CC BY
6
и реках (в холодный период), которые рассматриваются как природная среда обитания иерсииий и важный резервуар возбудителей нерсиннозов.
3. Водные популяции иерсииий, смешанные и по видовому составу, и по происхождению (аллохтонно-авто-хтонные), сильно разрежены.
4. Хотя риск заражения человека через сырую воду незначителен, целесообразен предупредительный бактериологический контроль источников питьевой воды на иерсиний.
Литература. Классоаский Л. Н., Осадчая Л. М., Петров В. С. — Ж- микробиол., 1965, № 11, с. 136. Кузнецов В. Г. — Гиг. и сан., 1978, № 7, с. 38—41.
Кузнецов В. Г. — Воен. мед. ж., 1981, № 3, с. 67—68. Методические рекомендации по лабораторной диагностике иерсиннозов. Иркутск, 1979. Серов Г. Д., Знаменский В. А., Вишняков А. К. — Ж.
микробиол., 1968, № 6, с. 146—149. Сомов Г. П., Шубин Ф. Н. — В кн.: Международный симпозиум по приполярной медицине. 4-й. Тезисы докладов. Новосибирск, 1978, т. 2, с. 77—78. Bercovier //., Alonso J. М,, Bentaiba Z. Н. et al. — ' Contrib. Microbiol. Immunol., 1979, v. 5, p. 12—22. Brenner D. J. — Ibid., p. 33—43.
Niléhn В. — Acta path, microbiol. scani., 1969, Suppl. 206, p. 5—48.
Поступила 20.07.32
УДК 614.7:615.285.7
Ш. Т. Атабаев, С. А. Хайдаров
ГИГИЕНИЧЕСКОЕ ИЗУЧЕНИЕ СТАБИЛЬНОСТИ МЕТИЛНИТРОФОСА И ПЕНТАХЛОРНИТРОБЕНЗОЛА ПРИ ПРИМЕНЕНИИ ИХ В СЕЛЬСКОМ ХОЗЯЙСТВЕ
Узбекский НИИ санитарии, гигнены и профзаболеваний, Ташкент
В связи с применением метатнона и пентахлорнитро-бензола (ПХНБ) в сельском хозяйстве нами была изучена стабильность этих препаратов в объектах окружающей среды. ПХНБ выпускается в виде 25% и 50% смачивающихся порошков, 96% технического препарата. LDS0 1500—1700 мг/кг для лабораторных животных при перо-ральном введении (В. А. Закордонец), используется как фунгицид'против^вредителей я болезней растений. Норма расхода препарата 50—100 кг/га, под хлопчатник вносится до 200 кг/га. ПХНБ служит также для протравливания семян1.хлопчатника из расчета 2—4 кг 25% смачивающегося порошка на 1 т семян.
Метилнитрофос (метатион) выпускается в виде 30% и 50% концентрата эмульсии. LDSÍ для белых крыс 470—516 мг/кг, для мышей 329—725 кг/мг. Пороговая доза 50 мг/кг (Ю. С. Каган). Применяется в качестве контактного инсектицида и акарицида для борьбы с вредителями растений нз расчета 0,5—1,5 кг на 1 га.
ПХНБ в пробах воздуха, почвы, растений и воды определяется газохроматографическим методом, разработанным В. В. Тарасовым совместно с нами с применением электронного захвата, метилнитрофос в воздухе — с помощью газожидкостиой хроматографии, в отдельных объектах — методом тонкослойной хроматографии. При установлении содержания остаточных количеств пестицидов в объектах окружающей среды определяли количество препарата в воздухе, воде, почве и растениях в динамике, а также дальность их распространения.
Результаты исследований почвы в условиях длительного эксперимента в динамике после однократного внесе-
Таблица I
Динамика, содержания ПХНБ а различных слоях почвы при однократном внесении под посевы люцерны и хлопчатника (норма внесения 100 кг/га)
Внесение Слой почвы, cu Число проб Среднее содержание ПХНБ, мг/кг
• 1977 г. в 1978 г. в 1979 г.
Под посе- 0 — 5 13 0.1 6 ± 0,05 0, |2±0,014 0,10 ±0,09
вы люцер- 6—25 13 0, 4 7 ± 0,02 0,42 ± 0,92' 0 , 28 ± 0,01
ны 26 — 50 12 0. 18 ± 0,05 О, 19± 0,002 0,20 ± 0,008
Под почвы 0-5 12 0. 18 ±0,05 0. 16± 0,003 0. 14±0.01
хлопчат- 6-25 13 0, 18±0.05 0,44 ± 0,036 0,33±0,006
ника 26-50 12 0, 22±0,06 0,15 ± 0,99 0,1 ±0.07
ния ПХНБ из расчета 100 кг/га под люцерну и хлопчатник показали, что препарат обнаруживается в течение 3 лет в слое почвы до 50 см, причем наибольшее количество — в слое почвы от 6 до 25 см (табл. 1). Происходят миграция пестицида в более глубокие слои почвы и его транслокацня в растения.
В первый год внесения препарата относительное содержание его в растениях выше, чем в почве (табл. 2). Следует отметить видовую чувствительность растений к ПХНБ. Например, люцерна поглощает ПХНБ из почвы интенсивнее, чем хлопчатник. Анализ пробы хлопчатника показал, что он содержит ПХНБ от 0,17 до 0,37 мг, а люцерна — от 0,26 до 0,52 мг на 1 кг сухого вещества. В последующие годы концентрация пестицида постепенно уменьшается.
Из почвы ПХНБ вымывается водой. Исследование воды показало наличие в ней пестицида, причем концентрация его обратно пропорциональна расстоянию от обработанного поля и зависит также от времени с момента внесения препарата (табл. 3). Так, поливная вода из середины поля содержит его в пределах от 0,1 ±0,01 до 0,14±0,001 мг/л через 5—6 мес после внесения, а в пробах воды (поливной) на расстоянии 500 м от обработанного поля — от 0,08 до 0,09 мг/л (это меньше, чем в воде, взятой с середины поля, что связано, видимо, с разбавлением ирригационной водой). На 3-й год виесе-
Таблица 2
Динамика содержания ПХНБ (в мг/кг) в различных частях растений (за 1976 г.)
Растение
Время отбора проб
о
5« S&
1977 г.
1978 г.
П р i
е. ПХНБ >мсп • 1*7» г.
Зеленая люцерна Сушеная люцерна Хлопчатник; корень стебель курак семена листья Кукуруза: корни стебли листья рыльце зерно
0 . 14 ± 0,001 0,52 ± 0,019
0, 37 ± 0. Об 0,27 ± 0,04 0,25 ± 0,02 0,056 ±0,0*2 0.17±в,014
Севооборот
0.1 ±0,001 0,5 ± 0.017
Севооборот
в,25 ± 0,02 0. 10±0,0017 0,098 ± 0,002 9,028 ± 0,002 9,014 ±0.009
1979 г.
0.09 ±0,001 0,22 ±•,006
в,02 ± 0,602 0, 16±0,01 1 0,©8±0,0*1 0,049 ± 0,01 0.01 ±0.0*1
Севооборот
Таблица 3
Динамика содержании остаточных количеств ПХНБ в поливной воде (мг/л) на различных расстояниях от обработанного поля после однократного внесения прапарата в почву под люцерну и хлопчатник из расчета 100 кг/га смачивающегося порошка
Место взятия проб Число проб Люцерна Чвсло Хлоп чат н и к
1977 г. 1978 г. 1979 г. проб 1977 г. 1979 г.
Вода поливная из' середины поля 12 O.ldtO.Ol 0,07± 0,004 « 0,03±0,02 8 0,14±0,001 0,07±0,001
Вода поливная на расстоянии 12 0,08±0,004 0,05±0,002 0,00 8 0,09±0,05 0,03±0,001
100 м от края поля
Вода поливная на расстоянии 12 0,06±0,002 0,02±0,001 0,00 8 0,05±0,002 0,02±0,0001
300 м от края поля
Вода поливная на расстоянии К2 0,09±0,006 0,005±0,001 0,00 8 0,08±0,004 0,002± 0,0001
500 м от края поля
ния ПХНБ н поливной воде обнаруживается в количестве 0,03±0,002 мг/л в пробах с середины поля, а в некоторых его не найдено.
В условиях жаркого климата пестициды после поступления в почву способны испаряться, улетучиваться и поступать в воздух. В 1-й и 2-й дни после обработки почвы ПХНБ в воздухе на расстоянии 500 м он определяется в небольшом количестве. Кроме этого, в момент внесения ПХНБ в почву концентрация его в воздухе на уровне рабочей зоны достигает 0,8±0,02 мг/м3, что превышает ПДК рабочей зоны в 1,6 р^за.
Приведенные данные позволяют считать, что ПХНБ относится к стойким препаратам, способным мигрировать в более глубокие слои почвы, в состав растений и поступать в воздух, улетучиваясь под влиянием высокой температуры (35—37 °С). Таким образом, ПХНБ по гигиенической классификации относится к очень стойким препаратам, так как период разложения его более 2 лет.
Метилнитрофос (ФОС) широко используется в сельскохозяйственной практике. При его применении с. по-
мощью сельскохозяйственной авиации также отмечается распостраненне его более чем на 1000 м при температуре окружающего воздуха 38 °С. Обычо такой способ использования пестицидов нередко способствует распространению их на дальние расстояния. Через 1 сут в воздухе над обработанным полем ФОС определяется в концентрации 0,116±0,02 мг/м», на расстоянии 300 м его 0,112± ±0,9 мг/м1, а на расстоянии 500 м — 0,095±0,003 мг/м3. Через 2 сут содержание препарата над полем уменьшается в 1,/1 раза, а через 3—4 дня в воздухе, воде и растениях он отсутствует. Следовательно, в условиях жаркого климата препарат долгое время не сохраняется, поэтому его применение представляет меньшую опасность. Он подвергается разложению во внешней среде.
Выводы. 1. ПХНБ — препарат, очень стойкий во внешней среде. В почве он обнаруживается в течение 3 лет. Мигрирует в воздух, воду и растения.
2. ФОС малостоек в окружающей среде: через 3—4 дня в воздухе, воде н растениях он не обнаруживается.
Посту ПИЛЕ 20.08.82
УДК «1Мв1.17-082.4-07:1в13.155:579.841.921-078
О. К. Борисова, И. С. Богатом
БАКТЕРИИ РОДА АСШЕТОВАСТЕК САЬСОАСЕПСив В ОБЪЕКТАХ ОКРУЖАЮЩЕЙ СРЕДЫ ОЖОГОВОГО СТАЦИОНАРА
Институт хирургии им. А. В. Вишневского АМН СССР, Москва
Вопросы экологии микроорганизмов — возбудителей госпитальных инфекций, всегда представляли один из наиболее важных аспектов в профилактике этих инфекций. Особое значение они приобретают в настоящее время, когда спектр условно-патогенных микроорганизмов значительно расширился и произошли существенные изменения в микробном пейзаже возбудителей внутриболыжч-ных инфекций. Естественно, что в наименьшей степени изучена экология микроорганизмов, которые лишь в последние годы признаны возбудителями госпитальных инфекций. Это в полной мере относится к неферментирую-щим грамотрнцательным бактериям из рода Acinetobacter calcoaceticus. Согласно данным последних 10—15 лет, они способны вызывать тяжелые инфекционные процессы у госпитализированных пациентов, ослабленных основным заболеванием. Чаще всего указанные инфекции возникают после различных хирургических и инструментальных вмешательств, длительной антибиотикотерапии (Daly и соавт.; Glew и соавт.). Источником инфекции в этих случаях могут служить катетеры, аспирационные маски, респирометры, дыхательные аппараты, увлажнители воздуха, различные растворы, даже дезинфекционные и др. (Castle и соавт.; Lecoco и Linz; Reinhardt и соавт.; Peder-son и соавт.; Smith и Massanari). При этом подчеркивается, что пути распространения A. calcoaceticus установить нелегко (Lecoco и Linz). Появляющиеся сообщения о
возрастающей роли A. calcoaceticus при инфекционных осложнениях ран у ожоговых больных свидетельствуют о необходимости изучения вопросов экологии 3tyix микроорганизмов в ожоговых стационарах. Вместе с тем ни в отечественной, ни в зарубежной литературе не обнаружено соответствующих материалов, в связи с чем целью настоящей работы являлось изучение распространения бактерий рода A. calcoaceticus в окружающей среде ожогового стационара.
В качестве объектов исследования были выбраны влажные (ванны, раковины, краны) и сухие (предметы, окружающие больных, у которых из ран выделялись A. calcoaceticus) поверхности, руки обслуживающего персонала и воздух.
Материал с поверхностей брали ватными тампонами, смоченными в физиологическом растворе. Воздух отбирали с помощью аппарата ПАБ-1. Исследуемый материал засевали на плотные питательные среды — Эндо и кровяной агар и в жидкую среду—бульон Хоттингера. Через 24 ч инкубации при 37 °С отбирали колонии, морфологически напоминающие A. calcoaceticus, и проводили идентификацию согласно стандартным критериям: изучали морфологию клеток, подвижность, определяли наличие фермента цитохромоксидазы, способность к окислению I % глюкозы на среде Hugh и Leifson, способность к окислению 10% лактозы (Б. А. Шендеров и Г. П. Серкбва;
