерес к ней значительно вырос за последние 5 лет: это были
годы активизации ее вредоносности и значительных потерь семенных и продовольственных партий картофеля.
К 2005 г. в результате изучения комплекса физиологических и молекулярных признаков этого патогена окончательно сформировалось мнение группы фитобактериологов во главе с Samson R. (Франция) обозначать его как D. chrysanthemi (Samson et al., 2005), который входит в число 6 обособленных ими видов. К настоящему времени последние уже четко разграничены на следующие виды (соответствуют в определенной мере конкретному патовару) - D. dianthicola, D. dadantii, D. zeae, D. chrysanthemi bv. chrysanthemi, D. chrysanthemi bv. parthenii, D. paradisiaca, D. dieffenbachiae. Одновременно западноевропейские ученые также выяснили, что все Dickeya ssp. (кроме D. paradisiaca) обнаружены на широком спектре декоративных растений, многие из которых являются предметом экспорта (Lee et al., 2002; Lee, Yu, 2006.).
В таблице 2 отражены виды бактерий Dickeya spp. (с обозначением их синонимов) и поражаемые ими растения-хозяева.
Диагностика возбудителя. Большой группой фитобактериологов (Samson et al., 2005) проводилось всестороннее изучение значительного штаммового состава нового патогена D. dianthicola новейшими мето-
дами исследований (ПЦР-анализ и др.). К 2004-2005 гг. они выяснили, что в составе D. dianthicola имеются бактерии («биовар 3»), которые ученые нашли целесообразным выделить в отдельный вид (D. solani). Микроорганизмы этого «биовара 3» характеризуются специфическими особенностями, в частности, большей агрессивностью по отношению к картофелю.
В настоящее время дискутируется вопрос, откуда появились эти агрессивные бактерии D. solani. Фитобакте-риологами установлено, что D. dianthicola вызывает бактериозы картофеля, томата, цикория, топинамбура, а также ряда декоративных растений (бегонии, георгина, фрезии, гиацинта, ириса, каланхоэ, гвоздики и сен-полии). Можно предположить, что патогенные свойства D. dianthicola могли претерпеть изменения на каком-то растении-хозяине, после чего патоген стал для картофеля более агрессивным.
Различные виды Dickeya spp. могут быть диагностированы по типичным профилям их жирных кислот (Laurila et al., 2008). Stead D.E. (1999), Sea-wiak et al. (2009b), Toth et al. (2011) считают, что это разделение возможно по конечным результатам REP-PCR. Изоляты D. dianthicola (также био-вары 1, 7 и 9) формируют особый профиль при работе с любой из этих методик. Риботипирование успешно ис-
Таблица 2
Растения-хозяева возбудителей - бактерий рода Dickeya
Виды рода Dickeya
Растения-хозяева
D. dianhicola (син.: E. chrysanthemi биовары 1, 7, 9; E. chrysanthemi pv. dianthicola; Pectobacterium chrysanthemi pv. dianthicola)
D. dadantii (син.: E. chrysanthemi биовар 3, несколько штаммов; Pectobacterium chrysanthemi биовар 3, несколько штаммов)
D. zeae (син.: E. chrysanthemi биовар 8 и биовар 8; несколько штаммов; Pectobacterium chrysanthemi биовар 8 и биовар 8, несколько штаммов)
D. chrysanthemi bv. chrysanthemi (син.: E. chrysanthemi биовар 5;
E. chrysanthemi pv. chrysanthemi; Pectobacterium chrysanthemi pv. chrysanthemi)
D. paradisiaca (син.: E. chrysanthemi биовар 4; E. chrysanthemi pv. paradisiacal; E. paradisiaca; Brenneria paradisiaca)
D. dieffenbachiae (син.: E. chrysanthemi биовар 2; E. chrysanthemi pv. dieffenbachiae; Pectobacterium chrysanthemi pv. dieffenbachiae)
Гвоздика китайская, картофель, томат, цикорий, артишок, георгин, гиацинт, ирис, каланхоэ
Пеларгония, картофель, батат, ананас, банан, виды гвоздики, эуфорбия, сенполия, кукуруза, филодендрон, сциндапсус (чертов плющ), крестовник, эрингиум (синеголовник), сингониум (гусиная лапка)
Кукуруза, картофель, ананас, банан, табак, рис, брахиария, хризантема, пшеница, виды гвоздики, ктенанте, ахмея (эхмея), сциндапсус, капуста (Brassica), диффенбахия
Хризантема, цикорий, томат, подсолнечник, картофель, морковь, патрениум (дикий хинин), эуфорбия
Банан
Диффенбахия, томат
пользуется для распознавания штаммов Dickeya spp. (Nassar et al., 1994).
ПЦР все чаще применяют для обнаружения и идентификации р. Dickeya (совместно всех видов Dickeya). Наиболее широко применяемые тесты для изоляции этой группы основаны на ADE праймеров (ADE1/ADE2) из pectate лиазы (PEL) гена (Nassar et al., 1996). Альтернативный метод ПЦР, разработанный группой авторов (Toth et al., 1999, 2001) позволяет выявлять мягкогнилостные возбудители р. Erwiniae как в качестве единой группы, так и с дифференциацией отдельных ее патогенов. Другие варианты ПЦР-анализов также возможны для диагностики (Smid et al., 1995; van der Wolf et al., 1995). Комбинированный метод для одновременного обнаружения Dickeya spp. и Р. atrosepticum, предложенный на основе мультиплексной ПЦР, имеет некоторые преимущества в скорости (Diallo et al., 2009). Выявление Dickeya spp. с помощью ИФА-метода, монокло-нального анализа и ПЦР-теста с успехом осуществлено рядом зарубежных ученых (Nassar et al., 1996; Singh et al., 2000; van der Wolf et al., 2006; Toth et al., 2011; Tsror et al., 2011). Аналогичных результатов добились и отечественные авторы при использованени ИФА-диагностикума (Карлов и др., 2010, 2011; Карлов, 2011), который позволяет выявлять бактерии D. dianthicola в клубневом экстракте. В случае обычного варианта ИФА нижний порог чувствительности колеблется в пределах 105-2 х 104 клеток/мл, а при применении БИО-ИФА выявляют даже 2 клетки в 1 мл. Отметим также, что эти авторы считают, что общепринятыми биохимическими тестами не представляется возможным разграничить D. dianthicola и D. solani (Карлов, 2011). Поэтому для разграничения этих близкородственных микроорганизмов придется прибегать к ПЦР- или ИФА-диагностике.
Некоторые авторы для выделения бактерий Dickeya spp. рекомендуют селективную пектатную среду с кри-сталл-виолетом (Cuppels, Kelman, 1974). Недавно предложены модифи-
кации двуслойной среды для изоляции как обеих разновидностей Pectobacterium, так и Dickeya spp. (Hyman et al., 2001; Bdliya, Langerfeld, 2005). Культивирование на этой среде при различных режимах температуры и с добавлением эритромицина предложено для разграничения P. atrosepticum, P. carotovorum и Dic-keya spp. при их изоляции из растительного материала (Pe rombelon, Hyman, 1986), однако Janse J.D. и Spit B.E. (1989) отмечают не всегда стабильные ее результаты. Дифференциальная среда, основанная на характерном выделении бактерией Dickeya spp. голубого (синего) не растворимого в воде пигмента индиго-идина, недавно продемонстрирована при разграничении Dickeya spp. и мягкогнилостных Pectobacterium spp. (Lee, Yu, 2006). На картофельно-дек-строзном агаре двухсуточные колонии D. dianthicola представляют собой по форме округлые выпуклые, гладкие или скульптурные с изрезанными краями (в зависимости от содержания влаги в питательной среде). Через 4-5 суток они напоминают по форме жареные яйца - крупный приподнятый розовый центр в окаймлении изрезанного поля, позднее становящимся кораллового цвета (Lelliott, Stead, 1987). Carter B. (Англия) сообщает, что при выделении бактерия D. solani дает характерные желтые колонии на картофельно-дек-строзном агаре и ряде неселективных сред (Toth et al., 2011).
Специалисты (Toth et al., 2011) отмечают способность видов Dickeya spp., в отличие от P. atrosepticum, проявлять свои симптомы на картофеле не только в прохладных и влажных условиях, но и в теплых широтах (в том числе Северной Америки, Африки, Израиля и самой континентальной Европы). Это вызывает серьезную обеспокоенность зарубежных картофелеводов из-за возможности более широкого распространения и увеличения вредоносности черной ножки благодаря взаимозаменяемости этих пектолитических патогенов (P. atrosepticum и видов Dickeya spр.) при различных погодных условиях. Также
высказывается предположение, что климатические изменения (повышение температуры весной и летом) могли повлечь за собой проблемы с теплолюбивыми видами Dickeya spр., особенно с высокоагрессивным D. solani, который на протяжении последних 5-6 лет вызывает наибольшие потери урожая картофеля. Из-за широкого диапазона растений-хозяев (в том числе и декоративных культур), бактериальная инфекция может получить широкое распространение в мире не только через торговлю семенным и продовольственным картофелем, но и через коммерческую продажу цветочных растений. Учитывая возможность переноса Dickeya spр. также через речную или оросительную воду, специалисты-фитобак-териологи должны быть постоянно готовы к расширению ареала и спектра поражаемых растений этими бактериями (уже имеются сведения об их вредоносности на луке, сахарной кукурузе).
В мировой практике отнесение изо-лятов, выделенных из ряда растений-хозяев (в том числе из картофеля), к D. dianthicola не всегда четко идентифицируется по патовару (Lelliott, Dickey, 1984) или биовару (Samson, Nassan-Agha, 1978). Без проведения же этих анализов сложно отнести эти изоляты непосредственно к конкретному виду Dickeya spр. Имеются сведения относительно выделения D. dianthicola из декоративных растений-хозяев в США, Колумбии, Японии и Новой Зеландии (Bradbury, 1986).
Для проявления симптомов бактериоза необходим более низкий уровень инфекции Dickeya spp., чем для P. atrosepticum. Так, в результате инфицирования только 10 бактериальными клетками D. solani и штаммами D. dianthicola (с более высокими оптимальными температурами) почти все клубни восприимчивого сорта оказались пораженными как при 21 °C, так и при 27 °C. В Польше отмечают, что штаммы D. solani вызывают более тяжелые потери, чем D. dianthicola, P. atrosepticum и P. carotovorum subsp. carotovorum (Lojkowska et al., 2010). Зато на основании результатов трех-
летних исследований Czajkowski R. et al. (2010) не выявлено особой разницы в заболеваемости картофеля между D. solaniи D. dianthicola. Tsror L. (Израиль) предлагает проводить сравнительную оценку агрессивности тестируемых штаммов D. solani сравнением клубневых биопроб (инкубация 48 ч при 30 °C), различающихся по весу загнившей ткани в диапазонах от 0,4 до 4 г (Toth et al., 2011).
Устойчивость сортимента картофеля к патогену. Пока отсутствуют четкие сведения в зарубежной литературе относительно устойчивости сортов картофеля к Dickeya spp. В то же время предварительные исследования английского специалиста Stead D.E. показывают, что все испытанные им сорта были неустойчивы к D. dianthicola, хотя по-разному страдали от проявления болезни (Toth et al., 2011). Czajkowski R. et al. (2010) сообщает, что D. solani способен колонизировать корни растений картофеля из почвы в течение суток, независимо от их поражения. В опытах этих авторов возбудитель был обнаружен в столонах и стеблях через 15 дней после инфицирования почвы. Высказывается мнение, что Dickeya spp. активнее оккупирует сосудистую систему растений картофеля, чем P. atro-septicum (Czajkowski et al., 2010; Toth et al., 2011). Хотя было сделано не сравнительное исследование, есть косвенные свидетельства того, что Dickeya spp. лучше оккупирует сосудистую систему растений картофеля, чем P. atrosepticum (Czajkowski et al., 2009a). Есть свидетельства, что нет существенных различий в скорости заселения материнского клубня между двумя возбудителями, хотя влияние температуры на такое разграничение возможно еще недооценено. Детальные исследования показывают, что Dickeya spp. и P. carotovorum subsp. carotovorum могут быть также обнаружены в высоких концентрациях в столонном конце клубней, в то время как оба патогена могут находиться в относительно небольших количествах в их кожуре или в более глубоких слоях их растительной ткани (Czajkowski et al., 2009). Но при этом
авторы не находят никакой связи относительно данного заключения в отношении обоих патогенов и различными сортами картофеля.
Источники инфекции. Известны факты выживания Dickeya spp. в сорных растениях, например, в Solanum dulcamara в Швеции (Olsson, 1985). В Израиле весной детально проанализирован дважды (2009-2010 гг.) бессимптомный растительный материал 12 местных сорняков (Cyperus rotun-dus, Orobanche aegyptiaca, Amaran-thus spinosus, Polygonum equiseti-forme, Chenopodium sp., Heliotropi-um sp., Centaurea iberica, Sorghum halepense, Malva nicaeensis, Cyno-don dactylon, Amaranthus blitum and Solanum elaeagnifolium) на предмет наличия Dickeya spp. В обоих сезонах инфекция этой группы бактерий была выявлена в многолетнике С. rotun-dus - 6,7 % (2009 г.) и 14,3 % (2010 г.) (Toth et al., 2011). Таким образом, следует предполагать, что дикие растения-хозяева способны оказывать существенное влияние на выживание и распространение этих микроорганизмов.
Также имеются многочисленные сведения, что фитопатоген D. dadantii тесно связан с некоторыми насекомыми. Так, он способен вызывать гибель гороховой тли Acyrthosiphon pisum (Grenier et al., 2006; Coste-chareyre et al., 2010). Grenier A.-M. et al. (2006) добавляет, что этот микроорганизм характеризуется низкой патогенностью для трех видов насекомых (дрозофилы Melanogaster, Sitophilus oryzae и Spodoptera litto-ralis). Это означает, что данная бактерия может сохраняться некоторое время в их мертвых или живых телах.
Бактерии Dickeya spp. менее морозостойки в почве, успешно выживают и переносятся через речную воду, в отличие от микроорганизма E. caro-tovora.
Меры борьбы. Независимо от источника инфекции последствия незамеченного проявления и невнимания к Dickeya spp. могут быть очень серьезными. Незамеченная вспышка бактериоза картофеля от Dickeya spp. может сильно нарушить систему се-
меноводства и промышленного выращивания картофеля. Ведь ранее система защиты картофеля от черной ножки, особенно серодиагностика и сортимент, разрабатывалась применительно к РесЮЬа^епит эрр. В некоторых странах введены жесткие требования к качеству семенного материала в отношении Dickeya эрр.; в Израиле эти микроорганизмы даже объявлены карантинными объектами (Тэгог е1 а1., 2009), а в Шотландии в 2010 г принято решение ввести так называемую нулевую «терпимость» в отношении всех Dickeya эрр. для отечественного семенного материала картофеля. Это важно понимать и в плане сложности диагностики этих новых патогенов при экспорте семенного и продовольственного картофеля в Россию.
Защитные мероприятия, рекомендуемые для Dickeya эрр., по существу такие же, как и со всеми бактериозами картофеля. Сводятся они, как правило, к соблюдению всех приемов агротехники и использованию здорового семенного клубневого материала. Несомненно, картофелеводы должны качественно подготавливать поля под культуру, исключая возможное затопление из-за проливных дождей во время вегетации. Своевременно проводить цикл боронований и окучиваний, чтобы успешно сформировалась корневая система и надземные органы. Обязательна выбраковка и удаление зараженных клубней во время выращивания, уборки и сортировки.
В регионах, где отсутствует Dickeya эрр., меры безопасности должны быть направлены на предотвращение ввоза возбудителя из районов его активного проявления. Наиболее вероятным источником D. dianthicola и D. эо1ап являются, прежде всего, инфицированные клубни семенного картофеля ^итЬ е1: а1., 1986;. Lau-п!а е1 а1., 2006; Siawiak е1 а1., 2009а; Тэгог е1 а1., 2009).
Кроме того, ТоИ1 L. е1 а1. (2011) предполагают, что вероятным вариантом ухода от бактериальной инфекции Dickeya эрр. может послужить создание определенных картофелевозде-лывающих зон, полностью свободных
от О/скеуа-инфекции, где будут созданы особые условия для культивирования картофеля.
К сожалению, эффективные пестициды, позволяющие подавить внутреннюю инфекцию бактериозов, пока отсутствуют. Но отдельные препараты способны уничтожить бактерии на поверхности клубней. Учитывая очень близкое сходство биологических свойств бактерий групп Р. сагоЮ¥огит эиЬэр. carotovorum и Оскеуа эрр., полностью поддерживаем мнение московских ученых (Игнатов, www.zizh.ru;
Карлов, 2011) о возможности применения фитобактериомицина (фитола-вина-300) против патогенов второй группы путем предпосадочного протравливания семенных клубней и обработки растений картофеля во время вегетации (Бушкова, Лазарев, 1984; Лазарев, 1989). Так, столичными коллегами доказана его эффективность против бактерии D. dianthicola в концентрациях выше 40 мг/л (in vitro).
Хотя биологические особенности бактерий D. dianthicola и D. solani неплохо изучены группой вышеупомя-
нутых отечественных специалистов, пока еще точно не определен его штаммовый состав на территории как европейской части, так и всей страны. Кроме того, в настоящее время неизвестна плотность их распространения по регионам, поэтому новая «черная ножка», вероятно, может представлять серьезную проблему при ее диагностике для семеноводства культуры, а также для карантинной службы ввиду больших закупок страной значительных партий экспортного картофеля.
Поздравляем ветерана
29 апреля исполнилось 80 лет В.А. Шапе - первому директору бывшего Всесоюзного научно-исследовательского института биологических методов защиты растений (г Кишинев). Созданный на базе Молдавского филиала ВИЗР этот институт сыграл заметную роль в развитии биологических методов в СССР, координируя работу, ведущуюся в различных регионах страны и обогащая арсенал берущихся на вооружение сельского хозяйства страны биологических средств и методов собственными исследованиями. На долю молодого ученого выпала нелегкая задача становления нового научного учреждения, призванного обеспечить альтернативу доминировавшему тогда химическому методу защиты растений.
Выходец из коренных слоев населения, Всеволод Антонович родился в многодетной крестьянской семье в многонациональном селе Гертоп Григориопольского района. В 1949 г. с отличием окончил школу, в 1953 г. - Кишиневское училище виноградарства и виноделия, а в 1957 г. - Кишиневский СХИ по специальности плодоводство и виноградарство. Работая по специальности, защитил кандидатскую диссертацию.
Возглавляемый молодым ученым институт быстро приобрел всесоюзную известность. Были подобраны талантливые кадры, среди которых преобладала молодежь из Молдавии. Наметилась актуальная тематика исследований - изучение видового состава и экологических особенностей энтомофагов важнейших вредителей сельскохозяйственных культур, путей их сохранения, накопления и активизации в агроценозах. Были обосно-
ваны технологические процессы производства и применения энтомофагов и акарифагов. Проведены идентификация и отбор вирусов и микроорганизмов, разработаны технологии их применения. Заметным вкладом стали работы института по идентификации и синтезу новых половых феромонов, разработке технологий их применения. Успехам института способствовал созданный при Всеволоде Антоновиче климат творчества и тесного взаимодействия ученых с другими научными учреждениями Молдавии и всего государства.
В.А. Шапа - автор более 200 научных публикаций по защите персика, яблони, груши, грецкого ореха, винограда, пшеницы. Он был членом редколлегий журналов «Защита растений», «Садоводство, виноградарство и виноделие Молдовы», заместителем председателя правления Молдавского общества охраны природы.
В 1976 г. В.А. Шапа был направлен в зарубежную командировку, где трудился 4 года. Вернувшись в 1980 г. в Молдавию, он руководил лабораторией защиты растений в НИИ плодоводства. Сейчас ученый на заслуженном отдыхе.
Заслуги и достижения В.А. Шапы в научно-производственной деятельности отмечены многими медалями и почетными грамотами.
Ученые ВИЗР желают Всеволоду Антоновичу хорошего здоровья, благополучия и долгих лет жизни.
В.А. ПАВЛЮШИН, директор ВИЗР, академик Россельхозакадемии
4 Защита и карантин растений № 6, 2013
