CC BY
21
УДК: 619:611.83.617-089.578.16:636.8
Ключевые слова: Интрамезовариальная блокада, яичниковые и краниальные маточные нервы, собака, пушные звери семейства собачьих, анатомо-топографическое и клиническое обоснование
Key words: Intramesovarial block, ovarian and cephalic uterine nerves, a dog, fur-bearing animals of Canidae family, anatomical topographic and clinical reasoning
Скубко О.Р.
МОРФОФУНКЦИОНАЛЬНОЕ ОБОСНОВАНИЕ ИНТРАМЕЗОВАРИАЛЬНОЙ БЛОКАДЫ ЯИЧНИКОВЫХ И КРАНИАЛЬНЫХ МАТОЧНЫХ НЕРВОВ У СОБАК
MORPHOFUNCTIONAL REASONING OFINTREMESAVARIAL BLOCK OF OVARIAN AND CEPHALIC UTERINE NERVES OF DOGS
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Омский государственный аграрный университет имени П.А.Столыпина», Институт Ветеринарной Медицины и Биотехнологии
Federal State-Funded Educational Institution of Higher Education «Omsk State Agrarian University n.a. P.A. Stolypin»,
Institute of Veterinarian Medicine And Biotechnology
Скубко Олег Романович, к.в.н., доцент, (+7) 3812 23 00 89, [email protected]
Skubko Oleg, PhD, Associate professor, (+7) 3812 23 00 89, [email protected]
Аннотация. Яичниковые и краниальные маточные нервы у собак располагаются в виде густопетлистого сплетения в мезоварии на уровне его перехода на яичниковую сумку. Здесь отсутствуют сложные замкнутые фасциальные чехлы жировых отложений, прослойка соединительной ткани вокруг нервных волокон рыхлая и существенно тоньше, чем на периферии яичниковой сумки. Установленные морфологические особенности яичникового и краниального маточного сплетений, а также окружающих их структур предопределяют легкость инъекции и свободную диффузию введенных растворов вдоль поддерживающей связки яичника на значительные площади. Интрамезовариальная блокада яичниковых и краниальных маточных нервов у собак проводится внутриоперационно. Это позволяет безопасно и небольшой дозой анестетика провести обезболивание или патогенетическое лечение яичниковой сумки, мезометрия, яичника и краниальной части рогов матки. Техника инъекционного доступа для ее проведения, следующая: через разрез брюшной стенки яичниковая и маточная брыжейки выводятся в просвет операционной раны оперативного доступа. Затем вводят инъекционную иглу в толщу мезовария в непосредственной близости от яичниковой сумки и рога матки на глубину 3-4 сантиметра. Инъецируют 1% раствор новокаина или лидо-каина для обезболивания, либо 0,5% раствор новокаина с патогенетической целью. Доза в обоих случаях составляет от 3мл. у мелких пород собак и до15 мл. раствора анестетика для крупных и гигантских пород с одной стороны тела. Патогенетический эффект выражался в нормализации основных клинических параметров у животных экспериментальной группы в течение первых 24 часов после операции. В течение всего последующего времени наблюдений (14 дней) эти показатели также оставались в пределах физиологической нормы.
Summary. Ovarian and cranial uterine nerves of dogs are located as a thickly looped interlacement in the place of junction of a mesovarian ligament onto an ovarian bursa. Complex close-looped fascial boxes of body fat are absent here, a layer of connective tissue around nerve fibers is quaggy and much thinner than on the periphery of an ovarian bursa. Revealed morphological traits of ovarian and cranial uterine plexus as well as structures around them predetermine easiness of injection andfree diffusion of fluids introduced along an ovarian suspensory ligament by large areas. Intremesavarial block of dog ovarian and cranial uterine nerves is held interoperatively. This allows conducting an anaesthesis or pathogenetic treatment of an ovarian bursa, a mesometrium, an ovary and uterine horn cranial sector safely and by means of a small doze of anaesthetic. The technique of its conduction is as follows: through discussion in abdominal wall an ovarian and uterine mesenteries are driven into a lumen of surgical approach incisional wound. Then one introduces an injection needle into full-thickness mezovarium in proximity to an ovarian bursa and uterine horn to a depth of 3-4 cm. One injects one-percent novocaine or lidocaine fluid for anesthesia or half-a-percent novocaine fluid for the pathogenetic purpose. In both cases the doze equal to 3 ml for small dog breeds and up to 15 ml - for large and giant dog breeds on one side of a body. Pathogenetic effect consisted in recovery of experimental group of animals basic clinical characteristics within the first 24 hours after the surgery. During following 14-day supervision these characteristics had being stuck within normal limits.
Введение
Новокаиновые блокады симпатических и парасимпатических нервов остаются одним из наиболее эффективных, действенных, легко выполнимых и относительно безопасных средств патогенетической терапии и, одновременно, местного обезболивания внутренних органов. У крупных копытных животных отмечено широкое использование блокад центров автономной нервной системы при острых незаразных заболеваниях, в том числе и хирургических [4, 5, 10]. Однако в лечебной работе клиник мелких животных наблюдается ограниченное применение подобных средств воздействия. Для всего многообразия современных пород собак и кошек до сих пор применяются способы транссоматических блокад автономных нервов области живота по И.Я. Тихонину и по В.В. Мосину [2, 6, 7, 9], разработанные главным образом для крупных животных и действующие на отдаленные от внутренних половых органов источники иннервации, что снижает их эффективность. Парасакральная блокада по И.А. Калашнику и пресакральная по П.Р. Пульняшенко [4, 7] показана для проведения обезболивания и патогенетического лечения области промежности, ануса, прямой кишки, мочевого пузыря, шейки, тела матки и наружных половых органов. Вну-триоперационно, до предлагаемого способа интрамезовариальной блокады, применялся лишь способ плоскостного струйного орошения мезентерия, мезометрия, мезовария, большого и малого сальника, а также органов брюшной полости у собак растворами новокаина и совкаина, реализующийся после ла-паротомии [4, 8]. Однако он небезопасен из-за риска отравления большим количеством анестетиков в зоне интенсивной тканевой и сосудистой резорбции и малоэффективен в силу слабой акцентированности воздействия в отношении конкретных органов и тканей брюшной полости.
Цель работы - предложить внутриопераци-онную методику блокад нервов яичников и матки у собаки домашней. Задачи исследования:
- уточнить органо - и гистотопические особенности нервов яичников и матки у собаки домашней;
- разработать технику внутриоперацион-ного оперативного доступа для проведения блокад нервов яичников и матки у собаки домашней;
- оценить влияние внутриоперационной блокады нервов яичников и матки, проведенной путем интромезовариального введения анестетика на изменения некоторых вегетативных функций и гемотологических показателей у собаки домашней.
Материал и методы
Работа проводилась на кафедрах анатомии, хирургии и акушерства ИВМ и Б Омского ГАУ в период с 2001 по 2015 гг.
Объектами морфологических исследований служили трупы беспородных собак мезоморфного типа, подвергшихся эвтаназии в половозрелом возрасте по клиническим показаниям не связанным с заболеваниями мочеполовых органов. Методом обычного и тонкого препарирования по академику В.П. Воробьеву было изготовлено и изучено по 10 двусторонних препаратов, на которых была разработана техника посмертного введения красящего вещества (окрашенного черной тушью водного раствора латекса) в зону локализации яичниковых и краниальных маточных нервов. Для микротопографических исследований применялась окраска гистологических срезов гематоксилин-эозином, по Маллори, Вейгерту, Ван-Гизону, Нис-лю, Бильшовскому-Гросс [1]. Всего было изготовлено 1200 гистопрепаратов.
Материалом для клинико-физиологиче-ских исследований послужили 40 клинически здоровых беспородных собак в возрасте 3-6 лет, подвергнутых овариогистерэктомии. Животные были разделены на экспериментальную и контрольную группы по 20 в каждой. Операция проводилась по единой методике с оперативным доступом по белой линии живота. За 2-3 минуты до реализации оперативного приема, животным экспериментальной группы была проведена интра-мезовариальная внутриоперационная блокада яичниковых и краниальных маточных нервов. Клинические наблюдения, общие и биохимические показатели крови исследовали до и в последующие 14 суток после
операции. Кровь для биохимического анализа брали из вены сафена, для общего анализа из ушной вены за 3-4 часа до кормления. Уровень гемоглобина, СОЭ, количество эритроцитов, лейкоцитов в крови, лейкоформу-лу определяли общепринятыми методами [3] и с использованием гемоанализатора Vetscan НМ2. Биохимические показатели крови исследовали с использованием биохимического анализатора ScreenMasterTouch.
Результаты исследований
Анатомо-топографически яичниковые и краниальные маточные нервы располагаются в непосредственной близости друг от друга в виде густопетлистого сплетения в мезоварии на уровне его перехода на яичниковую сумку и поддерживающую связку яичника. Здесь отсутствуют сложные замкнутые фасциаль-ные чехлы жировых отложений, а рыхлая волокнистая соединительная ткань всегда развита и легкодоступна даже после неширокой лапаротомии в проекции яичников. Коллаге-новые и эластиновые волокна переплетаются с элементами нервной ткани в окружении основного вещества и большого количества жировых включений. В исследуемой зоне нет других, кроме рыхло распределенных волокон, структур. Необходимо отметить, что прослойка соединительной ткани вокруг околоорганных нервных волокон рыхлая и существенно тоньше, чем на периферии яичниковой сумки. Последнее свидетельствует о практически полном отсутствии препятствия для проникновения лекарственных растворов к околояичниковым нервным волокнам. Присутствие в составе основного вещества мезовария большого количества эластических волокон позволяет этой ткани восстанавливать пространственную организацию после растяжения. Установленные анатомо- и гистотопографические особенности околояичникового и краниального маточного сплетений, а также окружающих их структур предопределяют легкость инъекции исвободную диффузию введенных растворов вдоль поддерживающей связки яичника на значительные площади.
В результате проведенных исследований было установлено, что охват окрашенным раствором латекса всех нервных элементов
мезовария, поддерживающей связки яичника и краниальной части мезометрия обуславливает максимальную эффективность методики при ее использовании с целью обезболивания яичников и рога матки, и для патогенетического воздействия на эти органы.
Интрамезовариальная блокада яичниковых и краниальных маточных нервов осуществляется внутриоперационно после проведения лапаротомии в медианной, па-рамедианной областях, а также горизонтальных разрезов в области собственно и мягкого подвздохов, проводимых при лечебно-диагностических операциях на внутренних половых органах собак. Блокада предполагает введение растворов местных анестетиков до реализации оперативного приема в точке наиболее близкой локализации друг к другу яичниковых и краниальных маточных нервов, а именно в мезоварии вблизи яичниковой сумки. Техника инъекционного доступа для ее проведения, следующая: введенными через разрез брюшной стенки в полость шпателями или пальцами, яичниковая и маточная брыжейки и весь связанный с ними органокомплекс выводятся в просвет операционной раны оперативного доступа до легкого натяжения поддерживающей связки яичника соответствующей стороны тела, обнажая место перехода мезовария и дорсо-краниальной части мезометрия на яичник и краниальную часть рога матки. Затем иглой длиной 5-6 сантиметров, канюля которой соединена с переходником полихлорвиниловой трубки или канюлей шприца проводят вкол в толщу мезовария в непосредственной близости от яичниковой сумки и рога матки. Угол вкола 10-15 градусов к поверхности яичниковой брыжейки. Иглу медленно продвигают в мезовариальной рыхлой соединительной ткани на глубину 3-4 сантиметра, слегка отклоняя от продольной оси (до 10 градусов) стремясь распространить анестетик на максимальную площадь яичниковой и краниальной части маточной брыжеек. У крупных собак целесообразно ввести раствор и интра-лигаментарно - в поддерживающую связку яичника. Инъецируют 1% раствор новокаина или лидокаина для обезболивания, либо 0,5% раствор новокаина с патогенетической
целью. Доза в обоих случаях составляет от 3 мл. у мелких пород собак и до15 мл раствора анестетика для крупных и гигантских пород с одной стороны тела. С противоположной стороны проводят те же манипуляции, сразу по завершении предыдущих. Время выжидания до наступления обезболивания составляет 3-4 минуты.
Патогенетический эффект выражался в нормализации основных клинических параметров у животных экспериментальной группы в течение первых 24 часов после операции. В течение всего последующего времени наблюдений (14 дней) эти показатели также оставались в пределах физиологической нормы. При этом у всех животных экспериментальной группы аппетит и двигательная активность наблюдались уже в раннем послеоперационном периоде в течение первых 48 часов. Попытки разлизывания и разгрызания кожных швов не были отмечены. У животных экспериментальной группы операционные раны зажили без осложнений по первичному натяжению.
Картина крови и динамика ее изменения также свидетельствовли о положительном высокоэффективном влиянии блокады на коррекцию послеоперационного состояния у животных экспериментальной группы. Скорость оседания эритроцитов, первоначально в 1,5 раза превышавшая норму, нормализовалась к моменту повторного исследования (на 3 сутки после операции). При этом уровень гемоглобина оставался умеренно высоким на протяжении всего периода наблюдений на фоне небольшой эритремии (до 9,7 млн/мкл), вызванной абсолютным эритроцитозом с преобладанием нормо-и гиперхромных клеток, а также ретикулоци-тов. Эти факты, а также лейкограмма (регенеративный лейкоцитоз за счет увеличения сегментоядерных клеток с незначительным нейтрофильным сдвигом влево на фоне эози-нофилии (до 11%) и лимфоцитоза (до 52%) и увеличение общего белка сыворотки крови в основном за счет гамма-глобулинов, служат доказательством высокой сопротивляемости организма экспериментальных животных, быстрого посттравматического восстановления на фоне усиления гемопоэза
и клеточного иммунитета. Наиболее яркими эти изменения наблюдаются в ранний послеоперационный период, в первые 3-4 дня. Но и во время последующей реабилитации наблюдения свидетельствовали об усилении иммунобиологической реакции организма исследованных собак. При отсутствии дополнительного серьезного лечения подобный эффект мог быть обеспечен только влиянием интрамезовариальной блокады.
В контрольной группе первые признаки нормализации состояния у животных были отмечены на 2-3 дни после операции: снизилась температура, восстановились частота и качество пульса и дыхания. У части контрольных животных температура, пульс и дыхание пришли в норму на 4-9 дни послеоперационного периода. У одного на 10 день наблюдения после примененной антибиотико-терапии. У всех животных контрольной группы в первые 2 дня после операции отсутствовал аппетит (4 отказывались и от питья), отмечалась адинамия, вынужденные движения и позы. Нормализация аппетита и восстановление нормальной двигательной активности имели замедленную в сравнении с экспериментальными животными динамику от 2 до 10 дней. У всех контрольных животных отмечались регулярные попытки разлизывания и разгрызания кожных швов, которые приводили к развитию гнойно-лигатурных свищей, расхождению 2-3 стежков шва и глубокого серозно-гнойного дерматита вокруг него, в результате чего заживление кожной раны проходило по вторичному натяжению с формированием рубца.
Лабораторные исследования крови животных контрольной группы подтверждали клиническую картину. СОЭ нормализовалась не ранее 4 суток после операции. Уровень гемоглобина снижался до нормы лишь к 5-6 суткам после операции, причем это снижение не было постепенным, литическим и протекало при слабовыраженных анизохромии и анизоцитозе эритроцитов на фоне общей эритроцитопении.
Лейкограмма на фоне высокого лейкоцитоза также говорит о более тяжелом течении послеоперационного периода у большинства контрольных животных.
Лейкоцитарный профиль отличался нейтро-филией с резким регенеративным (в 10% случа-
ев с дегенеративным) ядерным сдвигом влево: до 80% сегментоядерных - и до 15% палочко-ядерных нейтрофилов, среди которых встречались единичные дегенеративные формы.
В 4% случаев отмечался лимфоцитоз на фоне агранулоцитоза, что в купе с резким дегенеративным нейтрофильным сдвигом влево свидетельствует о тяжелом воспалении, а также о снижении фагоцитарной активности вследствие истощения кроветворения.
Обсуждение результатов
Интрамезовариальная блокада яичниковых и краниальных маточных нервов у собак проводится внутриоперационно в силу невозможности проведения точечного, узконаправленного воздействия на эти нервы в предоперационный период. Она позволяет безопасно и небольшой дозой анестетика провести обезболивание или патогенетическое лечение поддерживающей связки яичника, мезовария, яичниковой сумки, мезосальпинкса, истинной связки яичника, дорсокраниальной части мезометрия, яичника и краниальной части рогов матки, а также максимально достоверно мано-визуально контролировать положения иглы, ее направления и глубины вкола в любой момент введения. Важнейшим эффектом блокады служит возможность значительного увеличения мобильности яичников и матки при необходимости их эвакуации в просвет операционной раны в силу снижения болезненности этих манипуляций и расслабления мышечных элементов яичниковых связок и брыжейки в местах их прикрепления к дорсолатеральной брюшной стенке, а также гладкой мускулатуры рогов матки. Это, в свою очередь, позволяет не только безболезненно, но и максимально атравматично и провести такие хирургические манипуляции как отшивание связок и брыжейки яичников и матки, которые у собачьих малоподвижны в силу значительного развития жировых отложений в рыхлой соединительной ткани мезовария и мезометрия. Эти манипуляции являются основой оперативного приема и профилактики кровотечения при проведении овариоэктомии, гистерэктомии и овариогистерэктомии. Кроме того, последующий патогенетический эффект блокады во многом снижает риск послеоперационных воспалительных осложнений.
Заключение
Предлагаемая нами техника внутриопе-рационного интрамезовариального инъекционного доступа безопасна как с точки зрения инъекционной травмы (абсолютно достоверный визуальный и пальпаторный контроль практически полностью исключает ее избыточность), так и в отношении возможности передозировки (для достижения клинического эффекта в силу точности доставки инъекта к объекту воздействия, требуется незначительное количество анестетика в 4-5 раз меньше чем при плоскостном орошении). Полученные результаты убедительно доказывают наличие положительного патогенетического эффекта интрамезовариальной блокады на течение и исход послеоперационного периода у собак, подвергшихся овариогистерэктомии.
Список литературы:
1. Афанасьев Ю.И. Основы гистологии и гистологической техники (Второе издание исправленное и дополненное) / Ю.И. Афанасьев, В.К. Балан-чук, Л.Л. Ванников, Н.В. Донских, Е.Ф. Котовский, Т.Г. Оганесян, М.Я. Субботин, А.Ф. Суханов. М.: Медицина, 1967. - С. 268.
2. Болезни собак / А. Д. Белов [и др.] - 3-е изд. -М., 1994. - С. 368.
3. Кондрахин И.П. Клиническая лабораторная диа-гностикавветеринарии: Справочноеиздание/И.П. Кондрахин, Н.В. Курилов, А.Г. Малахов и др. - М.: Агро-промиздат, 1985, - С. 287.
4. Магда И.И. Местное обезболивание / И.И. Маг-да. - М.: Сельхозгиз, 1955. - С.375-380. - (Руководство для ветеринарных врачей).
5. Мосин В.В. Новое в лечении незаразных болезней сельскохозяйственных животных / В.В. Мосин. -М.: Россельхозиздат, 1975. - С.30-32.
6. Паршин А. А. Хирургические операции у собак и кошек: монография / А. А. Паршин, В. А. Соболев,
B. А. Сазинов.- М.: Аквариум, 2003. - С. 232. - (Практика ветеринарного врача).
7. Пульняшенко П.Р. Анестезиология и реаниматология собак и кошек / П.Р. Пульняшенко - М.: «Аквариум», 2000. - С. 70.
8. Смирнов Л. Г., Решетняк В. В., Абрамова СП. Интраабдоминальный способ введения новокаина и его действие на собак. // Актуальные проблемы науки в АПК. - Материалы юбилейной межвузовской научно-практической конференции. - Кострома.-20001. - Т. 1.- С. 145.
9.Старченков, С. В. Болезни мелких животных /
C. В. Старченков.- СПб.: Лань, 1999. - С. 236.
10. Шакалов К.И. Патогенетическая терапия заболеваний животных / К.И. Шакалов. - М. - Л.: Сельхоз-издат, 1961. - С. 38-100.
