CC BY
56
Таблица 7
Экономическая эффективность проведенных исследований (в среднем по группе)
Показатель Группа
I II III IV
Скормлено за период выращивания корнов, кг 413,66 417,37 410,06 424,62
Скормлено кормовой добавки, г: - глауконита -антивира - микосорба - фугата пробиотика биоспорина, мл - 1042,2 15960 1229,3 15680 425,5 16240
Стоимость скормленных кормов, руб. 4798,20 4841,31 4756,43 4925,4
Стоимость кормовой добавки, руб. - 255,03 241,35 320,19
Стоимость кормов и кормовой добавки, руб. 4798,20 5096,34 4997,78 5245,59
Получено прироста живой массы,кг 197,411 207,480 186,480 199,636
Произведено прироста живой массы, кг:
- в расчете на каждые скормленные 100 кг корма 47,73 49,71 45,48 47,02
в % к I группе 100 104,1 95,3 98,5
- в расчете на каждые скормленные 1000 руб. корма 41,14 40,71 37,31 38,06
в % к I группе 100 99,0 90,7 92,5
Дополнительно получено прироста живой массы (± к I группе), кг - +10,069 -2,250 -2,225
Стоимость дополнительно полученного прироста живой массы (± к I группе), руб. - +755,18 -177,75 -175,78
МОРФОЛОГИЧЕСКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА ЯИЧНИКА И ЯЙЦЕВОДА ПЕРЕПЕЛОК НА МОМЕНТ УГАСАНИЯ ЯЙЦЕКЛАДКИ
А. К). САВЕЛЬЕВА,
аспирант, Красноярский ГАУ, г. Красноярск
Ключевые слова: перепел, угасание яйцекладки, яичник, фолликулы, яйцевод, атрезия фолликулов, эпителиоциты, железистый эпителий
Еще Гиппократ сказал, что "наши пищевые вещества должны быть лечебными средствами, а лечебные средства - пищевыми веществами". Это высказывание в полной мере можно отнести к продукции перепеловодства, которая шаг за шагом уверенно завоевывает российский рынок.
Самки одомашненных перепелов начинают нести яйца в возрасте 45-48 дней, в год одна перепелка "производит" 250-300 яиц, что составляет 2,5 кг яичной массы. Угасает процесс яйцекладки к 8-9 месячному возрасту [1].
Ранее нами были изучены морфофункциональные особенности яичников и яйцеводов перепелов раннего периода онтогенеза [2]. В настоящей работе представлены результаты исследований репродуктивных органов перепелов на момент снижения и угасания яйцекладки.
Цель и методика исследований Целью нашей работы явилось изучение морфологических особенностей яичника и яйцевода перепелок на момент угасания яйцекладки. Объектом исследования послужили самки японского перепела (Coturnix coturnix japónica) 8-месячного возраста, разводимые на территории парка флоры и фауны "Роев
Ручей" г. Красноярска.
Материалом для исследования служили яичники и яйцеводы перепелок. Для отбора материала птицу декапитирова-ли и обескровливали. Органы взвешивали на аналитических весах и определяли их линейные размеры. Материал фиксировали в 10%-ном растворе нейтрального формалина, промывали под проточной водой, обезвоживали путем последовательного проведения через батарею спиртов возрастающей крепости и уплотняли в парафине по общепринятой методике. Поперечные срезы толщиной 5-7 мкм, изготовленные на санном микротоме, депарафинировали и окрашивали гематоксилином Эрлиха и эозином, коллагеновые волокна соединительной ткани выявляли по методу Ван-Гизон, эластические волокна - ре-зорцин-фуксином. Микроскопию окрашенных препаратов проводили под световым микроскопом MS 100 (Austria), при увеличении в 100, 400, 1000 раз.
Макроскопически яичник перепелок на момент угасания яйцекладки серорозового цвета, поверхность бугристая вследствие выступающих фолликулов, масса в среднем составляет 0,78±0,08 г. С поверхности органа в грудобрюшную полость свешиваются единичные
Птицеводство
Литература
1. Гулюшин С.Ю. и др. Использование минеральной добавки из природного глауконита для профилактики хронических микотоксикозов у цыплят-бройлеров. - ВНИИТиП, Сергиев Посад, 2007. - 35 с.
2. Егоров И.А., Андриянова Е.Н. Применение глауконита для профилактики миктоксико-зов у бройлеров. - ВНИИТиП, Сергиев Посад, 2006,- Юс.
3. Кондрахин, И.П. Методы ветеринарной клинической лабораторной диагностики. - М.: КолосС, 2004. - 520 с.
4. Кузнецов С.Г. Природные цеолиты в кормлении животных // Зоотехния. -1993.
5. Никитин В.М. Справочник методов иммунологии.-Кишинев: Штининца, 1982. -С.207.
6. Фисинин В.И. и др. Использование природных цеолитов в птицеводстве//Методические рекомендации ВНИТИП. - Загорск,1990. - 24 с.
7. Шадрин А.М., Жуков Г.А. Определение экономической эффективности применения природных цеолитов в животноводстве и птицеводстве: Рекомендации / РАСХН. - Новосибирск: Сиб отд. ИЭВСиДВ, 2000. - 24 с.
8. Шаронов A.C. Метод определения секреторной функции лейкоцитов //Методические рекомендации. - Владивосток, 1989. -12 с.
крупные фолликулы, основная масса фолликулов представлена мелкими и средними. В отдельных случаях желтков мы не обнаружили, что может свидетельствовать о замедлении или прекращении фолликулогенеза.
Микроскопически паренхима органа делится на корковый и сосудистый слои, граница между которыми обозначена нечетко. Снаружи яичник покрыт зачатковым эпителием, эпителиоциты кубической или призматической формы, и только в участках с выступающими крупными фолликулами они плоские. Белочная оболочка имеет волокнистое строение. Корковый слой представлен фолликулами на разных стадиях развития -примордиальными и первичными в фазах малого, медленного и быстрого роста, а также стромальными интерстициальными клетками. Примордиальные фолликулы окружены слоем плоских фолликулярных клеток, залегающих на базальной мембране. Первичные фолликулы на стадии малого роста окружены однорядным, а на стадии медленного роста многорядным кубическим фолликулярным эпителием, вокруг которого
Coturnix coturnix, extinction oviposition, ovary, follicles, oviduct, follicular atresia, epithelial cell, glandular epithelium
начинает формироваться тека. Быстрорастущие и созревающие фолликулы немногочисленны, окружены многорядным кубическим или призматическим эпителием, образующим гранулезный слой вокруг блестящей зоны. Тека состоит из гладкомышечного, соединительнотканного и сосудистого слоев. Интерстициальные клетки теки представлены фиб-робластами, макрофагами, малодифференцированными клетками. В совокупности блестящая зона, фолликулярный эпителий и слои теки формируют гематофолликулярный барьер вокруг растущего фолликула. Однако нами были обнаружены лишь единичные фолликулы, в которых шло формирование полноценного барьера. В большинстве фолликулов гранулезный слой прерывистый, происходит отслаивание эпителиального пласта от базальной мембраны, наблюдаются пикнотические изменения ядер фолликулоцитов. Гладкомышечный слой развит недостаточно, стенки отдельных сосудов капиллярной сети подвержены гиалиновому перерождению (рис.1). Вышеперечисленные признаки могут свидетельствовать о нарушении трофической функции фолликулярного слоя, недостаточности кровоснабжения и газообмена в растущем фолликуле, что неизбежно ведет к гибели ооцита.
Большую долю коркового вещества яичника занимают атретические тела. Значительное число фолликулов не достигает стадии зрелости, а претерпевает атрезию - перестройку деструктивного характера, что также характерно для других видов сельскохозяйственной птицы [3]. Блестящая зона утрачивает свою форму и становится складчатой, утолщается и гиалинизируется.
Рис.1. Гематофолликулярный барьер в стадии разрушения, окраска гематоксилин-эозин, ув. 100х
Рис. 2. Атрезия фолликула, краска Ван Гизон, ув. 100 х.
Одновременно гибнут и клетки зернистого слоя, подвергаясь кариопикнозу, кариорексису и в конечном итоге карио-лизису, погибающие клетки отрываются от базальной мембраны и рассеиваются в массе желтка. Интерстициальные клетки теки, наоборот, усиленно размножаются, и в ходе дальнейшей инволюции на месте атретических тел остаются скопления интерстициальных клеток. Такие изменения характерны для железистой атрезии. Нами, кроме того, выявлено жировое и кистозное перерождение фолликулов (рис. 2). Посто-вуляторные фолликулы единичны, их полость заполнена фолликулярными клетками и текальными интерстиоци-тами. Пространство между фолликулами и атретическими телами обширно и заполнено межфолликулярной рыхлой соединительной тканью, представленной фибробластами, макрофагами, гистиоцитами, плазматическими и малодифференцированными клетками и коллагеновыми волокнами.
Сосудистый слой яичника перепела в период снижения и угасания яйцекладки состоит из рыхлой соединительной ткани, в которой проходят сосуды кровеносного русла разного калибра, залегают пучки гладких мио-цитов, многочисленные коллагеновые волокна, нервные узлы.
Яйцевод перепелок на момент угасания яйцекладки представляет собой трубкообразный орган длиной 5-7 см и массой 0,76±0,028 г. Складчатость на поверхности и в полости яйцевода выражена слабо, диаметр увеличивается в направлении каудальной части, соот-
Рис. 3. Заращение просвета яйцевода, окраска гематоксилинэозин, ув. 100 х
Рис. 4. Деструктивные изменения собственной пластинки слизистой оболочки яйцевода, окраска Ван Гизон, ув. 400 х
Птицеводство
ветствующей скорлуповому отделу от
0,2 до 0,5 см. Макроскопически деление яйцевода на отделы не выражено.
Микроскопически яйцевод перепелок, утративших способность яйценоскости, состоит из трех оболочек. Слизистая оболочка на всем протяжении формирует складки, форма, количество и высота которых варьирует по отделам. Наиболее высокие складки 0,3-1,0 мм нами зафиксированы в каудальной половине яйцевода, соответствующей перешейку. В белковом отделе и матке высота складок составляет 0,2-0,7 мм. Просвет яйцевода в запустевшем состоянии, отдельные складки из-за уменьшения диаметра просвета соприкасаются и срастаются своими апикальными концами, вследствие чего наблюдается заращение просвета на отдельных участках (рис. 3). В скорлуповом отделе, как в наиболее широком, уменьшение диаметра обусловлено укладыванием стенок яйцевода друг на друга и упрощением ветвистости складок.
Слизистая оболочка яйцевода выстлана псевдомногослойным реснитчатым эпителием, клеточный состав которого представлен реснитчатыми, безреенитчатыми, камбиальными и бокаловидными клетками. Бокаловидные клетки малочисленны, их секреторная активность снижена. В собственной пластинке слизистой оболочки наблюдается нарушение архитектоники на протяжении всего яйцевода. Так, во всех секретирующих отделах яйцевода мы наблюдаем значительное сокращение числа трубчатых желез или полное их исчезновение, отдельные железы сливаются друг с другом, образуя лакуны. В толще складок происходит разроет элементов соединительной ткани, разрушение базальных мембран и атрофия трубчатых желез, гиалиновая дистрофия структур поделизисто-го слоя и стенок мелких кровеносных сосудов (рис. 4). Клетки собственной пластинки и подслизистого слоя представлены фибробластами, макрофагами, плазматическими клетками, лимфоцитами, гладкими миоцитами, гистиоцитами, а также отслоившимися с базальных мембран эпителиоцитами.
В мышечном слое деструктивные изменения выражены слабее. В отдельных гладких миоцитах наблюдаем набухание и вакуолинизацию цитоплазмы и ядер, кариорексис, кариолизис. Прослойки между гладкомышечными пучками обширны и заполнены рыхлой соединительной тканью и кровеносными сосудами разного калибра. Наружная соединительнотканная оболочка яйцевода покрыта мезотелием.
Выводы
Угасание яйцекладки у японских препелок сопровождается деструктивными изменениями в органах яйцеобразования. В корковом слое яичника значительное число фолликулов на разных стадиях развития не достигает стадии зрелости, а подвергается
Животноводство
атрезии, число быстрорастущих и созревающих фолликулов незначительно. Деление яйцевода на отделы не выражено. По всей его длине в толще слизистой наблюдаются явления атрофии желез, гиалиноза стенок кровеносных сосудов, разроста соединитель-
нотканных элементов и замещение ими железистой и мышечной частей яйцевода. Вышеперечисленные морфологические изменения репродуктивных органов перепелок 8-ми месячного возраста свидетельствуют об угасании их функциональной активности,
чем объясняется резкое снижение яйцеобразования и яйцекладки в этом возрасте.
Литература
1. Сидорова А.Л, Птицеводство и технология производства яиц и мяса птицы: учеб. пособие. - Красноярск: Краснояр. гос. аграр. ун-т, 2002. - С. 27-29.
2. Савельева А.Ю, Морфология яичников японского перепела раннего постнатального периода онтогенеза // Проблемы современной аграрной науки: Материалы международной заочной научной конференции. - Красноярск, 2007. - С. 53-55.
3. Житенко Н.В, Морфологическая дифференцировка яичника индейки в различные периоды онтогенеза: автореф. дисс... канд. биол, наук: 03.00.16. - Екатеринбург: Изд-во УГСХА, 2006, - 16 с.
ИЗМЕНЕНИЕ БЕЛКОВОГО СПЕКТРА КРОВИ КОРОВ ПРИ ПРИМЕНЕНИИ ПРЕПАРАТА "СЕЛЕМАГ"
A.B. БУЧ ЕЛЬ (фото),
аспирант
И.А. ЛЫКАСОВА,
доктор ветеринарных наук, профессор,
Уральская ГАВМ, г. Троицк, Челябинская область
Ключевые слова: препарат "Селемаг", спектр крови, коровы симментальской породы.
Многочисленными исследованиями установлено, что селен, является незаменимым биологически активным веществом, эффективным при лечении многих болезней у всех видов животных. Содержится во всех органах и тканях, обладает антиоксидантным действием, стимулирует рост и развитие организма, участвует во взаимодействии белков и ферментов, входит в состав аминокислот, обеспечивает нормальное функционирование иммунной системы.
Для поддержания правильного обмена веществ и профилактики заболеваний, связанных с дефицитом селена, необходимо адекватное пополнение его в рационах. Поскольку зона Южного Урала является селенодефицитной зоной, недостаток селена в кормах животных восполняется в основном за счет непосредственного введения селеносодержащих препаратов.
Цель и методика исследования
Наша цель, - изучить влияние селеносодержащего препарата "Селемаг" на уровень белкового обмена сыворотки крови коров симментальской породы австрийской селекции, завезенных в техногенную провинцию Южного Урала, поскольку белковый обмен играет существенную роль в физиологических процессах организма.
Опыт был провели на базе технологического комплекса по производству молока ООО "Ясные Поляны", Троицкого района, Челябинской области. Продолжительность эксперимента составила 11 месяцев. Объектом исследо-
вания были первотелки симментальской породы 2,5 летнего возраста, средней живой массой 550 кг, из которых по принципу аналогов были сформированы четыре группы коров (по десять коров в каждой группе).
Животным опытных групп в кормовой рацион добавляли препарат "Селемаг", представляющий собой водный раствор токоферола ацетата (25 мл) и натрия селенита (2,2 мл или 1 мг селена) согласно следующей схеме:
1 опытная - за месяц до и через один месяц после отела.
2 опытная - за два месяца до и через один месяц после отела.
3 опытная - через один и два месяца после отела.
Препарат в указанные сроки добавляли в рацион однократно по 25 мл на голову. До начала научно-производ-ственного опыта были установлены фоновые показатели сыворотки крови импортного скота через 14 дней после завоза их в хозяйство; через пять месяцев после этого были исследованы пробы крови для установления исходных данных. Затем ежемесячно у опытных коров брали кровь из ярёмной вены утром до приема корма и воды. Исследование биохимического состава сыворотки крови в динамике опыта проводили ежемесячно (три месяца).
Биохимическое исследование сыворотки крови завезенного импортного скота показало, что имеет место нарушение белкового обмена. Так, в крови нетелей было установлено пониженное
.содержание общего белка 67,68±0,89 г/л (таблица 1), что на 6% ниже физиологических нормативов. Одновременно были выявлены изменения фракционного состава белка в сыворотке - содержание альфа-глобулинов было ниже средней физиологической нормы на 28,37%; бета-глобулинов на 7,38%; гам-ма-глобулинов на 14,46% соответственно при одновременно высоком содержании альбуминов. Так, концентрация альбуминов в сыворотке крови составила 48,71 ±0,58%, что на 10,7% выше средней физиологической нормы. Изменения показателей белкового обмена позволяют предположить, что длительная транспортировка животных, сопровождающаяся длительным транспортным и кормовым стрессом, и вызвала изменения белковообразовательной функции печени.
Анализ белкового состава крови коров через пять месяцев после завоза импортного скота на территорию Южного Урала показал, что продолжается процесс нарушения белкового равновесия. Так, содержания общего белка в сыворотке крови коров всех опытных групп увеличено по сравнению с фоновыми показателями на 4,83-24,16%. Изменения глобулиновых фракций носили противоречивый характер, так концентрация альфа-глобулинов в сыворотке крови всех опытных групп была ниже физиологической нормы, а содержание бета-глобулинов было выше на 3,0-17,37% верхней границы физиологической нормы. Наряду с увеличением общего белка и бета-глобулиновых фрак-
"Selemag" preparation, blood spectrum, cows of simmentalskaya strain.
