CC BY
57
Short communications Краткие сообщения
Russian Journal of Infection and Immunity = Infektsiya i immunitet Инфекция и иммунитет
2022, vol. 12, no. 1, pp. 185-192 2022, Т. 12, № 1, с. 185-192
МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЙ МОНИТОРИНГ АНТИМИКРОБНОЙ РЕЗИСТЕНТНОСТИ ПОТЕНЦИАЛЬНЫХ ВОЗБУДИТЕЛЕЙ ИНФЕКЦИЙ КРОВОТОКА
А.С. Захватова12, М.Г. Дарьина12, Ю.С. Светличная1,2, Л.П. Зуева 1, Б.И. Асланов1, М.А. Червякова1
1ФГБОУВО Северо-Западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова, Санкт-Петербург, Россия 2 СПб ГБУЗ Медицинский информационно-аналитический центр, Санкт-Петербург, Россия
Резюме. Микробиологический мониторинг является важнейшим компонентом эпидемиологической безопасности организации лечебно-диагностического процесса, неотъемлемой частью процесса обеспечения эпидемиологического наблюдения за инфекциями, связанными с оказанием медицинской помощи (ИСМП), путем этиологической расшифровки, выявления госпитальных штаммов микроорганизмов и разработки стратегии и тактики борьбы с ними. В современных условиях развития здравоохранения и человечества в целом важнейшей проблемой является неуклонный рост числа инфекций, связанных с оказанием медицинской помощи (ИСМП), обусловленных нечувствительными к антимикробным препаратам (АМП) возбудителями, и снижение эффективности препаратов, используемых для их лечения. В условиях стационара структура инфекционных патологий, сопровождающих лечебно-диагностический процесс, специфична и определяется профилем и характером проводимого лечения, а также нозологией и возрастом пациентов. Микробиологический мониторинг играет важную роль для оценки и корректировки проводимой антимикробной терапии на основе организации своевременного и рационального взаимодействия лечащего врача и сотрудников бактериологической лаборатории. В этиологической структуре ИСМП к ведущим возбудителям относятся Staphylococcus aureus, Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae, Pseudomonas aeruginosa, Acinetobacter baumanii, а также Enterococcus faecalis и Enterococcus faecium. В настоящем исследовании оценены показатели распространенности в медицинских организациях Санкт-Петербурга потенциальных возбудителей инфекций кровотока, резистентных к АМП. Ретроспективно проанализированы данные о чувствительности к антимикробным препаратам штаммов шести клинически значимых возбудителей ИСМП, выявленных при исследовании крови пациентов 50 стационаров Санкт-Петербурга в 2016—2019 гг. Установлено, что применение в-лактамных антимикробных препаратов в настоящее время не эффективно при лечении больных с инфекциями кровотока, вызванными штаммами S. aureus (в 21,9% случаев), E. coli (в 2,1% случаев), Klebsiella spp. (в 39,6% случаев), P. aeruginosa (в 40,5% случаев), Acinetobacter spp. (в 66,7% случаев), Enterococcus spp. (в 4,4% случаев). Показано, что целенаправленный мониторинг инфекционных процессов, протекающих на фоне полирезистентности их возбудителей, следует рассматривать как эффективный организационный механизм своевременного выявления и профилактики осложнений, наблюдаемых в клинической практике, при оказании медицинской помощи пациентам, подверженным высокому риску развития инфекций кровотока. Выявление особенно-
Адрес для переписки:
Захватова Анастасия Сергеевна
198095, Россия, Санкт-Петербург, ул. Шкапина, 30,
СПб ГБУЗ Медицинский информационно-аналитический центр.
Тел.: 8 904 559-52-47.
E-mail: AZahvatova@spbmiac.ru
Для цитирования:
Захватова А.С., Дарьина М.Г, Светличная Ю.С., Зуева Л.П., Асланов Б.И., Червякова М.А. Микробиологический мониторинг антимикробной резистентности потенциальных возбудителей инфекций кровотока // Инфекция и иммунитет. 2022. Т. 12, № 1. С. 185-192. Со1: 10.15789/2220-7619-ДЯМ-1552
© Захватова А.С. и соавт., 2022
Contacts:
Anastasia S. Zakhvatova
198095, Russian Federation, St. Petersburg, Shkapina str., 30, St. Petersburg Medical Information and Analytical Center. Phone: +7 904 559-52-47. E-mail: AZahvatova@spbmiac.ru
Citation:
Zakhvatova A.S., Daryina M.G., Svetllchnaya Y.S., Zueva L.P., Aslanov B.I., Chervyakova M.A. Antimicrobial resistance monitoring of potential pathogens causing bloodstream infections // Russian Journal of Infection and Immunity = Infektsiya i immunitet. 2022, vol. 12, no. 1. C. 185-192. doi: 10.15789/2220-7619-ARM-1552
DOI: http://dx.doi.org/10.15789/2220-7619-ARM-1552
стей эпидемического процесса гнойно-септических инфекций с учетом фенотипа резистентности возбудителя в медицинских организациях позволяет определять пути совершенствования мер их профилактики для повышения качества оказываемой медицинской помощи. Очевидно, что данные микробиологического мониторинга также необходимы для разработки и проведения мероприятий по сдерживанию дальнейшего роста антимикробной резистентности возбудителей инфекционных заболеваний.
Ключевые слова: антимикробная резистентность микроорганизмов, возбудители инфекций кровотока, эпидемиологическая безопасность, инфекции, связанные с оказанием медицинской помощи, полирезистентность возбудителей, антимикробная терапия.
ANTIMICROBIAL RESISTANCE MONITORING OF POTENTIAL PATHOGENS CAUSING BLOODSTREAM INFECTIONS
Zakhvatova A.S.ab, Daryina M.G.ab, Svetlichnaya Y.S.ab, Zueva L.P. a, Aslanov B.I.a, Chervyakova M.A.
a North-Western State Medical University named after I.I. Mechnikov, St. Petersburg, Russian Federation b St. Petersburg Medical Information and Analytical Center, St. Petersburg, Russian Federation
Abstract. Microbiological monitoring, being an integral component of epidemiological surveillance of healthcare associated infection (HAI), is one of the most important components in hospital patient safety. The purpose of monitoring is the etiological interpretation of pathogens, the identification of microbial hospital strains and development of strategies as well as tactics for combating them. In modern conditions development of healthcare and humanity as a whole, the most important problem is the steady increase in the number of HAI caused by antimicrobial drug-insensitive pathogens and decreased drug effectiveness used in therapy. The structure of infectious conditions in the hospital is specific and is determined by the profile and nature of the treatment, nosology and age of patients. The main pathogens in the etiological structure of HAI are Staphylococcus aureus, Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae, Pseudomonas aeruginosa, Acinetobacter baumanii, Enterococcus faecalis and Enterococcus faecium. The study estimated the prevalence of bloodstream infections pathogens resistant to antimicrobial agents in healthcare facilities in St. Petersburg. We retrospectively analyzed data on the antimicrobial resistance for the six clinically significant HAI pathogens that were detected in the blood samples at the 50 hospitals of St. Petersburg during the years 2016—2019. It was found that the use of P-lactam antibiotics is not effective in the treatment of patients with bloodstream infections (BSI) caused by S. aureus (in 21.9% of BSI cases), E. coli (2.1%), Klebsiella spp. (39.6%), P. aeruginosa (40.5%), Acinetobacter spp. (66.7%), Enterococcus spp. (4.4%). This article shows that targeted microbiological monitoring of HAI caused by resistant pathogens should be considered as an effective organizational mechanism for timely detection and prevention of complications that are observed in medical care to patients at high risk for bloodstream infections. Identification of the features of the epidemic process for purulent-septic infections in medical organizations contributes to the improved preventive measures in order to improve the quality of medical care. Microbiological monitoring data are necessary for the development and implementation of measures to curb the further growth of antimicrobial resistance of infectious disease pathogens.
Key words: antimicrobial resistance of microorganisms, pathogens of bloodstream infections, epidemiological safety of medical activity, healthcare-associated infections, polyresistance of pathogens, antimicrobial therapy.
a
Введение
На современном этапе развития здравоохранения отмечается неуклонный рост числа инфекционных осложнений, связанных с оказанием медицинской помощи (ИСМП) и обусловленных условно-патогенными микроорганизмами, нечувствительными к антимикробным препаратам (АМП) [1]. Это значительно затрудняет прогнозирование результатов оказания медицинской помощи больным с патологией инфекционного генеза, так как при выделении резистентных штаммов эффективность лечения оказывается мало предсказуемой [2, 3]. Поэтому исследования, направленные на изучение распространения антимикробной резистентности в медицинских организациях, представляют особый интерес, а в связи с многократным ро-
стом использования высокоинвазивных лечебно-диагностических процедур актуальность подобного исследования увеличивается в разы.
В системе надзора и контроля за антибиотиками и резистентностью микробов в странах Евросоюза (European Antimicrobial Resistance Surveillance Network — EARS-Net) к индикаторным (в плане формирования антимикробной резистентности) отнесены шесть видов клинически значимых микроорганизмов: Staphylococcus aureus, Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae, Pseudomonas aeruginosa, Acinetobacter spp., Enterococcus spp. [6]. Самыми «проблемными» с позиции антибиотикорезистентности микробами в настоящее время считаются метицил-лин-резистентные штаммы S. aureus (MRSA), K. pneumoniae, E. coli, P. aeruginosa и Acinetobacter spp., устойчивые к АМП группы карбапенемов,
Таблица 1. Выделение S. aureus из крови пациентов МО СПб в 2016-2019 гг.
Table 1. S. aureus isolates from blood samples in St. Petersburg hospitals in 2016-2019
Годы Years Общее количество выделенных штаммов S. aureus/из них MRSA (%) Total S. aureus isolates/MRSA (%)
всего/из них MRSA total/MRSA подразделения/hospital departments
ОРИТ/ICU хирургические/surgery другие/other
2016 226/89 (39,4) 114/48 (42,1) 35/15 (42,9) 77/26 (33,8)
2017 402/169 (42,0) 216/99 (45,8) 59/19 (32,2) 127/51 (39,8)
2018 602/205 (34,1) 362/117 (32,3) 59/25 (42,4) 181/63 (34,8)
2019 805/306 (38,0) 543/195 (35,9) 84/29 (34,5) 178/82 (46,1)
Всего Total 2035/769 (37,8) 1235/459 (37,2) 237/88 (37,1) 563/222 (39,4)
и Enterococcus spp., резистентные к ванкомицину (VRE). Устойчивость штаммов этих микроорганизмов к ß-лактамам, а также их резистентность к антибактериальным средствам других групп позволяет предполагать неэффективность проводимой антимикробной терапии [4, 5].
Материалы и методы
Ретроспективно проанализированы данные о чувствительности к АМП штаммов микроорганизмов (S. aureus, E. coli, Klebsiella spp., P. aeruginosa, Acinetobacter spp., Enterococuss spp.), выделенных при исследовании крови пациентов 50 медицинских организаций стационарного типа Санкт-Петербурга (МО СПб) в 2016— 2019 гг. Результаты бактериологических исследований пациентов с высоким риском развития инфекций кровотока представлены многопрофильными стационарами для взрослых (29 учреждений) и детей (8 МО), 8 учреждениями родовспоможения и 5 стационарами для лечения больных социально значимыми заболеваниями (туберкулезом, кожно-венерологическими заболеваниями и психическими расстройствами).
Результаты и обсуждение
Характеристика резистентности к АМП штаммов S. aureus. За наблюдаемый период с 2016 по 2019 гг. при бактериологическом исследовании биологического материала пациентов стационаров Санкт-Петербурга выделены 53 739 штаммов S. aureus, в том числе из крови — 2035 (3,8%) изолятов данного микроорганизма. Удельный вес MRSA от общего количества выделенных за анализируемый период штаммов S. aureus составил 20,8%, в том числе из крови — 37,8%.
Обобщенные сведения о выделении штаммов MRSA из крови пациентов отдельных подразделений стационаров Санкт-Петербурга в 2016— 2019 гг. представлены в табл. 1.
Данные о выделении MRSA из крови пациентов с учетом типов стационаров Санкт-
Петербурга за 2016—2019 гг. представлены на рис. 1. Данные о выделении MRSA, предоставленные учреждениями родовспоможения и специализированными стационарами за исследуемый период, не отражают реальной картины в связи с незначительным количеством выделенных в этих стационарах штаммов S. aureus.
Характеристика резистентности к АМП штаммов E. coli и K. pneumoniae. В 2016—2019 гг. в Санкт-Петербурге из проб биологического материала пациентов стационаров выделены 47 320 штаммов E. coli и 49 730 штаммов K. pneumoniae, в том числе из крови — 1269 (2,7%) и 4041 (8,5%) изолятов соответственно. За наблюдаемый период удельный вес резистентных к карбапене-мам штаммов E. coli и K. pneumoniae составил, соответственно, 2,3 и 32,5% от общего числа штаммов этих микроорганизмов. Среди штаммов, выделенных из крови, доля устойчивых штаммов составила 3,5% (E. rnli — 44 шт.) и 44,6% (K. pneumoniae — 1801 шт.) соответственно.
для взрослых для детей СПб в целом
for adults for children SPb In general
Стационары | Hospitals 12016 Ц 2017 □ 2018 Q 2019
Рисунок 1. Доля MRSA от общего количества штаммов S. aureus, выделенных в 2016-2019 гг. в различных типах стационаров
Figure 1. Proportion of MRSA strains among S. aureus isolates in different types of hospitals in 2016-2019
Данные о выделении из крови пациентов ОРИТ и хирургических отделений штаммов E. coli и K. pneumoniae, резистентных к карба-пенемам, по сравнению с другими подразделениями стационаров Санкт-Петербурга в 2016— 2019 гг., представлены в табл. 2 и 3.
Сведения о выделении штаммов с учетом типов стационаров за 2016—2019 г. представлены на рис. 2 и 3. Данные о выделении штаммов E. coli и K. pneumoniae, резистентных к карбапе-
немам, в учреждениях родовспоможения за наблюдаемый период отсутствуют.
Характеристика резистентности к АМП штаммов P. aeruginosa и А. baumannii. За наблюдаемый период из проб биологического материала пациентов стационаров Санкт-Петербурга выделены 14 455 штаммов P. aeruginosa и 14 524 штамма А. baumannii (в том числе из крови пациентов — 590 (4,1%) и 1289 (8,9%) соответственно). Удельный вес штаммов P. aeruginosa
Таблица 2. Выделение E. coli из крови пациентов МО СПб в 2016-2019 гг.
Table 2. E. coli isolates obtained from blood samples in St. Petersburg hospitals in 2016-2019
Годы Years Общее количество штаммов E. coli/из них резистентные к карбапенемам (%) Total E. coli isolates/carbapenem resistant strains (%)
всего/резистентные ккарбапенемам total/carbapenem resistant подразделения/hospital departments
ОРИТ/ICU хирургические/surgery другие/other
2016 197/3 (1,5) 103/1 (1,0) 17/0 (-) 77/2 (2,6)
2017 251/10 (4,0) 160/10 (6,3) 19/0 (-) 72/0 (-)
2018 352/9 (2,6) 216/8 (3,7) 50/0 (-) 86/1 (1,2)
2019 469/22 (4,7) 296/18 (6,1) 50/2 (4,0) 123/2 (1,6)
Всего Total 1269/44 (3,5) 775/37 (4,8) 136/2 (1,5) 358/5 (1,4)
Таблица 3. Выделение K. pneumoniae из крови пациентов МО СПб в 2016-2019 гг.
Table 3. K. pneumoniae isolates obtained from blood samples in St. Petersburg hospitals in 2016-2019
Годы Years Общее количество штаммов K. pneumoniae/из них резистентные к карбапенемам (%) Total K. pneumoniae isolates/carbapenem resistant strains (%)
всего/резистентные ккарбапенемам total/carbapenem resistant подразделения/hospital departments
ОРИТ/ICU хирургические/surgery другие/other
2016 466/124 (26,6) 327 32/12 (35,3) 107/27 (25,7)
2017 859/344 (40,0) 620/255 (41,1) 57/22 (38,6) 182/67 (36,8)
2018 1282/585 (45,6) 949/445 (46,9) 79/31 (39,2) 254/109 (42,9)
2019 1434/748 (52,2) 1115/580 (52,0) 66/22 (33,3) 253/146 (57,7)
Всего Total 4041/1801 (44,6) 3011/1365 (45,3) 234/87 (37,2) 796/349 (43,8)
m
0
1 S
E œ
a. « га .E -Q œ
3
G 1 g ^
- 4-
О
- S
m аз и
о I С ¡S
Q. <D Q m
K 5 ï= ~
с Л
о ю о
CT CL а.
^ я о
^ к-
35 30 25 20 15 10 5 0
%
для взрослых for adults
25,0
12,5
4,9
0,0 0,0 0,0
33,3
0,0 0,0
для детей for children
специализированные specialized
СПб в целом SPb In general
Стационары | Hospitals |2016 □ 2017 □ 2018 Ц 2019
Рисунок 2. Доля резистентных к карбапенемам штаммов от общего количества штаммов E. coli, выделенных в 2016-2019 гг. в различных типах стационаров
Figure 2. Proportion of carbapenem resistant strains among E. coli isolates in different types of hospitals in 2016-2019
и А. baumannii, резистентных к меропенему (вследствие продукции металло^-лактамаз) и потенциально устойчивых ко многим другим АМП (в частности, антипсевдомонадным пе-нициллинам и цефалоспоринам), составил 40,2 и 64,1% от общего числа штаммов, среди них из крови больных выделено 59,5% (351 штаммов) и 75,2% (969 штаммов) соответственно.
Динамика выделения штаммов P. aeruginosa и А. baumannii, резистентных к карбапенемам
(меропенему и имипенему), из крови пациентов ОРИТ и хирургических отделений (по сравнению с другими подразделениями) стационаров Санкт-Петербурга в 2016—2019 гг. представлена в табл. 4 и 5.
В 2016—2019 гг. в многопрофильных стационарах для взрослых и детей отмечалась активная циркуляция штаммов P. aeruginosa и А. baumannii, резистентных к карбапенемам (меропенему и имипенему). Динамика выделе-
Стационары | Hospitals 12016 □ 2017 □ 2018 ■ 2019
Рисунок 3. Доля резистентных к карбапенемам штаммов от общего количества штаммов K. pneumoniae, выделенных в 2016-2019 гг. в различных типах стационаров
Figure 3. Proportion of carbapenem resistant strains among K. pneumoniae isolates in different types of hospitals in 2016-2019
Таблица 4. Выделение P. aeruginosa из крови пациентов МО СПб в 2016-2019 гг.
Table 4. P. aeruginosa isolates obtained from blood samples in St. Petersburg hospitals in 2016-2019
Годы Years Общее количество штаммов P. aeruginosa/из них резистентные к карбапенемам (%) Total P. aeruginosa isolates/carbapenem resistant strains (%)
всего/резистентные ккарбапенемам total/carbapenem resistant подразделения/hospital departments
ОРИТ/ICU хирургические/surgery другие/other
2016 45/26 (57,8) 30/18 (60,0) 3/3 (100) 12/5 (41,7)
2017 160/82 (51,3) 123/74 (60,2) 8/1 (12,5) 29/7 (24,1)
2018 162/95 (58,6) 135/80 (59,3) 5/4 (80,0) 22/11 (50,0)
2019 223/148 (66,4) 197/139 (70,6) 6/1 (16,7) 20/8 (40,0)
Всего Total 590/351 (59,5) 485/311 (64,1) 22/9 (40,9) 83/31 (37,3)
Таблица 5. Выделение А. baumannii из крови пациентов МО СПб в 2016-2019 гг.
Table 5. А. baumannii isolates obtained from blood samples in St. Petersburg hospitals in 2016-2019
Годы Years Общее количество штаммов А. baumannii/из них резистентные к карбапенемам (%) Total А. baumannii isolates/carbapenem resistant strains (%)
всего/резистентные ккарбапенемам total/carbapenem resistant подразделения/hospital departments
ОРИТ/ICU хирургические/surgery другие/other
2016 146/101 (69,2) 103/74 (71,8) 11/7 (63,6) 32/20 (62,5)
2017 306/230 (75,2) 251/195 (77,7) 12/7 (58,3) 43/28 (65,1)
2018 325/244 (75,1) 286/219 (76,6) 18/17 (94,4) 21/8 (38,1)
2019 512/394 (77,0) 440/351 (79,8) 18/13 (72,2) 54/30 (55,6)
Всего Total 1289/969 (75,2) 1080/839 (77,7) 59/44 (74,6) 150/86 (57,3)
%
для взрослых для детей СПб в целом
for adults for children SPb In general
Стационары | Hospitals ■ 2016 Q 2017 Ц 2018 Q 2019
Рисунок 4. Доля резистентных к карбапенемам штаммов от общего количества штаммов P. aeruginosa, выделенных в 2016-2019 гг. в различных типах стационаров
Figure 4. Proportion of carbapenem resistant strains among P. aeruginosa isolates in different types of hospitals in 2016-2019
для взрослых для детей СПб в целом
for adults for children SPb in general
Стационары | Hospitals ■ 2016 Q 2017 □ 2018 ■ 2019
Рисунок 5. Доля резистентных к карбапенемам штаммов от общего количества штаммов А. baumannii, выделенных в 2016-2019 гг. в различных типах стационаров
Figure 5. Proportion of carbapenem resistant strains among А. baumannii isolates in different types of hospitals in 2016-2019
ния из крови пациентов таких штаммов с учетом типа стационаров Санкт-Петербурга представлена на рис. 4 и 5.
Характеристика резистентности к АМП штаммов Enterococcus Брр. За исследуемый период из проб биологического материала пациентов Санкт-Петербурга выделены 32 062 штамма Enterococcus Брр., в том числе из крови — 1712 (5,3%). На долю штаммов группы Enterococcus Брр., резистентных к ванкомицину и устойчивых к большей части имеющихся в клинической практике АМП, пришлось 5,1% от общего числа (из крови — 12,7%, 218 штаммов).
Динамика выделения Enterococcus Брр., резистентных к ванкомицину, из крови пациентов ОРИТ и хирургических отделений по сравнению с другими подразделениями стационаров Санкт-Петербурга в 2016—2019 гг. представлена в табл. 6.
Динамика выделения из крови пациентов штаммов Enterococcus Брр., резистентных к ванкомицину, в 2016—2019 гг. в различных типах стационаров Санкт-Петербурга представлена на рис. 6. За этот период данные о выделении таких штаммов в учреждениях родовспоможения и специализированных стационарах отсутствуют.
Данные проведенного исследования позволяют считать, что микробиологический мониторинг, организуемый на уровнях МО и региона в целом, должен быть обязательным компонентом в системе инфекционного контроля и безопасности медицинской деятельности. Сведения, получаемые в ходе микробиологического мониторинга, являются индикаторной основой для выбора и включения АМП в схемы лечебного процесса. Очевидно,
Таблица 6. Выделение Enterococcus spp. из крови пациентов МО СПб в 2016-2019 гг.
Table 6. Enterococcus spp. isolates obtained from blood samples in St. Petersburg hospitals in 2016-2019
Годы Years Общее количество штаммов Enterococcus spp./из них резистентные к ванкомицину (%) Total Enterococcus spp. isolates/vancomycin resistant strains (%)
всего/резистентные к ванкомицину total/vancomycin resistant подразделения/hospital departments
ОРИТ/ICU хирургические/surgery другие/other
2016 324/46 (14,2) 187/35 (18,7) 45/1 (2,2) 92/10 (10,4)
2017 340/47 (13,8) 225/40 (17,9) 29/3 (10,3) 86/4 (4,7)
2018 478/61 (12,8) 300/38 (12,7) 59/12 (20,3) 119/11 (9,2)
2019 570/64 (11,2) 356/39 (11,0) 51/5(9,8) 163/20 (12,3)
Всего Total 1712/218 (12,7) 1068/152 (14,2) 184/21 (11,4) 460/45 (9,8)
что ß-лактамные АМП постепенно утрачивают свою эффективность в лечении больных с инфекциями, обусловленными клинически значимыми микроорганизмами, среди которых высокий удельный вес резистентных штаммов наблюдается у S. aureus — 21,9%, E. coli — 2,1%, K. pneumoniae — 39,6%, P. aeruginosa — 40,5%, А. baumannii — 66,7%. При целенаправленном проведении микробиологического мониторинга возбудителей инфекционных заболеваний в стационарах возможно не только получить достоверную информацию о распространенности микроорганизмов, резистентных к АМП, но и своевременно учитывать ее при назначении антимикробной терапии. Данные сведения также необходимы для проведения мероприятий по сдерживанию роста антимикробной резистентности возбудителей инфекционных заболеваний.
Заключение
Рациональная антимикробная терапия может осуществляться при своевременном и гарантированном получении информации о чувствительности микроорганизмов к АМП. Распространение в медицинских организациях устойчивых к АМП микроорганизмов существенно снижает эффективность антибактериальной терапии и сопряжено с угрозой распространения эпидемически значимых штаммов в широких масштабах. Несомненно, всестороннее целенаправленное наблюдение за устойчивостью возбудителей инфекций к АМП представляет собой один из эффективных путей к профилактике антибиотикорезистентности.
С 2008 г. в Санкт-Петербурге проводится работа по обеспечению городской системы слежения за распространенностью потенциальных
Список литературы/References
%
для взрослых для детей СПб в целом
for adults for children SPbln general
Стационары | Hospitals ■ 2016 Ц 2017 □ 2018 □ 2019
Рисунок 6. Доля резистентных к ванкомицину штаммов от общего количества штаммов Enterococcus spp., выделенных в 2016-2019 гг. в различных типах стационаров
Figure 6. Proportion of vancomycin resistant strains among Enterococcus spp. isolates in different types of hospitals in 2016-2019
возбудителей ИСМП, резистентных к АМП. С 2018 г. результаты микробиологического мониторинга чувствительности к АМП клинически значимых микроорганизмов (S. aureus, E. coli, K. pneumoniae, P. aeruginosa, Acinetobacter spp., Enterococcus spp.) отображаются в информационно-аналитическом модуле (ИАМ) региональной медицинской информационной системы (РМИС) и доступны специалистам разных уровней для обеспечения эффективного эпидемиологического надзора и реализации программ по сдерживанию роста антимикробной резистентности.
1. Агеевец В.А., Лазарева И.В., Сидоренко С.В. Проблема устойчивости к карбапенемным антибиотикам: распространение карбапенемаз в мире и России, эпидемиология, диагностика, возможности лечения // Фарматека. 2015. № 14. С. 9—16. [Ageevets V.A., Lazareva I.V., Sidorenko S.V. Problem of resistance to carbapenem antibiotics: the spread of carbapenemases in the world and Russia, epidemiology, diagnosis, treatment options. Farmateka, 2015, no. 14, pp. 9—16. (In Russ.)]
2. Гомон Ю.М., Светличная Ю.С., Колбин А.С., Сидоренко С.В., Дарьина М.Г., Зуева Л.П., Курылев А.А., Иванов И.Г., Стрижелецкий В.В. Бремя резистентности бактериальных инфекций, вызванных резистентными штаммами S. aureus, E. coli, K. pneumoniaе в России // Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2018. Т. 20, № 4. С. 310-318. [Gomon Yu.M., Svetlichnaya Yu.S., Kolbin A.S., Sidorenko S.V., Daryina M.G., Zueva L.P., Kurylyov A.A., Ivanov I.G., Strizheletskiy V.V. Burden of resistant infections caused by S. aureus, E. coli, K. pneumoniae in Russian Federation. Klinicheskaya mikrobiologiya i antimikrobnaya khimioterapiya = Clinical Microbiology and Antimicrobial Chemotherapy, 2018, vol. 20, no. 4, pp. 310-318. (In Russ.)]
3. Захарова Ю.А., Сидоренко С.В., Федотова О.С. Внутривидовое типирование госпитальных штаммов Acinetobacter baumannii с множественной лекарственной устойчивостью // Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2018. Т. 20, № 1. С. 22-23. [Zakharova Yu.A., Sidorenko S.V., Fedotova O.S. Intraspecific typing of multidrug-resistant Acinetobacter baumannii hospital strains. Klinicheskaya mikrobiologiya i antimikrobnaya khimioterapiya = Clinical Microbiology and Antimicrobial Chemotherapy, 2018, vol. 20, no. 1, pp. 22-23. (In Russ.)]
4. Bradford P.A., Kazmierczak K.M., Wise M.G., Biedenbach D.J., Hackel M., Sahm D.F. Correlation of ß-lactamase production and colistin resistance among Enterobacteriaceae isolates from a Global Surveillance Program. J. Antimicrob. Chemother., 2016, vol. 60, no. 3, pp. 1385-1392. doi: 10.1128/AAC. 01870-15
5. Morill H.J., Pogue J.M., Kaye K.S., LaPlante K.L. Treatment options for carbapenem-resistant Enterobacteriaceae infections. Open Forum Infect. Dis, 2015, vol. 2, no. 2: ofv050. doi: 10.1093/ofid/ofv050
6. Sacha P., Michalska A., Ojdana D., Wieczorek P., Hauschild T., Majewski P., Tryniszewska E. Identification of plasmid OXA and other ß-lactamase genes among carbapenem-resistant isolates of Pseudomonas aeruginosa from the Clinical University Hospital in northeastern Poland. New Microbiol., 2015, vol. 38, no. 2, pp. 271—275.
Авторы:
Захватова А.С., аспирант кафедры эпидемиологии, паразитологии и дезинфектологии ФГБОУ ВО СевероЗападный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова, Санкт-Петербург, Россия; врач-методист сектора госпитальной эпидемиологии городского координационного организационно-методического отдела СПб ГБУЗ Медицинский информационно-аналитический центр, Санкт-Петербург, Россия;
Дарьина М.Г., к.м.н., доцент кафедры эпидемиологии, паразитологии и дезинфектологии ФГБОУ ВО СевероЗападный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова, Санкт-Петербург, Россия; зав. городским координационным организационно-методическим отделом СПб ГБУЗ Медицинский информационно-аналитический центр, Санкт-Петербург, Россия;
Светличная Ю.С., к.м.н., ассистент кафедры эпидемиологии, паразитологии и дезинфектологии ФГБОУ ВО СевероЗападный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова, Санкт-Петербург, Россия; начальник сектора госпитальной эпидемиологии отдела организационно-методического сопровождения и мониторинга медицинской деятельности СПб ГБУЗ Медицинский информационно-аналитический центр, Санкт-Петербург, Россия; |Зуева Л.П., д.м.н., профессор, зав. кафедрой эпидемиологии, паразитологии и дезинфектологии ФГБОУ ВО СевероЗападный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова, Санкт-Петербург, Россия; Асланов Б.И., д.м.н., доцент, профессор кафедры эпидемиологии, паразитологии и дезинфектологии ФГБОУ ВО Северо-Западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова, Санкт-Петербург, Россия; Червякова М.А., аспирант кафедры эпидемиологии, паразитологии и дезинфектологии ФГБОУ ВО СевероЗападный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова, Санкт-Петербург, Россия.
Поступила в редакцию 31.07.2020 Принята к печати 25.12.2021
Authors:
Zakhvatova A.S., Postgraduate Student, Department of Epidemiology, Parasitology and Disinfectology, North-Western State Medical University named after I.I. Mechnikov, St. Petersburg, Russian Federation; Physician-Methodist of the Hospital Epidemiology Section of the City Coordination Organisational and Methodological Department, St. Petersburg Medical Information and Analytical Center, St. Petersburg, Russian Federation; Daryina M.G., PhD (Medicine), Associate Professor, Department of Epidemiology, Parasitology and Disinfectology, Northwestern State Medical University named after I.I. Mechnikov, St. Petersburg, Russian Federation; Head of the City Coordination Organisational and Methodological Department, St. Petersburg Medical Information and Analytical Center, St. Petersburg, Russian Federation;
Svetlichnaya Y.S., PhD (Medicine), Associate Professor, Department of Epidemiology, Parasitology and Disinfectology, North-Western State Medical University named after I.I. Mechnikov, St. Petersburg, Russian Federation; Head of the Hospital Epidemiology Section of the City Coordination Organisational and Methodological Department, St. Petersburg Medical Information and Analytical Center, St. Petersburg, Russian Federation; |Zueva L.P., PhD, MD (Medicine), Professor, Head of the Department of Epidemiology, Parasitology and Disinfectology, North-Western State Medical University named after I.I. Mechnikov, St. Petersburg, Russian Federation;
Aslanov B.I., PhD, MD (Medicine), Associate Professor, Professor of the Department of Epidemiology, Parasitology and Disinfectology, North-Western State Medical University named after I.I. Mechnikov, St. Petersburg, Russian Federation; Chervyakova M.A., Postgraduate Student, Department of Epidemiology, Parasitology and Disinfectology, North-Western State Medical University named after I.I. Mechnikov, St. Petersburg, Russian Federation.
Received 31.07.2020 Accepted 25.12.2021
