CC BY
48
7. Средние титры антител к ИБК в 230-суточном возрасте птиц
Корпус, № Средние титры % к ср. по
(весовая категория) антител возрасту
1 (средняя) 7876 65,14
2 (средняя) 15737 130,16
3 (средняя) 12835 106,16
4 (средняя) 10191 84,29
5(лёгкая) 9741 80,57
6 (тяжёлая) 16163 133,68
Ср. по возрасту (Х±Бх) 12090,5±1382,35
9. Средние титры антител к ИБК в 366-суточном возрасте птиц
Корпус, № Средние титры % к ср. по
(весовая категория) антител возрасту
1 (средняя) 20203 96,53
2 (средняя) 21923 104,75
3 (средняя) 14523 69,39
4 (средняя) 21728 103,82
5 (лёгкая) 30904 147,66
6 (тяжёлая) 16294 77,85
Ср. по возрасту (Х±Бх) 20929,17±2339,33
8. Средние титры антител к ИБК в 280-суточном возрасте птиц
Корпус, № Средние титры % к ср. по
(весовая категория) антител возрасту
1 (средняя) 20692 120,14
2 (средняя) 25033 145,35
3 (средняя) 19394 112,61
4 (средняя) 16270 94,47
5 (лёгкая) 12135 70,46
6 (тяжёлая) 9813 56,98
Ср. по возрасту (Х±Бх) 17222,83±2305,41
отмечены у птиц из корпуса № 5 с массой 1900 г и менее и составляли 147,66% от среднего показателя по возрасту (табл. 9).
Выводы. Анализируя значения средних титров по возрастным группам, можно отметить, что в целом происходит постепенное нарастание значений у птиц каждой следующей возрастной группы. Имеется период незначительного снижения значений в возрасте 210 и 230 сут., что может быть связано с перегруппировкой птиц в возрасте 120 сут. и выводом их на пик яйценоскости. Наши данные согласуются с исследованиями других учёных [7, 8]. Далее титры антител продолжали постепенно увеличиваться и к 366 сут. достигли значения 20929.
В зависимости от пола птиц наиболее низкие значения среднего титра выявлены у петухов в течение 2-го и 3-го возрастных периодов, т.е. в возрасте 45 и 80 сут. Только к возрасту 120 сут. эти
значения заметно увеличились — до 19854, и стали такими же, как и в среднем по возрасту.
Анализируя значения средних титров в зависимости от живой массы птицы, можно отметить, что наиболее низкими они были к концу периода пика яйценоскости, т.е. в 366-суточном возрасте, причём у крупных птиц были ниже, чем у мелких, на 47,2%.
К концу исследуемого периода наибольшая напряжённость иммунитета выявлена у лёгких по весу птиц и составляла 30904, ниже она была у средних по весу — 19594,25, самая низкая — у крупных, тяжёлых птиц.
Литература
1. Борисов А.В., Борисов В.В. Инфекционный бронхит кур: особенности эпизоотологии и профилактики // Птицеводство. 2014. № 1. С. 72-74.
2. Забудский Ю.И. Современные методы диагностики состояния стресса у сельскохозяйственных птиц // Сельское хозяйство и природные ресурсы: труды III Междунар. ирано-росс. конф. М., 2002. С. 134-135.
3. Серова Н.Ю., Джавадов Э.Д. Инфекционный бронхит кур // Международный вестник ветеринарии. 2016. № 3. С. 14.
4. Голод Я.Р., Кожемяка Н.В., Терюханов А.Б. Сравнительная оценка живых вакцин против инфекционного бронхита кур // Ветеринария. 1990. № 11. С. 9-11.
5. Кэлнека Б.У. Болезни домашних и сельскохозяйственных птиц. М.: Аквариум, 2003. 1232 с.
6. Госманов Р.Г., Колычев Н.М. Ветеринарная вирусология. М.: Колос, 2006. 304 с.
7. Забудский Ю.И. Стресс-устойчивость рано и поздно вылупившихся цыплят разного пола в зависимости от продолжительности пребывания в инкубаторе // Сельскохозяйственная биология. Серия «Биология животных». 2002. № 6. С. 80.
8. Abolnik C. Genomic and single nucleotide polymorphism analysis of infectious bronchitis Coronavirus // Infect Genet Evol. 2015. V. 32. P. 416-424.
Морфобиохимический профиль крови цыплят-бройлеров кросса Ross-308 в постинкубационый период онтогенеза
О.А. Матвеев, к.б.н., А.А. Торшков, д.б.н, профессор, ФГБОУ ВО Оренбургский ГАУ
Кровь обеспечивает гомеостаз организма, поддерживает гуморальную регуляцию, протекание обменных и энергетических процессов. Промышленное птицеводство с содержанием значительного количества птиц на ограниченных площадях оказывает негативное влияние на показатели
крови. Определение ряда морфобиохимических показателей крови является одним из методов изучения состояния здоровья цыплят-бройлеров и позволяет объективно оценить физиологический статус организма птиц [1—11].
Содержание в сыворотке крови общего белка является показателем интенсификации роста цыплят-бройлеров, имеет важное значение, так как определяет скорость образования мышечной
ткани, а следовательно, и энергию роста организма. Кроме того, белковый обмен диктует интенсивность углеводного и липидного [12, 13].
Несмотря на имеющиеся в литературе сведения по изучению морфогематологических и биохимических показателей крови птиц различных кроссов, данные по морфобиохимическим исследованиям крови цыплят-бройлеров кросса ROSS-308 немногочисленны. В связи с этим нами была поставлена цель — изучить морфобиохимический профиль крови цыплят-бройлеров кросса ROSS-308 в постинкубационный период онтогенеза.
Материал и методы исследования. Объектами для изучения отдельных морфобиохимических показателей крови служили цыплята-бройлеры кросса ROSS-308 в возрасте 1, 7, 14, 21, 28 и 35 сут. Птицы были доставлены из ПАО «Уральский бройлер» Оренбургской области. Цыплят-бройлеров кормили по нормам, предусмотренным для конкретного возраста, сбалансированными кормами по питательным веществам, энергии, аминокислотам, витаминам, макро- и микроэлементами. Взятие крови у цыплят-бройлеров осуществляли путём резекции больших нёбных артерий и вены глазными ножницами по методике А.В. Комарова. При исследовании морфогематологического анализа крови определяли количество эритроцитов, лейкоцитов, лимфоцитов, гемоглобина, тромбоцитов, процентное соотношение форменных элементов крови к плазме — гематокрит, а биохимические исследования сыворотки крови осуществляли по таким показателям, как содержание общего белка, альбумина, прямого и общего билирубина, глюкозы, б-амилазы, общего холестерина, триглицеридов, активность гамма глутамилтрансферазы, щелочной фосфотазы, АлАТ, АсАТ [14—16]. Гематологические исследования стабилизированной гепарином крови и биохимические исследования образцов сыворотки крови проведены на автоматическом биохимическом анализаторе Dirui CS-T240 в испытательном центре биохимической лаборатории ФГБНУ ФНЦ БСТ РАН ВНИИМС. Цифровой материал, полученный в процессе исследования, обработан методами вариационной статистики при помощи стандартных компьютерных программ Microsoft Excel.
Результаты исследования. При анализе морфогематологических показателей цыплят-бройлеров нами выявлено, что динамика их изменения в постинкубационном онтогенезе происходит неравномерно (табл. 1).
Онтогенез белой крови цыплят-бройлеров до 35-суточного возраста проходит характерные этапы преобразований, которые предполагают увеличение количества лейкоцитов на 0,8%, лимфоцитов — 3,9%. Максимальное насыщение лейкоцитами крови нами обнаружено у суточных и 35-суточных цыплят-бройлеров, когда их количество увеличивается по сравнению с другим возрастом птицы в среднем на 11,1%. К 28 сут. отмечено снижение количества лейкоцитов на 12,2%, а лимфоцитов — на 0,8%.
Количество эритроцитов в крови суточных цыплят-бройлеров было выше по сравнению с другими возрастными группами, за исключением 35-суточного возраста птицы. По сравнению с 2 8-суточным возрастом данный показатель был выше на 0,29%, что характеризует их высокую функциональную активность и готовность к обеспечению интенсивной жизнедеятельности птицы.
Высокая концентрация гемоглобина нами обнаружена у суточных и 21-суточных цыплят-бройлеров, что составляет 13,6% от уровня, достигнутого 35-суточными птицами.
Высокий показатель гематокритной величины был выявлен у суточных цыплят-бройлеров, а затем отмечено её равномерное снижение к 35-суточному возрасту постинкубационного периода онтогенеза за исключением 14-суточного возраста.
Максимальное количество тромбоцитов в крови отмечалось у суточных цыплят-бройлеров, а к 35-суточному возрасту данный показатель изменялся волнообразно.
Динамика изменений биохимических показателей сыворотки крови цыплят-бройлеров в постинкубационный период онтогенеза происходит неравномерно (табл. 2).
Важной составной частью крови являются белки. Белковый обмен обеспечивает интенсивность углеводного и липидного обменов. Так, уровень общего белка в сыворотке крови цыплят-бройлеров увеличивался до 21-суточного возраста в связи с
1. Морфогематологические показатели цыплят-бройлеров в постинкубационный
период онтогенеза (n=3; X±Sx)
Показатель
Возраст, WBC LYM RBC HGB HCT PLT
сут. (лейк.), (лимф.), (эритроц.), (гемогл.), (гематок.), (тромб.),
109 кл/л % 1012 кл/л г/л % 109 кл/л
1 44,8±21,34 58,4±4,24 3,63±0,366 122,6±19,29 19,6±4,50 97,0±20,07
7 36,7±11,41 60,1±4,80 3,39±0,020 94,0±2,64 16,6±1,09 70,6±11,59
14 32,3±11,54 59,1±3,30 3,57±0,113 97,0±7,00 17,7±1,30 57,0±11,78
21 34,9±8,18 54,5±3,30 3,36±0,264 122,3±40,41 15,1±2,77 82,0±9,84
28 32,6±4,83 57,6±6,60 3,34±0,191 99,0±8,88 15,5±1,69 87,3±11,50
35 45,6±3,95 62,3±8,14 3,81±0,155 109,0±2,00 14,5±6,90 64,3±33,84
интенсивным ростом массы птицы, а затем к 35-су-точному возрасту произошло некоторое снижение данного показателя из-за снижения скорости роста цыплят-бройлеров. По сравнению с суточными цыплятами уровень общего белка до 21-суточного возраста птицы увеличился в сыворотке крови в 1,6 раза, что свидетельствует о высоком уровне белкового обмена веществ и интенсивном росте организма цыплят-бройлеров, а также объясняется наличием высокого содержания протеина в рационах кормления птиц.
Уровень альбумина в сыворотке крови цыплят-бройлеров к 7-суточному возрасту увеличился в 1,8 раза, что свидетельствует об интенсификации роста организма цыплят-бройлеров, а это, разумеется, реализуется за счёт повышения белково-синтетической функции печени.
Поскольку именно альбумины активно участвуют в построении тела цыплят-бройлеров, их концентрация в крови изменялась аналогично скорости роста организма птиц. В возрасте 21 сут. отмечалось некоторое повышение уровня альбумина в сыворотке крови, а незначительное снижение данного показателя нами выявлено у цыплят-бройлеров в возрасте 14, 28 и 35 сут. по сравнению с 7-суточным возрастом.
В ветеринарной медицине хорошо известно токсическое действие высоких концентраций билирубина в крови, которое приводит к поражению центральной нервной системы, развитию очагов некроза в паренхиматозных органах, подавлению клеточного иммунитета, развитию анемии вследствие гемолиза эритроцитов. Концентрация общего и прямого билирубина в сыворотке крови цыплят-бройлеров изменялась синхронно от суточного до 35-суточного возраста, системно снижаясь. Высокий уровень общего билирубина в сыворотке крови суточных цыплят-бройлеров (7,79+0,844) по сравнению с 7-суточным возрастом
(2,69+0,320) мы связываем с наличием желточного мешка в данном возрасте. Уровень общего и прямого билирубина довольно тесно коррелировал с количеством эритроцитов и гемоглобина в крови. Концентрация прямого билирубина в сыворотке крови с суточного до 35-суточного возраста понизилась в 5,6 раза, а общего билирубина — в 8,3 раза соответственно.
Ферментные системы играют важную роль в регуляции и интеграции процессов жизнедеятельности у животных и птиц. С участием ферментных систем реализуется наследственная информация в онтогенезе, поддерживается гомеостаз, обеспечивается регуляция роста и развития, формирования продуктивных качеств. Изменение активности ферментов переаминирования АсАТ, АлАТ и ГГТ происходило между собой асинхронно. По-видимому, это связано с различной скоростью роста отдельных органов и тканей, для которых требуются высококачественные белки. Уровень активности гамма глутамилтрансферазы (ГГТ) в сыворотке крови к 7-суточному возрасту цыплят-бройлеров увеличивается в 5,2 раза, что связано с повышением функциональной нагрузки на печень и сменой питания.
Во все исследованные периоды постинкубационного онтогенеза активность АсАТ была выше, чем АлАТ, в десятки раз, о чём свидетельствовали значения коэффициента де Ритиса. Преобладание активности АсАТ над АлАТ максимально проявлялось в суточном, 7-суточном и 28-суточном возрасте. Данное явление может быть связано с тем, что фермент АсАТ занимает центральное место в метаболизме, обеспечивая субстратами цикл трикарбоновых кислот, и участвует в регуляции образования энергии в процессах окислительного фосфорилирования. Активный синтез ферментов переаминирования указывает на активное функционирование печени цыплят-бройлеров практиче-
2. Изменение биохимические показателей сыворотки крови цыплят-бройлеров в постинкубационный период онтогенеза (п = 3; X+Sx)
Возраст, сут. Показатель
общий белок, г/л альбумин, г/л билирубин общ., мкмоль/л билирубин прям., мкмоль/л ГГТ, ед/л АлАТ, ед/л АсАТ, ед/л коэфф. де Ритиса (АсАТ/АлАТ)
1 25,12± 2,356 8,0± 0,57 7,79± 0,844 2,02± 0,638 16,7± 3,18 6,2± 1,09 251,0± 27,30 40,5
7 25,70± 0,360 14,3± 0,33*** 2,69± 0,320*** 0,73± 1,672 86,3± 12,68** 5,6± 0,30 249,6± 19,17 44,5
14 30,96± 3,870 11,3± 0,57** 1,22± 0,225 0,62± 0,112 17,6± 3,51** 6,1± 2,48 232,3± 15,14 38,0
21 40,61± 0,359 13,6± 0,57* 0,88± 0,412 0,61± 0,185 21,0± 1,73 7,9± 1,46 164,5± 20,87* 20,8
28 37,89± 4,095 12,6± 2,30 0,70± 0,255 0,42± 0,025 16,6± 1,52 4,9± 2,17 209,6± 19,85 42,7
35 34,19± 6,239 11,0± 1,73 0,94± 0,085 0,36± 0,054 20,0± 5,71 7,4± 1,44 206,3± 13,58 27,8
Примечание: *Р<0,05; **Р<0,01; ***Р<0,001
3. Динамика биохимических показателей сыворотки крови цыплят-бройлеров в постинкубационный период онтогенеза (п=5; X±Sx)
Возраст, сут. Показатель
глюкоза, ммоль/л а-амилаза, ед/л триглицериды, ммоль/л общий холестерин, ммоль/л щелоч. фос., ед/л
1 7 14 21 28 35 10,05±0,070 10,23±0,208 10,3±0,68 9,42±0,478 9,17±0,464 10,08±0,614 1019,4±348,74 877,16±376,585 753,15±265,473 850,95±88,776 477,47±175,382 411,63±271,124 0,42±0,098 0,73±0,085* 0,60±0,135 0,49±0,110 0,45±0,121 0,44±0,210 5,9±0,41 2,076±0,2051*** 1,91±0,315 2,16±0,141 2,20±0,258 2,70±0,624 270,7±61,60 63,0±12,88 62,3±34,38 221,0±50,31* 88,9±38,40 242,0±42,45*
Примечание: *Р<0,05; ***Р<0,001
ски в течение всего периода постинкубационного онтогенеза.
Глюкоза — один из важных компонентов крови. Большинство тканей организма (головной мозг, эритроциты, хрусталик, паренхима почки, работающая мышца) полностью зависят от прямого поступления глюкозы в клетки, в частности в три типа клеток: печёночные, мышечные, клетки жировой ткани. Головной мозг, в отличие от остальных тканей, не способен депонировать глюкозу и требует её постоянного поступления из крови для обеспечения энергетических потребностей. Колебания концентрации глюкозы в крови связаны с влиянием на организм определённых стрессоров. Уровень глюкозы в сыворотке крови цыплят-бройлеров имел чётко выраженную зависимость от интенсивности роста птиц в постинкубационный период онтогенеза (табл. 3).
Амилаза принимает участие в передаче регулирующих сигналов из цитоплазмы клетки на внешнюю поверхность мембраны эпителиоцита. В качестве регуляторных сигналов при этом выступают различные нутриенты. Благодаря таким свойствам фермента происходит авторегуляция естественного полисубстратного пищеварения на молекулярном уровне.
Снижение активности а-амилазы в сыворотке крови цыплят-бройлеров с возрастом связано с функциональной нагрузкой на печень и уровнем в ней гликогена.
Важное клиническое значение в оценке ли-пидного обмена имеет определение холестерина и триглицеридов. Снижение концентрации тригли-церидов в сыворотке крови цыплят-бройлеров с суточного возраста связано с интенсивностью роста птиц и наступлением физиологической зрелости. Холестерин является компонентом клеточным мембран и служит исходным материалом при биосинтезе стероидных гормонов. В коже из модифицированного холестерина образуется витамин D. В печени холестерин превращается в жёлчные кислоты и их соли с последующей экскрецией из жёлчного пузыря в желудочно-кишечный тракт в составе жёлчи.
Достаточно высокий уровень общего холестерина в сыворотке крови цыплят-бройлеров в суточном
возрасте связан с наличием желточного мешка в организме, а последующее снижение уровня данного показателя к 7-суточному возрасту констатирует его рассасывание в организме цыплят-бройлеров. Повышение концентрации общего холестерина в сыворотке крови к 35-суточному возрасту цыплят-бройлеров связано с их физиологическим половым созреванием.
Высокий уровень щелочной фосфатазы в сыворотке крови суточных цыплят-бройлеров связан с адаптацией организма птицы к новым условиям обитания (270,6+61,67), а к 7-суточному возрасту происходит снижение значений данного показателя в 4,3 раза. Активность щелочной фосфатазы коррелирует с уровнем общего белка и альбумина, а также с интенсивностью роста костной ткани цыплят- бройлеров.
Вывод. Изменение морфогематологических показателей в суточном возрасте цыплят-бройлеров характеризуется увеличением числа эритроцитов, общего количества гемоглобина в литре крови, стабильном увеличением гематокрита, а также числа тромбоцитов в 32 раза.
Изменение гематологических показателей у изученных возрастных групп цыплят-бройлеров связано с процессами роста, развития и высокобелковым уровнем кормления.
Нелинейная динамика большинства изученных биохимических показателей крови, по-видимому, связана с изменением состава комбикормов, а также всевозрастающей интенсивностью технологии выращивания цыплят-бройлеров.
Литература
1. Жбанова С.Ю. Показатели биохимического статуса цыплят-бройлеров в динамике откорма / С.Ю. Жбанова, Е.А. Дегтярёв, Д.Е. Аносов [и др.] // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2012. № 6 (38). С. 98-99.
2. Бессарабов Б.Ф. Гематологические показатели и здоровье птицы // Животноводство России. 2009. № 3. С. 17-18.
3. Биохимические и морфологические показатели крови цыплят-бройлеров при различном уровне обменной энергии и минеральном составе рациона / Е.А. Сизова [и др.] // Вестник Оренбургского государственного университета. № 6. 2009. С. 340-343.
4. Головко А. Влияние препарата Факс-1 на биохимию крови цыплят бройлеров // Птицеводство. 2011. № 9. С. 47-49.
5. Дерхо М.А., Колесник Е.А. Корреляция прироста живой массы и сохранности бройлеров кросса КА-15 с уровнем биохимических показателей крови // Аграрный вестник Урала. 2011. № 3 (82). С. 27-29.
6. Ермолина С.А., Булдакова К.В., Созинов В.А. Биохимические показатели крови цыплят-бройлеров при применении Альгасола // Успехи современного естествознания. 2014. № 9. С. 34-37.
7. Сапрунов Д.А., Квочко А.Н., Криворучко А.Ю. Активность ферментов в сыворотке крови индеек в постнатальном онтогенезе // Аграрный вестник Урала. 2010. № 2 (68). С. 65-66.
8. Середа Т.И., Дерхо М.А. Оценка роли аминотрансфераз в формировании продуктивности у кур-несушек // Сельскохозяйственная биология. 2014. № 2. С. 72-77.
9. Топурия Г.М. Топурия Л.Ю., Жуков П. А. Биохимический статус организма цыплят-бройлеров под влиянием герми-вита // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2014. № 5 (49). С. 107-110.
10. Торшков А.А. Изменение биохимических показателей крови бройлеров при использовании арабиногалакана // Фундаментальные исследования. 2011. № 9 (ч. 3). С. 583-587.
11. Черкасова В.В., Зеленский К.С. Гематологические и биохимические показатели крови цыплят-бройлеров в онтогенезе // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2009. № 4 (24). С. 60-63.
12. Клетикова Л. В. Белковый и углеводный обмен веществ у несушек // Птицеводство. 2010. № 1. С. 55-56.
13. Русакова Е.А., Лебедев С.В., Копанева Н.Ю. Влияние фитазы на некоторые биохимические показатели крови цыплят-бройлеров // Вестник Оренбургского государственного университета. 2011. № 12 (131). С. 421-423.
14. Козинец Г.И. Интерпретация анализов крови и мочи. Клиническое значение анализов. СПб.: Ломо, 1997. 118 с.
15. Методические рекомендации по гематологическим и биохимическим исследованиям у кур современных кроссов / Насонов И.В. [и др.]. Минск, 2014. 32 с.
16. Садовников Н.В. Общие и специальные методы исследования крови птиц промышленных кроссов / Н.В. Садовников, Н.Д. Придыбайло, Н.А. Верещак [и др.]. Екатеринбург -СПб.: Уральская ГСХА, НПП «АВИВАК», 2009. 83 с.
Способы профилактики смешанных инвазий Ascaridia galli, Heterakis gallinarum и Singamus trachea мясной птицы и их влияние на организм
А.А. Диданова, к.б.н., И.Х. Махова, к.б.н., ФГБОУ ВО Кабардино-Балкарский ГАУ
Технология напольного содержания птиц создаёт условия для одновременного заражения их несколькими видами гельминтов [1, 2]. В этой связи разработка новых комплексных противо-гельминтозных премиксов, их испытание, определение биологической безопасности приобретают особую значимость [3]. Технология кормления кур предусматривает использование синтетических кормовых белковых добавок микробного синтеза, за счёт чего балансируют количество белка в корме. Разработка биотехнологических способов профилактики путём создания и применения противогельминтозных премиксов Мепринал, Эприфен, БЛБД+Алфен и КМБ-12 + Феналбен представляет актуальную проблему [4—9]. Тем более что технология выращивания мясной птицы на стандартных комбикормах не предусматривает использование противогельминтозных премиксов. Создание комплексных препаратов будет способствовать высокой эффективности производства мяса птиц в приусадебных хозяйствах, практикующих напольное и напольно-выгульное содержание. Поэтому изучение количественных и качественных показателей продуктов убоя птицы и экологической безопасности лечебных премиксов представляет научный и практический интерес.
Материал и методы исследования. В процессе исследования изучали антигельминтную активность премиксов Мепринал, Эприфен, БЛБД+Алфен и КМБ-12 + Феналбен при смешанной инвазии Ascaridia galli, Heterakis gallinarum и Singamus trachea у кур при напольно-выгульном содержании.
Поголовью птиц опытных I—IV гр. два раза в месяц, с апреля по ноябрь, скармливали в смеси с комбикормами лечебные премиксы, замещавшие
часть кормового белка рациона: Мепринал — 5%, Эприфен - 10%, БЛБД + Алфен - 7,5%, КМБ-12 + Феналбен — 10%. Поголовью птиц контрольной V гр. (100 гол.) скармливали обычные комбикорма без добавления премикса.
Лечебную эффективность премиксов при смешанной инвазии определяли с учётом возраста мясных птиц.
Результаты исследования. Результаты опытов показали достаточно высокую профилактическую эффективность премикса Мепринал. У птиц всех четырёх опытных групп независимо от возраста не было зарегистрировано случаев распространения смешанной инвазии аскаридоза, гетеракидоза и сингамоза. Экстенс- (ЭЭ) и интенсэффектив-ность (ИЭ) премикса Мепринал составляла 100%. У цыплят контрольной группы, не получавших Мепринал, экстенсивность смешанной инвазии в августе составила 57,0%. При этом у птиц контрольной группы при вскрытии обнаружены были Ascaridia galli — 35,1 ±3,2 экз/гол, Heterakis gallinarum — 26,8±2,9 экз/гол, Singamus trachea — 12,4±2,6 экз/гол (табл. 1).
Результаты исследования доказали высокую профилактическую эффективность лечения пре-миксом Эприфен. У кур опытных групп во все возрастные периоды не было зарегистрировано случаев возникновения смешанной инвазии. ЭЭ и ИЭ премикса Эприфен в конце наблюдений составил 100%. Напротив, у кур контрольной группы, не получавших Эприфен, ЭИ в октябре составил 48,0%, при этом было обнаружено Ascaridia galli — 38,5±3,4 экз/гол, Heterakis gallinarum — 29,7± 3,0 экз/гол, Singamus trachea — 16,1±2,3 экз/гол (табл. 2).
О высокой профилактической эффективности премикса БЛБД + алфен, задаваемого птицам по схеме два раза в месяц с апреля по ноябрь,
