CC BY
11
УДК 617-089.844 doi:10.21685/2072-3032-2021-4-7
Морфологические изменения тканей передней брюшной стенки и толстой кишки при моделировании параколостомической грыжи в различные сроки после операции
К. И. Сергацкий1, В. И. Никольский2, М. Г. Федорова3, В. Е. Киселев4, А. С. Ивачев5, А. Д. Захаров6
1,2,3,4,5,6Пензенский государственный университет, Пенза, России
[email protected], [email protected], [email protected], [email protected], [email protected], [email protected]
Аннотация. Актуальность и цели. В настоящее время в мире отмечен рост количества операций по поводу колоректального рака, аномалий развития, травм толстой кишки, заканчивающихся выведением колостомы. Использование ксеноперикар-диальной пластины в качестве эндопротеза при параколостомических грыжах актуально. Цель исследования - изучение особенностей репаративных процессов, а также результатов интеграции ксеноперикарда при его имплантации в апоневроз наружной косой мышцы живота в области грыжевых ворот и стенки кишки, выведенной в качестве колостомы. Материалы и методы. В эксперименте на кроликах породы шиншилла моделировали выведение колостомы с последующей интраабдоминальной имплантацией заранее подготовленного герниопротеза из ксеноперикарда и полипропиленовой сетки. Результаты. Выполнен сравнительный анализ особенностей роста соединительной ткани в зонах имплантации путем подсчета количества фиб-робластов и фиброцитов. Проведена оценка различий в процессах развития воспаления и неоваскуляризации в областях интеграции ксеноперикарда и сетчатого эндопротеза. Выводы. Воспалительная реакция при имплантации в зону апоневроза и кишечной стенки как ксеноперикардиальной пластинки, так и сетки регрессирует к концу месяца после операции. Однако контакт синтетического материала со стенкой кишки приводит к выраженным некротическим изменениям, распространяющимся вплоть до подслизи-стого слоя, чего не отмечено после имплантации биологического материала. Таким образом, в тех случаях пластики, когда возможен контакт имплантата с кишечной стенкой, использование биологических материалов предпочтительнее.
Ключевые слова: параколостомическая грыжа, ксеноперикард, сетчатый эндопро-тез, колостома
Для цитирования: Сергацкий К. И., Никольский В. И., Федорова М. Г., Киселев В. Е., Ивачев А. С., Захаров А. Д. Морфологические изменения тканей передней брюшной стенки и толстой кишки при моделировании параколостомической грыжи в различные сроки после операции // Известия высших учебных заведений. Поволжский регион. Медицинские науки. 2021. № 4. С. 86-99. doi:10.21685/2072-3032-2021-4-7
Morphological changes in anterior abdominal wall and large intestine tissues while modeling paracolostomic hernia in various times after operation
K.I. Sergatskiy1, V.I. Nikol'skiy2, M.G. Fedorova3, V.E. Kiselev4, A.S. Ivachev5, A.D. Zakharov6
© Сергацкий К. И., Никольский В. И., Федорова М. Г., Киселев В. Е., Ивачев А. С., Захаров А. Д., 2021. Контент доступен по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 License / This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.
u,3A5,6penza state University, Penza, Russia
[email protected], [email protected], [email protected],
[email protected], [email protected], [email protected]
Abstract. Background. Currently, an increase in the number of operations for colorectal cancer, developmental anomalies, and large intestine trauma resulting in the removal of a colostomy is noted in the world. The use of a xenopericardial plate as an endoprosthesis for paracolostomy hernias seems to be relevant. The purpose of the research is to study the features of reparative processes, as well as the results of the integration of the xenopericar-dium during its implantation into the aponeurosis of the external oblique muscle of the abdomen in the area of the hernial orifice and the intestinal wall, removed as a colostomy. Materials and methods. In an experiment on rabbits of the chinchilla breed, the removal of a colostomy was simulated, followed by intra-abdominal implantation of a previously prepared hernioprosthesis from a xenopericardium and a polypropylene mesh. Results. A comparative analysis of the features of the connective tissue's growth in the zones of implantation was carried out by counting the number of fibroblasts and fibrocytes. Differences in the development of inflammation and neovascularization in the areas of integration of xenoper-icardium and mesh endoprosthesis were assessed. Conclusions. The inflammatory reaction upon implantation into the zone of the aponeurosis and the intestinal wall of both the xen-opericardial plate and the mesh regresses by the end of the month after the operation. However, the contact of the synthetic material with the intestinal wall leads to pronounced ne-crotic changes extending up to the submucosal layer, which was not observed after implantation of the biological material. Thus, in those cases of plastic surgery, when the contact of the implant with the intestinal wall is possible, the use of biological materials is preferable. Keywords: paracolostomy hernia, xenopericardium, mesh endoprosthesis, colostomy
For citation: Sergatskiy K.I., Nikol'skiy V.I., Fedorova M.G., Kiselev V.E., Ivachev A.S., Zakharov A.D. Morphological changes in anterior abdominal wall and large intestine tissues while modeling paracolostomic hernia in various times after operation. Izvestiya vys-
shikh uchebnykh zavedeniy. Povolzhskiy region. Meditsinskie nauki = University proceedings. Volga region. Medical sciences. 2021;(4):86-99. (In Russ.). doi:10.21685/2072-3032-2021-4-7
Введение
В настоящее время в мире отмечен рост количества операций по поводу колоректального рака, аномалий развития, травм толстой кишки, заканчивающихся выведением колостомы [1, 2]. По данным Всемирной организации здравоохранения, число пациентов с выведенной стомой на 100 тыс. населения составляет 100-150 человек, из них 38,2-50,8 % - лица трудоспособного возраста. Выведение колостомы оказывает существенное влияние на повседневную жизнь пациента. Появление ранних и поздних стомальных осложнений служит важным фактором снижения качества жизни [3, 4].
Существуют определенные факторы, предрасполагающие к возникновению параколостомических грыж (ПКСГ): возраст, ожирение, парастомаль-ные воспалительные осложнения, любые факторы, сопровождающиеся повышением внутрибрюшного давления, выведение кишки за пределы прямой мышцы живота, создание широкого канала в мышечно-апоневротическом слое передней брюшной стенки, варианты фиксации брюшины к коже, формирование отверстия в бандаже на уровне стомы в послеоперационном периоде [5].
Случается так, что кишечная стома устанавливается пожизненно, когда выполнение реконструктивно-восстановительных операций на пищевари-
тельной трубке невозможно. Наличие пожизненной колостомы уже создает для больного сложности в психологическом плане, а колостома, осложненная параколостомической грыжей, еще больше снижает уровень качества жизни у данных пациентов. У грыженосителей обычно наблюдается деформация живота, грубые послеоперационные рубцы, ограничение физической активности. Частота возникновения параколостомических грыж составляет до 48 % при выведении постоянных концевых колостом [6, 7]. Несмотря на появление новых способов формирования колостомы и оперативных приемов, направленных на профилактику возникновения грыж, эти осложнения до сих пор остаются в ряду самых важных проблем колоректальной хирургии.
В основном во время выполнения герниопластики ПКСГ используются синтетические протезы с антиадгезивным покрытием. Однако осложнения, связанные с их имплантацией, встречаются достаточно часто.
Использование ксеноперикардиальных протезов клапанов сердца и сосудов нашло свое применение в практике сердечно-сосудистых хирургов [8]. Также были выполнены многочисленные исследования, в которых при наличии грыж живота в качестве пластического материала был применен ксено-перикард [9]. Результаты этих исследований доказывают преимущества биологического материала по сравнению с синтетическим.
Также были проанализированы научные работы, в которых установлена выраженная воспалительная реакция при эндопротезировании сеткой, а также наличие риска разволокнения данных протезов после герниопластики [10]. Попыткой выхода из сложившейся ситуации может явиться применение модифицированного ксеноперикарда. Способов использования ксенопери-кардиальной пластины в случае наличия у пациентов ПКСГ в доступной литературе не обнаружено.
В связи с этим целью данного исследования явилось изучение морфологических изменений тканей передней брюшной стенки и стенки толстой кишки, особенностей интеграции биологического материала и их сравнение с таковыми при использовании синтетического протеза для герниопластики при моделировании параколостомической грыжи в различные сроки после операции на лабораторных животных в эксперименте.
1. Материал и методы
На 18 лабораторных животных под воздействием ингаляционного наркоза произведено моделирование наложения концевой колостомы на переднюю брюшную стенку и ПКСГ. Затем в зависимости от группы лабораторных животных произведено два вида герниопластики:
1) интраабдоминальная имплантация заранее подготовленного гернио-протеза из ксеноперикардиальной пластины (9 животных); при этом часть эндопротеза со стороны шероховатой поверхности имплантата была обращена к толстой кишке, а гладкая - к апоневрозу;
2) интраабдоминальная имплантация полипропиленового сетчатого эндопротеза («Линтекс», г. Санкт-Петербург) аналогичным способом (9 животных).
В качестве экспериментальных животных были выбраны 18 половозрелых кроликов-самцов (по 9 в каждой группе в зависимости от выполненного оперативного вмешательства) породы шиншилла массой не менее 3,5 кг и не более 5 кг. Группы животных были сравнимы по основным параметрам (р > 0,05).
Экспериментальное исследование было выполнено на базе АО «Технопарк высоких технологий» (г. Пенза) в условиях специально оборудованного вивария в соответствии с приказом Минздрава СССР от 11.10.1983 и № 267 МЗ РФ от 19.06.2003, требованиями «Европейской конвенции о защите позвоночных животных, используемых для экспериментов или в иных научных целях» (Страсбург, 1986), международными правилами Guide for the Care and Use of Laboratory Animals (Washington, D.C.; 1996), принципами ГОСТ 330442014 «Надлежащая лабораторная практика».
Из эксперимента кроликов выводили путем передозировки эфира через 7, 14 и 30 дней после хирургического пособия. Из зоны операции для дальнейшего исследования забирали участки кишечной стенки и участок апоневроза наружной косой мышцы живота с частью имплантированного ксенопе-рикарда и аналогичные участки мягких тканей с частью сетчатого эндопроте-за. Ткань подвергалась делению на фрагменты размером 1^1 см. После стандартной проводки получали парафиновые блоки. Получали необходимые по толщине микропрепараты (7-8 мкм), которые впоследствии подвергались окраске гематоксилином-эозином и исследованию на микроскопе Carl Zeiss с фотографической насадкой Axioskop.
Было получено по три микрофотографии с каждого подготовленного предварительно препарата. Затем вели количественное изучение клеточного состава ткани в области хирургического вмешательства: подсчитывали число клеток соединительной ткани, воспалительных элементов и площадь сосудистого русла. В составе клеток соединительной ткани выделяли фибробласты и фиброциты [11]. Также вели подсчет количества нейтрофильных лейкоцитов и лимфоцитов как представителей клеток воспалительного ряда. Число клеточных элементов и площадь кровеносных сосудов определяли в 10 полях зрения на каждом микропрепарате при увеличении ><400 и ><100 соответственно.
Результаты обрабатывали с помощью программы Statistica 6.0. При этом вычисляли среднее количество клеток в поле зрения, ошибку средней. Все данные проверяли на нормальность распределения по критерию Манна -Уитни. Распределение во всех группах было близко к нормальному. Достоверность различий между группами определяли при помощи непараметрического критерия Колмогорова - Смирнова. Различия считали достоверными при степени вероятности более 95 % (p < 0,05).
2. Результаты
Через неделю от начала эксперимента в препаратах, где был использован сетчатый эндопротез, в кишечной стенке отмечали умеренную воспалительную лимфо-лейкоцитарную инфильтрацию, количество клеток в среднем составляло 55,4 ± 7,3 в поле зрения, стенка кишки была отечна, гиперемиро-вана, с небольшими участками кровоизлияний (рис. 1). При этом были видны очаги десквамированного кишечного эпителия и участки некротизированной кишечной стенки, некроз затрагивал серозную оболочку, распространяясь до мышечного и местами до подслизистого слоя (рис. 2). Шовный материал лежал свободно в окружающих тканях и не оставался в препарате. Количество клеток соединительной ткани (фибробластов и фиброцитов) составляло 55,1 ± 5,2 в поле зрения. Отмечено появление молодых сосудов, относительная площадь их сечения достигала 2,8 ± 1,9 %.
/ Шч&ж
Рис. 1. Воспалительный инфильтрат в толще кишечной стенки (сетка, 7 сут, гематоксилин-эозин, х400)
Рис. 2. Кровоизлияние среди воспалительного инфильтрата в кишечной стенке (сетка, 7 сут, гематоксилин-эозин, х400)
В толще апоневроза также присутствовали воспалительно-клеточные элементы (нейтрофильные лейкоциты и лимфоциты), в среднем 47,3 ± 2,2 клетки в поле зрения. Наблюдали выраженный отек, полнокровие сосудов и рассеянные очаги кровоизлияний (рис. 3). Нити сетки также свободно лежали среди элементов соединительной ткани без прикрепления к ним. Количество фибробластов и фиброцитов превышало их число в области стенки кишки и составило 64,2 ± 3,1 в поле зрения. Площадь сечения новообразованных сосудов была 3,3 ± 0,7 %.
При обработке результатов по окончании 1 недели в препаратах с ксе-оперикардом в зоне прикрепления ксеноперикардиальной пластины к кишечной стенке была отмечена умеренная воспалительно-клеточная инфильтрация, при этом в толщу имплантата воспалительные элементы не проникали (рис. 4). Число данных клеток составляло 43,5 ± 2,4 в поле зрения. Стенка кишки была отечна, гиперемирована. Пластинка ксеноперикарда плотно при-
легала к соединительной ткани серозной оболочки кишки. Количество клеток соединительной ткани было 60,1 ± 3,6. В зоне имплантации ксеноперикарда кровеносные сосуды образовывались активнее и площадь их сечения составляла 5,5 ± 1,3 %.
Рис. 3. Полнокровные сосуды в толще апоневроза (сетка, 7 сут, гематоксилин-эозин, х100)
Рис. 4. Рыхлая соединительная ткань в зоне соединения ксеноперикарда и серозной оболочки кишки. Умеренная инфильтрация (ксеноперикард, 7 сут, гематоксилин-эозин, х400)
Участки соединения ксеноперикардиальной пластины с апоневрозом были умеренно инфильтрированы лейкоцитами и лимфоцитами - количество клеток превышало количество их в области стенки кишки и достигло 48,2 ± 1,7 в поле зрения (рис. 5). Апоневроз представлял собой полнокровную соединительную ткань, плотно прилежащую к имплантату. Число фибробла-стов и фиброцитов составило 67,8 ± 4,3 клетки в поле зрения. В плотной со-
единительной ткани апоневроза васкуляризация прослеживалась несколько хуже, чем в стенке кишки, площадь сечения кровеносных сосудов составляла 4,2 ± 0,5 %
Рис. 5. Ксеноперикардиальные волокна с поверхностной нейтрофильной инфильтрацией (ксеноперикард, 7 сут, гематоксилин-эозин, х400)
Через 2 недели при использовании сетки воспалительная инфильтрация сохранялась в виде рассеянных скоплений клеток, число их достигало 31,4 ± 1,5 в поле зрения (рис. 6). Отмечено утолщение серозной оболочки кишки. Образованная соединительная ткань содержала хаотически расположенные коллагеновые и эластические волокна: 70,8 ± 3,7 соединительнотканных клеток в поле зрения. При этом сохранялись признаки некротических изменений, которые были отмечены через 7 дней после имплантации; часть некротизированной ткани подвергалась организации и была замещена соединительной тканью. Отмечено нарушение гистологической структуры кишечной стенки. Увеличилось количество новообразованных сосудов до 3,3 ± 0,1 %.
Рис. 6. Новообразованная соединительная ткань в зоне имплантации с хаотичным расположением волокон и тонкостенными сосудами (сетка, 14 сут, гематоксилин-эозин, х100)
В зоне апоневроза также отмечали разрастание рыхлой волокнистой соединительной ткани (рис. 7). Она, как и в стенке кишки, была незрелой, но с меньшим количеством кровеносных сосудов. Число фиброцитов и фиб-робластов составило 78,3 ± 4,2 в поле зрения. Относительная площадь кровеносных сосудов составила 4,6 ± 0,2 %. Количество клеток лейкоцитарного ряда уменьшилось до 28,8 ± 0,6 в поле зрения.
Рис. 7. Незрелая соединительная ткань в зоне прикрепления сетки к апоневрозу (сетка, 14 сут, гематоксилин-эозин, х100)
При использовании ксеноперикардиальной пластины (через 14 сут) воспалительная инфильтрация стенки кишки также сохранилась, хотя и отмечено значительное уменьшение количества клеток: 23,6 ± 2,9 в поле зрения. Обнаружены участки взаимного проникновения соединительной ткани серозной оболочки кишки и волокон ксеноперикарда (рис. 8). Количество соединительнотканных элементов увеличилось и составило 81,9 ± 3,4 клетки в поле зрения. Отмечен рост кровеносных сосудов, площадь их сечения составила 6,9 ± 1,2 %.
В области апоневроза также продолжались процессы заживления, однако менее активные, чем в области стенки кишки. Воспалительная инфильтрация уменьшилась до 22,3 ± 1,7 клетки в поле зрения. Число клеток соединительной ткани в зоне апоневроза было больше, чем в стенке кишки, так как была обнаружена более плотная соединительная ткань: 85,1 ± 2,6 клетки в поле зрения. Рост сосудов микроциркуляторного русла незначительно отстал от данного показателя в стенке кишки, но значительно превзошел цифры, полученные при исследовании зоны имплантации сетки: 6,1 ± 0,8 %.
На крайних сроках исследования (30 сут) после интеграции сетчатого эндопротеза воспалительно-клеточная инфильтрация в зоне кишечной стенки отмечена в незначительном количестве. Продолжено образование соединительной ткани, врастающей в некротизированные участки стенки кишки. Отмечено значительное некротическое нарушение структуры кишечной стенки, при этом фрагменты сетки обнаруживали в разных слоях кишки. Количество фибробластов и фиброцитов составило 73,8 ± 4,5 клетки в поле зрения. Пло-
щадь сечения кровеносных сосудов сохранилась практически на прежнем уровне: 3,9 ± 1,1 %.
ш ' \
\_. J
ÀL
-'¿■ЧЕТ—
2
1
Рис. 8. Прорастание собственной соединительной ткани (1) в волокна ксеноперикарда (2) (ксеноперикард, 14 сут, гематоксилин-эозин, х400)
В апоневрозе воспалительные изменения были представлены отдельными клетками лейкоцитарного ряда. Волокна апоневроза также «прирастали» к волокнам сетки. Количество клеток соединительной ткани составило 82,1 ± 5,1 в поле зрения. Площадь сечения кровеносных сосудов увеличилась незначительно - до 5,3 ± 0,7 %
Анализ результатов интеграции ксеноперикарда показал, что через месяц воспалительная инфильтрация в кишечной стенке и апоневрозе значительно снизилась (рис. 9).
V-V
, * t " » »
г >>/-;
■ V • •• • m гяв
1 1
■'■ ' ; " si i ЖШ
•Л h : -У- V-- / ' ' g
'мчу 1гди л»" я
hk, 'Утл
■ Î4I
йЫ
ШЯВЯПЩШ „-.w
Л ' Р -ir vir
il MП№ЛХ .-■ ï'.r.t« 'Л
¡t» (i /
2
f • ' M. ■ « * t * : ' j«> r.
Ж м v Л VA- - ■ ч >Ьл -г. • л ■■
Рис. 9. Место соединения собственной соединительной ткани (1) и ксеноперикардиального имплантата с проросшей в него соединительной тканью (2) (ксеноперикард, 30 сут, гематоксилин-эозин, х100)
Произошло проникновение волокон и клеток соединительной ткани в толщу ксеноперикарда. Четкой границы между имплантатом и собственными тканями организма не отмечено. Количество клеток соединительной ткани в стенке кишки составило 83,5 ± 2,8 в поле зрения, в апоневрозе -88,7 ± 3,6. Площадь сечения кровеносных сосудов в стенке кишки увеличилась и составила 7,9 ± 2,8 %, в апоневрозе - 7,6 ± 0,4 %.
Сравнительные показатели клеток воспалительного ряда, соединительной ткани и относительной площади сосудов микроциркуляторного русла в тканях в различные сроки после имплантации ксеноперикарда и сетчатого имплантата зоне апоневроза передней брюшной стенки и выведенной в качестве колостомы толстой кишки в результате эксперимента представлены в табл. 1 и 2.
Таблица 1
Сравнительные морфологические показатели в различные сроки после имплантации ксеноперикарда и полипропиленовой сетки в области апоневроза передней брюшной стенки (М ± БО)
Сроки Морфологические показатели Апоневроз Уровень значимости
после операции Полипропиленовая сетка Ксеноперикард
Клетки воспалитель-
ного ряда (клетки 47,3 ± 2,2 48,2 ± 1,7 р > 0,05
в поле зрения)
Фибробласты /
7 сут фиброциты (клетки в поле зрения) 64,2 ± 3,1 67,8 ± 4,3 р > 0,05
Относительная
площадь сосудов микроциркуляторного 3,3 ± 0,7 4,2 ± 0,5 р < 0,05
русла(%)
Клетки воспалитель-
ного ряда (клетки 28,8 ± 0,6 22,3 ± 1,7 р > 0,05
в поле зрения)
Фибробласты /
14 сут фиброциты (клетки в поле зрения) 78,3 ± 4,2 85,1 ± 2,6 р < 0,05
Относительная
площадь сосудов микроциркуляторного 4,6 ± 0,2 6,1 ± 0,8 р > 0,05
русла (%)
Клетки воспалитель-
ного ряда (клетки 7,2 ± 0,1 2,1 ± 0,2 р < 0,05
в поле зрения)
Фибробласты /
30 сут фиброциты (клетки в поле зрения) 82,1 ± 5,1 88,7 ± 3,6 р < 0,05
Относительная
площадь сосудов микроциркуляторного 5,3 ± 0,7 7,6 ± 0,4 р < 0,05
русла(%)
Таблица 2
Сравнительные морфологические показатели в различные сроки после имплантации ксеноперикарда и полипропиленовой сетки в области толстой кишки (М ± БО)
Сроки после операции Морфологические показатели Кишечная стенка Уровень значимости
Полипропиленовая сетка Ксеноперикард
7 сут Клетки воспалительного ряда (клетки в поле зрения) 55 ± 7,3 43,5 ± 2,4 р > 0,05
Фибробласты / фиброциты (клетки в поле зрения) 55,1 ± 5,2 60,1 ± 3,6 р > 0,05
Относительная площадь сосудов микроциркуляторного русла ( %) 2,8 ± 1,9 5,5 ± 1,3 р < 0,05
14 сут Клетки воспалительного ряда (клетки в поле зрения) 31,4 ± 1,5 23,6 ± 2,9 р > 0,05
Фибробласты / фиброциты (клетки в поле зрения) 70,8 ± 3,7 81,9 ± 3,4 р < 0,05
Относительная площадь сосудов микроциркуляторного русла ( %) 3,3 ± 0,1 6,9 ± 1,2 р < 0,05
30 сут Клетки воспалительного ряда (клетки в поле зрения) 8,4 ± 0,3 2,6 ± 0,2 р < 0,05
Фибробласты / фиброциты (клетки в поле зрения) 73,8 ± 4,5 83,5 ± 2,8 р < 0,05
Относительная площадь сосудов микроциркуляторного русла(%) 3,9 ± 1,1 7,9 ± 1,5 р < 0,05
3. Обсуждение
Как показали полученные результаты эксперимента, при имплантации ксеноперикарда, а также сетчатого эндопротеза в случае их интеграции в апоневроз и кишечную стенку наблюдается достаточно выраженная воспалительная реакция в мягких тканях. При этом уже на первом этапе (7 сут после имплантации) была отмечена более выраженная васкуляризация тканей с ксеноперикардом по сравнению с полипропиленовой сеткой. Через 2 недели от начала эксперимента отмечена тенденция к стиханию воспаления в зоне операции в обоих случаях, количество клеток воспалительного ряда в тканях, интегрированных с сеткой, было несколько больше. Через 1 месяц после проведения эксперимента в полученных препаратах было отмечено формирование достаточно плотной по своей структуре соединительной ткани, которая интегрировалась с полипропиленовым эндопротезом и ксеноперикардом. При
этом наилучшая васкуляризация отмечена с ксеноперикардиальной пластиной. Воспалительный ответ к окончанию эксперимента значительно уменьшался. В то же время уже на первой неделе исследования после имплантации сетчатого протеза были отмечены очаги десквамированного кишечного эпителия и участки некротизированной кишечной стенки, некроз затрагивал серозную оболочку, распространяясь до мышечного и местами до подслизисто-го слоя. К концу эксперимента было отмечено выраженное нарушение гистологической структуры кишечной стенки, интегрированной с синтетическим протезом, а также значительное ее некротическое изменение.
Заключение
Использование ксеноперикардиальной пластины, как и протеза из синтетических материалов, при имплантации в зону апоневроза передней брюшной стенки и стенки толстой кишки вызывает достаточно выраженный воспалительный ответ, который регрессирует к концу месяца после операции. Ре-паративные процессы после имплантации биологических и синтетических эндопротезов протекают по одинаковому сценарию. Однако контакт синтетического материала со стенкой кишки приводит к выраженным некротическим изменениям, распространяющимся вплоть до подслизистого слоя, чего не отмечено после имплантации биологического материала.
Таким образом, в тех случаях пластики, когда возможен контакт им-плантата с кишечной стенкой, использование биологических материалов предпочтительнее.
Список литературы
1. Аюпов Р. Т. Современные подходы к лечению распространенного колоректально-го рака // Креативная хирургия и онкология. 2010. № 3. С. 32-36.
2. Янышев А. А., Базаев А. В., Кокобелян А. Р., Абелевич А. И. Современные методы профилактики парастомальных грыж (обзор) // Современные технологии в медицине. 2018. Т. 10, № 3. С. 175-183.
3. Бочар В. Т. Оцшка якост життя пацieнтiвi з парастомними ускладненнями // Л^вський медичний часопис. 2015. № 1. С. 55-60.
4. Тулупов М. С. Профилактика парастомальных осложнений у пациентов с кишеч-нойстомой // Аспирантские чтения - 2017 : материалы науч.-практ. конф. c Меж-дунар. участием «Научные достижения молодых ученых XXI века в рамках приоритетных направлений стратегии научно-технологического развития страны». Самара : СамГМУ, 2017. С. 39-40.
5. Каторкин С. Е., Журавлёв А. В., Тулупов М. С., Разин А. Н. Хирургическое лечение пациентов с колостомой и параколостомической грыжей после операции Гартмана // Колопроктология. 2018. № 2S (64). С. 50.
6. Came P. W., Robertson G. M., Frizelle F. A. Parasternal hernia // Br. J. Surg. 2003. Vol. 90, № 7. P. 784-793.
7. Токмаков И. А., Юданов А. В., Ганичева И. А., Говорков Р. В., Задильский Р. П. Профилактика осложнений кишечных стом // Колопроктология. 2016. № S1 (55). С. 114.
8. Столяров М. С. Клинико-функциональная оценка пластики сонных артерий заплатой из ксеноперикарда, обработанного диэпоксисоединениями, при каротид-ной эндартерэктомии : автореф. дис. ... канд. мед. наук. Новосибирск, 2008. 23 с.
9. Никольский В. И., Титова Е. В., Феоктистов Я. Е. Ксеноперикардиальные имплан-таты в герниологии // Медицинские импланты : материалы Междунар. науч.-практ. конф. / под ред. В. А. Лазаренко, А. И. Бежина, В. А. Липатова, И. Л. Приваловой ; ГБОУ ВПО «Курский государственный медицинский университет» Минздрава России. Курск : ООО «МедТестИнфо», 2016. С. 84.
10. Зюлькин Г. А. Обоснование и оценка эффективности применения полиэфирных имплантатов при герниопластике послеоперационных вентральных грыж : авто-реф. дис. ... канд. мед. наук. Пенза, 2012. 23 с.
11. Афанасьев Ю. И., Юрина Н. А., Котовский Е. Ф. [и др.]. Гистология, эмбриология, цитология. 6-е изд., перераб. и доп. М. : Гэотар-Медиа, 2012. 800 с.
1. Ayupov R.T. Modern approaches to the treatment of advanced colorectal cancer. Krea-tivnaya khirurgiya i onkologiya = Creative surgery and oncology. 2010;(3):32-36. (In Russ.)
2. Yanyshev A.A., Bazaev A.V., Kokobelyan A.R., Abelevich A.I. Modern methods of prevention of parastomal hernias (review). Sovremennye tekhnologii v meditsine = Modern technologies in medicine. 2018;10(3):175-183. (In Russ.)
3. Bochar V.T. Assessment of life quality in patients with parastomal diseases. L'vivs'kiy medichniy chasopis = Lviv medical journal. 2015;(1):55-60.
4. Tulupov M.S. Prevention of parastomal complications in patients with intestinal stoma. Aspirantskie chteniya - 2017: materialy nauch.-prakt. konf. c Mezhdunar. uchastiem "Nauchnye dostizheniya molodykh uchenykh XXI veka v ramkakh pri-oritetnykh naprav-leniy strategii nauchno-tekhnologicheskogo razvitiya strany" = Postgraduate Readings - 2017: proceedings of scientific and practical conference with International participation "Scientific achievements of young scientists of the 21st of the century in the framework of the priority areas of the strategy of scientific and technological development of the country ". Samara: SamGMU, 2017:39-40. (In Russ.)
5. Katorkin S.E., Zhuravlev A.V., Tulupov M.S., Razin A.N. Surgical treatment of patients with colostomy and paracolostomy hernia after Hartmann's operation. Koloprok-tologiya = Coloproctology. 2018;(2S):50. (In Russ.)
6. Carne P.W., Robertson G.M., Frizelle F.A. Parastomal hernia. Br. J. Surg. 2003;90(7):784-793.
7. Tokmakov I.A., Yudanov A.V., Ganicheva I.A., Govorkov R.V., Zadil'skiy R.P. Prevention of complications of intestinal stoma. Koloproktologiya = Coloproctology. 2016;(S1):114. (In Russ.)
8. Stolyarov M.S. Clinical and functional assessment of carotid artery plasty with a xen-opericardium patch treated with diepoxy compounds in carotid endarterectomy. PhD abstract. Novosibirsk, 2008:23. (In Russ.)
9. Nikol'skiy V.I., Titova E.V., Feoktistov Ya.E. Xenopericardial implants in herniology. Meditsinskie implanty: materialy Mezhdunar. nauch.-prakt. konf. = Medical implants: proceedings of an International scientific and practical conference. Kursk: OOO «MedTestInfo». 2016:84. (In Russ.)
10. Zyul'kin G.A. Substantiation and evaluation of the effectiveness of the use of polyester implants in hernioplasty of postoperative ventral hernias. PhD abstract. Penza, 2012:23. (In Russ.)
11. Afanas'ev Yu.I., Yurina N.A., Kotovskiy E.F. [et al.]. Gistologiya, embriologiya, tsitologiya. 6-e izd., pererab. i dop. = Histology, embryology, cytology. The 6th edition, revised and added. Moscow: Geotar-Media. 2012:800. (In Russ.)
References
Информация об авторах / Information about the authors
Константин Игоревич Сергацкий доктор медицинских наук, доцент, профессор кафедры хирургии, Медицинский институт, Пензенский государственный университет (Россия, г. Пенза, ул. Красная, 40)
E-mail: [email protected]
Konstantin I. Sergatskiy
Doctor of medical sciences, associate
professor, professor of the sub-department
of surgery, Medical Institute, Penza State University (40 Krasnaya street, Penza, Russia)
Валерий Исаакович Никольский
доктор медицинских наук, профессор, профессор кафедры хирургии, Медицинский институт, Пензенский государственный университет (Россия, г. Пенза, ул. Красная, 40)
E-mail: [email protected]
Valeriy I. Nikol'skiy Doctor of medical sciences, professor, professor of the sub-department of surgery, Medical Institute, Penza State University (40 Krasnaya street, Penza, Russia)
Мария Геннадьевна Федорова
кандидат медицинских наук, доцент, заведующий кафедрой клинической морфологии и судебной медицины с курсом онкологии, Медицинский институт, Пензенский государственный университет (Россия, г. Пенза, ул. Красная, 40)
E-mail: [email protected]
Владислав Евгеньевич Киселев ординатор кафедры хирургии, Медицинский институт, Пензенский государственный университет (Россия, г. Пенза, ул. Красная, 40)
E-mail: [email protected]
Mariya G. Fedorova Candidate of medical sciences, associate professor, head of the department of clinical morphology and forensic medicine with a course of oncology, Medical Institute, Penza State University (40 Krasnaya street, Penza, Russia)
Vladislav E. Kiselev
Resident of the sub-department of surgery, Medical Institute, Penza State University (40 Krasnaya street, Penza, Russia)
Александр Семенович Ивачев доктор медицинских наук, профессор, профессор кафедры хирургии, Медицинский институт, Пензенский государственный университет (Россия, г. Пенза, ул. Красная, 40)
E-mail: [email protected]
Aleksandr S. Ivachev Doctor of medical sciences, professor, professor of the sub-department of surgery, Medical Institute, Penza State University (40 Krasnaya street, Penza, Russia)
Артем Дмитриевич Захаров ординатор кафедры хирургии, Медицинский институт, Пензенский государственный университет (Россия, г. Пенза, ул. Красная, 40)
E-mail: [email protected]
Artem D. Zakharov
Resident of the sub-department of surgery, Medical Institute, Penza State University (40 Krasnaya street, Penza, Russia)
Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов / The authors declare no conflicts of interests.
Поступила в редакцию / Received 10.09.2021
Поступила после рецензирования и доработки / Revised 17.10.2021 Принята к публикации / Accepted 12.11.2021
