CC BY
289. Khamzin, R.A. Immunofermentnyy analiz dlya vyyavleniya protivotuberkuleznykh antitel u krnpnogo rogatogo skota /R.A. Khamzin, M.A. Safin, K.G. Idrisova // Voprosy borby s tuberkulezom lyudey i zhivotnykh. - Tashkent, 1990. - P. 112-114.
10. Khodun, L.M. Test-sistema Elisa dlya diagnostiki tuberkuleza krupnogo rogatogo skota i kriterii otsenki rezul'tatov metoda / L.M. Khodun, N.I. Tsunskaya // Razrabotka sredstv i metodov borby s tuberkulezom zhivotnykh. - Novosibirsk, 1990. - P. 10.
11. Tsunskaya, N.I. Diagnostika tuberkuleza krupnogo rogatogo skota metodom IFA / N.I. Tsunskaya, L.T. Appelgants // Sistema mer borby s tuberkulezom s.-kh. zhivotnykh. - Novosibirsk, 1991. - P. 35.
12. Moudgil, K.D. Evaluation of an enzyme immunoassay based on sonicate supernation antigens of Mycobacterium W for immunodiagnostic of leprosy / K.D. Moudgil, S.K. Gupta // Indian J. Lepr. 1988. - 60. -№2. - P. 159.
13. Ritacco, V. Further evaluation of an indirect enzyme-linked immunosorpent assay for the diagnosis of bovine tuberculosis / V. Ritacco, B. Lopez, L. Barrera / J. Veter. Med. Ser. B. 1990, 37. - P. 19.
14. Tacco, R. Assessment of the sensitivitiand specificity of indirect enzyme-linked immunosorpent / R. Tacco, V. Kantor / J. Veter. Med. Ser. B. - 1987, vol. 34. - P. 119.
15. Immunofermentnyy analiz krovi pri tuberkuleze. https://siestafit.ru/analiz-krovi/immunofermentnyy-analiz-krovi-pri-tuberkuleze.
16. IFA na tuberkulez ili immunofermentnyy analiz na tuberkulez http://tbdoc.ru/analysis/krovi.html.
17. Patomorfologicheskiye izmeneniya v organizme zhivotnykh pri tuberkuleze https://studfiles.net/preview/2901312/page:2.
18. Tuberkulez. https://vetvo.ru/tuberkulez.html.
19.Tuberkulez. https://nsau.edu.ru/images/vetfac/images/ebooks/microbiology/stu/micro/tuberk.htm.
20. Osobennosti provedeniya testa IFA na tuberkulez. https://pulmonologi.ru/tuberkulez/ifa.html.
УДК 619:615.281:636.5 DOI 10.33632/1998-698Х.2020-4-62-69
КОМПЛЕКС ХВОЙНЫЙ БАЛЬЗАМИЧЕСКИЙ ПИХТОВЫЙ ДЛЯ ДЕЗИНФЕКЦИИ
ИНКУБАЦИОННЫХ ЯИЦ
Сунцова О.А. — кандидат ветеринарных наук, Задорожная М.В. — кандидат ветеринарных наук,
Лыско С.Б. — кандидат ветеринарных наук
Сибирский научно-исследовательский институт птицеводства — филиал ФГБНУ «Омский аграрный научный центр. (644555, Омская область, Омский район, с. Морозовка, ул. 60 лет Победы, д. 1, sibniip@mail.ru)
В технологическом процессе производства птицеводческой продукции наиболее уязвимым является инкубатор, в котором благоприятные условия создаются не только для развивающегося эмбриона, но и для микроорганизмов. Задача дезинфекции предупредить накопление микрофлоры до критических показателей и не допустить перезаражения молодняка на выводе. Однако не все средства, применяемые для обработки инкубационных яиц эффективны, безопасны для будущего потомства, обслуживающего персонала и окружающей среды. Цель исследования - разработать эффективную схему дезинфекции инкубационных яиц с применением комплекса хвойного бальзамического пихтового. Исследования проводились в отделе ветеринарии сельскохозяйственной птицы СибНИИП-филиал ФГБНУ «Омский АНЦ» и в птицеводческом хозяйстве на инкубационных яйцах перепелов породы фараон. В опытах in vitro было установлено, что оптимальным является воздействие на микроорганизмы 10%-ного водного раствора комплекса хвойного бальзамического в течение 60 минут, что вызывало гибель всех тест-культур. При изучении в экспериментальных условиях разных схем применения испытуемого препарата наиболее эффективной оказалась двукратная дезинфекция инкубационных яиц, снижающая обсемененность скорлупы на 31,4-75,0%, частоту выделения стафилококков и энтерококков на 20-40%, энтеробактеров на 20%, повышающая выводимость яиц на 4,0% и вывод молодняка на 3,7%. Испытание данной схемы в производственном опыте подтвердило экспериментальные данные. Обработка инкубационных яиц перепелов 10%-ным водным раствором комплекса хвойного бальзамического пихтового перед инкубацией и на 15,5 сутки снижает микробную обсемененность скорлупы на 41,5-90,5%, повышает выводимость яиц на 3,9%, вывод перепелят на 2,7%, сохранность выведенного
молодняка за первые 14 дней жизни на 2%, не оказывает негативного действия, как на развивающийся эмбрион, так и на обслуживающий персонал и может быть рекомендована для применения в птицеводческих хозяйствах.
Ключевые слова: комплекс хвойный бальзамический пихтовый, микробная обсемененность, инкубационное яйцо перепелов, выводимость яиц, вывод молодняка, дезинфекция яиц
Рентабельность любого птицеводческого хозяйства во многом зависит от результатов инкубации. Ее задача — получение кондиционного молодняка в максимально возможном количестве. Зачастую этому препятствует несоблюдение ветеринарно-санитарных требований как при содержании родительского стада, так и при сборе, транспортировке и хранении инкубационных яиц, что приводит к их бактериальному загрязнению. Параметры микроклимата в инкубаторе, создаваемые для развития эмбрионов птиц, являются благоприятными и для микроорганизмов. В результате в период инкубации идет накопление всевозможной микрофлоры, как на поверхности яйца, так и внутри него, что приводит к снижению выводимости яиц и качества получаемого молодняка [5, 6]. Решить данную проблему позволяет дезинфекция. За годы развития промышленного птицеводства и ветеринарной науки было разработано много различных как физических, так и химических способов дезинфекции [1, 2, 14]. Но при этом для одних необходимо специальное оборудование, другие же оказывают негативное действие либо на развивающийся эмбрион, либо на обслуживающий персонал, либо агрессивны в отношении оборудования, либо обладаю высокой стоимостью [1, 5].
В связи с вышесказанным поиск природных средств с выраженным антибактериальным действием, безопасных для развивающихся эмбрионов, обслуживающего персонала и окружающей среды остается актуальным. Данным требованиям отвечают препараты, получаемые при переработке зеленой массы хвойных пород деревьев, бактерицидное действие которой известно с давних времен и подтверждается современными исследованиями [3, 4, 7, 9]. К таковым относится комплекс хвойный бальзамический пихтовый, получаемый методом органической и углекислотной экстракции хвойной лапки пихты сибирской. Это натуральный экологически чистый препарат, в состав которого входят хвойные тритерпеновые смоляные и жирные кислоты, эфирное масло, мальтол, фосфолипиды, стерины, камфора, комплекс органических кислот [15]. Аэрозольная обработка производственных помещений в присутствии животных водным раствором комплекса оказывала дезодори-
рующее и бактерицидное действие, замедляло накопление микрофлоры в воздухе помещения. Однако для дезинфекции инкубационных яиц данный препарат не применялся.
Целью наших исследований было разработать эффективную схему дезинфекции инкубационных яиц с применением комплекса хвойного бальзамического пихтового.
Материалы и методы. Исследования проводили в отделе ветеринарии сельскохозяйственной птицы СибНИИП-филиал ФГБНУ «Омский АНЦ» и в птицеводческом хозяйстве. В опытах использовали комплекс хвойный бальзамический пихтовый производства ООО «Солагифт», г. Томск.
В опытах in vitro изучали бактерицидную активность комплекса хвойного бальзамического пихтового [11]. Для этого готовили 7-, 10-, 15-, 17-, 20- и 25%-ные водные растворы препарата. В качестве тест-культур использовали 37 полевых штаммов 8 видов микроорганизмов, выделенных в инкубаториях. В пробирки с 2 мл испытуемого средства вносили 0,02 мл 2-миллиардной взвеси тест-культур и инкубировали при температуре +37°С. Жизнеспособность бактерий определяли посевом на соответствующие виду дифференциальные среды через 30, 60 и 90 минут экспозиции.
Для изучения эффективных схем дезинфекции комплексом хвойным бальзамическим пихтовым в экспериментальном опыте из инкубационных яиц перепелов породы фараон были скомплектованы контрольная и 2 опытные группы по 150 штук в каждой. Инкубацию проводили в разных идентичных инкубаторах. Режим инкубации соответствовал методическим рекомендациям [10]. Яйца контрольной группы обрабатывали парами формальдегида перед закладкой на инкубацию в соответствии с инструкцией [13]. Обработку в опытных группах проводили 10%-ным раствором комплекса хвойного бальзамического пихтового в первой группе двукратно (перед инкубацией и на 15,5 сутки), во второй - четырехкратно (перед инкубацией и далее на 6,5; 9,5 и 15,5 сутки инкубации). Орошение проводили при помощи генератора HURRICANE с расходом рабочего раствора 100 мл на 1 м2 лотка. Для контроля микробной обсемененности брали смывы со скорлупы яиц перед закладкой и на 6,5, 9,5, 15,5 сутки инкубации. Микробиологическими исследо-
ваниями определяли общую микробную обсемененность, видовой состав микрофлоры скорлупы и погибших эмбрионов. Результаты инкубации оценивали по выводимости яиц, выводу перепелят с учетом причин гибели эмбрионов.
С целью апробации наиболее эффективного способа обработки в контролируемом производственном опыте из инкубационных яиц перепелов породы фараон были скомплектованы контрольная и опытная группы по 1000 яиц в каждой. Инкубацию проводили в разных идентичных инкубаторах. Инкубационные яйца контрольной группы обрабатывали перед инкубацией парами формальдегида по существующей методике. В опытной группе дезинфекцию проводили 10%-ным водным раствором комплекса хвойного бальзамического пихтового двукратным оро-шением: перед закладкой и на 15,5 сутки инкубации. Эффективность обработок оценивали бактериологическими исследованиями смывов со скорлупы, учитывали выводимость яиц, вывод и сохранность молодняка в первые 14 дней жизни.
Смывы со скорлупы исследовали на наличие патогенной и условно патогенной микрофлоры с применением простых (мясо-пептонный бульон, мясо-пептонный агар) и дифференциально-диагностических питательных сред (Эндо, стафилококкагар, энтерококкагар, ).
Биохимические свойства выделенных культур изучали на средах Симмонса, Олькеницкого и Гисса с углеводами. Морфологию выделенных микроорганизмов изучали в мазках из суточных культур, окрашенных по Граму.
Результаты исследований обрабатывали методом статистики с использованием критерия достоверности Стьюдента [8, 12].
Результаты исследований. Лабораторные исследования комплекса хвойного бальзамического пихтового показали, что бактерицидная активность препарата возрастала с увеличением концентрации раствора и его экспозиции (табл. 1). Так, 30-минутное воздействие 7%-ного раствора препарата подавляло рост 25-75% тест-культур, тогда как 25%-ный раствор за то же время оказывал действие на 75-100% культур, также, как и 7%-ный раствор за 90 минут. При этом наиболее чувствительными оказались Enterobacter agglomerans, рост которого отсутствовал через полчаса взаимодействия с 15%-ным раствором препарата, а также Enterococcus faecium и Citrobacter diversus, погибшие после взаимодействия с 25%-ным раствором за то же время. Оптимальным является воздействие на микроорганизмы 10%-ного водного раствора комплекса хвойного бальзамического в течение 60 минут, что оказывало антибактериальное действие на все тест-культуры.
Таблица 1 - Антибактериальная активность комплекса хвойного бальзамического пихтового на микрофлору, выделенную в инкубаториях, %
Экспозиция, минут Концентрация растворов, %
7 10 15 17 20 25
Enterococcus faecalis (n=4)
30 75 75 75 75 75 75
60 75 100 100 100 100 100
90 100 100 100 100 100 100
Enterococcus faecium (n=4)
30 75 75 75 75 75 100
60 100 100 100 100 100 100
90 100 100 100 100 100 100
Staphylococcus aureus (n=10)
30 50 60 70 70 80 80
60 80 100 100 100 100 100
90 90 100 100 100 100 100
Citrobacter diversus (n=3)
30 33 33 33 66 66 100
60 100 100 100 100 100 100
90 100 100 100 100 100 100
Citrobacter freundii (n=4)
30 75 75 75 75 75 75
60 75 100 100 100 100 100
90 100 100 100 100 100 100
Pseudomonas aeruginosa (n=4)
30 25 50 75 75 75 75
60 75 100 100 100 100 100
90 100 100 100 100 100 100
Enterobacter agglomerans (n=4)
30 75 75 100 100 100 100
60 75 100 100 100 100 100
90 100 100 100 100 100 100
Esherichia coli (n=4)
30 25 50 50 75 75 75
60 75 100 100 100 100 100
90 75 100 100 100 100 100
Изучение эффективности дезинфекции инкубационных яиц перепелов 10%-ным водным раствором испытуемого препарата свидетельствует о его выраженном бактерии-цидном действии (табл. 2). Так, в 6,5 сутки инкубации микробная обсемененность скорлупы яиц в опытных группах была достоверно ниже по сравнению с данными до обработки перед закладкой на инкубацию на 92,9-95,5%,
тогда как в контрольной группе ее снижение составило 83,2%. При этом на протяжении всего исследования данный показатель в 1 и 2 группах был на 31,4-75,0% и 38,0-92,2% соответственно ниже, чем в контроле. При сравнении опытных групп между собой достоверная разница (88,6%) была выявлена лишь на 9,5 сутки инкубации при отсутствии таковой в другие периоды.
Таблица 2 - Эффективность разных схем дезинфекции инкубационных яиц перепелов 10%-ным раствором комплекса хвойного бальзамического пихтового в экспериментальном опыте_
Показатель Группа
контрольная 1 опытная 2 опытная
Микробная обсемененность скорлупы яиц: общее
микробное число, КОЕ/мл
перед закладкой 47,6 ± 5,7 47,6 ± 5,7 47,6 ± 5,7
6,5 сутки инкубации 8,0 ± 1,2 2,0 ± 0,8** 3,4 ± 1,2*
9,5 сутки инкубации 10,2 ± 1,3 7,0 ± 0,6* 0,8 ± 0,9*
15,5 сутки инкубации 13,8 ± 1,0 4,4 ± 0,8*** 3,8 ± 0,9***
частота индикации Staphylococcus aureus, %
6,5 сутки инкубации 40 20 20
9,5 сутки инкубации 60 40 40
15,5 сутки инкубации 40 20 0
частота индикации Enterococcus faecalis, %
6,5 сутки инкубации 0 0 0
9,5 сутки инкубации 40 0 0
15,5 сутки инкубации 20 0 0
частота индикации Enterobacter agglomerans, %
6,5 сутки инкубации 0 0 0
9,5 сутки инкубации 40 0 0
15,5 сутки инкубации 0 0 0
Результаты инкубации, %
гибель эмбрионов до 48 ч инкубации 3,2 ± 1,4 3,1 ± 1,4 3,1 ± 1,4
кровяное кольцо яйца 7,5 ± 2,2 7,3 ± 2,1 7,2 ± 2,2
замерший эмбрион птицы 6,5 ± 2,0 5,2 ± 1,8 11,3 ± 2,6
задохлики 12,9 ± 2,7 11,5 ± 2,6 52,6 ± 4,1***
выводимость яиц 62,7 ± 4,0 66,7 ± 3,9 7,7 ± 2,2
вывод молодняка 50,5 ± 4,1 54,2 ± 4,1 6,2 ± 6,2
Примечание — разница с контрольной группой достоверна *Р<0,05 **Р<0,01; ***Р<0,001.
Изучение видового состава
микрофлоры скорлупы до обработки перед инкубацией выявило наличие Escherihia coli, Enterobacter agglomerans, Citrobacter freundii, Enterococcus faecalis, Enterococcus faecium, Staphylococcus aureus. Дезинфекция яиц как парами формальдегида, так и опытным препаратом снижала видовой состав изолированных микроорганизмов. При этом частота выделения культур стафилококка и энтерококка в опытных группах по сравнению с контролем была ниже на 20-40%, энтеробактера — на 20%, тогда как других возбудителей выделено не было.
Результаты инкубации показали, что четырехкратная дезинфекция яиц комплексом хвойным бальзамическим пихтовым (2 группа) снижала выводимость яиц и вывод молодняка на 55,0 и 44,3% соответственно за счет увеличения гибели эмбрионов во второй половине инкубации — замерших на 4,8% и задохликов на 39,7%, что, вероятно, произошло в результате нарушения газообмена через скорлупу и подскорлупные оболочки из-за
более плотной пленки препарата, образовавшейся в результате многократных обработок.
В то же время двукратная дезинфекция (1 группа), напротив, повышала выводимость яиц на 4,0% и вывод молодняка на 3,7% благодаря снижению гибели эмбрионов (замерших — на 1,3% и «задохлики» — на 1,4% ).
Таким образом, наиболее эффективным является двукратная дезинфекция инкубации-онных яиц перепелов 10%-ным водным раствором комплекса хвойного бальзамического пихтового — перед началом и на 15,5 сутки инкубации, способствующая снижению обсемененности скорлупы яиц на 31,4-75,0%, частоту выделения стафилококков и энтерококков на 20-40%, энтеробактеров на 20%, повышающая выводимость яиц на 4,0% и вывод молодняка на 3,7%.
Результаты производственного
испытания эффективной схемы дезинфекции инкубационных перепелиных яиц препаратом хвои приведены в таблице 3
Таблица 3 - Эффективность обработки инкубационных яиц перепелов комплексом хвойным бальзамическим пихтовым в производственном опыте
Показатель Группа
контрольная опытная
Общее микробное число скорлупы яиц, КОЕ/мл
перед закладкой 152,0 ± 9,6 152,0 ± 9,6
6,5 сутки инкубации 8,2 ± 3,2 4,8 ± 1,58
9,5 сутки инкубации 55,0 ± 6,3 5,2 ± 0,5***
15,5 сутки инкубации 15,0 ± 2,2 4,8 ± 2,1**
Результаты инкубации, %
гибель эмбрионов до 48 ч инкубации 6,1 ± 0,8 4,1 ± 0,6*
кровяное кольцо яйца 0 ± 0,0 1,4 ± 0,4***
замерший эмбрион птицы 8,1 ± 0,9 6,8 ± 0,8
задохлики 9,5 ± 0,9 8,1 ± 0,9
выводимость яиц 71,1 ± 1,6 75,0 ± 1,5
вывод молодняка 58,1 ± 1,6 60,8 ± 1,5
Сохранность перепелят за период 1-14 дней жизни, % 92,0 ± 3,2 94,0 ± 2,8
Примечание - **Р<0,01, ***Р<0,001.
Полученные данные подтверждают высокую бактерицидную активность 10%-ного водного раствора комплекса хвойного бальзамического пихтового, дезинфекция которым позволила снизить обсемененность скорлупы по сравнению с результатами до обработки на 96,8%. При этом данный
показатель в опытной группе был ниже контроля на протяжении всего опыта: на 41,5% в 6,5 суток, на 90,5% в 9,5 и на 68,0% в 15,5 сутки инкубации.
Также отмечено снижение видового состава микрофлоры скорлупы. Так, при бактериологическом исследовании до
обработки перед закладкой на инкубацию были выделены культуры Staphylococcus aureus, Enterococcus faecium, Enterococcus faecalis, Enterobacter agglomerans, Citrobacter amalonaticus. После дезинфекции в опытной группе на протяжении всего исследования изолировали лишь Staphylococcus aureus на 2060% реже, чем в контрольной группе, в которой, помимо стафилококка, выделяли Enterococcus faecium, Enterococcus faecalis и Citrobacter amalonaticus.
Снижение микробной нагрузки способствовало повышению выводимости яиц и вывода молодняка соответственно на 3,9 и 2,7% за счет снижения отходов инкубации категорий «замершие эмбрионы» на 1,3% и «задохлики» на 1,4%. При выращивании выведенных перепелят сохранность за первые 14 дней в опытной группе была на 2% выше контроля, что свидетельствует о повышении их жизнеспособности. При расчете экономических
показателей дополнительная прибыль от обработки инкубационных яиц 10%-ным водным раствором комплекса хвойного бальзамического пихтового составила 708,5 рублей в расчете на 1000 заложенных яиц за счет увеличения вывода перепелят.
Заключение. Проведенные исследования показали, что двукратная дезинфекция инкубационных яиц перепелов 10%-ным водным раствором комплекса хвойного бальзамического пихтового снижает
микробную обсемененность скорлупы на 31,490,5%, повышает выводимость яиц на 3,9-4,0%, вывод перепелят на 2,7-3,7%, сохранность выведенного молодняка за первые 14 дней жизни на 2%, не оказывает негативного действия как на развивающийся эмбрион, так и на обслуживающий персонал, позволяет получить дополнительную прибыль и может быть рекомендована для применения в перепелиных хозяйствах.
Литература
1. Бушина, О.А. Применение некоторых современных химических препаратов для дезинфекции инкубационных яиц кур / О.А. Бушина // Ветеринарная медицина. - 2009. - № 1-2. -С. 90.
2. Донсков, А.П. Способы дезинфекции инкубационных яиц / А.П. Донсков, Д.Д. Кривчик, А.П. Волошин // Междунар. науч. периодич. изд. по итогам Междунар. науч.-практич. конф.: «Новая наука: стратегии и векторы развития» : в 2 ч. — Стерлитамак: РИЦ АМИ, 2016. - Ч. 1. - С. 9.
3. Задорожная, М. Лабораторные испытания новых растительных препаратов для обеззараживания объектов птицеводства / М. Задорожная, С. Лыско, А. Портянко и др. // Главный зоотехник. - 2019. - № 9. - С. 9.
4. Зеленская, К.Л. Углекислотные экстракты пихты и спиртовые экстракты дельфиниума и болиголова в комплексном лечении и профилактике воспалительных заболеваний верхних дыхательных путей / К.Л. Зеленская, Ю.В. Нестерова, Т.Н. Поветьева и др. // Современные проблемы фитотерапии: Мат. I Междунар. съезда фитотерапевтов. - М., 2006. - С. 84.
5. Краснобаев, Ю. Дезинфекция инкубационных яиц / Ю. Краснобаев, О. Краснобаева, А. Крыканов и др. // Птицеводство. - 2011. - № 9. - С. 63.
6. Краснобаева, О.А. На что следует обратить внимание при дезинфекции инкубационных яиц / О.А. Краснобаева, Ю.В. Краснобаев, Л.П. Гонцова и др. // Ветеринария Кубани. - 2012. - № 4. - С. 13.
7. Куликова, А.В. Влияние пихтовита на продуктивность и антиоксидантный статус бройлеров / А.В. Куликова, А.В. Хохлова // Ветеринария. - 2007. - № 2. - С. 12.
8. Лакин, Г.Ф. Биометрия / Г.Ф. Лакин. - М.: Высшая школа, 1973. - 343 с.
9. Маймескулова, Л.А. Исследование некоторых видов биологической активности извлечений из пихты [Электронный ресурс] / Л.А. Маймескулова, И.М. Кошкарев, В.И. Карпицкий. - (https://cow-leech.ru/docs/index-8264.html)
10. Методические рекомендации по инкубации яиц сельскохозяйственной птицы. - Сергиев Посад: ФГБНУ ВНИТИП, 2011. - 46 с.
11. Методические указания о порядке испытания новых дезинфицирующих средств для ветеринарной практики / Госагропром СССР. — М., 1987 — 45 с.
12. Полянчиков А.А. Популяционная генетика в птицеводстве / А.А. Полянчиков. - М.: Колос, 1980. - 44 с.
13. Правила проведения дезинфекции и дезинвазии объектов ветеринарного надзора: № 135-2/0525 Утв. 15.07.2002
14. Смирнов, А.А. Экспериментальные исследования по дезинфекции озоном перепелиных
инкубационных яиц / А.А. Смирнов // Инновации в сельском хозяйстве. - 2015. - № 5 (15). - С. 53.
15. Хвойные субстанции для сельского хозяйства [Электронный ресурс]. -(http://solagift.ru/?page_id=403)
COMPLEX CONIFEROUS BALSAMIC FIR FOR DISINFECTION OF HATCHING EGGS
Suntsova O.A. - Candidate of Veterinary Sciences, Zadorozhnaya M.V. - Candidate of Veterinary Sciences, Lysko S.B. - Candidate of Veterinary Sciences
Siberian Research Institute of Poultry Farming - is a branch of the Federal State Budgetary Scientific Institution "Omsk Agricultural Research Center"
(644555, Omsk Region, Omsk District, p. Morozovka, st. 60 years of Victory, 1, sibniip@mail.ru)
In the technological process of poultry production, the most vulnerable is the incubator, in which favorable conditions are created not only for the developing embryo, but also for microorganisms. The task of disinfection is to prevent the accumulation of microflora to critical levels and to prevent overgrowth of young animals at the conclusion. However, not all products used to process hatching eggs are effective and safe for future offspring, staff and the environment. The aim of the study was to develop an effective scheme for the disinfection of hatching eggs using a complex of coniferous balsamic fir. The studies were carried out in the Department of Veterinary Poultry Siberian Research Institute of poultry farming - is a branch of the Federal State Budgetary Scientific Institution "Omsk Agricultural Research Center" and in the poultry farm on incubatory eggs of the quail of the Pharaon breed. In experiments in vitro, it was found that the optimal effect on microorganisms is a 10% aqueous solution of the complex coniferous balsamic fir for 60 minutes, which caused the death of all test cultures. When studying different patterns of application of the test drug under experimental conditions, double-disinfection of incubatory eggs was found to be most effective, which reduces insemination by 31.4-75.0%, the frequency of isolation of staphylococci and enterococci by 20-40%, enterobacteria by 20%, which increases the hatchability of eggs by 4.0% and young hatching by 3.7%. Testing this circuit in a production experiment confirmed the experimental data. Processing incubation eggs of quail eggs with a 10% aqueous solution of a complex of coniferous balsamic fir before incubation and for 15.5 days reduces the microbial insemination of the shell by 41.5-90.5%, increases the hatchability of eggs by 3.9%, the output is quail by 2.7%, the safety of hatched young quails for the first 14 days of life by 2% does not have a negative effect on both the developing embryo and the maintenance staff and can be recommended for use in poultry farms.
Keywords: complex coniferous balsamic fir, microbial contamination, incubatory egg of the quail, hatchability of eggs, young hatching, egg disinfection
References
1. Bushina O.A. Primeneniye nekotorykh sovremennykh khimicheskikh preparatov dlya dezinfektsii inkubatsionnykh yaits kur [The use of some modern chemicals for the disinfection of hatching chicken eggs] / O.A. Bushina // Veterinarnaya meditsina. - 2009. - Vol. 1-2. - P. 90.
2. Donskov A.P. Sposoby dezinfektsii inkubatsionnykh yaits [Methods for disinfection of hatching eggs] / A.P. Donskov, D.D. Krivchik, A.P. Voloshin // Mezhdunar. nauch. periodich. izd. po itogam Mezhdunar. nauch.-praktich. konf.: «Novaya nauka: strategii i vektory razvitiya» : v 2 ch. — Sterlitamak: RITS AMI, 2016. - Part 1. - P. 9.
3. Zadorozhnaya, M. Laboratornyye ispytaniya novykh rastitelnykh preparatov dlya obezzarazhivaniya ob"yektov ptitsevodstva [Laboratory tests of new herbal preparations for disinfection of poultry facilities] / M. Zadorozhnaya, S. Lysko, A. Portyanko i dr. // Glavnyy zootekhnik. - 2019. - Vol. 9. - P. 9.
4. Zelenskaya, K.L. Uglekislotnyye ekstrakty pikhty i spirtovyye ekstrakty delfiniuma i boligolova v kompleksnom lechenii i profilaktike vospalitel'nykh zabolevaniy verkhnikh dykhatelnykh putey [Carbon dioxide extracts of fir and alcoholic extracts of delphinium and hemlock in the complex treatment and prevention of inflammatory diseases of the upper respiratory tract] / K.L. Zelenskaya,
YU.V. Nesterova, T.N. Povetyeva i dr. // Sovremennyye problemy fitoterapii: Mat. I Mezhdunar. s"yezda fitoterapevtov. - M., 2006. - P. 84.
5. Krasnobayev, YU. Dezinfektsiya inkubatsionnykh yaits [Disinfection of hatching eggs ] / Y.U. Krasnobayev, O. Krasnobayeva, A. Krykanov i dr. // Ptitsevodstvo. - 2011. - Vol. 9. - P. 63.
6. Krasnobayeva, O.A. Na chto sleduyet obratitvnimaniye pri dezinfektsii inkubatsionnykh yaits [What should I look for when disinfecting hatching eggs] / O.A. Krasnobayeva, YU.V. Krasnobayev, L.P. Gontsova i dr. // Veterinariya Kubani. - 2012. - Vol. 4. - P. 13.
7. Kulikova A.V. Vliyaniye pikhtovita na produktivnosti antioksidantnyy status broylero [The effect of fir on the productivity and antioxidant status of broilers] / A.V. Kulikova, A.V. Khokhlova // Veterinariya. - 2007. - Vol. 2. - P. 12-15.
8. Lakin, G.F. Biometriya [Biometry] / G.F. Lakin. - M.: Vysshaya shkola, 1973. - 343 p.
9. Maymeskulova L.A. Issledovaniye nekotorykh vidov biologicheskoy aktivnosti izvlecheniy iz pikhty [Elektronnyy resurs] [The study of some types of biological activity of extracts from fir] / L.A. Maymeskulova, I.M. Koshkarev, V.I. Karpitskiy. - (https://cow-leech.ru/docs/index-8264.html)
10. Metodicheskiye rekomendatsii po inkubatsii yaits selskokhozyaystvennoy ptitsy . [Guidelines for the incubation of eggs of poultry] - Sergiyev Posad: FGBNU VNITIP, 2011. - 46 p.
11. Metodicheskiye ukazaniya o poryadke ispytaniya novykh dezinfitsiruyushchikh sredstv dlya veterinarnoy praktiki [Guidelines on the test procedure for new disinfectants for veterinary practice ] / Gosagroprom SSSR. — M., 1987 — 45 p.
12. Polyanchikov A.A. Populyatsionnaya genetika v ptitsevodstve [Population genetics in poultry farming] / A.A. Polyanchikov. - M.: Kolos, 1980. - 44 p.
13. Pravila provedeniya dezinfektsii i dezinvazii ob"yektov veterinarnogo nadzora [Tekst] [Rules for the disinfection and disinfestation of objects of veterinary surveillance]: № 13-5-2/0525 Utv. 15.07.2002
14. Smirnov A.A. Eksperimental'nyye issledovaniya po dezinfektsii ozonom perepelinykh inkubatsionnykh yaits [Tekst] [Experimental studies on ozone disinfection of quail hatching eggs] / A.A. Smirnov // Innovatsii v sel'skom khozyaystve. - 2015. - Vol. 5 (15). - P. 53-55.
15. Khvoynyye substantsii dlya sel'skogo khozyaystva [Elektronnyy resurs] [Coniferous substances for agriculture]. / - (http://solagift.ru/?page_id=403)
УДК. 591.1:577.152.3 DOI 10.33632/1998-698Х.2020-4-69-77
ФОРМИРОВАНИЕ ТРАНСПОРТНЫХ И ПИЩЕВАРИТЕЛЬНО-ТРАНСПОРТНЫХ СИСТЕМ ТОНКОЙ КИШКИ В ОНТОГЕНЕЗЕ
Хаснутдинов Н.Ш. - кандидат биологических наук, доцент
ФГБОУ ВО «Поволжская государственная академия физической культуры, спорта и туризма». (420010, РТ, г. Казань, Деревня Универсиады, д. 35, e-mail: nahas@mail.ru)
В эксперименте были использованы крысы линии Вистар. Для получения потомства к самкам подсаживали самцов приблизительно массой тела от 170 до 180 г. Через три дня самок пересаживали в индивидуальные клетки. На 21 день у самок появлялось потомство. Фиксировали дату рождения крысят, взвешивали их и на каждую лактирующую самку помещали по 8 крысят. Крысята содержались в стандартных лабораторных условиях. В эксперименте мы использовали технику "вывернутого мешка'' для исследования мукозно-серозного транспорта тонкой кишки у растущих крыс. Вывернутые отрезки тонкой кишки длиной 10 см на специальном держателе фиксировали с помощью двух лигатур, затем помещали их термостатируемую камеру для инкубации. Приготовленные препараты использовались для исследования активности мукозно-серозного транспорта из растворов (глюкозы, мальтозы, лактозы и крахмала). Время приготовления препаратов не превышало 3-х минут на каждый. Препараты, приготовленные из
