CC BY
41of the pathogen Clostridium botulinum type А by the method of complete antigen Buavena. The second method involves the separation of botulinum antigen from a complex pathogen- toxin Clostridium botulinum type A. In the course of the experiment, the occurrence of a group reaction of precipitation associated with the homologous structure of antigens was revealed. The most effective and specific precipitinogen for the precipitation reaction is botulinum antigen of the pathogen Clostridium botulinum type A, obtained by the method of "Full antigen Buavena".
KEYWORDS: botulism, diagnosis, antigen, precipitinogen, precipitin.
References
1. Bocharova, N.G. Novaya test sistema obnaruzheniya spetsificheskikh antitel [New test system for the detection of specific antibodies] / N.G.Bocharova // Sbornik nauchnykh trudov. - 1979. - Vyp. 4. - P. 157-161. [Collection of scientific articles. - 1979. - Issue 4. - P. 157-161.
2. Nikitin, V.M. Spravochnik serologicheskikh reaktsiy [Reference book on serological reactions] / V.M.Nikitin. -Kishinev: Shtiintsa, 1977. - 205 p.
3. Matveev, K.I. Botulizm [Botulism] / K.I.Matveev. - M.: Medgiz, 1959. - 408 p.
4. Labinskaya, A.S. Mikrobiologiya s tekhnikoy mikrobiologicheskikh issledovaniy [Microbiology with the technique of microbiological research] / A.S.Labinskaya. - M.: Meditsina, 1978. - 391 p.
5. Pyatkin, K.D. Mikrobiologiya [Microbiology] / K.D.Pyatkin, Yu.S. Krivoshein. - M.: Meditsina, 1981. - 511 p.
6. Kazdobina, I.S. Spetsificheskaya indikatsiya biologicheskikh sredstv i laboratornaya diagnostika infektsionnogo zabolevaniya [Specific indication of biological agents and laboratory diagnosis of an infectious disease] / I.S.Kazdobina // Sbornik trudov NIC Epidemiologii I Mikrobiologii. Vyp. 32 [Proceedings from N.F.Gamaleya Federal Research Center for Epidemiology and Microbiology. Issue 32]. - M., 1985. - P. 5-13.
7. Nikiforov, V.N. Botulizm [Botulism] / V.N.Nikiforov, V.V.Nikiforov. - M.: Meditsina, 1985. - 198 p.
8. Dezfulian, M. Kinetics of growth and toxigenicity of Clostridium botulinum in experimental wound botulism / M. Dezfulian, H.G. Bartlett // Infec. and Im-mun. - 1985. - Vol. 49, № 2. - P. 452-454.
9. Bulatova, TI. K voprosu o primenenii RNGA dlya obnaruzheniya botulinicheskikh toksinov [On the use of RNGA for the detection of botulinum toxins] / TI.Bulatova, K.I.Matveyev // Sbornik trudov NIC Epidemiologii I Mikrobiologii. Vyp 10 [Proceedings from N.F.Gamaleya Federal Research Center for Epidemiology and Microbiology. Issue 10]. - M., 1966. - P. 167.
10. Metodicheskoye ukazaniye po indikatsii botulinicheskikh toksinov v obyektakh veterinarnogo nadzora reaktsiyey nepryamoy gemagglyutinatsii [Guidelines for indication of botulinum toxins using Indirect Hemagglutination test (IHA) in objects of veterinary supervision] / A.KH.Shamsutdinova, K.KH.Papunidi, D.A.Kirilyuk [et al.]; GUV pri GK SM SSSR. - M., 1989. - 73 p.
11. Busygin, K.F. Lyuminestsentnaya diagnostika infektsionnykh bolezney zhivotnykh [Luminescent diagnosis of infectious animal diseases] / K.F.Busygin. - M.: Kolos, 1975. - 160 p.
12. Bulatova, T.I. Primeneniye lyuminestsiruyushchikh antitel dlya vyyavleniya vozbuditeley botulizma. [The use of luminescent antibodies to identify pathogens of botulism.] / T.I.Bulatova, E.A.Kabanova, A.Ya.Kulberg // Lyuminestsiruyushchiye antitela v mikrobiologii [Luminescent antibodies in microbiology]. - M., 1962. - P. 98-116.
13. Mustafina, E.N. Sravnitelnaya otsenka polucheniya nativnogo neyrotoksicheskogo kompleksa Klostridium botulinum tip A metodom kontsentratsii i vysalivaniya sulfatom ammoniya [Comparative evaluation of obtaining the native neurotoxic complex Clostridium botulinum type A by the method of concentration and salting out with ammonium sulfate] / E.N.Mustafina, T.R.Mustafin, N.S.Sadykov // Veterinarny vrach. -2018. - № 4. - P. 39-42.
УДК 619:616.9:636.4 DOI: 10.33632/1998-698X.2019-1-28-33
биологические свойства staphylococcus aureus,
выделенного от больной артритом птицы
А.А.Балбуцкая - кандидат биологических наук, вед.н.с.; В.Н.Скворцов - доктор ветеринарных наук, директор.
Белгородский филиал ФГБНУ ФНЦ «Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии им. К.И.Скрябина и Я.Р.Коваленко»РАН, г. Белгород (308002, г.Белгород, ул. Курская, 4, тел.+7(4722) 26-29-75, е-mail:[email protected]).
В работе описаны фенотипические свойства изолята Staphylococcus aureus, выделенного из синовиальной жидкости курицы больной артритом. S.aureus, который обладал типичными культуральными и морфологическими свойствами для рода Staphylococcus, был способен коагулировать цитратную плазму крови кролика, продуциро-
28
НАУЧНО-ПРОИЗВОДСТВЕННЫЙ ЖУРНАЛ
№ 1/2019
вал fi-гемолизин. На солевом агаре с маннитом наблюдали рост колоний с желтой пигментацией. Видовую идентификацию стафилококка проводили с помощью биохимической тест-системы «STAPHYtest24» (PLIVA - Lachema Diagnostikas.r.o). В 24 тестах изолят проявил свойства характерные для вида aureus. Проведены исследования по изучению чувствительности S.aureus к различным антибактериальным средствам диско-диффузионным методом. Метициллин устойчивый S.aureus (MRSA) был чувствителен к карбапенемам, аминогликозидам, фтор-хинолонам, тетрациклинам, ланкозамидам, фузидину, ванкомицину, линезолиду и рифампицину. Изолят был устойчив к пенициллинам, цефалоспоринам, фуразолидону, макролидам, левомицитину и хлорамфениколу. Для изучения патогенных свойств S.aureus была воспроизведена экспериментальная стафилококковая инфекция. В качестве моделей использовали беспородных белых мышей и цыплят. Изучаемый стафилококк обладал выраженными патогенными свойствами. Подкожное введение S.aureus мышам в дозе 1,5x10s КОЕ/0,5 мл вызывало у них формирование абсцессов. Внутрибрюшинное введение возбудителя в дозе 1x10 КОЕ/0,5 мл вызывало поражение суставов у цыплят.
КЛЮчЕВЫЕ СЛОВА: Staphylococcus aureus, синовиальная жидкость, артрит, птица, фенотипиче-ские свойства, антибиотикорезистентность, экспериментальная модель, стафилококковая инфекция.
Бактериальные инфекции до настоящего времени являются важнейшей причиной экономических потерь в птицеводстве. Неуклонно растет этиологическая роль стафилококков в патологии животных. У кур представители рода Staphylococcus являются возбудителями зооантропонозного септического заболевания, сопровождающегося массовой гибелью птицы, - стафилококкоза [3]. Инфекция, этиологическим агентом которой служит в основном Staphylococcus aureus, характерна для домашних птиц и наиболее часто локализуется в костях, влагалищах сухожилий и суставах конечностей. Реже встречается стафилококковая инфекция другой локализации, включая кожу, веки, желточный мешок, сердце, печень, суставы грудной клетки и позвоночника, патологии дыхательной системы. Стафилококковая септицемия, обычно наблюдается в жаркое время года у яйценоских кроссов птиц, часто завершается летальным исходом болезни и сходна с холерой домашней птицы [4, 6]. Кроме S.aureus, и другие виды стафилококка способны вызывать заболевания, например, S.epidermidis, S.gallinarum, S.hyicus [1, 2]. Доказана возможность передачи штаммов некоторых видов стафилококка от сельскохозяйственных и домашних животных человеку, а также случаи заражения животных от человека. Некоторые виды стафилококка обладают множеством факторов патогенности, резистентны к различным группам антибактериальных средств. [2, 7]. Кроме того, примерно 50% штаммов S.aureus, изолируемых от домашней птицы, продуцируют энтероток-сины и способны вызвать пищевые отравления у людей, которые связаны с потреблением мяса птиц [1].
Цель исследования - изучить биологические свойства изолята S.aureus, выделенного от больной артритом птицы.
Материалы и методы. От курицы больной артритом была отобрана синовиальная жидкость из полости пораженного сустава. Посев исследуемого материала производили на селективные питательные среды: солевой агар с маннитом, стрептококковый агар, агар
Эндо («Hi Media», Индия) и инкубировали в течение суток при температуре +370С.
Микроорганизм, выросший на солевом агаре, идентифицировали до уровня рода Staphylococcus путем оценки морфологии колоний, результатов окраски по Граму и микроскопии мазка, а также ка-талазной реакции.
Дальнейшая идентификация до уровня вида была выполнена с помощью биохимической тест-системы «STAPHYtest 24» («PLIVA - Lachema Diagnostikas.r.o», Чехия) и теста на продукцию плазмокоагулазы с использованием лиофилизированной цитратной плазмы крови кролика (НПО «Микроген»). Интерпретацию результатов «STAPHYtest 24» проводили при помощи цветной шкалы, входящей в набор, и компьютерной программы «Микроб-2». Окончательную идентификацию устанавливали, как на основании результатов биохимической активности микроорганизма, так и дополнительной тестов. Учитывали характер колоний, наличие пигмента, гемолиза, результаты микроскопии, тестов для выявления продукции ацетоина (ВП тест), активности фермента пирролидониларилами-дазы (ПИР тест) и оксидазной активности (ОКСИ тест).
Определение чувствительности исследуемого микроорганизма к антибактериальным средствам проводили на среде Мюллера-Хинтондиско диффузионным методом (ДДМ) в соответствии с методическими указаниями по определению чувствительности микроорганизмов к антимикробным препаратам [5].
Патогенные свойства стафилококка определяли путем постановки биологической пробы на белых мышах и цыплятах. В качестве модели для воспроизведения экспериментальной инфекции использовали белых беспородных мышей массой 18-20 г, которым суточную культуру микроорганизма вводили подкожно в область спины. Цыплятам трёхнедельного возраста суточную культуру стафилококка вводили внутрибрю-шинно. Всех животных содержали в одинаковых условиях, наблюдение за ними вели в течение 20 суток.
Результаты исследований. В результате культивирования посевов синовиальной жидкости на селективных питательных средах, был обнаружен рост золотисто-желтых колоний на солевом агаре с маннитом. Исследования показали, что выделенный микроорганизм хорошо рос на обычных питательных средах (мясо-пептонный агар (МПА), мясо-пептонный бульон (МПБ), кровяной агар). На МПА и кровяном агаре микроорганизм формировал плотные, выпуклые, гладкие, блестящие, круглые колонии золотистого цвета диаметром 2-4 мм с ровными краями.На агаре с кровью колонии образовывали значительную зону в-гемолиза. В бульоне рост культуры характеризовался равномерным помутнением среды и образованием осадка на дне.
В мазках, окрашенных по Граму, были обнаружены неподвижные грамположительные клетки шаровидной формы, располагавшиеся беспорядочными скоплениями, попарно или тетрадами. При постановке каталаз-ной реакции наблюдали положительный результат.
Таким образом, на основании определения морфологических и культуральных свойств, изолированный микроорганизм был отнесен к роду Staphylococcus.
Результаты биохимических тестов показали способность изучаемого микроорганизма ферментировать N-ацетил-глюкозамин, сахарозу, мальтозу, тре-галозу, рибозу, маннит, лактозу, маннозу, галактозу, фруктозу; неспособность ферментировать целлобио-зу, ксилитол, ксилозу, арабиозу, сорбитол, раффинозу. Изолят образовывал уреазу, фосфотазу, аргинин, в-глюкозидазу, р-галактзидазу, не продуцировал в-глюкоронидазу, не декарбоксилировал орнитин, не вызывал гидролиз эскулина. Исследуемый изолят был способен коагулировать плазму крови кролика, обнаружены положительные реакции в тестах для выявления продукции ацетоина и активности фермента пирролидонилариламидазы, отрицательную реакцию наблюдали при выявлении оксидазной активности.
Учитывая результаты всех тестов, с помощью программы «Микроб-2» было установлено, что данный микроорганизм относится к виду Staphylococcus aureus.
Исследования по определению чувствительности выделенной культуры S.aureusк антибиотикам различных групп показали его чувствительность к следующим группам препаратов: карбопенемы, аминогликозиды, тетрациклины, гликопептиды, ок-сазолидиноны (табл.).
Таблица
чувствительность S.aureus к антибактериальным средствам
Препарат Интерпретация размеров зон задержки роста Результаты
устойчивый, (У) промежуточный, (П) чувствительный, (Ч) зона задержки роста результат
1 2 3 4 5 6
Пенициллины
Ампициллин 28 - 29 32 Ч
Бензилпенициллин 28 - 29 35 Ч
Оксациллин 10 11-12 13 - У
Амоксициллин 19 - 20 38 Ч
Амоксициллин/клавуланат 19 - 20 34 Ч
Ампициллин/сульбактам 11 12-14 15 39 Ч
Карбапенемы
Имипенем 13 14-15 16 40 Ч
Меропенем 13 14-15 16 38 Ч
Цефалоспорины
Цефазолин 14 15-17 18 39 Ч
Цефтазидим 14 15-17 18 - У
Цефтриаксон 13 14-20 21 28 Ч
Цефокситин 14 15-17 18 32 Ч
Цефотаксим 14 15-22 23 34 Ч
Цефепим 14 15-17 18 36 Ч
НАУЧНО-ПРОИЗВОДСТВЕННЫЙ ЖУРНАЛ
№ 1/2019
30
Продолжение таблицы
1 2 3 4 5 6
Аминогликозиды
Стрептомицин 11 12-14 15 26 Ч
Гентамицин 12 13-14 15 21 Ч
Тобрамицин 12 13-14 15 23 Ч
Неомицин 12 13-16 17 21 Ч
Канамицин 13 14-17 18 29 Ч
Нитрофураны
Фуразолидон 14 15-17 18 - У
Фузидин 15 16-21 22 32 Ч
Тетрациклины
Тетрациклин 14 15-18 19 23 Ч
Доксициклин 12 13-15 16 21 Ч
Фторхинолоны
Ломефлоксацин 18 19-21 22 15 У
Норфлоксацин 12 13-16 17 34 Ч
Офлоксацин 14 15-17 18 25 Ч
Пефлоксацин 12 13-16 17 26 Ч
Ципрофлоксацин 15 16-20 21 38 Ч
Энрофлоксацин 17 18-21 22 40 Ч
Левофлоксацин 15 16-18 19 35 Ч
Спарфлоксацин 15 16-18 19 24 Ч
Гемифлоксацин 20 21-23 24 34 Ч
Моксифлоксацин 20 21-23 24 29 Ч
Линкозамиды
Линкомицин 17 18-20 21 21 Ч
Клиндамицин 14 15-20 21 22 Ч
Макролиды
Тилозин 13 14-20 21 10 У
Олеандомицин 12 13-17 18 12 У
Другие
Нитроксолин 12 3-29 30 10 У
Рифампицин 16 17-19 20 34 Ч
Левомицитин 12 13-17 18 10 У
Хлорамфеникол 12 13-17 18 - У
Триметоприм/ сульфаметоксазол 10 11-15 16 13 П
Линезолид - - 21 38 Ч
Ванкомицин - - 15 22 Ч
Анализ чувствительности изолята к р-лактамным был чувствителен ко всем препаратам этой группы, антибиотикам показал, что данный микроорганизм за исключением оксациллина и цефтазидима. Устой-
чивость к оксациллину свидетельствует о неэффективности р-лактамных препаратов в отношении изучаемого стафилококка, включая цефалоспорины и ингибиторозащищенные пенициллины.
Среди нитрофуранов активным в отношении изучаемого Б.аигеиБ оказался фузидин. Стафилококк был чувствителен к препаратам группы фторхинолонов за исключением ломефлоксацина. Линкозамиды были активны в отношении выделенного микроорганизма.
Б.аигвив проявил устойчивость к макролидам, нитроксолину, хлорамфениколу, левомицетину и чувствительность к рифампицину. К триметоприм/ сульфаметоксазолу значение устойчивости было промежуточным.
Биопроба на белых мышах. Для биопробы использовали 30 белых беспородных мышей с целью воспроизведения экспериментальной стафилококковой инфекции. Животные были разделены на 3 группы,в каждой группе находилось по 10 особей.
Суточную культуру Б.Аигвив вводили мышам 1 группы подкожно в концентрации 1,5х108 КОЕ/0,5 мл (1 по МсРаг!апф. Во 2 группе мышам подкожно вводили 0,5 мл 0,9% раствора ЫаС1. В 3 группу были включены интактные животные.
Первые признаки заболевания проявились на третьи сутки после заражения. У одной мыши в первой группе отмечали ограниченное поражение кожного покрова в месте введения суспензии стафилококка. На пятые сутки на этом месте образовался абсцесс (рис.). Все опытные животные в 1 группе были малоподвижными, шерсть серая взъерошенная. За период наблюдения еще у двух мышей образовались абсцессы. При посеве содержимого абсцессов на питательные среды была изолирована монокультура Б.аигвив. У животных интактной и контрольной групп на протяжении 20 дней наблюдения проявление клинических признаков инфекции не установлено.
Рис. Образование абсцесса у лабораторной белой мыши.
На третьи сутки после заражения провели вскрытие больных животных. В посевах из органов и биологических жидкостей (кровь из сердца, желчный пузырь, печень, селезенка) была изолирована монокультура золотистого стафилококка.
Биопроба на цыплятах. 40 цыплят, находящихся в опыте, разделили на 4 группы по 10 цыплят в каждой. Суточную культуру Б.аигвив вводили внутрибрюшинно цыплятам первой группы в дозе 2х109 К0Е/0,5 мл; животным второй группы в дозе 1х109 К0Е/0,5 мл; в третьей группе - 1,5х108 К0Е/0,5мл на голову. В четвертой группе цыплятам вводили 0,9% раствора ЫаС! в объеме 0,5 мл. За весь период исследования клинические признаки инфекции проявились поражением суставов у 4 цыплят второй группы и у 3 цыплят первой группы. Симптомы заболевания в третьей и четвертой группах на протяжении опытного периода не выявлены.
Заключение. Микроорганизм, выделенный от больной артритом курицы, по морфологическим и культуральным свойствам соответствовал роду Staphylococcus. Результаты определения биохимической и ферментативной активности позволили отнести стафилококк к виду S.aureus.
Изолированный метициллин устойчивый S.aureus был чувствителен к карбапенемам, аминогликозидам, фторхинолонам, тетрациклинам, ланкозамидам, фу-зидину, ванкомицину, линезолиду и рифампицину. И, напротив, был устойчив к пенициллинам, цефалоспо-ринам, фуразолидону, макролидам, левомицитину и хлорамфениколу.
При воспроизведении экспериментальной стафилококковой инфекции исследуемый микроорганизм обладал патогенными свойствами для беспородных белых мышей и цыплят.
Литература
1. Бакулин, В.А. Болезни птиц / В.А.Бакулин. - СПб., 2006. - 688 с.
2. Видовое разнообразие представителей рода Staphylococcus, выделенных от домашних и сельскохозяйственных животных с различными гнойно-воспалительными заболеваниями/ А.А.Балбуцкая, О.А.Дмитриенко, А.В.Войтенко, В.Н.Скворцов // Международный вестник ветеринарии. - 2015. - № 3. - С. 56-62.
32
НАУЧНО-ПРОИЗВОДСТВЕННЫЙ ЖУРНАЛ
№ 1/2019
3. Кисленко, В.Н. Ветеринарная микробиология и иммунология / В.Н.Кисленко, Н.М.Колычев, Р.Г.Госманов. - М.: Изд-во ГЭОТАР-Медиа, 2012. - 752 с.
4. Болезни домашних и сельскохозяйственных птиц: пер. с англ. Часть 3 / Б.У.Кэлнек, Г.Д.Барнес, К.В.Бэрд [и др.]. - М.: Изд-во Аквариум, 1997. - 1232 с.
5. Федеральный центр Госсанэпиднадзора Минздрава России. 2004. Определение чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам. Методические указания. - М., 2004. - 91 с.
6. Saif, YM. Diseases of poultry / YM. Saif. -12th edition. - Iowa: Blackwell Publishing, 2008. - 1506 р.
7. Dmitrenko, O.A. 2016. Ecological features, pathogenic properties, and role of Staphylococcus intermedius group representatives in animal and human infectious pathology / O.A.Dmitrenko, A.A.Balbutskaya, V.N.Skvortsov // Molecular Genetics, Microbiology and Virology. - 2016. - Vol. 31, № 3. - Р. 117-124.
biological properties of staphylococcus aureus isolated from poultry with arthritis
Balbutskaya A.A. - Candidate of Biological Sciences; Skvortsov V.N. - Doctor of Veterinary Sciences.
Belgorod Department of Federal Research Center«All-Russian Scientific Research Institute of Experimental Veterinary Medicine named after K.I.Skryabina and Ya.R.Kovalenko» Russian Academy
of Sciences, Belgorod (e-mail: [email protected]).
The paper describes the phenotypic properties of Staphylococcus aureus strain isolated from the synovial fluid of a chicken with arthritis. S.aureus had typical cultural and morphological properties for Staphylococcus genus, coagulated the citrated rabbit blood plasma and produced p-hemolysin. The growth of colonies with yellow pigmentation was observed on salt mannitol agar. Species identification of Staphylococcuswas performed by the biochemical test system "STAPHYtest 24" (PLIVA - LachemaDiagnostikas.r.o). The isolate showed specific reactions for aureus species in 24 tests. The study was also conducted to identify drug resistance profile of S.aureus to different antimicrobials by disc and diffusion method. The methicillin-resistant S.aureus (MRSA) was sensitive to carbapenems, aminoglycosides, fluoroquinolones, tetracyclines, lancosamides, fusidin, vancomycin, linezolid and rifampicin. The strain was resistant to penicillins, cephalosporins, furazolidone, macrolides, levomycitin and chloramphenicol, metronidazole. An experimental staphylococcal infection was reproduced to investigate the pathogenic properties of S. aureus. White mice and chickens were used as the models of experimental S. aureus infection. The investigated strain showed pronounced pathogenic properties. Subcutaneous injection of S. aureus at the dose 1.5x10s CFU/0.5 ml caused abscess formation in mice. Intraperitoneal injection of the causative agent at the dose U109 CFU/0.5 ml caused joints affection in chickens.
KEYWORDS: Staphylococcus aureus, synovial fluid, arthritis, poultry, phenotypic properties, antibiotic resistance, experimental model, staphylococcal infection.
References
1. Bakulin, V.A. Bolezni ptits [Diseases of poultry] / V.A.Bakulin. - SPb, 2006. - 688 p.
2. Vidovoe raznoobrazie predstaviteley roda Staphylococcus, vydelennykh ot domashnikh I selskokhozyaystvennykh zhivotnykh s razlichnymi gnoyno-vospalitelnymi zabolevaniyami [Species diversity of members of the genus staphylococcus isolated from domestic and farm animals with different purulent and inflammatory diseases] / A.A.Balbutskaya, O.A.Dmitrenko, A.V.Voytenko, V.N.Skvortsov // Mezhdunarodny vestnik veterinarii. - 2015. - Vol.3. - C. 56-62.
3. Kislenko, V.N.Veterinarnaya mikrobiologia I immunologiya [Veterinary microbiology and immunology] / V.N.Kislenko, N.M.Kolychev, R.G.Gosmanov. - M.: GEOTAR-Media, 2012. - 752 p.
4. Bolezni domashnikh I selskohozyaystvennykh ptic: perevod s angl. Part 3 [Diseases of domestic and farm poultry] / B.W.Calnek, H.D. Barnes,C.W.Beard [et al.]. - M.: Akvarium, 1997. - 1232 p.
5. Federalny centr gossanepidnadzora Minzdrava Rossii. 2004. Opredelenie chuvstvitelnosti mikroorganizmov k antibakterialnym preparatam. Metodicheskie ukazaniya [Federal Center for Sanitary and Epidemiological Control of Russian Ministry of Health. 2004. Determination of a sensitivity of microorganisms to antibacterial drugs. Guidelines]. -M., 2004. - 91 p.
6. Saif, YM. Diseases of poultry / YM.Saif. - 12th edition. - Iowa: Blackwell Publishing, 2008. - 1506 p.
7. Dmitrenko, O.A. Ecological features, pathogenic properties, and role of Staphylococcus intermedius group representatives in animal and human infectious pathology / O.A.Dmitrenko, A.A.Balbutskaya, V.N. Skvortsov // Molecular Genetics, Microbiology and Virology. - 2016. - Vol.31, № 3. - P. 117-124.
