CC BY
24Баймишев Хамидулла Балтуханович, д-р биол. наук, зав. кафедрой анатомии, акушерства и хирургии федерального государственного бюджетного образовательного учреждения (ФГБОУ) высшего образования (ВО) «Самарская государственная сельскохозяйственная академия»; д. 2, ул. Учебная, п. г. т., Усть-Кинельский, Самарская область, Россия, 446442; e-mail: Baimischev_HB@mail.ru
Баймишева Светлана Александровна, аспирант кафедры анатомии, акушерства и хирургии федерального государственного бюджетного образовательного учреждения (ФГБОУ) высшего образования (ВО) «Самарская государственная сельскохозяйственная академия»; д. 2, ул. Учебная, п. г. т., Усть-Кинельский, Самарская область, Россия, 446442; e-mail: kitaewa.s@gmail.com
Author affiliation:
Baimischev Murat Hamidullovich, Ph. D. in Biology, Associate Professor of the Department of anatomy, obstetrics and surgery of the Federal State Budgetary Educational Institution (FSBEI) of Higher Education (HE) «Samara State Agricultural Academy»; house 2, Educational str., Ust-Kinelsky urban-type settlement, Samara Region, Russia, 446442; e-mail: Baimishev_M@ mail.ru
Eremin Sergei Petrovich, D. Sc. in Veterinary Medicine, Professor, Head of the Department of «Private zootechny, farming animals and midwifery» of the Federal State Budgetary Educational Institution (FSBEI) of Higher Education (HE) «Nizhny Novgorod State Agricultural Academy»; house 97, Gagarin Avenue, Nizhny Novgorod city, Nizhny Novgorod Region, Russia, 603107; e-mail: ereminsp@rambler.ru
Baimishev Hamidulla Baltukhanovich, D. Sc. in Biology, Head of the Department of anatomy, obstetrics and surgery of the Federal State Budgetary Educational Institution (FSBEI) of Higher Education (HE) «Samara State Agricultural Academy»; house 2, Educational str., Ust-Kinelsky urban-type settlement, Samara Region, Russia, 446442; e-mail: Baimischev_HB@ mail.ru
Baimasheva Svetlana Aleksandrovna, postgraduate student of the Department of anatomy, obstetrics and surgery of the Federal State Budgetary Educational Institution (FSBEI) of Higher Education (HE) «Samara State Agricultural Academy»; house 2, Educational str., Ust-Kinelsky urban-type settlement, Samara Region, Russia, 446442; e-mail: kitaewa.s@gmail.com
УДК 619:618.19.002
Алиев А. Ю., Булатханов Б. Б., Магомедов М. З., Магомедов А. С., Климов Н. Т.
МИКРОФЛОРА МОЛОКА БОЛЬНЫХ СУБКЛИНИЧЕСКИМ МАСТИТОМ КОРОВ И ОВЦЕМАТОК И ЕЁ АНТИБИОТИКОЧУВСТВИТЕЛЬНОСТЬ
Ключевые слова: коровы, овцематки, молочная железа, микрофлора, субклинический мастит, секрет молочной железы, антибиотикочувствительность.
Резюме: Приведены данные по микробной контаминации молока больных субклиническим маститом коров и овец республики Дагестан и изучена чувствительность выделенной микрофлоры к антибактериальным средствам. Для бактериологического исследования отобраны пробы молока от лактирующих животных, больных субклиническим маститом, у коров в количестве 73 проб и 51 проба от овцематок. Установлено, что из секрета вымени больных субклиническим маститом коров в 89,0 %, овцематок в 82,3 % случаев выделена патогенная и условно патогенная микрофлора, в том числе: Staph. aureus в 24,6-26,1 %, Staph. haemolyticus - 4,7-7,7 %, Str. alacti-ae - 16,7-20,0 %, Str. disgalactiae - 6,1-7,1 %. Определение чувствительности выделенной микроВетеринарная патология. № 2. 2019 43
флоры к 16-ти антимикробным средствам показало, что наиболее эффективными были амок-сициллин, цефотаксим, доксициклин, неомицин, тилозин, энрофлоксацин. В меньшей степени себя проявили гентамицин, норфлоксацин, левомицетин, линкомицин, тетрациклин, фурагин, рифампицин, стрептомицин, пенициллин, ампициллин. Фуразолидон и канамицин не дали положительных результатов, к ним микрофлора оказалась устойчива. Определение видовой принадлежности микроорганизмов и изучение чувствительности к антибиотикам является одним из важных и необходимым условием для успешной и эффективной борьбы с маститом сельскохозяйственных животных.
Введение
Одной из неотложных задач дальнейшего развития молочного скотоводства страны является повышение продуктивности маток и улучшение пищевых и сани-тарно-технологических качеств получаемого молока.
Среди многих болезней коров и овцематок, обуславливающих снижение молочной продуктивности, особое место занимает мастит. Воспаление молочной железы - мастит, несмотря на многочисленные исследования и большие затраты на осуществление лечебно-профилактических мероприятий, является основной причиной снижения удоев, санитарных и технологических качеств молока, заболевания молодняка желудочно-кишечными и респираторными болезнями, преждевременной выбраковки маточного поголовья [1, 2].
Наибольшую хозяйственно-экономическую проблему представляет субклинический (скрытый) мастит, встречающийся в 3-7 раз чаще, чем клинически выраженный, при этом скрытое воспаление может сохраняться в течение 1-2 лактаций [3, 4, 5]. Животные, перенесшие субклинический мастит, снижают удой за лактацию на 1015 %, наряду со снижением удоя изменяются и качественные характеристики молока [6]. Анализ причины выбраковки коров показывает, что значительная часть их (в среднем 20 %) выбывает из стада по причине неизлеченного мастита или его последствий.
Многие авторы ведущую роль в этиологии мастита сельскохозяйственных животных отводят микроорганизмам (бактериям, грибам и вирусам) [7, 8, 9]. На микробный фактор приходится около 86 % всех случаев мастита коров и овцематок, причем преобладают маститы бактериальной этиологии [9, 10, 11].
Из секрета пораженных долей вымени в основном выделяются стафилококки и стрептококки, которые инициируют заболевание сами по себе, либо наслаиваются на патологический процесс, вызванный другими факторами.
Как правило, именно антибиотикоре-
зистентные штаммы обуславливают длительное и безуспешное лечение воспаления вымени. Поэтому определение микробного фона молока и антибиотикочув-ствительности выделенных штаммов является необходимым условием в подборе адекватных средств и методов лечения коров, больных маститом [5, 10].
С учетом вышеизложенного была изучена структура видового состава микрофлоры, выделенной из секрета молочной железы коров и овцематок, больных субклиническим маститом, и определена чувствительность к антибактериальным средствам.
Материалы и методы исследований
Этиологическая структура мастита изучена путем бактериологического исследования секрета вымени, полученного от 73 коров и 51 овцематки со скрытым воспалением вымени животноводческих хозяйств разных форм собственности Герге-бильского и Хунзахского районов Республики Дагестан, в соответствии с «Методическими указаниями по бактериологическому исследованию молока и секрета вымени коров. М., 1983». Исследования проведены с 2016 по 2018 годы.
Результаты и обсуждение
Бактериологическими исследованиями молока от 73-х коров, больных субклиническим маститом, в 89,0 % случаях (65 проб) выделяли микрофлору 6-ти видов, которые в основном представлены грам-положительными кокками, а остальные -представителями кишечной палочки.
Монокультуры выделены в 71,2 %, в том числе Staphilococcus aureus - 24,6 %, Staph. epidermidis - 10,8 %, Staph. haemolyti-cus - 7,7 % и Streptococcus agalactiae - 20,0 %, Str. disgalactiae - 6,1 %, E. coli - 10,8 %.
Смешанная микрофлора изолирована из 20,0 % проб, в том числе Staph. aureus + E. coli и Str. agalactiae + E. coli в 10,8 % и 9,2 % случаев соответственно.
При исследовании 51 пробы молока от овцематок со скрытым воспалением вымени микрофлора выделена в 82,3 % случа-
ев (45 проб). Монокультуры выделены в 70,7 %, в том числе: Staph. aureus - 26,1 %; Staph. epidermidis - 11,9 %; Staph. haemolyticus - 4,7 %; Str. agalactiae - 16,7 %; Str. disga-lactiae - 7,1 % и E. coli - 11,9 %. В ассоциации микрофлора была выделена в 21,4 % случаев - (Staph. aureus + E. coli - 11,9 %, Str. agalactiae + E. coli - 9,5 %).
Проведенными бактериологическими исследованиями установлено, что чаще
ры обладают разной чувствительностью к испытанным 19-ти антимикробным средствам.
Культуры золотистого стафилококка были чувствительны к амоксициллину, доксициклину, неомицину, тилозину, цефа-лексину, цефотаксиму и нечувствительны к канамицину и фуразолидону.
Исследованные культуры эпидермаль-ного стафилококка имели высокую чувствительность к амоксициллину, гентами-цину, доксициклину, линкомицину, неоми-цину, тилозину, норфлоксацину, цефалекси-ну, цефотаксиму и нечувствительны к ка-намицину и фуразолидону.
других культур при субклиническом мастите у коров и овец встречается золотистый стафилококк (до 24-26 %) и агалак-тийный стрептококк (17-20 %).
Чувствительность к антибиотикам микрофлоры, выделенной из секрета молочной железы больных субклиническим маститом коров и овцематок, представлена в таблице.
Установлено, что выделенные культу-
Гемолитический стафилококк был чувствителен к гентамицину, доксициклину, линкомицину, неомицину, тилозину, норф-локсацину, цефалексину, цефотаксиму и нечувствителен к канамицину, рифампици-ну и фуразолидону.
Стрептококк агалактийный имел высокую чувствительность к амоксицилли-ну, доксициклину, неомицину, норфлокса-цину, тилозину, цефалексину, цефотаксиму и был резистентным к гентамицину, лево-мицетину и фуразолидону.
Стрептококк дисгалактийный был чувствителен к амоксициллину, доксициклину, рифампицину, тилозину, цефотаксиму и не-
Таблица. Чувствительность микрофлоры, выделенной из секрета вымени больных субклиническим маститом коров и овцематок, к антибактериальным средствам
Антибактериальные средства Чувствительность культур
Staph. aureus Staph. epidermidis Staph. haemolyticus Str. agalactiae Str. dysgalactiae E. coli
Ампициллин + + + + + +
Амоксициллин ++ ++ + ++ ++ ++
Гентамицин + ++ + - + +
Доксициклин ++ ++ ++ ++ ++ +
Канамицин - - - + - -
Левомицетин + + + - + +
Линкомицин + ++ ++ + + +
Неомицин ++ ++ ++ ++ + +
Норфлоксацин + ++ ++ ++ + ++
Пенициллин + + + + + +
Рифампицин + + - + ++ +
Стрептомицин + + + + + +
Тилозин ++ ++ ++ ++ ++ ++
Фурагин + + + + + -
Фуразолидон - - - - - +
Цефалексин ++ ++ ++ ++ + +
Цефотаксим ++ ++ ++ ++ ++ ++
Энрофлоксацин + ++ ++ + + ++
Эритромицин + + + + + +
Примечание: ++ - чувствительные, + - малочувствительные, - - нечувствительные
чувствителен к канамицину и фуразолидо-ну.
Кишечная палочка оказалась чувствительной к амоксициллину, норфлоксацину, тилозину, цефотаксиму и энрофлоксацину и нечувствителен к канамицину и фуразо-лидону.
Наиболее эффективными антибиотиками в отношении микрофлоры, выделенной из секрета молочной железы больных маститом коров овцематок, были: амокси-циллин, цефотаксим, доксициклин, неоми-цин, тилозин, энрофлоксацин и, в меньшей степени, гентамицин, норфлоксацин, лево-мицетин, линкомицин, тетрациклин, эри-
тромицин, фурагин, рифампицин, стрептомицин, пенициллин, ампициллин. Выделенные культуры оказались устойчивы к ка-намицину, фуразолидону.
Выводы и заключение
Результаты проведенных исследований свидетельствуют о том, что из секрета пораженных долей молочной железы 89,0 % коров и 82,3 % овец выделена микрофлора, в основном представленная грамполо-жительными кокками, которые были чувствительны к бета лактамным антибиотикам, аминогликозидам, тетрациклинам, макролидам и фторхинолонам.
Библиографический список:
1. Алиев А. Ю. Опыт лечения мастита у коров в хозяйствах Республики Дагестан / А. Ю. Алиев, С. Ш. Абдулмагомедов, П. Д. Устарханов // Ветеринария и кормление. - 2012. - № 4. - С.10.
2. Тогобицкая Д. Р Применение новых препаратов для лечения мастита у коров молочных пород / Д. Р. Тогобицкая // Ветеринария Кубани. - 2016. - № 6 - С. 15-16.
3. Климов Н. Т. Прогнозирование субклинического мастита у лактирующих коров / Н. Т. Климов, П. А. Паршин, В. И. Зимников, О. А. Манжурина, И. С. Чернышова // Ветеринарная патология. - 2018. - № 3. - С. 24-28.
4. Алиев А. Ю. Формы проявления мастита у овец / А. Ю. Алиев // Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н. Э. Баумана. - Казань. - 2013. - С. 43-46.
5. Шабунин С. В. Актуальные проблемы терапии и профилактики мастита коров / С. В. Шабунин, Н. Т. Климов, А. Г Нежданов, Л. И. Ефанова // Ветеринария. - 2011. - № 12. - С. 3-6.
6. Ивашкевич О. П. Субклинический мастит у коров
(распространение, этиопатогенез и лечение) / О. П. Ивашкевич // Международная научно-практическая конференция, посвященная 45-летию
ГНУ ВНИВПФиТРоссельхозакадемии «Проблемы и пути развития ветеринарии высокотехнологичного животноводства». Сборник научных трудов. - Воронеж. - 2015. - С.189-194.
7. Наурзыбаев И. Б. Изучение бактериальной обсе-
мененности молока при субклиническом мастите / И. Б. Наурзыбаев, Б. А. Асильбеков // Инфекционные и незаразные болезни с.-х животных в Казахстане. - Алма-Ата. - 1983. - С. 101-103.
8. Париков В. А. Разработка и совершенствование
методов диагностики, терапии и профилактики мастита у коров: дис. ... д-ра вет. наук / В. А. Париков. - Воронеж, 1990. - 52 с.
9. Картушина А. С. Совершенствование метода те-
рапии коров при субклиническом мастите: ав-тореф. дис. . канд. вет. наук / А. С. Картушина. - Краснодар, 2016. - 20 с.
10. Bramley A. J. Streptococcus uberis mastitis: epidemiology and pathogenesis / A. J. Bramley // Anim. Health Nutrit. - 1987. - Vol. 42. - № 5.
11. Gebrewahid T. T. Prevalance and etiology of subclinical mastitis in small Rumniants of Tigrau Regional state, North Ethiopia / T. T. Gebrewahid, B. H. Abera, Mendhistu // Veterinary World. - 2012. -Vol. 5. - № 2. - I? 103-109.
References:
1. Aliev A. Yu. Opyit lecheniya mastita u korov v
hozyaystvah Respubliki Dagestan [Experience in the treatment of mastitis in cows in the farms of the Republic of Dagestan] / A. Yu. Aliev, S. Sh. Abdulmagomedov, P. D. Ustarhanov // Veterinariya i kormlenie. - 2012. - # 4. - S.10.
2. Togobitskaya D. R. Primenenie novyih preparatov
dlya lecheniya mastita u korov molochnyih porod [The use of new drugs for the treatment of mastitis in dairy cows] / D. R. Togobitskaya // Veterinariya Kubani. - 2016. - # 6 - S. 15-16.
3. Klimov N. T. Prognozirovanie subklinicheskogo mastita u laktiruyuschih korov [Prediction of subclinical mastitis in lactating cows] / N. T. Klimov, P. A. Parshin, V I. Zimnikov, O. A. Manzhurina, I. S. Chernyishova // Veterinarnaya patologiya. - 2018. - # 3. - S. 24-28.
4. Aliev A. Yu. Formyi proyavleniya mastita u ovets
[Forms of manifestation of mastitis in sheep] / A. Yu. Aliev // Uchenyie zapiski Kazanskoy gosudarstvennoy akademii veterinarnoy meditsinyi im. N. E. Baumana. - Kazan. - 2013. - S. 43-46.
5. Shabunin S. V. Aktualnyie problemyi terapii i profilaktiki mastita korov [Actual problems of treatment and prevention of cow mastitis] / S. V Shabunin, N. T. Klimov, A. G. Nezhdanov, L. I.
Efanova // Veterinariya. - 2011. - # 12. - S. 3-6.
6. Ivashkevich O. P. Subklinicheskiy mastit u korov (rasprostranenie, etiopatogenez i lechenie) [Subclinical mastitis in cows (distribution, etiopathogenesis and treatment)] / O. P Ivashkevich // Mezhdunarodnaya nauchno-prakticheskaya konferentsiya, posvyaschennaya 45-letiyu GNU VNIVPFiTRosselhozakademii «Problemyi i puti razvitiya veterinarii vyisokotehnologichnogo zhivotnovodstva». Sbornik nauchnyih trudov. -Voronezh. - 2015. - S.189-194.
7. Naurzyibaev I. B. Izuchenie bakterialnoy obsemenennosti moloka pri subklinicheskom mastite [The study of bacterial contamination of milk with subclinical mastitis] / I. B. Naurzyibaev, B. A. Asilbekov // Infektsionnyie i nezaraznyie bolezni s.-h zhivotnyih v Kazahstane. - Alma-Ata. - 1983. - S. 101-103.
8. Parikov V. A. Razrabotka i sovershenstvovanie metodov diagnostiki, terapii i profilaktiki mastita u korov [Development and improvement of methods for diagnosis, therapy and prevention of mastitis in cows]: dis. ... d-ra vet. nauk / V A. Parikov. -Voronezh, 1990. - 52 s.
9. Kartushina A. S. Sovershenstvovanie metoda terapii
korov pri subklinicheskom mastite [Development
and improvement of methods for diagnosis, therapy - 20 s.
and prevention of mastitis in cows]: avtoref. dis. ... 10-11. Vide supra.
kand. vet. nauk / A. S. Kartushina. - Krasnodar, 2016.
Aliev A. U., Bulatkhanov B. B., Magomedov M. Z., Magomedov A. S.,Klimov N. T. MILK MICROFLORA IN SHEEP AND COWS WITH SUBCLINICAL MASTITIS AND ITS ANTIBIOTIC SENSITIVITY
Key Words: cows, ewes, mammary gland, microflora, subclinical mastitis, secret of the mammary gland, antibiotic sensitivity.
Abstract: The data on the microbial contamination of the milk of patients with subclinical mastitis of cows and sheep in Dagestan are presented, and the sensitivity of the selected microflora to antibacterial agents is studied. Milk samples from lactating animals with subclinical mastitis were collected for bacteriological examination: cows (73 samples) and sheep (51 samples). It was established that pathogenic and conditionally pathogenic microflora was isolated from the secret of the udder of patients with subclinical mastitis in 89.0 % of cows and in 82.3 % of sheep, including: Staph. aureus 24.6-26.1 %, Staph. haemolyticus 4.7-7.7 %, Str. alactiae 16.7-20.0 %, Str. disgalactiae 6.1-7.1 %. Determination of the sensitivity of the isolated microflora by 16 antimicrobial agents showed that amoxicillin, cefotaxime, doxycycline, neomycin, tylosin, enrofloxacin were the most effective. Gentamicin, norfloxacin, levomycetin, lincomycin, tetracycline, furagin, rifampicin, streptomycin, penicillin, ampicillin showed themselves to a lesser degree. Furazolidone and kanamycin did not give positive results. Identification of the species of microorganisms and sensitivity to antibiotics is one of the most important and necessary conditions for successful and effective control of mastitis in farm animals.
Сведения об авторах:
Алиев Аюб Юсупович, доктор вет. наук, директор Прикаспийского зонального научно-исследовательского ветеринарного института - филиала ФГБНУ «Федеральный аграрный научный центр Республики Дагестан» (ФАНЦ РД); д. 88, ул. Дахадаева, г. Махачкала, Россия, 367000; e-mail: alievayb@mail.ru
Булатханов Булатхан Бисолтанович, научный сотрудник лаборатории незаразной патологии сельскохозяйственных животных, Прикаспийского зонального научно-исследовательского ветеринарного института - филиала ФГБНУ «Федеральный аграрный научный центр Республики Дагестан» (ФАНЦ РД); д. 88, ул. Дахадаева, г. Махачкала, Россия, 367000
Магомедов Мустафа Закарьяевич, доктор вет. наук, профессор кафедры микробиологии, вирусологии и патанатомии ФГБОУ ВО «Дагестанский государственный аграрный университет имени М.. Джамбулатова», д. 180, ул. М. Гаджиева, г. Махачкала, Россия, 367032
Магомедов Абдулатип Саадулавич, ветеринарный врач СПК им. «Хизроева» Хунзах-ского района Республики Дагестан
Климов Николай Тимофеевич, доктор вет. наук, главный научный сотрудник лаборатории болезней органов воспроизводства и молочной железы ГНУ «Всероссийский научно-исследовательский ветеринарный институт патологии, фармакологии и терапии» Российской академии сельскохозяйственных наук; д. 114-б, ул. Ломоносова, г. Воронеж, Россия, 394087; e-mail: vetklimov@gmail.com
Author affiliation:
Aliyev Ayub Yusupovich, D. Sc. in Veterinary Medicine, Director of the Caspian Zonal Veterinary Research Institute - a branch of the Federal Agrarian Scientific Center of the Republic of Dagestan (FASC RD); house 88, Dakhadaev str., Makhachkala city, Republic of Dagestan, Russian Federation, 367000; e-mail: alievayb@mail.ru
Bulatkhanov Bulatkhan Bisoltanovich, Researcher of the Laboratory for Non-communicable Pathology of Farm Animals of the Caspian Zone Veterinary Research Institute - a branch of the Federal Agrarian Scientific Center of the Republic of Dagestan (FASC RD); house 88, Dakhadaev str., Makhachkala city, Republic of Dagestan, Russian Federation, 367000
Magomedov Mustafa Zakaryaevich, D. Sc. in Veterinary Medicine, Professor of the Department of Microbiology, Virology and Pathological Anatomy of the Dagestan State Agrarian University named after M. Dzhambulatov; house 180, M. Gadzhiyev str., Makhachkala
city, Republic of Dagestan, Russian Federation, 367032; e-mail bac.05@mail.ru
Magomedov Abdulatip Saadulavich, Veterinarian of the APC them «Khizroev» Khunzakh district, Republic of Dagestan, Russian Federation
Klimov Nikolai Timofeevich, D. Sc. in Veterinary Medicine, Chief Researcher of the Laboratory of Diseases of the Reproductive Organs and Breast of State Scientific Institution 'All-Russian Veterinary Research Institute of Pathology, Pharmacology and Therapy" of the Russian Academy of Agricultural Sciences; house 114-b, Lomonosov str., Voronezh city, Russia, 394087; e-mail: vetklimov@gmail.com
УДК 619:616-00:615.356:636.7 Кравченко В. М., Кравченко Г. А.
КЛИНИКО-МОРФОЛОГИЧЕСКИЕ ИЗМЕНЕНИЯ И АНТИДОТОТЕРАПИЯ ПРИ ОТРАВЛЕНИИ СОБАК ИЗОНИАЗИДОМ
Ключевые слова: изониазид, собаки, антидототерапия, отравление, клинические признаки, па-тологоанатомическое вскрытие, патогистологические изменения, острое катарально-геморра-гическое воспаление, диапедезные кровоизлияния.
Резюме: Целью исследования явилось изучение клинических признаков, морфологических изменений и антидототерапии собак при отравлении изониазидом. Авторами впервые на большом материале были выявлены и описаны клинические признаки, патологоанатомические и патогистологические изменения, которыми характеризуются отравления собак изониазидом с учетом частоты их проявления у отравившихся животных. Патоморфо логические изменения обусловлены процессами нарушения гемодинамики, дистрофическими, некротическими и воспалительными процессами в различных органах и тканях собак. Основными из них являются острый катарально-геморрагический гастроэнтерит, серозно-геморрагический лимфаденит желудочных и брыжеечных лимфоузлов, гиперемия сосудов брыжейки и желудка, не свернувшаяся или плохо свернувшаяся кровь, подкожные и межмышечные диапедезные кровоизлияния, диапедезные кровоизлияния в брюшную полость - 100 %, острая венозная гиперемия селезенки
- 91,4 %, цианоз кожи и слизистых оболочек - 87,2 %, острая венозная гиперемия и отек легких
- 80,8 %, острая венозная гиперемия и отек оболочек и вещества мозга, серозный или серозно-геморрагический лимфаденит портальных лимфоузлов - 68,0 %, острая венозная гиперемия почек - 87,2 %, серозный или серозно-геморрагический лимфаденит околопочечных лимфоузлов
- 76,5 %. На основании обнаруженных патоморфологических изменений у собак, отравившихся изониазидом, была подобрана оптимальная антидототерапия. Данные, полученные в результате проведенного исследования, могут использоваться для установления отравления собак изо-ниазидом и проведения лечебно-профилактических мероприятий.
Введение
Изониазид или тубозид является препаратом, который применяется в медицине для профилактики и лечения различных форм туберкулеза у человека [1, 2]. Фар-макодинамика и фармакокинетика этого препарата у человека подробно описана в наставлении по его применению. Однако такие данные применительно к собакам в доступной отечественной и иностранной литературе отсутствуют. Сведения по кли-
ническому проявлению отравления изони-азидом у собак и других животных отрывочные и разноречивые [3-7]. Имеются отдельные сообщения, касающиеся патомор-фологических изменений при воздействии изониазида на белых мышей, морских свинок, кроликов, молодняка крупного рогатого скота и собак [8-10]. Однако детального описания морфологических изменений у собак при отравлении изониазидом как в отечественной, так и в иностранной
