CC BY
45Материалы всероссийского научного форума студентов с международным участием «СТУДЕНЧЕСКАЯ НАУКА - 2020» 179
Результаты: дендритные клетки — профессиональные антиген-презентирующие клетки, способные инициировать и регулировать как первичный, так и вторичный Т- и В-клеточный иммунный ответ. Уникальные свойства этих клеток обусловлены способностью захватывать антигены, переваривать их и транспортировать в периферические лимфоидные органы, где запускается специфический иммунный ответ: активируются CD4+ и CD8+ Т-лимфоциты. Активированные эффекторные клетки распознают опухоль и осуществляют там лизис раковых клеток посредством секреции перфорина и гранзима В [3].
Вышеописанное свойство дендритных клеток способствовало созданию инновационной методики иммунотерапии рака. Приготовление дендритно-клеточной вакцины начинается с выделения незрелых дендритных клеток из мононуклеаров периферической крови донора или пациента. Одновременно из кратковременной культуры раковых клеток с помощью жидкого азота получают РТА+ (содержащий раково-тестикулярные антигены) опухолевый лизат. Далее незрелые дендритные клетки нагружают лизатом РТА+, после чего они созревают. Для реализации противоопухолевого ответа зрелые активированные дендритные клетки вводят пациенту [2].
Выводы: в настоящее время в мире проводится более трёхсот клинических испытаний по использованию вакцин на основе дендритных клеток для лечения различных онкологических заболеваний. В частности, в отделе онкоиммунологии НМИЦ онкологии им. Н.Н. Петрова ведутся исследования иммунотерапии диссеминированной меланомы кожи. Опубликованные данные свидетельствуют о том, что клинический эффект у больных с исчерпанными возможностями терапии достигает 37%, а медиана общей выживаемости составляет 8,4 месяца [1]. Возможно, в будущем дендритно-клеточные вакцины займут своё место в арсенале классических противоопухолевых средств. Литература
1. Балдуева И.А. и др. Дендритно-клеточная иммунотерапия в сочетании с фотодинамической терапией и циклофосфамидом у больных диссеминированной меланомой кожи, резистентных к стандартным методам лечения //Онкология, гематология и радиология. 2017.
2. Оппедизано М.Д.Л., Ищенко И.О. Роль аутогенных дендритных клеток в терапии диссеминированной меланомы кожи //Forcipe. 2019.
3. Шмагель К.В., Черешнев В.А. «Клетки врождённого иммунитета». — М.: ГОУ ВПО ПГМА им. ак. Е.А. Вагнера. 2011.
МОДИФИКАЦИЯ КЛАССИЧЕСКОЙ ТЕХНИКИ ПРИГОТОВЛЕНИЯ ГИСТОЛОГИЧЕСКИХ ПРЕПАРАТОВ
Павлова В. С., Охотникова К. Д., Русанова П. А.
Научный руководитель: преподаватель Миронов Т.И.
Кафедра Гистологии и эмбриологии имени профессора А.Г. Кнорре
Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет
Контактная информация: Павлова Валерия Сергеевна — студент 2 курса, педиатрический факультет. E-mail: herondale.valery@gmail.com
Ключевые слова: Приготовление микропрепаратов, Гистологические препараты, ксилол, изопропанол
Актуальность: освоение студентами микроанатомии невозможно без изучения гистологических препаратов. Использование микропрепаратов в процессе обучения приводит к их повреждению. В связи с этим, необходимо своевременное пополнение кафедрального фонда. Большинство гистологических методик приготовления препаратов подразумевает работу с патогенными веществами, что затрудняет вовлечение студентов в этот процесс.
Цель работы: модификация классической методики приготовления препаратов, с целью оптимизации и снижения вредных факторов воздействия (ксилола, хлороформа).
Методы и материалы: тканевой материал трахеи, легкого, тонкого и толстого кишечника, яичника и дна желудка разделили на кусочки 10*10*10 мм и погрузили в ёмкости, с большим объемом фиксатора — фиксатор Буэна и раствор формалина 10% по Лилли (забуференный).
FORCIPE
ТОМ 3 СПЕЦВЫПУСК 2020
elSSN 2658-4182
Abstracts Nationwide scientific forum of students with international participation «STUDENT SCIENCE - 2020»
Затем тканевой материал промывали под проточной водой и проводили по схеме: изопропанол (И), с повышением концентрации спирта от 75% до 100% — промежуточная среда (И + М) — минеральное масло (М). Заливали материал в расплавленный парафин с добавлением 8% пчелиного воска и 1% диметилсульфоксида. Нарезку материала осуществляли на ротационном микротоме МПС-2.
Депарафинирование срезов производили по схеме: уайт спирит — изопропанол — вода. Окрашивание препаратов проводилось с помощью красителей: гематоксилин-эозин [2], альциа-новый синий [3], по Маллори[3], по Ван-Гизону[3]. При заключении препаратов использовали ал-кидно-уретановый лак.
Результаты: при соблюдении всех условий приготовления препаратов [1] трудностей с нарезкой материала не возникло. Метод требует дальнейшей модификации.
Выводы: метод проводки материала с использованием изопропанола и минерального масла не вызывает его переуплотнение. Преимуществом так же является отсутствие необходимости использования патогенных веществ (ксилол, хлороформ). Однако требуется длительная проводка материала. Данный метод может быть рекомендован для его реализации в гистологических лабораториях. Литература
1. Buesa René J., & Peshkov M.V. Histology without xylene, 2009. Annals of diagnostic Pathology 13, 246-256.
2. Пирс Э. Теоретическая и прикладная гистохимии, 1962. Издательство иностранной литературы, Москва.
3. Коржевский Д.Э., Кирик О.В., Гилерович Е.Г. Морфологическая диагностика. Подготовка материала для гистологического исследования и электронной микроскопии, 2013. СпецЛит, Санкт-Петербург.
изменения в цитоАРХитЕктоникЕ и распределении гамкергических нейронов в неокортексе после воздействия острой перинатальной гипоксии в ранний постнатальный период и возможность их фармакологической коррекции
Сагомонов А. В.
Научный руководитель: д.б.н. доцент Хожай Л.И.2, преподаватель Миронов Т.И.1 Кафедра гистологии и эмбриологии имени профессора А.Г. Кнорре Лаборатория онтогенеза нервной системы
Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет Институт физиологии им. И.П. Павлова РАН
Контактная информация: Сагомонов Антон Витальевич — студент 2 курса, педиатрический факультет. E-mail: anton.sag.lon@gmail.com
Ключевые слова: неокортекс, гипоксия, ГАМК
Актуальность: неокортекс является важной структурой конечного мозга, который осуществляет многочисленные физиологические функции: сенсорные, моторные, когнитивные, зрительные, слуховые и т.д. [1] Эти функции контролируются разными нейротрансмиттерами, из которых основным тормозным является ГАМК (гамма-аминомасляная кислота). Кортикальные ГАмКергические нейроны отвечают за тормозную трансмиссию в неокортексе и играют ключевую роль в регуляции кортикальных входов. [2] Нарушения в неокортикальной ГАМКер-гической сети приводят у человека к тяжелым нейрогенным расстройствам: шизофрении, эпилепсии, аутизму.
FORCIPE
VOL. 3 SUPPLEMENT 2020
ISSN 2658-4174
