CC BY
8
УДК G16.9S-02:615.28i*j-07
Л. В. Самойлова, Е. А. Плотникова, Э. А. Амплеева, Л. В. Ляпустина, В. Б. Марысаев, Р. Я. Шанина, А. С. Васенин, Н. П. Агеева
ИССЛЕДОВАНИЯ АНТИМИКРОБНЫХ СВОЙСТВ ТКАНИ С ГЕКСАХЛОРОФЕНОМ
Всесоюзный научно-исследовательский противочумный институт «Микроб», Саратов
Целью настоящей работы являлось определение антимикробной активности ткани с гексахлорофеном в отношении возбудителей особо опасных инфекций и степени сохранения этой активности после санитарно-гигиенической и дезинфекционной обработки, предусмотренной «Инструкцией о противоэпидемическом режиме работы с материалом, зараженным или подозрительным на зараженность возбудителями инфекционных заболеваний I—II группы» [1, 3]. Ткань изготовлена на Глуховском хлопчатобумажном комбинате.
Исследования проведены с различными по вирулентности штаммами возбудителей: чумы (39 штаммов), туляремии (20), сибирской язвы (19), сапа (9), мелиоидоза (6), бруцеллеза (8). Санитарно-гигиеническая обработка заключалась в- замачивании ткани на 24 ч в 0,5 % водных растворах отечественных синтетических моющих средств (CMC) или хозяйственного мыла и последующей стирке. При этом определяли влияние температуры растворов CMC на сохранность антимикробных свойств ткани.
Из средств дезинфекции испытывали автоклавирование при 126 °С 60 мин, погружение в I % раствор хлорамина на 120 мин, в 0,2 % раствор формальдегида с 0,2 % раствором мыла на 60 мин, в 3 % раствор перекиси водорода с 0,5% моющих средств (120 мин). Антимикробную активность образцов ткани определяли методом, аналогичным методу «дисков» при установлении активности антибиотиков, основанным на диффузии в агар бактерицидного вещества ткани и адсорбции его микробной клеткой [4, 6, 8]. Суспензии микроорганизмов (концентрации 105 и Ю7 микробных тел/мл) высевали на соответствующие селективные среды: штаммов чумного микроба на агар Хот-тингера (рН 7,2), штаммов возбудителя сибирской язвы на мясопептонный агар (рН 7,6), штаммов возбудителя туляремии на кровяной агар Д (с 10% свежей дефибриннро ванной крови кролика, рН 7,2), штаммов возбудителя бруцеллеза на мясо-печеночный агар (рН 7.2). штаммов возбудителей сапа и мелиоидоза па мясо-пептонный глицериновый агар (5% глицерина, рН 6,9). На засеянные поверхности плотных питательных сред накладывали испытываемые и контрольные образцы ткани размером 1 см2. Контролем во всех опытах служили образцы новой (без обработки) ткани. Посевы инкубировали при оптимальных условиях культивирования микроорганизмов: бактерий чумы 48 ч при 28°С, возбудителей сибирской язвы, бруцеллеза, сапа и мелиоидоза 48 ч при 37 °С, бактерий туляремии 5—7 сут при 37 °С. Результаты учитывали путем измерения зоны отсутствия роста культур микроорганизмов вокруг образцов ткани.
Эксперименты показали, что новая ткань с гексахлоро-феиом оказывает выраженное бактерицидное действие на возбудителей особс опасных инфекций. В зависимости от вида микроорганизма антимикробный эффект ее неодинаков. Зоны задержки роста для штаммов возбудителя бруцеллеза составляли 9,6±0,3 мм, сибирской язвы (вегетативная форма) — 6,37±0,19 мм, чумы — 5,37±0,5 мм, сапа — 4,9±0,37 мм, туляремии — 2,8±0,21 мм, мелиоидоза — 1,75±0,3 мм.
Санитарно-гигиеническую обработку образцов ткани проводили анионактивными веществами, выпускаемыми отечественной промышленностью, и хозяйственным мылом. После обработки хозяйственным мылом, пастами «Бно-миг» и «Триалон» отмечалось резкое снижение бактерицидных свойств ткани уже после двадцатнкратной обра-боткиу особенно по отношению к возбудителю чумы и ме-
лиоидоза. К возбудителю чумы бактерицидиость ткани сохранялась только до 24—26 % (Я<0,01), к возбудителю мелиоидоза — до 26—40 % (Ж0.01).
CMC «Лотсс», «Кристалл», «Сульфанол», «Планета», «Ока» и «Нептун» действовали одинаково на антимикробные свойства ткани. После десятикратной обработки растворами этих CMC при температуре от 40 до 90 °С антимикробные свойства сохранялись на 99,6—84,2 % (Я> >0,05). После двадцатикратной обработки антимикробная активность ткани сохранялась в пределах 99,8—57,8 % (Я<0,05), после тридцатикратной — 84,8—55,7 % (Я< <0,05 и <0,01), после сорокакратной— 78,5—53,7 % (Я<0,01). CMC оказывают в основном моющее действие. Антимикробный эффект CMC анионного типа выраже# слабо [2, 7].
Известно, что высокая температура губительно влияет па жизнеспособность возбудителей особо опасных инфекций. Так, через 30 мин при 50—60 °С погибают бактерии чумы, туляремии, бруцеллеза, сибирской язвы (вегетативная форма), сапа и мелиоидоза. При более высокой температуре (70—90 °С) гибель этих микроорганизмов происходит еще быстрее — в срок от 15 до 1—2 мин [5]. Со-четанное воздействие высокой температуры и 0,5 % раствора CMC, не влияя на антимикробные свойства ткани с гексахлорофеном, способствует быстрой гибели возбудителей особо опасных инфекций и обеспечивает санитарно-гигиеническую обработку.
Полученные данные позволяют рекомендовать обеззараживание ткани с гексахлорофеном и защитной одежды из этой ткани путем замачивания на 24 ч в 0,5 % растворах CMC («Лотоса», «Кристалла», «Нептуна», «Сульфано-ла», «Оки», «Планеты») при начальной температуре растворов CMC 70—90 "С и последующей стирке. Такое обеззараживание включает самодезинфнцнрующий эффект ткани с гексахлорофеном, температурный фактор и действие 0,5 % растворов CMC.
В связи с тем что может возникнуть необходимость срочной дезинфекции ткани или изделия из нее, изученА-влияние различных методов дезнифекцин на бактерицида ные свойства ткани. Установлено, что многократное (до 5 раз) автоклавирование, погружение в растворы формальдегида, перекиси водорода с моющим средством не изменяют существенно антимикробной активности ткани и ее внешнего вида. После пятикратного автоклавирования антимикробное действие ткани с гексахлорофеном сохранялось по отношению к возбудителям чумы, туляремии, бруцеллеза, вегетативной формы сибирской язвы, сапа и мелиоидоза на 79—90 % (Я<0,01). При погружении ткани в 0.2 % раствор формальдегида с 0,2 % раствором CMC на 60 мин антимикробная активность ее по отношению к изучаемым микроорганизмам сохранялась на 73—100 % от первоначальной (Я<0,05), при погружении в 3% раствор перекиси водорода с 0,5 % раствором CMC на 120 мин — на 83—100 % (Я<0,05). Дезинфекция ткани кипячением в растворе соды, а также погружением в 1 % раствор хлорамина резко снижает антимикробную активность ткани с гексахлорофеном вплоть до полного исчезновения анти* микробного эффекта.
Выводы. ¡. Ткань с химически привитым гексахлорофеном оказывает антимикробное действие на возбудителей чумы, бруцеллеза, туляремии, сибирской язвы, сапа и в меньшей степени на возбудителя мелиоидоза.
2. Антимикробные свойства ткани в отношении возбудителей особо опасных инфекций снижаются незначителы^
но после сорокакратной обработки (срок наблюдения) в
0.5.% растворах СМС с начальной температурой от 40 до
^ з' Для дезинфекции антимикробной ткани возможно применение автоклавнровання или замачивания в растворах формальдегида, перекиси водорода с моющим средством.
Литература
1. Вашков В. И. Антимикробные средства и методы дезинфекции при инфекционных заболеваниях. М„ 1971.
2. Григорьева Л. В. Санитарная бактериология и вирусология синтетических моющих средств. Киев, 1980.
3. Инструкция о противоэпидемическом режиме работы с материалом, зараженным или подозрительным на зара-
женность возбудителями инфекционных заболеваний 1— II групп. Саратов, 1979.
4. Ковальский 10. В., Падалкин В. П. — Гиг. и сан., 1982. № 1, с. 54—56.
5. Лабораторная диагностика особо опасных и малоизвестных бактериальных' инфекций / Под ред. А. К. Шишкина, М. С. Ддрожжевкиной. Ростов н/Д., 1963.
6. Митрофанов Н. Г., Тория Л. Н. — Гиг. и сан., 1Э83, № 7, с. 41—43.
7. Широкобоков В. П., Тарасов Т. Н., Корнюшенко О. Н. и др. — В кн.: Дезинфекция и стерилизация. Перспективы развития. Волгоград, 1983, с. 155.
8. Friser Е. Р. — Chemiefasern, 1962, Bd 12, S. 942.
Поступила 11.04.85
Информация Советского Токсикологического Центра
УДК 615+9+613.632
А. И. Г а л у ш к а, О. Н. К о г у т, И. К. Д о д о -лова, Г. С. Г а в р и л ю к, Н. Е. Беляева, Л. М. В ы х о п е н ь, А. А. Г р и н ч у к, В. М. Не-с и с, О. П. Н о в а к, В. П. Д р о б я з к о , М. И. Г ж е г о ц к и й, А. К. М а н е н к о. Токсичность димера метилцианкарбамата, ортофениленднамина, трилана (Львовский медицинский институт)
Димер метилцианкарбамат (ДМЦК) — CcUgO.,!^ примесь (1—-2%) в высокоэффективном фунгициде ВМК. Кристаллический порошок белого цвета, молекулярная . масса 200, температура плавления 240 °С. Хорошо растворим в горячей воде, в ацетоне — 2%, в спирте— 1%. LDS0 для белых крыс самок 1600 мг/кг, для самцов 1200 мг/кг, для белых мышей самок 500 мг/кг, самцов 370 мг/кг, для морских свинок 820 мг/кг. Коэффициент видовой чувствительности (КВЧ)=4,3 (выраженные различия в видовой чувствительности). В клинической кар-Аине интоксикации преобладают симптомы поражения Нервной системы: смена кратковременной активности депрессией, прерывистое учащенное дыхание, нарушение координации движений, паралич задних конечностей, судороги, отсутствие реакции на внешние раздражители. Гибель в 1-е сутки. ICum по Лиму 4,16. Расчетная CL50 для белых крыс 2299 мг/м3. Limao для белых крыс и морских св::нок 38,8 мг/м3, Zac 59,25, LimCh 8,23 мг/м3, Zch 4,7. Отмечается специфическое эмбриотоксическое действие Limc|,sp 2 мг/м3. Гонадотропное, мутагенное, аллергенное, кожно-резорбтивное и местно-раздражащее действие не оказывает ПДК димера в воздухе рабочей зоны 0,5 мг/м3 (пыль). Для определения вещества в воздухе разработан метод, основанный на хроматографии в тонком слое сорбента. Чувствительность метода 5 мкг, диапазон намерения 0,02—1,6 мг/м3.
Ортофеиилендиамин (ОФДА) — Cf: I!8N2— исходное сырье для производства высокоэффективного фунгицида БМК. Молекулярная масса 108, температура плавления 101 —103 °С, плотность 0,56 г/см3. Хорошо растворим в спирте, эфире, хлороформе, растворимость в воде при 20 °С равна 3%. LD50 для белых крыс 660 мг/кг, для белых мышей 470 мг/кг, для морских свинок 360 мг/кг. КВЧ для белых крыс и белых мышей. 2,87 (невыраженные различия видовой чувствительности). Для острого ^травления характерны кратковременное возбуждение,
сменяющееся депрессией, нарушение координации движений и ритма дыхания, паралич задних конечностей, кло-нические судороги, кровянистые выделения из носа. Гибель в 1-е сутки. Ic„m по Лиму 1,48. Расчетная СЬ50 для белых крыс 1873 мг/м3, Limac 57,8 мг/м3, Zac 32,4, Linic|,
6.2 мг/м3, Zch 9,3. Мутагенное, аллергенное, кожно-рё-зорбтивное и местно-раздражающее действие отсутствует. Оказывает специфическое гонадотропное и эмбриотроп-ное действие. I-imc],sp ! мг/м3. Рекомендуемая ПДК1 в воздухе рабочей зоны производственных помещений 0,5 мг/м3 (пыль). Коэффициент запаса от Limci,sp 5. Для определения вещества в воздухе рабочей зоны предложен метод хроматографии в тонком слое сорбента. Предел обнаружения в пробе 0,2 мкг, диапазон измерений 0,005—0,1 мг/м3.
Трилан (4, 5, 6-трихлорбензоксазолинон-2) — C8H2CL3N02— фунгицид для борьбы с болезнями картофеля при его хранении и др. или антисептик полимеров (100% д. в.). Молекулярная масса 240,5, насыпная масса 0,642 г/см3, температура плавление 240—250 °С. Не растворим в воде, хорошо растворим в ацетоне, диметил-формамиде, толуоле, ограниченно растворим в слабощелочных и спиртовых растворах. LD50 для белых крыс 1200 мг/кг, для белых мышей 240 мг/кг, для морских свинок 460 мг/кг. Клиническая картина острого отравления: смена кратковременного возбуждения депрессией, нарушение координации движений, судороги, паралич задних конечностей. Гибель в 1—2-е сутки. Icunl по Лиму 4,6, расчетная CL60 для белых крыс 1805 мг/м3, для белых мышей 680 мг/м3, для морских свинок 700 мг/м3. КВЧ (для крыс и мышей) 4,1, Limac 30 мг/м3, Zac для белых крыс 60,1, Zac Ддя морских свинок 23,3, Lim0h
6.3 мг/м3, Zci, 4,8. Оказывает эмбриотропное действие. LimchSp 1 мг/м3. Гонадотропное, мутагенное, аллергенное, кожно-резорбтизное и местно-раздражающее действие отсутствует. ПДК в воздухе рабочей зоны 0,1 мг/м3 (пыль). Коэффициент запаса от Limc|lSp 10. Для контроля вещества в воздухе рабочей зоны разработан метод, основанный на хроматографии в тонком слое сорбента. Чувствительность метода 5 мкг, диапазон измерения 0,05—1,5 мг/м3.
1 Примечание: ПДК ортофениленднамина не утверждена Минздравом СССР.
