CC BY
6
Гигиена труда
© КОЛЛЕКТИВ АВТОРОВ, 1994 УДК 613.6:036.5/.6 |-07
Г.ГЛадчова, В.Л.Пашкова, Л.В.Истомин
ГИГИЕНИЧЕСКАЯ ОЦЕНКА УСЛОВИЙ ТРУДА И ПОКАЗАТЕЛЕЙ СОСТОЯНИЯ ЗДОРОВЬЯ ПТИЦЕВОДОВ
Орловский педагогический институт; Московский НИИ гигиены им. Ф.Ф.Эрисмана
Одной из основных профессиональных групп в промышленном птицеводстве являются рабочие, контактирующие по роду своей деятельности с химическими веществами.
В связи с этим изучено влияние условий труда рабочих на показатели здоровья. Объектом исследования была профессиональная группа женщин-птицеводов в возрасте 20—49 лет со стажем работы по специальности более 3 лет. Для сравнения взята группа птицеводов того же возраста, с тем же стажем работы, не имевших профессионального контакта с химическими веществами (контроль).
С целью гигиенической оценки условий труда изучены параметры микроклимата, уровни шума, запыленности [6 ]; проведены исследования содержания химических веществ в воздухе рабочей зоны, смывах с оборудования цехов и незащищенных участков кожи птицеводов [3]. Исследования гематологических показателей осуществляли общепринятыми методами [5).
Проведены цитохимические исследования лейкоцитов [4 ]. Активность ферментов (кроме сукцинат-и лактатдегидрогеназы), а также содержание гликогена выражали в процентах положительно прореагировавших клеток (ППК) в среднем цитохимическом коэффициенте (СЦК), ферментативную активность лактат- и сукцинатдегидрогеназы — в среднем количестве гранул на клетку.
Специфическую аллергическую реакцию клеток крови на химические вещества изучали по иммунологическим тестам: реакции специфической агломерации лейкоцитов (РСАЛ), реакции специфического лизиса лейкоцитов (РСЛЛ) [1 ].
Изучение заболеваемости с временной утратой трудоспособности обследуемых контингентов проводили по показателям частоты, длительности и структуры заболеваний методом лицевого учета [2].
При обработке полученных данных использованы общепринятые методы санитарной статистики [7 ].
Гигиенические исследования условий труда показали, что параметры микроклимата на птицефабриках не всегда соответствовали санитарно-гигиеническим нормативам.
Так, в холодный период года температура воздуха в цехах выращивания молодняка достигала 21,4 — 32°С, в то время как в цехах для содержания родительского стада температура сохранялась на относительно низком уровне (11,5— 20,3°С).
Относительная влажность воздуха в этот период изменялась с 60,5 до 74,6% (в зависимости от особенностей обогрева и вентиляции) при скорости движения воздуха от 0,3 до 0,4 м/с.
В теплый период года температура воздуха в
птичниках колебалась от 21,6 до 34,0°С при относительной влажности 68—75% и средней скорости движения воздуха 0,38 м/с.
Установлено, что воздушная среда птичников загрязняется газообразными продуктами, образующимися в процессе жизнедеятельности птицы и в результате разложения органического субстрата (помет, подстилка, корма и т.д.), пылью растительного и животного происхождения.
В зависимости от способа содержания кур концентрация газов в цехах была различной. Так, в цехе выращивания молодняка в холодный период года при напольном содержании птиц концентрация аммиака составляла в среднем 27,5 мг/м3, при клеточном содержании — 15,4 мг/м3, в теплый период года — 6,5 и 4,3 мг/м3 соответственно.
В цехах промышленного стада при клеточном содержании кур концентрация аммиака в холодный период года достигала 19,2 мг/м3, в теплый — 3,1 мг/м3, при напольном содержании кур эти показатели составляли соответственно 30,1 и 6,3 мг/м3.
Сероводород в воздухе рабочей зоны производственных помещений, где проводилась ежедневная механическая уборка помета, определялся в незначительных количествах — от следов до 6,2 мг/ м3.
Кроме указанных газов, в воздухе рабочей зоны обнаружен фосфин (в пределах 0,07-0,18 мг/м3).
Концентрация пыли в воздухе птичников колебалась в широких пределах — от 1,2 до 35,0 мг/м3. Наибольшее количество пыли (до 70 мг/м3) выявлено в зоне дыхания работающих при раздаче сухих кормов, выбраковке и отлове птиц, уборке помещений.
Как установлено в исследовании, для обеззараживания птицеводческих помещений и уничтожения эктопаразитов кур применяют ряд химических веществ: формальдегид, хлорофос, аэрол-2. При этом концентрация формальдегида в 1-й день после обработки составила 2,25 мг/м3, через 1 сут она значительно снизилась — до 1,2 мг/м3, через 3 сут после окончания обработки формальдегид в пробах воздуха на уровне дыхания птицеводов обнаруживался в следовых количествах.
Исследования показали также, что в воздухе рабочей зоны в цехах как промышленного стада, так и выращивания молодняка концентрация хлорофоса и аэрола-2 составляла в среднем 0,1-0,3 мг/м3.
Концентрация щелочи в воздухе рабочей зоны при напольном содержании кур в цехе родительского стада в холодный период года равнялась 0,4 мг/м3, при клеточном содержании — 0,2 мг/м3, в
теплый период года в этом же цехе — соответственно 0,6 и 0,1 мг/м3.
Повышенные концентрации щелочи выявлены в цехе выращивания молодняка при напольном содержании кур. Так, в холодный период года концентрация щелочи составила 0,8 мг/м3, в теплый — 0,6 мг/м3; при клеточном содержании кур концентрация щелочи была ниже: в холодный период 0,4 мг/м3, в теплый — 0,3 мг/м3.
В значительных количествах химические вещества обнаруживались в смывах с оборудования (внутри цехов) и с незащищенных участков кожи птичниц (лицо, шея, кисти рук).
Среди других неблагоприятных факторов на птицефабриках следует отметить превышение ПДУ шума и недостаточную освещенность в помещениях птицеводов в цехах промышленного стада.
Исследования позволили выявить достоверные различия морфологических показателей крови в группах птицеводов, работавших и не работавших с химическими веществами: это достоверное снижение (/;<0,05) уровня гемоглобина (128,2±1,8 г/л против 140,0±2,8 г/л) и числа эритроцитов (3,8±0,12 против 4,5±0,2).
При морфологическом изучении эритроцитов у лиц, работавших с химическими веществами, отмечены единичные оксифильные нормоциты, выявлены анизохромия, анизо- и пойкилоцитоз эритроцитов. В этой группе обследуемых 10-15% эритроцитов были представлены микросфероцита-ми, овалоцитами, грушеобразными формами.
Исследуемые показатели лейкоцитов находились в пределах физиологической нормы, но в группе лиц, работавших с химическими веществами, общее количество лейкоцитов было снижено.
Анализ лейкоцитарной формулы показал также, что в группе лиц, работавших с химическими веществами, отмечался относительный лимфоци-тоз, обнаруживались морфологические изменения в клетках лейкоцитарного ряда: явления гипохро-матоза, пикноза ядра, цитомы клеток, увеличение количества атипичных лимфоцитов.
Результаты цитохимических исследований свидетельствуют о более выраженных нарушениях функционального и энзимологического статуса птицеводов, контактирующих в процессе работы с химическими веществами (см. таблицу).
Так, у них по сравнению с лицами, не имевшими профессионального контакта с химическими веществами, наблюдались существенное снижение активности окислительно-восстановительных ферментов (цитохрома С и миелопероксидазы), значительное повышение активности щелочной фосфатазы и снижение активности кислой фосфатазы.
В лимфоцитах выявлена тенденция к снижению активности кислой фосфатазы и активности ферментов энергетического обмена (сукцинат- и лак-тагдегидрогеназы). В нейтрофилах отмечена повышенная активность лактатдегидрогеназы.
Результаты иммунологических исследований показали, что при добавлении комбинации химических веществ в кровь биоматсриала у лиц, не работавших с химическими веществами, показатели РСАЛ и РСЛЛ составили соответственно 4,8±1,1 и 14,7±2,2%, а в группе птицеводов, контактировавших с химическими веществами, эти показатели были достоверно (/КО,05) выше: 9,1 ±1,3 и 23,2±4,2% соответственно.
Цитохимические показатели клеток кропи у птицеводов (М±т)
Показатель Контроль Опыт
Лимфоциты
Гликоген:
ППК 11,82+2.12 9,43± 1,32
СЦК 0,20±0,02 0,19±0,01*
Кислая фосфатаза:
ППК 56,4±4,9 38,4+3,0*
СЦК 1,2±0,07 0,85±0,02*
Лактатдсгидрогсназа, усл.сд. 1(),8±2,05 18,4± 1,9
Сукцинатдсгидрогсназа. усл.ед. 9,4± 1,01 14,1 ±1,7
Нейтрм/шлы
11ероксилаза:
ППК 98,2±2,0 85,7±3.2*
СЦК 2,3±0,04 15,8±0,9*
Щелочная фосфатаза:
ППК 49,7 ±3,0 57,6±3,3*
СЦК 0,6±0,01 0,97+0,12*
Кислая фосфатаза:
ППК 68,2±2,2 52,6±4,6*
СЦК 0,73±0,07 0,50±0.03*
Цитохро.ч С:
ППК 83,5±2,3 65,4± 1,8*
СЦК 1,47±0,04 1,17+0,03*
Лактатдсгидрогсназа, усл. ед. 5,7+0,98 8,9± 1,3
Сукцинатдсгидрогеназа, усл. ед. 3,0±0,49 2,8±0.16
* Достоверные различия по сравнению с контролем (р<0,05).
Анализ заболеваемости с временной утратой трудоспособности позволил установить, что в группе птицеводов, не работающих с химическими веществами, число случаев нетрудоспособности составило 79 на 100 работающих, число дней — 825; в группе птицеводов, работающих с химическими веществами, аналогичные показатели были на 28-30% выше.
Для птицеводов обеих групп были характерны различные формы хронических заболеваний органов дыхания, болезни нервов и периферических ганглиев (радикулиты, невриты), органов пищеварения, почек (нефриты, пиелонефриты).
Вместе с тем у птицеводов, работавших с химическими веществами, чаще встречались заболевания глаз (конъюнктивиты), острые тонзиллиты и фарингиты, бронхиты, инфекции кожи и подкожной клетчатки.
Число случаев нетрудоспособности увеличивалось в летний период, когда проводилась работа по уничтожению мух хлорофосом. В этот период года частота аллергических заболеваний кожи на 100 работающих в группе птицеводов, имевших контакт с химическими веществами, составила 32,5 случая (против 15,2 случая у неконтактирующих), острых тонзиллитов и фарингитов — 69,9 (против 37,7), острых бронхитов—55,6 (против 28,6), инфекций кожи и подкожной клетчатки — 19,8 (против 8,6); средняя продолжительность 1 случая заболевания в группе лиц, работавших с химическими веществами, составила 16 дней (против 10 дней).
Таким образом, ведущим неблагоприятным производственным фактором при работе птицеводов является контакт с химическими дезинфицирую-
щими веществами, концентрация которых превышает ПДК в 1,5-2 раза.
У птицеводов, имеющих профессиональный контакт с токсичными веществами, выявлены изменения морфофункциональных, цитохимических, иммунологических показателей периферической крови, повышенный уровень заболеваемости.
Результаты исследования явились основой для разработки комплексных гигиенических рекомендаций по оптимизации условий труда и здоровья лиц, работающих в промышленном птицеводстве.
2. Цосле H.H., Юркевич Л.Я. Заболеваемость с временной утратой работоспособности. — М., 19X4.
3. Клисенко М.Л., Александрова Л.Г. Определение остаточных количеств пестицидов. — Киев, 1983.
4. Лецкий H.H. Цитохимические исследования лейкоцитов. — Л., 1973.
5. Меньшиков ВН. Лабораторные методы исследовании в клинике. — М., 1987.
6. Миих A.A. Методы гигиенических исследований. — М., 1971.
7. Ноткин E.JI. Статистика в гигиенических исследованиях. — М., 1965.
Поступила 14.06.94
Литература
1. Алексеева О.Г., Дуева Л.Л. Аллергия к промышленным химическим соединениям. — М., 1978.
S u m m a r y. The main unfavourable factor of poultry farms environment is contact of workers with chemical disinfectants. Changes in morphofunctional, cytochemical, immunological parameters and higher level of morbidity were revealed in poultry farms. Hygienic prophylactic recommendations were made.
С 1>.Я. ХАМИТОВА, 1994 УДК 613.632-074
Р.Я. Хамитова
ПОКАЗАТЕЛИ АНТИПИРИНОВОГО ТЕСТА У РАБОТНИЦ БЫТОВОЙ ХИМИИ
Казанский медицинский университет
Одним из важных путей охраны внутренней среды при химических воздействиях является детоксикация поступающих в организм ксенобиотиков. Метаболическая ферментная система, обеспечивающая общий механизм, функционально сопряжена с иммунной системой, обеспечивающей специфические механизмы, вместе они составляют единую иммунохимическую функциональную систему химического гомсостаза [4 ]. Не исключено, что толерантность к ксенобиотикам обусловлена большей скоростью метаболических реакций в организме, развитием аутоиммунных процессов при их инактивации [5, 18].
Активность оксидаз смешанной функции гепато-цитов, которые играют ведущую роль в биотрансформации химических соединений, можно использовать как чувствительный тест для выявления ранних признаков интоксикации [13, 16, 20]. Изменения биотрансформационной активности отмечены у работающих на химических, нефтеперерабатывающих производствах [3, 19, 21 ]. В экспериментах на мышах обнаружено торможение метаболизма химических веществ в печени под воздействием высоких уровней шума, что, вероятно, является одной из причин потенцирующего влияния шума на токсические свойства многих соединений при их сочетанном действии 111 ].
По данным клиницистов, параметры биотрансформации ксенобиотиков изменяются при заболеваниях печени и служат информативным критерием прогноза течения гепатитов [1]. В то же время антипириновый тест, характеризующий первую фазу биотрансформации, не позволяет с уверенностью диагностировать у работающих на вредных производствах доклиническую фазу токсического поражения печени [7 ]. Кроме того, для оценки состояния монооксигеназной системы гепа-тоцитов в некоторых случаях предпочтительнее использовать амидопириновую пробу [2, 17]. Антипириновая и амидопириновая пробы отражают активность различных изоформ цитохрома Р-450,
различающихся реакцией на химическое воздействие.
Теоретически активация путем естественного обезвреживания должна повысить устойчивость организма к воздействию вредных веществ 112]. На практике предполагаемые профилактика и коррекция патологических состояний химической этиологии не всегда наблюдаются |8 — 10, 15].
Исследований, посвященных изучению состояния биотрансформационной активности ферментов печени у работающих на вредных производствах, немного, и они не могут дать ответ на следующие актуальные для практики вопросы: 1) имеют ли значение для величины и знака (торможение или активация) реакции обсуждаемой системы качественные и количественные характеристики химического воздействия, 2) какая связь имеет место между параметрами антитоксической функции печени и состоянием здоровья. Настоящее исследование и посвящено выяснению этих вопросов.
Для оценки антитоксической функции печени у работающих использовали антипириновый тест. Определяли период полувыведсния (Т ] /2, ч) и клиренс (С1, мл/(кг*ч)) антипирина. Обследуемые принимали раствор антипирина из расчета 15 мг/кг утром натощак. До введения препарата и через 3, 6, 9, 12, 24 ч после него брали пробы слюны (3—5 мл). Концентрацию антипирина в слюне определяли спектрофотомстричсски [14].
Исследования проведены у 111 женщин. Из них 22 человека составили контрольную группу, не имевшую контакта с химическими и физическими вредными факторами в процессе трудовой деятельности. 19 работниц обследованы вторично через 4 года. Для исключения влияния сезона года все исследования проводились осенью. Сравнение показателей антипиринового теста, полученных нами в контрольной группе, с данными литературы позволяет говорить об их сопоставимости. Т]/2 антипирина у здоровых лиц в норме колеблется от 6 до 17 ч. Индивидуальные отклонения в
