Липидная фракция из морской бурой водоросли Saccharina japonica как фармакологическое средство при гепатозах Текст научной статьи по специальности «Фундаментальная медицина»

УДК 577.121+615.324

ЛИПИДНАЯ ФРАКЦИЯ ИЗ МОРСКОЙ БУРОЙ ВОДОРОСЛИ SACCHARINA JAPONICA КАК ФАРМАКОЛОГИЧЕСКОЕ СРЕДСТВО ПРИ ГЕПАТОЗАХ

© 2015 В.Г. Спрыгин1, Н.Ф. Кушнерова1, С.Е. Фоменко1, Т.В. Момот2-3, Т.В. Павлова1

1 Тихоокеанский океанологический институт им. В.И. Ильичева ДВО РАН 2 Дальневосточный федеральный университет, г. Владивосток 3 Институт биологии моря им. А.В. Жирмунского ДВО РАН

Поступила в редакцию 01.04.2015

Показано, что липидная фракция, выделенная из водно-спиртового экстракта (70%) таллома бурой водоросли сахарины японской, содержащая комплекс нейтральных липидов и фосфолипидов с высоким содержанием полиненасыщенных жирных кислот семейства n-3 и n-6, оказывает гепатозащитное действие в условиях СС14-токсического гепатита у крыс. Отмечалось восстановление удельной массы печени и ее этерифицирующей функции, снижение активности аланинаминотрансферазы в крови и уровня малонового диальдегида в печени, снятие жировой инфильтрации за счет снижения количества общих липидов и восстановление фосфолипидного спектра мембран гепатоцитов. Действие липидного комплекса из сахарины японской в сохранении липидного обмена печени оказалось более эффективным, чем эталонного гепатопротектора «Эссенциале®». Сахарина японская представляет перспективный вид сырья для получения гепатопротекторных препаратов, содержащих эссенциальные фосфолипиды.

Ключевые слова: сахарина японская, печень, липидный обмен, фосфолипиды, четыреххлористый углерод, токсический гепатит

Патология печени различного генеза является широко распространенной причиной заболеваемости и смертности населения. В основе большинства механизмов гепатозов лежит повреждение мембранных структур гепатоцитов, что делает обоснованным применение средств, обладающих репаративными свойствами. К таковым относятся препараты, содержащие фосфолипиды. Эталонным гепатопротектором фосфолипидной природы считается широко известный в аптечной сети препарат «Эссенциале®» [6]. В то же время высокая стоимость и зарубежное производство определяют необходимость поиска отечественных источников сырья для получения препаратов с аналогичными свойствами. В последнее время все чаще внимание исследователей привлекают морские гидробио-нты, в частности, морские водоросли, в состав которых входит достаточно высокий процент

Спрыгин Владимир Геннадьевич, кандидат биологических наук, ведущий научный сотрудник лаборатории биохимии. E-mail: [email protected] Кушнерова Наталья Федоровна, доктор биологических наук, профессор, заведующая лабораторией биохимии. E-mail: [email protected]

Фоменко Светлана Евгеньевна, кандидат биологических наук, ведущий научный сотрудник лаборатории биохимии. E-mail: [email protected]

Момот Татьяна Викторовна, кандидат медицинских наук, доцент кафедры фундаментальной медицины, научный сотрудник лаборатории фармакологии. E-mail: kushnerova83@mail. ru

Павлова Татьяна Васильевна, старший инженер лаборатории биохимии. E-mail: [email protected]

веществ липидной природы, в частности, фосфолипиды, содержащие полиненасыщенные жирные кислоты (ПНЖК) семейства n-3 и n-6 [7]. Однако работ, посвященных изучению гепатопротектор-ной активности липидных комплексов из морских водорослей крайне мало, что обусловливает актуальность проведения исследований в плане расширения ресурсного диапазона для получения природных гепатопротекторов, содержащих фос-фолипиды. Наибольший интерес в этом отношении представляют собой массовые виды морских водорослей, имеющих пищевое значение. Ранее нами было показано [5], что липидный комплекс, выделенный из экстракта Saccharina japonica (ранее Laminaria japonica), содержит в значительных количествах фосфолипиды, которые преимущественно составляют мембранный матрикс. Также в состав комплекса входит целый ряд липидных фракций, являющихся важнейшими предшественниками биосинтеза фосфолипидов в организме животных и человека. В связи с этим представляется интересным изучить гепатопротекторные свойства комплекса липидов, выделенных из Saccharina japonica, в условиях экспериментального токсического гепатита.

Цель работы: явилось изучение гепато-протекторных свойств липидной фракции, выделенной из водно-спиртового (70%) экстракта таллома бурой морской водоросли Saccharina japonica при интоксикации крыс четыреххлористым углеродом.

Материалы и методы исследования. Образцы водоросли Saccharina japónica собирали в период с 1 августа по 30 сентября 2014 г. в прибрежной зоне залива Петра Великого Японского моря. Собранные образцы промывали профильтрованной морской водой и затем нагревали 2 мин. в кипящей воде для инактивации ферментов и обсушивали в тени на открытом воздухе. Далее водоросли сушили в помещении в потоке воздуха до суховоздушного состояния с остаточной влажностью 10-15%. Высушенные водоросли измельчали с помощью лабораторной мельницы Pulverisette 15 (Fritsch, Germany) до размера частиц 3-5 мм. Получение экстрактов проводили методом реперколя-ции с 70% этиловым спиртом в течение 48 часов при периодическом перемешивании. Объем экст-рагента на 100 г водоросли составлял 300 мл. Через 48 часов экстракт сливали, водоросли отжимали на сите и полученные извлечения объединяли.

Суммарную липидную фракцию из экстракта Saccharina japónica получали по методу Фолча [9]. Для этого 100 мл исходного экстракта упаривали на роторном испарителе (t<30 С) для удаления спирта и разводили дистиллированной водой до исходного объема. Полученный образец подкисляли 0,1 н HCl и экстрагировали два раза по 200 мл смесью растворителей хлороформ: метанол - 2:1 (по объему). Для разделения фаз к экстракту добавляли раствор хлористого натрия (0,73%) в количестве 20% от объема. После разделения фаз хлороформный слой, содержащий липиды, отделяли на делительной воронке и упаривали на роторном испарителе (T<37oC) до отсутствия запаха хлороформа. Выход липидного экстракта составил 1% от массы сухой водоросли, что согласуется с известными в литературе данными [8].

Эксперимент проводили на крысах-самцах линии Вистар массой тела 200-220 г, содержавшихся в стандартных условиях вивария и на стандартном рационе питания. В качестве сравнения использовали коммерческий препарат «Эссенциа-ле®» (полиненасы-щенный фосфатидилхолин соевых бобов производства «Рон-Пуленк Рорер», Германия) [1]. Для создания острого токсического гепатита животным вводили в дорзальную шейную складку четыреххлористый углерод (ЧХУ) в дозе 2 мл/кг в 50% масляном растворе (оливковое масло) ежедневно в течение 4 дней [1]. С 5-го дня эксперимента одна группа животных получала в течение 7 дней эссенциале (в вазелиновом масле) в дозе 80 мг/кг [4], другая группа - липидный комплекс из Saccharina japónica в той же дозе (в вазелиновом масле). Животным контрольной группы вводили эквиобъемное количество вазелинового масла. В ходе исследования были выделены следующие группы животных по 10 крыс в каждой: 1 -я - контроль; 2-я - введение ЧХУ в течение 4 дней; 3-я - введение ЧХУ с последующей отменой (де-привация) в течение 7 дней; 4-я - введение ли-пидной фракции из сахарины в период

депривации в течение 7 дней; 5-я -введение эс-сенциале в период депривации в течение 7 дней. Через сутки после последнего введения препаратов крыс выводили из эксперимента декапитацией под легким эфирным наркозом с соблюдением правил и международных рекомендаций Европейской конвенции по защите позвоночных животных, используемых для экспериментов или в иных научных целях (Страсбург, 1986). Исследование одобрено Комиссией по вопросам этики Тихоокеанского океанологического института им. В.И. Ильичева ДВО РАН.

Липиды из ткани печени экстрагировали по методу J. Folch et al. [9]. Количество общих липидов определяли весовым методом в мг на 1 г сухой ткани. Фракционное разделение фосфолипидов осуществляли методом двумерной микротонкослойной хроматографии на силикагеле, а их количественное определение по методу V.E. Vaskovsky et al. [12]. Использовали следующие системы растворителей [11]: в первом направлении - хлороформ: метанол: аммиак (28%-ный) (65:25:5 или 65:35:5, по объему), во втором - хлороформ: ацетон: метанол: ледяная уксусная кислота: вода (30:40:10:10:5 или 50:20:10:10:5, по объему). Для обнаружения холинсодержащих фосфолипидов (фосфатидилхолин, лизофосфатадилхолин, сфин-гомиелин) использовали реактив Драгендорфа [14]; липиды проявлялись в виде оранжевых пятен на желтом фоне. Для обнаружения фосфолипидов, содержащих аминогруппу (фосфатидилэтанола-мин, лизофосфатидилэтаноламин, фосфатидилсе-рин), пластинки опрыскивали 5%-ным раствором нингидрина в ацетоне [11] с последующим нагреванием в течение 2-3 минут над парами воды до появления розовых пятен на белом фоне. Фосфо-липиды, содержащие гидроксильную групппу (фосфатидилинозит), обнаруживали с помощью периодатного реактива Шиффа [3], пятна липидов имели розово-сиреневый цвет. Для проявления всех фосфолипидных фракций применяли молиб-датный реактив [12] и реагент на основе малахитового зеленого [13]. При этом липиды проявлялись в виде синих или зеленых пятен на белом фоне. Содержание отдельных фракций фосфолипидов выражали в процентах от их общего количества. В сыворотке крови определяли активность аланина-минотрансферазы (АлАТ; BIO-LA-TEST, Чехия), в печени - содержание малонового диальдегида (МДА) [2]. Обработку результатов проводили с использованием статистического пакета Instat 3.0 (GraphPad Software Inc. USA, 2005) с функцией проверки соответствия выборки закону нормального распределения. Для определения статистической значимости различий в зависимости от параметров распределения использовали параметрический t-критерий Стьюдента или непараметрический U-критерий Манна-Уитни. Различия считали статистически значимыми при р<0,05.

Результаты и обсуждение. При изучении состава липидного комплекса из экстракта Саха-рины японской было выявлено, что более 60% относится к категории мембрано-активных компонентов [5]. В качестве мембраноактивной фракции принимали сумму эссенциальных фосфолипидов и нейтральных липидов. Эссенциальные фосфоли-пиды составляли 65% мембраноактивной фракции липидов, при этом суммарное содержание основных структурных компонентов мембран фосфати-дилхолина и фосфатидилэтаноламина, а также предшествен-ника биосинтеза фосфолипидов -фосфатидной кислоты составляло более 60%. Важным элементом этой композиции является высокое содержание (более 30%) в составе фосфолипидов ПНЖК семейства п-3 - предшественниц биологически активных эйкозаноидов [9].

Введение ЧХУ в течение 4 дней вызывало у животных типичную картину токсического гепатита с изменением биохимических показателей, характеризующих уровень свободно-ради-кальных процессов в организме и обмен липидов в печени. Отмечали достоверное увеличение в 1,4 раза (4,8±0,33 г/100 г массы против 3,43±0,21 г/100 г массы в контроле; р<0,001) удельной массы печени при одновременном снижении массы животных в опытной группе на 20% (175±3,9 г против 219±5,6 г в контроле; р<0,001). При визуальном обследовании в пече-ни отмечалась сплошная зернистость жировых включений, то есть проявлялась выраженная жировая инфильтрация, характерная при интоксикации ЧХУ. Количество общих липидов в печени превышало контрольный уровень в 3 раза, что составляло 133,18±6,54 мг/г ткани против 44,21 ±2,68 мг/г ткани в контроле.

Таблица 1. Содержание фракций фосфолипидов в печени крыс после поражения четыреххлористым углеродом и введении липидной фракции таллома S. japonica и эссенциале (M±m)

Пока-за-тели 1 группа Контроль (интакт-ные) 2 группа ЧХУ 3 группа Депривация 4 группа Депривация +экстракт таллома ульвы 5 группа Депривация +эссенциале

ФХ 44,12+0,61 40,84'''+0,72 38,25'''+0,75 "43,92+0,98 ''44,80+0,96

ЛФХ 4,53+0,19 6,31'''+0,31 7,56'''+0,25 "'4,15+0,19 '''5,51'',3+0,23

СМ 9,40+0,46 11,65'+0,71 14,36'''+0,65 "'9,00+0,44 '''9,722+0,51

ФЭ 22,30+0,93 20,11'''+0,85 18,62'''+0,78 '23,31+0,84 ''22,101+0,81

ЛФЭ 3,15+0,12 5,04'''+0,17 5,86'''+0,19 '''3,25+0,19 '''4,60''', 3+0,16

ФС 4,32+0,19 3,42''+0,18 3,38''+0,18 '''4,43+0,24 3,90', 3+0,21

ФИ 4,78+0,15 4,10'''+0,14 3,85'''+0,10 '''4,60+0,24 '3,91'''1+0,19

ФК 3,10+0,11 5,38'''+0,16 5,02'''+0,17 '''2,90+0,09 '''2,38''', 3+0,11

ДФГ 4,30+0,13 3,15***+0,11 3,10'''+0,09 '''4,44+0,19 3,08''', 3+0,09

Примечание: различия статистически достоверны при * 1 - р<0,05; " 2 - р<0,01; *" 3 - р<0,001. Звездочки справа -сравнение с контрольной группой, звездочки слева - сравнение с 3-й группой (депривация), цифры справа -сравнение с 4-й группой. Сокращения: ФХ - фосфатидилхолин, ЛФХ - лизофосфатидилхолин, СМ - сфинго-миелин, ФЭ - фосфатидилэтаноламин, ЛФЭ - лизофосфатидилэтаноламин, ФС - фосфатидилсерин, ФИ -фосфатидилинозит, ФК - фосфатидная кислота, ДФГ - дифосфатидилглицерин

О развитии токсического гепатита в данной экспериментальной модели свидетельствует повышение активности в крови фермента маркера цитолиза АлАТ в 6 раз (236,63±29,65 Ед/л против 38,56±3,18 Ед/л в контроле; р<0,001), обусловленное выходом фермента из гепатоцитов в кровь в результате повышения проницаемости мембран. Биохимическим механизмом этого феномена является активация перекисного окисления жирных кислот мембранных фосфолипидов, что в нашем эксперименте подтверждается двукратным увеличением содержания МДА (81,6±4,2 нмоль/г 39,8±2,3 нмоль/г в контроле; р<0,001) в печени крыс. Высокая активность перекисного окисления липидов (ПОЛ) приводит к изменениям в соотношении фосфолипидных фракций гепатоцитов (табл.), что сопровождалось увеличением на 39%

(р<0,001) содержания лизофосфатидилхолина (ЛФХ), на 60% (р<0,001) лизофосфатидилэтанола-мина (ЛФЭ), на 74% (р<0,001) фосфатидной кислоты (ФК), что обусловлено активацией фосфолипаз.

Отмечали снижение содержания основных структурных комопонентов мембран - фосфати-дилхолина (ФХ) и фосфатидилэтаноламина (ФЭ) на 7-10% (р<0,001). Известно, что при активации сво-боднорадикальных процессов в мембранах в первую очередь подвергаются окислению полиненасыщенные жирные кислоты фосфолипидов, что и вызывает уменьшение содержания соответствующих фракций. Накопление лизофракций фосфоли-пидов в мембране гепатоцитов приводит к нарушению пространственно-функционального матрикса и вызывает компенсаторный ответ в виде увеличения количества сфингомиелина, кото-

рый наряду с холестерином, является ее стабилизатором. Уменьшение количества дифосфатидилг-лицерина (ДФГ) на 27% (p<0,001) - основного фос-фолипида митохондрий, предполагает нарушение в системе фосфорилироания и ресинтеза АТФ. Следует отметить, что снижение содержания метаболически активных фракций фосфатидилино-зита (ФИ) на 14% (p<0,001) и фосфатидилсерина (ФС) на 21% (p<0,001), определяет угнетение активности мембраносвязанных ферментов.

Через 7 дней после отмены ЧХУ (период депривации) в печени подопытных животных (3-я группа) большинство изученных биохимических параметров не нормализовалось, что свидетельствовало о продолжающемся токсическом стрессе и недостаточности собственных защитных сил организма противостоять развитию токсической патологии. Так, масса животных в период отмены токсиканта (депривациия) изменилась незначительно по сравнению со 2-й группой (ЧХУ) (увеличение на 5%) и составила 183,79±4,60 г, тогда как относительно контроля сохранялась достоверно низкой (на 19%, р<0,001). Удельная масса печени животных снизилась на 10% (р<0,05) относительно 2-й группы (ЧХУ), что соответствовало 4,32±0,15 г/100 г массы, но в то же время, еще достоверно превышало контрольный уровень на 26% (р<0,001). В печени при вскрытии имелись зернистые включения липидов. Количество общих липидов в печени превышало контрольный уровень в 2,7 раза (р<0,001), что составляло 118,35±10,56 мг/г ткани. Достоверно высокими по сравнению с контролем сохранялась актив-ность АлАТ (на 51%, р<0,05) и уровень МДА на 58% (соответственно 58,22±2,14 Ед/л и 62,88±3,18 нмоль/г; р<0,001). В период депривации были отмечены еще большие отклонения в соотношении фосфолипидных фракций гепатоцитов. Содержание лизофракций (ЛФХ и ЛФЭ) продолжало нарастать, что указывает на дальнейшую активацию ПОЛ и фосфолипаз. Содержание основных структурных компонентов мембран (ФХ и ФЭ) имело тенденцию к дальнейшему снижению по сравнению со 2-й группой, а относительно контрольных значений было снижено на 13-17% (р<0,001). Содержание метаболический активных фракций (ФС, ФИ и ДФГ) оставалось на уровне 2-й группы, при дальнейшем увеличении содержания СМ, которое достигло 53% (р<0,001) по отношению к контролю.

Введение липидного комплекса из S. japónica и эссенциале в период отмены ЧХУ пока-зало, в общем, схожий биологический эффект, но с разной степенью выраженности. Так, в 4-й группе (S. japónica) масса тела крыс составляла 220±6,18 г, тогда как в 5-й группе (эссенциале) - 202±5,12 г, что на 8% (p<0,05) ниже контроль-ных величин. Удельная масса печени в 4-й группе, в среднем, была

3,38±0,09 г/100 г массы, а в 5-й группе - 2,99±0,11 г/100 г массы. Количество общих липидов в печени крыс 4-й группы относительно контроля полностью нормализовалось (45,57±2,20 мг/г ткани), тогда как в 5-й группе эта величина была на 20% (р<0,05) выше (53,19±2,51 мг/г ткани). Активность АлАТ при введении комплекса липидов из S. japónica достоверно не отличалась от контроля (41,62±2,31 Ед/л), а при введении эссенциале была выше на 25% (49,65±2,35 Ед/л; р<0,05), что свидетельствует о не полном восста-новлении структуры мембран гепатоцитов. Величина МДА в 4-й группе также восстановилась до контрольных величин (40,56±3,12 нмоль/г печени), а при введении эссенциале была на 28% (р<0,05) выше контроля (50,09±3,08 нмоль/г печени), что указывало на сохраняющийся повышенным уровень ПОЛ. При анализе фосфолипидного спектра в ткани печени животных 4-й и 5-й групп в сравнении с контрольными значениями, было отмечено, что введение комплекса липидов из S. japónica сопровождалось нормализацией исследуемых биохимических параметров. Так, до контрольных значений снизилось количество ЛФХ и ЛФЭ при одновременном увеличении содержания ФХ и ФЭ. Восстановилось соотношение метаболически активных фракций (ФК, ФИ, ФС, ДФГ) т.е. применение комплекса ли-пидов из S. japónica в период депривации способствовало снятию токсического действия ЧХУ. При этом в группе эссенциале, несмотря на выраженную тенденцию к нормализации исследуемых биохимических показателей, были отмечены повышенные уровни ЛФХ и ЛФЭ, соответственно, на 22 и 46% (р<0,001). В то же время, содержание ФК, ФИ, ФС и ДФГ не восстановилось до уровня контроля. Это указывает на сохраняющиеся последствия токсического стресса. Таким образом, применение комплекса липидов из S. japónica показало более высокую эффективность в восстановлении функции печени. По мнению авторов, основной причиной наблюдаемых различий является то, что биологической активности полиненасыщенного фосфатидихолина из соевых бобов, входящего в состав эссенциале, противопоставлен многокомпонентный липидный комплекс из S. japónica. Его более высокая эффективность, по нашему мнению, обусловлена наличием в составе практически всех известных классов фосфолипидов морского происхождения, обладающих репаратив-ными свойствами. При этом свободные жирные кислоты с высокой степенью ненасыщенности (семейство n-3 и n-6) участвуют в преобразовании лизофосфолипидов в основные структурные компоненты мембран и метаболически активные фракции фосфолипидов.

Выводы: на основании полученных результатов следует, что применение липидного комплекса из экстракта S. japónica при экспериментальном ЧХУ-гепатите сопровождалось выраженным гепатозащитным действием, которое проявлялось в восстановлении массы животных и весовых показателей печени, нормализации липидного обмена и снижении перекисного окисления ли-пидов. Механизм терапевтического действия липидного комплекса из S. japónica обусловлен восстановлением фосфолипидного паттерна мембран гепатоцитов за счет обеспечения необходимого набора пластических ресурсов в виде фософлипи-дов и полиненасыщенных жирных кислот для репарации липидного бислоя плазматической мембраны, восстановления ее пространственно-функционального матрикса. По исследованным показателям липидный комплекс из S. japónica превосходит препарат «Эссенциале®».

Работа поддержана Российским научным фондом проект № 14-50-00034.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ:

1. Венгеровский, А.И. Доклиническое изучение гепатозащитных средств / А.И. Венгеровский, И.В. Марков, А.С. Саратиков // Ведомости фармкомитета. 1999. №2. С. 9-12.

2. Гончаренко, М.С. Метод оценки перекисного окисления липидов / М.С. Гончаренко, А.М. Латинова// Лабораторное дело. 1985. №1. С. 60-61.

3. Кейтс, М. Техника липидологии. - М.: Мир, 1975. 300 с.

4. Саратиков, А.С. Влияние гепатопротекторов фос-фолипидной природы на токсичность циклофос-фана / А.С. Саратиков, А.В. Ратькин, В.Н. Фролов, В.С. Чучалин // Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии. 2004. №2. С. 4347.

LIPID FRACTION FROM BROWN SEAWEED SACCHARINA JAPONICA AS PHARMACOLOGICAL REMEDY AT HEPATOSIS

© 2015 V.G. Sprygin1, N.F. Kushnerova1, S.E. Fomenko1, T.V. Momot23, T.V. Pavlova1 1 Pacific Oceanological Institute named after V.I. Ilyichev FEB RAS

2 Far East Federal University, Vladivostok 3 Institute of Marine Biology named after A.V. Zhirmunskiy FEB RAS

It was shown, that lipids fraction separated from water-ethanol extract (70%) of brown kelp thallome Sacharina japónica (Saccharina japónica (Miyabe)), containing combination of neutral and phospholipids with high content of polyunsaturated fatty acids of n-3 and n-6 family, possess hepatoprotective activity at CCL4-induced liver damage in Wistar rats. It was registered the restoration of the specific liver weight and its esterifying function, reducing of alaninaminotransferase activity in blood and malone dialdehyde level in liver, diminution of fatty infiltration because of decreasing of general lipids and restoration of phospholipids pattern of hepatocyte membranes. It was shown that lipid complex from Sacharina japónica facilitates normalization of liver lipid metabolism indexes more effective, than reference hepatoprotector "Essentiale®. Sacharina japónica is a promising raw material for obtaining of hepatoprotectors containing essential phosopholipids.

Key words: Sacharina japónica, liver, lipid metabólism, phósphólipids, carbón tetrachlóride, tóxic hepatitis

Vladimir Sprygin, Candidate of Biology, Leading Research Fellow at the Biochemistry Laboratory. E-mail: [email protected]; Nataliya Kushnerova, Doctor of Biology, Professor, Chief of the Biochemistry Laboratory. E-mail: [email protected]; Svetlana Fomenko, Candidate of Biology, Leading Research Fellow at the Biochemistry Laboratory. E-mail: [email protected]; Tatiana Momot, Candidate of Medicine, Associate Professor at the Department of Fundamental Medicine, Research Fellow at the Pharmacology Laboratory. E-mail: [email protected]; Tatiana Pavlova, Senior Engineer at the Biochemistry Laboratory. E-mail: [email protected]

5. Спрыгин, В.Г. Морские водоросли - перспективный источник полифенольных антиоксидантов и комплексов эссенциальных фосфолипидов / В.Г. Спрыгин, Н.Ф. Кушнерова, С.Е. Фоменко, Л.А. Сизова // Известия Самарского научного центра РАН. 2012. Т.14. №1-9. С. 2299-2302.

6. Ушкалова, Е.А. Проблемы применения гепатопротекторов // Фарматека. 2004. №6. С. 45-55.

7. Хотимченко, С.В. Липиды морских водорослей-макрофитов и трав. Структура, распределение, анализ. Монография. - Владивосток: Дальнаука, 2003. 234 с.

8. Dawczynski, C. Amino acids, fatty acids, and dietary fibre in edible seaweed products / C. Dawczynski, R. Schubert, G. Jahreis // Food Chem. 2007. Vol.103, N3. P. 891-899.

9. Folch, J. A simple method for the isolation and purification of total lipids from animal tissues / J. Folch, M. Less, G.H. Sloane-Stanley // J. Biol. Chem. 1957. Vol. 226, N1. P. 497-509.

10. Khotimchenko, S.V. Fatty acids of brown algae from the Russian Far East // Phytochemistry. 1998. Vol.49, N8. P. 2363-2369.

11. Rouser. G. Column chromatographic and associated procedures for separation and determination of phosphatides and glicolipids / G. Rouser, G. Kritchevsky, A. Yamamoto // Lipid Chromatographic Analysis Eds. G.V. Marinetti. - New York: Dekker, 1967: Vol. 1. P. 99162.

12. Vaskovsky, V.E. A universal reagent for phospholid analysis / V.E. Vaskovsky, E.Y. Kostetsky, I.M Vasenden // J. Chromatography. 1975. Vol.114. N1. P. 129-141.

13. Vaskovsky, V.E. A. Modified jungnikkel reagent for detecting phospholipids and other phosphoruse compounds on thin-layer chromatograms / V.E. Vaskovsky, N.A Latishev // J. Chromatography. 1975. Vol. 115. P. 246-249.

14. Wagner, H. Thin-layer chromatography of phosphatides and glycolipids / H. Wagner, L Horhammer, F. Wolff // Biochem. Z. 1961. Vol. 334. N 2. P. 175-184.