CC BY
44УДК 619:616-07: [616.24-002:636.4]
ДИАГНОСТИКА ЭНЗООТИЧЕСКОЙ ПНЕВМОНИИ СВИНЕЙ В ООО «ВЕЛЕС-КРЫМ»
Полищук С. В., кандидат биологических наук, доцент;
Белявцева Е. А., кандидат ветеринарных наук, доцент;
Академия биоресурсов и природопользования ФГАОУ ВО «КФУ им. В. И. Вернадского»
DIAGNOSIS ENZOOTIC PNEUMONIA PIGS AT FARM «VELES-CRIMEA»
Polishchuk S. V., Candidate of Biological Sciences, Associate Professor; Belyavtseva E. A., Candidate of Veterinary Sciences, Associate Professor; Academy of Life and Environmental Sciences FSAEI HE «V. I. Vernadsky Crimean Federal University»
В статье представлены результаты комплексной диагностики энзоотической пневмонии с учётом эпи-зоотологических данных, клинической картины заболевания, патологоанато-мического вскрытия трупов и серологических исследований по методу ПЦР и ИФА. После клинического осмотра условно-больных животных, выявили, что наиболее выражены клинические признаки у поросят в возрасте 15-20 недель. У них при исследовании морфологических показателей крови было установлено: эритроцитопения, лей-коцитопения, снижение процентного числа лимфоцитов, моноцитов, увеличение скорости оседания эритроцитов.
Ключевые слова: свиньи, энзоотическая пневмония, Mycoplasma hyopneumoniae, комплексный диагноз
The article presents the results of complex diagnostics of enzootic pneumonia taking into account the epizootic data, clinical picture of the disease, autopsy report and serological tests for PCR and ELISA in the pig farm. After a clinical examination of conditionally sick animal found that the farm are most pronounced clinical signs in pigs at the age of 15-20 weeks. They have in the study of morphological parameters of blood were found: erythropenia, leukopenia, decreased percentage of lymphocytes, monocytes, increased erythrocyte sedimentation rate.
Keywords: pigs, enzootic pneumonia, Mycoplasma hyopne-umoniae, complex diagnosis.
Введение. В современном свиноводстве значительный удельный вес занимают инфеционные заболевания молодняка с преимущественным поражением систем органов пищеварения и дыхания [2,7,8]. Одной из острых проблем являются респираторные болезни вирусно-бактериальной этиологии, широко распространенные во многих странах с развитым свиноводством, наносят ощутимый экономический ущерб и тормозят развитие отрасли. Инфекционные болезни: репродуктивно-респираторный синдром свиней, цирковирусная инфек-
ция, энзоотическая (микоплазмозная) пневмония, гемофилезный полисерозит, актинобациллезная плевропневмония, пастереллез чаще всего протекают как смешанная инфекция с варьирующим сочетанием, патогенов [6,10,15]. Частота и тяжесть респираторных болезней зависит от численности свиней в хозяйстве, их иммунного статуса и технологии производства [7,11].
Mycoplasma hyopneumoniae, Actinobacillus pleuropneumoniae, Bordetella bronchiseptica, являются основными (первичными) вдыхаемыми бактериальными патогенами, при введении возбудителя у поросят в трахею развивается пневмония. Они имеют факторы вирулентности, преодолевающие естественную защиту в легких [1,10].
Mycoplasma hyopneumoniae - главный бактериальный респираторный патоген. Она поражает эпителиальные клетки респираторного тракта, нарушает функцию бронхиального аппарата по удалению вдыхаемых частиц пыли и микробов и совместно с одним или несколькими второстепенными бактериальными патогенами вызывает бронхопневмонию. Заболевание, обусловленное Mycoplasma hyopneumoniae и второстепенными бактериальными патогенами, называют энзоотической пневмонией, оно распространено среди популяций свиней и является эндемичной в большинстве стад во всём мире [5,12]. Возбудители энзоотической пневмонии передаются при перемещении свиней-носителей инфекции или ветром на расстояние 2,5-3 км при хороших климатических условиях. Микроорганизмы быстро погибают вне организма свиньи, но во влажных прохладных условиях они могут существовать в течение 2-3 дней. У заболевания долгий инкубационный период (2-8 недель), после чего проявляются клинические симптомы [4,7,8].
Микоплазмы сами по себе обладают минимальной патогенностью, однако в содружестве с другими микрорганизмами усиливают свое патогенное действие. Особое значение это явление приобрело в последние годы, т.к. в условиях хозяйств, особенно крупных, все чаще одновременно обнаруживаются несколько инфекций. Микоплазмоз повышает восприимчивость свиней к вторичным инфекциям т.к. «открывает» лёгкие для других инфекций, что делает его течение более тяжелым, зачастую приводя к гибели [9,14]. Поражения легких при этой болезни обнаруживают у 30-80% свиней при убое [3,6,13].
Ввиду высокой заболеваемости свиней и хронического течения энзоотическая пневмония наносит большой экономический ущерб, обусловленный снижением массы тела животных, замедления роста и развития поросят из-за плохой усвояемости корма (зараженные животные расходуют на единицу прироста живой массы на 18-20% кормов больше, чем здоровые), потерей племенных качеств, появлением заморышей, гибелью поросят (показатели смертности составляют от 2 до 15%) и значительными затратами на лечение и оздоровительные мероприятия [5,7,9,11,13].
В связи с этим весьма актуальным является своевременная постановка диагноза, выявление, изоляции, лечение больных животных и проведение
противоэпизоотических мероприятий в свиноводческих неблагополучных хозяйствах.
Цель работы: усовершенствование методов диагностики энзоотической пневмонии свиней в хозяйстве ООО «Велес-Крым».
Материал и методы исследований. Исследования проводились в декабре 2013 года на территории хозяйства ООО «Велес-Крым» в цеху откорма по адресу с. Тепловка, Симферопольский район.
Объектом исследования были откормочное поголовье свиней породы крупная белая, из которых сформировали две группы в возрасте 15-20 недель по 12 голов в каждой: опытная группа, у которых выявлен возбудитель Mycoplasma hyopneumoniae и контрольная группа особей без проявления клинических признаков инфекционного заболевания, при исследовании в ПЦР были получены отрицательные результаты на все инфекционные заболевания.
Для постановки предварительного диагноза на основании эпизоотологи-ческих данных, изучали данные анамнеза - восприимчивый возраст, условия содержания животных и кормления; из клинических, патологоанатомических данных - учитывали время появления и характер различных симптомов и патологий. Клиническое исследование животных (с измерением температуры тела, пульса и дыхания) и патологоанатомическое вскрытие проводилось по общепринятой схеме.
Для установления окончательного диагноза проводили лабораторные (серологические) исследования - ПЦР и ИФА, а также в крови унифицированными методами определяли количество эритроцитов (RBC), лейкоцитов (WBC), гемоглобина (НЬ), скорость оседания эритроцитов (СОЭ), выводили лейкограмму.
Материалом исследования были образцы крови животных, которые отбирали утром до кормления. Кровь отбиралась в одноразовые шприцы из ка-удальной полой вены в объеме 4-5 мл с антикоагулянтом и без антикоагулянта. Шприцы помещались в теплое место на 2 часа для отделения сыворотки крови, которую затем сливали в пронумерованные пробирки, охлаждали до 4 °С, и в течение 24 часов транспортировали в Научно-исследовательский центр биобезопасности и экологического контроля ресурсов АПК при Днепропетровском Аграрном Университете.
Диагностику микоплазмоза проводили в лаборатории с помощью тест-системы для выявления ДНК возбудителя в патологическом материале методом поли-меразно-цепной реакции (ПЦР), а также определяли наличие специфических антител к возбудителю энзоотической пневмонии в сыворотке крови методом ИФА.
Морфологические показатели крови поросят проводили в условиях лаборатории при ООО «Велес-Крым». Анализ крови включал: определение числа эритроцитов и лейкоцитов, определение гемоглобина, гематокрита, скорости оседания эритроцитов и выведение средних показателей лейкограммы по общепринятым методикам.
Статистическую обработку полученных данных проводили общепринятыми методами вариационной статистики с помощью критерия Стьюдента с применением пакета прикладных программ Microsoft Excel 2007.
Результаты и обсуждение. Свинопоголовье расположено в 8 корпусах (на территории цеха откорма содержится около 20 000 голов свиней) с соответственными технологическому процессу режимами микроклимата и распределения поголовья.
Ферма находится на расстоянии в 7 км от автомобильной трассы Саки
- Севастополь и более 10 км от железнодорожных путей. Кормление полностью автоматизировано. Корма разработаны технологическим отделом ООО «Велес-Крым», производятся внутри хозяйства в условиях кормоцеха Симферопольского района. Корма ежедневно подвозятся к свинарникам автомобильным транспортом. Поение животных вволю, ниппельное. Свиноводческое предприятие специализируется на мясной производительности, на территории ООО «Велес-Крым» продукция не хранится, сбыт производится в с. Скворцово и частные предприятия.
Хозяйство благополучно по острым инфекционным и инвазионным болезням более 3-х лет.
На территории хозяйства «ООО Велес-Крым» проводятся плановые вакцинации свиней против: классической чумы свиней, колибактериоза, рожи, РРСС, цирковирусной инфекций.
Ветеринарной службой хозяйства периодически проводятся копрологи-ческие исследования (10% ремонтных свинок и хрячков перед вводом в стадо, свиноматки - ежемесячно на 90 день супоросности 5% поголовья), Исследования на бруцеллез, лептоспироз, туберкулез (подсосные свиноматки
- 20-30 голов ежемесячно).
Плановым ветеринарным осмотром всех свиней хозяйства, в цеху откорма в возрасте 15-20 недель была выделена группа животных в количестве 30 голов с клиническими признаками, характерными для респираторных заболеваний. При клиническом обследовании среди поросят отмечали повышение температуры до 40,5-41,0 оС, угнетенное состояние, снижение аппетита, отставание в росте, тусклая окраска кожи, носовые истечения и чихание, наблюдались периодические приступы сухого, поверхностного кашля которые больше всего проявлялись при утреннем подъёме и прогоне животных по клетке. У некоторых животных отмечали синюшность или анемию слизистых оболочек, слизисто-гнойный конъюнктивит. Одышка смешанная, брюшной тип дыхания с частотой 50-60 дыхательных движений в минуту, поросята иногда принимали позу сидячей собаки, стояли на широко расставленных грудных конечностях. У восьми поросят наблюдались артриты.
От данных животных были отобраны и направлены в лабораторию образцы цельной крови и сыворотки. Результаты лабораторных исследований были полу-
чены из Днепропетровского Научно-исследовательского центра биобезопасности и экологического контроля ресурсов АПК через 3 дня.
При серологическом исследовании сыворотки крови у поросят из 30 проб в 12 случаях выявлен возбудитель М. hyopneumoniae, экспертиза № ХТ/040 от 25 декабря 2013 года.
Для дальнейшего исследования были сформированы группы поросят, у которых изучали морфологические показатели крови. Результаты исследования крови клинически здоровых поросят и больных приведены в таблице 1.
Таблица 1. Морфологические показатели крови свиней
№ Показатели Группы животных Норма
Опыт (М±т, п=12) Контроль (М±т, п=12)
1 Эритроциты, Т/л 4,20 ± 0,86 * 6,00 ± 0,91 6-7,5
2 Лейкоциты, Г/л 6,20 ± 2,13 * 11,60 ± 0,80 8-16
3 Лимфоциты, % 19,60 ± 6,30 ** 44,10 ± 3,80 40-50
4 Моноциты, % 0,80 ± 0,40 * 2,50 ± 1,50 2-6
5 Гемоглобин, г/л 87,50 ± 6,20 ** 97,4 ± 6,30 90-110
6 СОЭ, мм/час 12,32 ± 1,80 *** 4,13 ± 2,08 2-9
Примечание: * - Р<0,05, ** - Р<0,01, *** - Р<0,001 в сравнении с контрольной группой
Из данных таблицы видно, что у свиней с проявлением клинических признаков энзоотической пневмонии отмечали следующие изменения в морфологии крови: эритроцитопения (4,2 ± 0,86 Т/л) - количество эритроцитов достоверно ниже нормы в 1,4 раза (Р < 0,05), лейкоцитопения (6,2 ± 2,13 Г/л) снижение лейкоцитов в 1,9 раз (Р < 0,05), в эритроцитах было снижено содержание гемоглобина в 1,1 раза (87,5 ± 6,2 г/л; Р < 0,01). Скорость оседания эритроцитов увеличилась в 3 раза (12,32 ± 1,8 мм/час; Р < 0,001), по сравнению со здоровыми животными. При выведении лейкограммы наблюдалась ярко выраженная лимфоцитопения (19,6 ± 6,3 %; Р < 0,01) и моноцитопения (0,8 ± 0,4 %; Р < 0,05), процентное число лимфоцитов и моноцитов достоверно ниже нормы в 2,3 и 3,1 раза.
Анализируя данные крови больных животных, отмечали угнетение гемопоэза, приводящее к снижению уровня гемоглобина и эритроцитов, что клинически проявлялось слабостью у животных, анемией, исхуданием, одышкой и тахикардией.
При патологоанатомическом исследовании положительно реагирующих животных убитых с диагностической целью были выявлены признаки характерные для заболевания: трупы истощены, анемичны, лобулярная серозно-ка-таральная пневмония с преимущественной локализацией очагов воспаления в сердечных и верхушечных долях - апикальные участки синюшно-красного и серо-розового цвета с очагами уплотнений, резко контурирующие со здоровыми тканями. В трахее в большинстве случаев была серая слизь с красноватыми вкраплениями. Бронхиальные и средостенные лимфатические узлы увеличены, отечны, гиперемированы.
Всё заболевшее поголовье было изолировано с последующей разработкой эффективных схем лечения и профилактики данного заболевания.
Немедленная изоляция откормочного поголовья с клиническими признаками, характерными для респираторных заболеваний представляет собой неотъемлемую часть профилактики болезней органов дыхания свиней, в том числе и энзоотической пневмонии, поскольку основной путь передачи всех респираторных заболеваний - аэрогенный.
Проведение комплексных диагностических исследований отобранного изолируемого поголовья на респираторные заболевания необходимо для разграничения животных, положительно реагирующих на микоплазменную пневмонию и поголовья с характерными клиническими признаками поражения органов дыхания с целью уменьшения степени распространения данного заболевания.
Выводы. Диагноз на микоплазменную пневмонию свиней был поставлен комплексно: на основании клинических (приступы сухого кашля, усиливающиеся при подъёме и прогонке животных, смешанная одышка, абдоминальный тип дыхания) и патологоанатомических (лобулярная серозно-ката-ральная пневмония с преимущественной локализацией очагов воспаления в сердечных и верхушечных долях) признаков; серологических (положительная реакция ПЦР, ИФА) и гематологических (угнетение гемопоэза, приводящее к снижению уровня гемоглобина и эритроцитов с ярко выраженной лимфоцитопенией и моноцитопенией) исследований.
Список использованных источников:
1. Андросик Н. Н. Диагностика респираторного микоплазмоза свиней и меры борьбы с ним. Методические рекомендации. - Минск, 2006. - 39 с.
2. Гаффаров Х. А., Романов Е. А. Инфекционные болезни свиней и современные средства их диагностики, лечения и профилактики. - М., 2004. -с. 68-111, 154-188.
References:
1. Androsik N. N. Diagnostics of respirator mikoplazmoza of pigs and measure of fight against him. Methodical recommendations. - Minsk, 2006. - 39 p.
2. Gafarov H. A. Infectious diseases of pigs and modern means of diagnosis, treatment and prevention. - M., 2004. -p.68-111, 154-188.
3. Душук Р. В. Методические указания по диагностике, профилактике и мерам борьбы с микоплазмозом свиней: Утв. ГУВ Госагропрома СССР 14.08.87 г. / Р. В. Душук, В. П. Бердник,
B. Д. Настенко и др. // М., 1987. - 63 с.
4. Жбанова Т. В. Микоплазмозы свиней. / Т. В. Жбанова, Т. В. Дрыгин, Н. С. Дудникова // Владимир, ФГУ Федерал, центр охраны здоровья животных, 2005. - 76 с.
5. Жонглович А. Е. Этио-эпизоото-логические особенности микоплазмоза свиней и усовершенствование методов его диагностики и лечения: авторефер. дис. канд. ветеринар. наук / А. Е. Жонглович // Омск, 2008. - с. 5-6.
6. Орлянкин Б. Г. Инфекционные респираторные болезни свиней. / Б. Г. Орлянкин, Т. И. Алипер, Е. А. Непоклонов // Ветеринария, 2005. - №11. - с. 3-6.
7. Паутов Ю. Н. Этиологическое значение микоплазм и стафилококков при энзоотической пневмонии свиней. Новосибирск, 1989. - 16 с.
8. Пустоваров А. Я. Основные вопросы изучения микоплазмозов животных / А. Я. Пустовар // Информ. бюл. / Укр. акад. аграр. наук. Ин-т эксперим. клинич. вет. медицины, 1994. - с. 33.
9. Стегний Б. Т. Мониторинговые исследования на микоплазмоз и репро-дуктивно-респираторный синдром свиней с использованием ELLISA и ПЦР те -стов / Б. Т. Стегний, А. М. Коваленко,
C. А. Гузь // Ветеринар, медицина. Харьков, 2006. - Вып. 86. - с. 307-312.
10. Тазаян А.Н. Диагностика и лечебно-профилактические мероприятия при энзоотической пневмонии свиней:
3. Dushuk R. V. The methodical pointing on diagnostics, prophylaxis and measures of fight against mikoplazmozom of pigs: Utv. V. D. Gos-agroproma of the USSR 14.08.87 / R. V. Dushuk, V. P. Berdnik, V. D. Nastenko and other of // M., 1987. - 63 p.
4. Zhbanova T. V. Mikoplazmozy of pigs. / T. V. Zhbanova, T. V. Drygin, N. S Dudnikova. // Vladimir, FGU of Federal, center of health of zoons care, 2005. - 76 p.
5. Zhonglovich A. E. Etioepizootolo-gicheskie features of mikoplazmoza of pigs and improvement of methods of his diagnostics and treatment: avtorefer. dis. kand. veterinary. sciences / A. E. Zhonglovich // Omsk, 2008. - p. 5-6.
6. Orlyankin B. G. The infectious respirator diseases of pigs. / B. G. Orlyan-kin, T. I. Aliper, E.A. Nepoklonov // Veterinary Science, 2005. - № 11. - p. 3-6.
7. Pautov Y. N. The etiologic value of mikoplazm and staphylococcuss at enzootic pneumonia of pigs. Novosibirsk, 1989. - 16 p.
8. Pustovarov A. Y. Osnovnye questions of study of mikoplazmozov of zoons / A. Y. Pustovar // Inform. byul. / Ukr. akad. agrar. sciences. in-t of eksperim. klinich. vet. mediciny, 1994. - p. 33.
9. Stegniy B. T. Monitoring researches on mikoplazmoz and genesial-respirator syndrome of pigs with the use of ELLISA and PCR of tests / B. T. Stegniy, A. M. Kovalenko // Veterinary, medicine. Kharkov, 2006. - Vup. 86. - p. 307-312.
10. Tazayan A. N. Diagnosis, treatment and preventive measures when swine enzootic pneumonia: avtorefer. dis. cand. vet. Science / A.N. Tazayan // Moscow, 2009. - 146 p.
авторефер. дис. канд. ветеринар. наук / АН. Тазаян // Москва, 2009. - 146 с.
Сведения об авторах:
Полищук Светлана Викторовна - кандидат биологических наук, доцент, доцент кафедры инфекционных и инвазионных болезней Академии биоресурсов и природопользования ФГАОУ ВО «КФУ им. В. И. Вернадского», e-mail: polivet@bk.ru, 295492, п. Аграрное, Академия биоресурсов и природопользования ФГАОУ ВО «КФУ им. В. И. Вернадского»;
Белявцева Елена Анатольевна - кандидат ветеринарных наук, доцент, доцент кафедры хирургии и акушерства Академии биоресурсов и природопользования ФГАОУ ВО «КФУ имени В. И. Вернадского», e-mail: Elena2010simf@mail.ru, 295492, п. Аграрное, Академия биоресурсов и природопользования ФГАОУ ВО «КФУ им. В. И. Вернадского».
Information about the authors:
Polishchuk Svetlana Viktorovna
- Candidate of Biological Sciences, Associate Professor of Academy of Life and Environmental Sciences FSAEI HE «V. I. Vernadsky Crimean Federal University», e-mail: polivet@bk.ru, Academy of Life and Environmental Sciences FSAEI HE «V. I. Vernadsky Crimean Federal University» 295492, Republic of Crimea, Simferopol, Agrarnoe;
Belyavtseva Elena Anatolyevna
- Candidate of Veterinary Sciences, Associate Professor of Academy of Life and Environmental Sciences FSAEI HE «V. I. Vernadsky Crimean Federal University», e-mail: Elena2010simf@ mail.ru, Academy of Life and Environmental Sciences FSAEI HE «V. I. Vernadsky Crimean Federal Uni-versity» 295492, Republic of Crimea, Simferopol, Agrarnoe.
