CC BY
111УДК 664.856
DOI 10.29141/2500-1922-2021-6-1-3
Антиоксидантный потенциал плодов облепихи крушиновидной и продуктов ее переработки
Е.Д. Рожнов1*
'Бийский технологический институт (филиал) Алтайского государственного технического университета им. И.И. Ползунова, г. Бийск, Российская Федерация, *e-mail: [email protected]
Реферат
Употребление в пищу продуктов питания, содержащих природные антиоксиданты, в первую очередь флавоноиды, входящие в состав фруктов и овощей, служит для профилактики ишемической болезни сердца, связанной с протеканием перекисного окисления липопротеинов низкой плотности активными формами кислорода. Плоды облепихи обладают значительным антиоксидантным потенциалом, обусловленным содержанием аскорбиновой кислоты и полифенольных веществ; благодаря этому они достаточно широко используются в производстве пищевых продуктов (например, напитков). Сдерживающим фактором использования облепихи как сырья для производства массовых сегментов продуктов питания являются кислый, зачастую вяжущий, вкус и невысокая сладость ее плодов, что диктует необходимость разработки нового подхода как к обоснованию рецептур, так и технологий. Результаты проведенных исследований подтверждают, что плоды облепихи сортов Чуйская, Алтайская и Эссель обладают высокой антиоксидантной активностью. Снижение антиоксидантной активности напитков, получаемых посредством добавления сока изучаемых сортов облепихи, происходит пропорционально снижению доли сока в рецептуре напитка. Установлено, что относительно начальной антиоксидантной активности нативного сока облепихи антиоксидантная активность продуктов сохраняется на 27-56 %. Показано, что при производстве ферментированного напитка «Тиби с облепихой» происходит незначительное увеличение содержания аскорбиновой кислоты в готовом продукте за счет биосинтеза микроорганизмами, входящими в состав симбиотической культуры. По мнению автора, предпочтительнее в процессе производства напитков осуществлять подбор низкокислотных сортов облепихи, поскольку это гарантирует более высокое значение антиоксидантной активности готовых продуктов.
Для цитирования: Рожнов Е.Д. Антиоксидантный потенциал плодов облепихи крушиновидной и продуктов ее переработки// Индустрия питания|Food Industry. 2021. Т. 6, № 1. С. 23-30. DOI: 10.29141/2500-1922-2021-6-1-3
Дата поступления статьи: 11 января 2021 г.
Antioxidant Potential of Sea Buckthorn Fruits
and Products of Its Processing
Evgeny D. Rozhnov1*
1Biysk Technological Institute (branch) of the Altay State Technical University n.a. Ivan I. Polzunov, Biysk, Russian Federation,
Abstract
Eating foods that contain natural antioxidants, primarily Flavonoids, which are part of fruits and vegetables, serves to prevent coronary heart disease associated with the peroxidation course of low-density lipoproteins by active oxygen forms. Sea buckthorn fruits have a significant antioxidant potential due to the content of ascorbic acid and polyphe-
Ключевые слова:
облепиха;
сок;
смузи;
ферментированные
безалкогольные
напитки;
антиоксидатная активность
*e-mail: [email protected]
Keywords:
sea buckthorn;
juice;
smoothies;
fermented non-alcoholic nolic substances; due to this, they are widely used in the food production (For example, in beverages; beverages). The limiting Factor in the use of sea buckthorn as a raw material For the mass
antioxidant activity segments production of food products is the sour, often astringent taste and low sweet-
ness of its fruits, which dictates the need to develop a new approach to both the recipes and technologies justification. The results of the conducted studies confirm that the fruits of sea buckthorn varieties Chuyskaya, Altayskaya and Essel have high antioxidant activity. The decrease in the antioxidant activity of beverages obtained by adding the juice of the studied sea buckthorn varieties occurs in proportion to the decrease in the juice proportion in the drink recipe. The author revealed that the antioxidant activity of the products was preserved by 27-56 % relative to the initial antioxidant activity of the native sea buckthorn juice. The research shows that in the production of the fermented drink "Tibi with Sea Buckthorn " there is a slight increase in the ascorbic acid content in the finished product due to the biosynthesis by microorganisms that are part of the symbiotic culture. According to the author , it is preferable to select low-acid varieties of sea buckthorn in the beverage production process , since it guarantees a higher value of the antioxidant activity of the finished products.
For citation: Evgeny D. Rozhnov. Antioxidant Potential of Sea Buckthorn Fruits and Products of Its Processing. Индустрия питания|Food Industry. 2021. Vol. 6, No. 1. Pp. 23-30. DOI: 10.29141/2500-1922-2021-6-1-3
Paper submitted: January 11, 2021
Введение
В последние десятилетия в связи с усиливающимся стремлением людей к здоровому образу жизни вообще и здоровому питанию в частности наблюдается повышение научного и практического интереса к поиску природных антиокси-дантов и богатых ими продуктов питания [1]. В этом плане плоды облепихи крушиновидной (Hippophae гhamnoides L.) можно рассматривать как «суперфрукт», содержащий перечень биологически активных веществ, в том числе антиокси-данты: аскорбиновая кислота (500-14 000 мг/кг); токоферолы (до 1 600 мг/кг); каротиноиды (150430 мг/кг);полифенольные вещества [2; 3;4], представленные различными классами, основные из которых - флавоны (1 500-2 000 мг/кг), катехины (700-1 300 мг/кг), проантоцианидины (1 100-2 900 мг/кг), фенолокислоты (в основном хлорогеновая) (300-730 мг/кг) [5; 6; 7]. Общеизвестным является преимущественный состав флавонолов, в числе которых изорамнетин, кверцетин, кемпферол и рутин [2; 5].
Полифенольные вещества обладают широким спектром биохимической активности, проявляя в первую очередь антиоксидантные, антимутагенные, антиканцерогенные свойства, а также способность изменять экспрессию генов [3; 7; 8].
Употребление в пищу продуктов, содержащих природные антиоксиданты (в первую очередь, флавоноиды, входящие в состав фруктов и овощей), служит для профилактики ишемической болезни сердца, связанной с протеканием пере-кисного окисления липопротеинов низкой плотности активными формами кислорода [1; 9-11].
Имеются результаты проводенных in vitro обширных исследований, доказывающих ингиби-рующее действие полифенольных веществ на процесс перекисного окисления липопротеинов низкой плотности [12; 13; 14].
Доказано, что вещества фенольной природы могут являться как антиоксидантами, поглощающими свободные радикалы (в том числе супероксид-анионы [15]), так и выступать в качестве комплексообразователей (хелатов) для проок-сидантных и переходных металлов, служить восстановителями и препятствовать образованию синглетного (атомарного) кислорода, а также катализировать перенос электронов [16; 17; 18].
Удаление радикалов полифенолами происходит за счет отдачи атома водорода от свободных гидроксилов основного скелета флавонои-дов, и в то же время хелатирование металлов осуществляется фенольными гидроксогруппа-ми [18].
Авторы ряда публикаций указывают, что плоды облепихи крушиновидной обладают самой высокой антиоксидантной активностью среди другого растительного сырья [19; 20].
В настоящее время промышленная переработка облепихи связана с производством, в основном, облепихового масла и масляных экстрактов [21], а в меньшей степени - различных продуктов питания в виде концентратов напитков (киселей), неосветленного сока прямого отжима, джемов и др., а также полуфабрикатов для их производства - густых и сухих экстрактов [7; 19; 22; 23], косметических средств [24; 25].
Сдерживающими факторами использования облепихи как сырья для производства массовых сегментов продуктов питания, по мнению ряда авторов (например, [26]), являются кислый, зачастую вяжущий, вкус и низкая сладость ее плодов, что, в свою очередь, обусловливает необходимость формирования нового подхода как к обоснованию рецептур, так и технологий.
Таким образом, исследование антиоксидант-ной активности плодов облепихи крушиновид-ной и продуктов ее переработки весьма своевременно, актуально и практически значимо в свете разработки новых технологий переработки данной культуры.
Цель работы - изучение антиоксидантной активности районированных в Алтайском крае сортов облепихи крушиновидной и продуктов ее переработки - соков, смузи и ферментированных напитков.
Материалы и методы исследования
Объектами исследования являлись:
1) плоды облепихи крушиновидной низкокислотных сортов Алтайская, Чуйская и Эссель (урожай 2019 г.), собранных в стадии технической зрелости;
2) образцы облепихового сока, полученные по технологии прямого отжима с применением пек-толитического препарата (Lalzyme HC, Lallemand Inc., Канада) для повышения сокоотдачи и облегчения последующего осветления бентонитом (GranuBent PORE-TEC, Erbslöh Geisenheim AG, Германия). В образцах проведена корректировка содержания титруемых кислот до значения 5,0 ± ± 0,2 г/дм3 (в пересчете на яблочную кислоту), внесен инвертный сахарный сироп до концентрации углеводов 100,0 ± 5,0 г/дм3, что позволяет получить приемлемые для потребителя вкусовые характеристики с сохранением выраженного сортового аромата и характерного вкуса свежих ягод без преобладания излишней кислотности и терпкости;
3) образцы тыквенно-облепихового смузи, полученные путем использования плодов указанных сортов облепихи, а также тыквы сорта Гри-
бовская1 Смузи состоит из ферментированного пюре тыквы (50 %), облепихового сока прямого отжима (до получения титруемой кислотности напитка 4,0 г/дм3), сахарного сиропа (5 %) и воды (до 100 %);
4) образцы ферментированных напитков, полученные с использованием симбиотических культур Oгyzamyces indichi (напиток «Тиби с облепихой») и Medusomyces gisevii (напиток «Комбуча с облепихой») согласно рецептурам (табл. 1) и определенным условиям [27].
Количественное определение редуцирующих сахаров проводили химическим методом с использованием перманганата калия по ГОСТ 13192-73. Содержание титруемых кислот определяли потенциометрическим титрованием в пересчете на преобладающую яблочную кислоту по ГОСТ 25555.0-82. Количественное определение аскорбиновой кислоты проводили с использованием 2,6-дихлорфенолиндофенолята натрия ^ире1со, CAS# 620-45-1) по методике, изложенной в [28]. Массовую концентрацию общих фенольных веществ рассчитывали колориметрическим методом с использованием реактива Фолина-Чокальтеу [29] с предварительным разбавлением образцов в 100 раз. Показатели про-цианидинов определяли колориметрическим методом Бейта-Смита [30].
Антиоксидантную активность объектов исследования определяли на анализаторе антиок-сидантной активности «Цвет Яуза-01-АА» (НПО «Химавтоматика», Россия) по ГОСТ Р 54037-2010.
Результаты исследования и их обсуждение
На первом этапе исследований был определен химический состав плодов облепихи (табл. 2).
Наименьшую титруемую кислотность имеют плоды облепихи сортов Чуйская и Эссель, что
1 Патент РФ 2734509 C1. МПК: A23L 2/02. Состав для производства смузи тыквенно-облепихового / Е.Д. Рожнов, М.Н. Школьникова, А.О. Казарских; заявитель и патентообладатель: ФГБОУ ВО «Алтайский государственный технический университет им. И.И. Ползунова» (ФГБОУ ВО «АлтГТУ»). Заявка № 2019138488; заявлено: 27.11.2019; опубликовано: 19.10.20; Бюл. № 29.
Таблица 1. Состав образцов ферментированных напитков Table 1. Composition of Fermented Beverages Samples
Сырье «Тиби с облепихой» «Комбуча с облепихой»
Облепиховый сок прямого отжима ,% мас 25,0 25,0
Сахароза ,% мас 10,0 10,0
Настой зеленого чая* - 2,25
Питьевая вода До 100,0 До 100,0
Примечание. *Количество полифенолов в настое - 0,215 ± 0,007 %.
Таблица 2. Химический состав исследуемых плодов облепихи (n = 3, М ± m) Table 2. Chemical Composition of the Studied Sea Buckthorn Fruits (n = 3, M ± m)
Показатель Чуйская Алтайская Эссель
Массовая доля титруемых кислот, % (в пересчете на яблочную) 1,05 ± 0,04 1,32 ± 0,03 1,12 ± 0,04
Массовая доля общих сахаров, % 8,32 ± 0,04 8,24 ± 0,03 9,42 ± 0,04
Массовая доля полифенольных соединений, мг/100 г 178,7 ± 1,9 187,3 ± 0,8 167,9 ± 3,4
Содержание аскорбиновой кислоты, мг/100 г 83,4 ± 0,6 72,7 ± 0,6 67,3 ± 0,4
делает их предпочтительными для промышленной переработки облепихи в безалкогольные напитки различных групп. Это же доказывает расчет сахарокислотного индекса, поскольку чем выше данный показатель, тем более гармоничным вкусом обладает исследуемое сырье или продукт.
Обработку мезги облепихи ферментным препаратом Lallzyme НС проводили в течение 3 ч при температуре 20 °С и дозировке препарата 0,05 % к массе обрабатываемого сырья.
По окончании обработки сок отделяли от мезги в корзиночном прессе, осветляли 5 %-й водной суспензией бентонита из расчета внесения в сок 4,5-5,5 г/дм3 в пересчете на сухой бентонит. Осветленный бентонитом сок отфильтровывали с помощью фильтр-картона и использовали для дальнейших исследований.
В таблице 3 представлены результаты определения антиоксидантной активности в исследуемых образцах плодов облепихи и продуктов ее переработки. Как видим, антиоксидантная активность нативного сока из плодов облепихи относительно высока и снижается пропорционально количеству сока, используемого для приготовления единицы объема продукции. Следовательно, при организации переработки облепихи особое внимание необходимо уделять такому параметру сырья, как титруемая кислотность, поскольку чем ниже начальное значение кислотности, тем большее количество сока используется в соответствующих рецептурах, и, соответственно, можно ожидать
более высокую антиоксидантную активность готовых напитков.
Аналогично снижению антиоксидантной активности происходит снижение содержания по-лифенольных веществ (ФВ) и процианидинов (ПЦА) (рис. 1).
Аскорбиновая кислота является достаточно нестабильным соединением даже в обычных условиях хранения, а при воздействии таких факторов, как нагревание, наличие растворенного кислорода и ионов тяжелых металлов скорость ее деградации значительно увеличивается. Стабильность аскорбиновой кислоты зависит как от состава продукта, так и от условий хранения, т. е. скорость деградации, установленная для одного продукта, не может характеризовать скорость разрушения аскорбиновой кислоты в другой пищевой системе, даже если различия в их составе весьма незначительны. Динамика содержания аскорбиновой кислоты в исследуемых образцах представлена на рис. 2.
Аналогично показателю антиоксидантной активности концентрация аскорбиновой кислоты снижается с разбавлением нативного сока в продуктах переработки. Однако в напитке «Тиби с облепихой» можно заметить небольшое увеличение ее содержания по сравнению с напитком «Комбуча с облепихой», несмотря на одинаковое содержание соков в исходных рецептурах. Этот факт можно связать с особенностями метаболизма симбиотической культуры, поскольку известно [31], что при культивировании Oгyzamyces indichi в субстрате происходит накопление аскор-
Таблица 3. Антиоксидантная активность образцов облепихи (в пересчете на кверцетин) (n = 3, M ± m), мг/г Table 3. Antioxidant Activity of Sea Buckthorn Samples (in Terms of Quercetin) (n = 3, M ± m), mg /g
Образец Чуйская Алтайская Эссель
Сок прямого отжима (нативный) 3,47 ± 0,11 3,76 ± 0,09 3,29 ± 0,14
Сок облепиховый осветленный (скорректированный по составу) 1,51 ± 0,04 1,35 ± 0,04 1,38 ± 0,06
Смузи тыквенно-облепиховый 1,18 ± 0,05 1,02 ± 0,04 1,07 ± 0,07
Напиток «Комбуча с облепихой» 1,67 ± 0,04 1,79 ± 0,06 1,86 ± 0,03
Напиток «Тиби с облепихой» 1,24 ± 0,03 1,09 ± 0,03 1,14 ± 0,05
200,0 180,0 160,0 140,0 120,0 100,0 80,0 60,0 40,0 20,0 0,0
Чуйская Алтайская Эссель Массовая доля ФВ, мг/100 г
Чуйская Алтайская Эссель Массовая доля ПЦА, мг/100 г
Сок прямого отжима (нативный)
Сок облепиховый осветленный
Смузи
тыквенно-облепиховый Напиток
«Комбуча с облепихой» Напиток
«Тиби с облепихой»
Рис. 1. Динамика содержания суммы полифенольных веществ и процианидинов в нативном соке облепихи и продуктах ее переработки Fig. 1. Content Dynamics of the Polyphenolic Substances and Procyanidins Sum in the Native Sea Buckthorn Juice and Its Processed Products
Напиток «Тиби с облепихой» Напиток «Комбуча с облепихой» Смузи тыквенно-облепиховый Сок облепиховый осветленный Сок прямого отжима (нативный)
Эссель
Алтайская
Чуйская
I I I I I I I
0,0 10,0 20,0 30,0 40,0 50,0 60,0 70,0 80,0 90,0
Массовая концентрация аскорбиновой кислоты, мг/100 г
Рис. 2. Динамика содержания аскорбиновой кислоты в нативном соке облепихи и продуктах ее переработки Fig. 2. Dynamics of Ascorbic Acid Content in Native Sea Buckthorn Juice and Products of Its Processing
биновой кислоты в результате реализации метаболических путей микроорганизмов, входящих в культуру рисового гриба.
Выводы
Проведенные исследования показали, что плоды облепихи сортов Чуйская, Алтайская и Эссель обладают высокой антиоксидантной активностью. Снижение антиоксидантной активности напитков, получаемых с использованием сока изучаемых сортов облепихи, происходит пропорционально снижению доли сока в рецептуре напитка. Установлено, что относительно начальной антиоксидантной активности нативного сока облепихи антиоксидантная активность в продуктах сохраняется на 27-56 %. В процессе произ-
водства напитка «Тиби с облепихой» наблюдается незначительное увеличение содержания аскорбиновой кислоты в готовом продукте за счет биосинтеза микроорганизмами, входящими в состав симбиотической культуры.
Плоды облепихи обладают существенным ан-тиоксидантным потенциалом, обусловленным содержанием аскорбиновой кислоты и поли-фенольных веществ; благодаря этому они достаточно широко используются в производстве пищевых продуктов (например, напитков). При этом предпочтительным при организации производства напитков необходимо признать подбор низкокислотных сортов облепихи, поскольку это гарантирует более высокое значение антиокси-дантной активности в готовых продуктах.
Библиографический список
1. Kumar, M.S.Y.; Dutta, R.; Prasad, D.; Misra, K. Subcritical Water Extraction of Antioxidant Compounds from Seabuckthorn (Hippophae Rhamnoides) Leaves for the Comparative Evaluation of Antioxidant Activity. Food Chemistry. 2011. Vol. 127, iss. 3. Pp. 1309-1316. DOI: 10.1016/j.foodchem.2011.01.088.
2. Рожнов Е.Д., Аверьянова Е.В., Школьникова М.Н., Селиванов Н.И. Ферментолиз сырья как фактор интенсификации процесса выделения фенольных веществ облепихового шрота // Вестник Красноярского государственного аграрного университета. 2020. № 9 (162). С. 177-184. DOI: 10.36718/1819-4036-2020-9-177-184.
3. Sytarova, I.; Orsavova, J.; Snopek, L.; Mlcek, J.; Byczynski, t.; Misur-cova, L. Impact of Phenolic Compounds and Vitamins C and E on Antioxidant Activity of Sea Buckthorn (Hippopha§ Rhamnoides L.) Berries and Leaves of Diverse Ripening Times. Food Chemistry. 2019. Vol. 310. Article Number: 125784. DOI: 10.1016/j.food-chem.2019.125784.
4. Chen, C.; Xu, X.-M.; Chen, Y.; Yu, M.-Y.; Wen, F.-Y.; Zhang, H. Identification, Quantification and Antioxidant Activity of Acylated Fla-vonol Glycosides from Sea Buckthorn (Hippophae Rhamnoides Ssp. Sinensis). Food Chemistry. 2013. Vol. 141, iss. 3. Pp. 1573-1579. DOI: 10.1016/j.foodchem.2013.03.092.
5. Rosch, D.; Bergmann, M.; Knorr, D.; Kroh, L.W. Structure-Antiox-idant Efficiency Relationships of Phenolic Compounds and Their Contribution to the Antioxidant Activity of Sea Buckthorn Juice. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 2003. Vol. 51, iss. 15. Pp. 4233-4239. DOI: 10.1021/jf0300339.
6. Beveridge, T.; Li, T.S.C.; Oomah, D.; Smith A. Sea Buckthorn Products: Manufacture and Composition. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 1999. Vol. 47. Pp. 3480-3488. DOI: 10.1021/ jf981331m.
7. Gao, X.; Ohlander, M.; Jeppsson, N.; Bjork, L.; Trajkovski, V. Changes in Antioxidant Effects and Their Relationship to Phytonutrients in Fruits of Sea Buckthorn (Hippophae rhamnoides L.) during Maturation. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 2000. Vol. 48, iss. 5. Pp. 1485-1490. DOI: 10.1021/jf991072g.
8. Ercisli, S.; Orhan, E.; Ozdemir, O.; Sengul, M. The Genotypic Effects on the Chemical Composition and Antioxidant Activity of Sea Buckthorn (Hippophae Rhamnoides L.) Berries Grown in Turkey. Scientia Horticulturae. 2007. Vol. 115, iss. 1. Pp. 27-33. DOI: 10.1016/j.scien-ta.2007.07.004.
9. Hertog, M.G.L.; Feskens, E.J.M.; Hollman, P.C.H.; Katan, M.B.; Kro-mhout, D. Dietary Antioxidant Flavonoids and Risk of Coronary Heart Disease: The Zutphen Elderly Study. Lancet. 1993. Vol. 342, iss. 8878. Pp. 1007-1011. DOI: 10.1016/0140-6736(93)92876-U.
10. Hertog, M.G.L.; Kromhout, D.; Aravanis, C.; Blackburn, H.; Buzina, R.; Fidanza, F., et al. Flavonoid Intake and Long-Term Risk of Coronary Heart Disease and Cancer in the Seven Countries Study. Archives of Internal Medicine. 1995. Vol. 153, iss. 4. Pp. 381-386. DOI: 10.1001/ARCHINTE.1995.00430040053006.
11. Geetha, S.; Sai Ram, M.; Mongia, S.S.; Singh, V.; Ilavazhagan, G.; Sawhney, R.C. Evaluation of Antioxidant Activity of Leaf Extract of Seabuckthorn (Hippophae Rhamnoides L.) on Chromium (VI) induced Oxidative Stress in Albino Rats. Journal of Ethnophar-macology. 2003. Vol. 87, iss. 2-3. Pp. 247-251. DOI: 10.1016/S0378-8741(03)00154-5.
12. Frankel, E.N.; German, J.B.; Kinsella, J.E.; Parks, E.; Kanner, J. Inhibition of Oxidation of Human Low-Density Lipoprotein by Phenolic Substances in Red Wine. Lancet. 1993. Vol. 341, iss. 8843. Pp. 454-457. DOI: 10.1016/0140-6736(93)90206-V.
Bibliography
1. Kumar, M.S.Y.; Dutta, R.; Prasad, D.; Misra, K. Subcritical Water Extraction of Antioxidant Compounds from Seabuckthorn (Hippophae Rhamnoides) Leaves for the Comparative Evaluation of Antioxidant Activity. Food Chemistry. 2011. Vol. 127, iss. 3. Pp. 1309-1316. DOI: 10.1016/j.foodchem.2011.01.088.
2. Rozhnov, E.D.; Aver'yanova, E.V.; Shkolnikova, M.N.; Selivanov, N.I. Fermentoliz Syr'ya kak Faktor Intensifikacii Processa Vydeleniya Fenol'nyh Veshchestv Oblepihovogo Shrota [Fermentolysis of Raw Materials as a Factor of the Process Intensification of Phenolic Substances Isolation of Sea Buckthorn Meal]. Vestnik Krasnoyar-skogo Gosudarstvennogo Agrarnogo Universiteta. 2020. No. 9 (162). Pp.177-184. DOI: 10.36718/1819-4036-2020-9-177-184.
3. Sytarovä, I.; Orsavovä, J.; Snopek, L.; Mlcek, J.; Byczynski, t.; Misur-covä, L. Impact of Phenolic Compounds and Vitamins C and E on Antioxidant Activity of Sea Buckthorn (Hippophae Rhamnoides L.) Berries and Leaves of Diverse Ripening Times. Food Chemistry. 2019. Vol. 310. Article Number: 125784. DOI: 10.1016/j.food-chem.2019.125784.
4. Chen, C.; Xu, X.-M.; Chen, Y.; Yu, M.-Y.; Wen, F.-Y.; Zhang, H. Identification, Quantification and Antioxidant Activity of Acylated Fla-vonol Glycosides from Sea Buckthorn (Hippophae Rhamnoides Ssp. Sinensis). Food Chemistry. 2013. Vol. 141, iss. 3. Pp. 1573-1579. DOI: 10.1016/j.foodchem.2013.03.092.
5. Rösch, D.; Bergmann, M.; Knorr, D.; Kroh, L.W. Structure-Antiox-idant Efficiency Relationships of Phenolic Compounds and Their Contribution to the Antioxidant Activity of Sea Buckthorn Juice. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 2003. Vol. 51, iss. 15. Pp. 4233-4239. DOI: 10.1021/jf0300339.
6. Beveridge, T.; Li, T.S.C.; Oomah, D.; Smith A. Sea Buckthorn Products: Manufacture and Composition. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 1999. Vol. 47. Pp. 3480-3488. DOI: 10.1021/ jf981331m.
7. Gao, X.; Ohlander, M.; Jeppsson, N.; Björk, L.; Trajkovski, V. Changes in Antioxidant Effects and Their Relationship to Phytonutrients in Fruits of Sea Buckthorn (Hippophae rhamnoides L.) during Maturation. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 2000. Vol. 48, iss. 5. Pp. 1485-1490. DOI: 10.1021/jf991072g.
8. Ercisli, S.; Orhan, E.; Ozdemir, O.; Sengul, M. The Genotypic Effects on the Chemical Composition and Antioxidant Activity of Sea Buckthorn (Hippophae Rhamnoides L.) Berries Grown in Turkey. Scientia Horticulturae. 2007. Vol. 115, iss. 1. Pp. 27-33. DOI: 10.1016/j.scien-ta.2007.07.004.
9. Hertog, M.G.L.; Feskens, E.J.M.; Hollman, P.C.H.; Katan, M.B.; Kromhout, D. Dietary Antioxidant Flavonoids and Risk of Coronary Heart Disease: The Zutphen Elderly Study. Lancet. 1993. Vol. 342, iss. 8878. Pp. 1007-1011. DOI: 10.1016/0140-6736(93)92876-U.
10. Hertog, M.G.L.; Kromhout, D.; Aravanis, C.; Blackburn, H.; Buzina, R.; Fidanza, F., et al. Flavonoid Intake and Long-Term Risk of Coronary Heart Disease and Cancer in the Seven Countries Study. Archives of Internal Medicine. 1995. Vol. 153, iss. 4. Pp. 381-386. DOI: 10.1001/ARCHINTE.1995.00430040053006.
11. Geetha, S.; Sai Ram, M.; Mongia, S.S.; Singh, V.; Ilavazhagan, G.; Sawhney, R.C. Evaluation of Antioxidant Activity of Leaf Extract of Seabuckthorn (Hippophae Rhamnoides L.) on Chromium (VI) induced Oxidative Stress in Albino Rats. Journal of Ethnophar-macology. 2003. Vol. 87, iss. 2-3. Pp. 247-251. DOI: 10.1016/S0378-8741(03)00154-5.
13. Teissedre, P.L.; Frankel, E.N.; Waterhouse, A.L.; Peleg, H.; German, J. B. Inhibition of In Vitro Human LDL Oxidation by Phenolic Antioxidants from Grapes and Wines. Journal of the Science of Food and Agriculture. 1996. Vol. 70, iss. 1. Pp. 55-61.
14. Kyriakopoulou, K.; Pappa, A.; Krokida, M.; Detsi, A.; Kefalas, P. Effects of Drying and Extraction Methods on the Quality and Antioxidant Activity of Sea Buckthorn (Hippophae Rhamnoides) Berries and Leaves. Drying Technology. 2013. Vol. 31, iss. 9. Pp. 1063-1076. DOI: 10.1080/07373937.2013.773907.
15. Papuc, С.; Diaconescu С.; Nicorescu, V. Antioxidant Activity of Sea Buckthorn (Hippophae Rhamnoides) Extracts Compared with Common Food Additives. Romanian Biotechnological Letters. 2008. Vol. 13, no. 6. Pp. 4049-4053.
16. Kim, J.-S.; Kwon, Y.S.; Sa, Y.J.; Kim, M.-J. Isolation and Identification of Sea Buckthorn (Hippophae Rhamnoides) Phenolics with Antiox-idant Activity and a-Glucosidase Inhibitory Effect. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 2011. Vol. 59, iss. 1. Pp. 138-144. DOI: 10.1021/jf103130a.
17. Parsaeimehr, A.; Sargsyan, E.; Javidnia, K. A Comparative Study of the Antibacterial, Antifungal and Antioxidant Activity and Total Content of Phenolic Compounds of Cell Cultures and Wild Plants of Three Endemic Species of Ephedra. Molecules. 2010. Vol. 15, iss. 3. Pp. 1668-1678. DOI: 10.3390/molecules15031668.
18. Geetha, S.; Ram, M.S.; Sharma, S.K.; Ilavazhagan, G.; Banerjee, P.K.; Sawhney, R.C. Cytoprotective and Antioxidant Activity of Seabuck-thorn (Hippophae Rhamnoides L.) Flavones Against tert-Butyl Hy-droperoxide-Induced Cytotoxicity in Lymphocytes. Journal of Medicinal Food. 2009. Vol. 12, iss. 1. Pp. 151-158. DOI: DOI: 10.1089/ jmf.2007.0612.
19. Guo, R.; Chang, X.; Guo, X.; Brennan, C.S.; Li, T., Fu, X.; Liu, R.H. Phenolic Compounds, Antioxidant Activity, Antiproliferative Activity and Bioaccessibility of Sea Buckthorn (Hippopha§ Rhamnoides L.) Berries as Affected by In Vitro Digestion. Food & Function. 2017. Vol. 8, iss. 11. Pp. 4229-4240. DOI: 10.1039/c7fo00917h.
20. Miller, H.E.; Rigelhof, F.; Marquart, L.; Prakash, A.; Kanter, M. Antioxidant Content of Whole Grain Breakfast Cereals, Fruits and Vegetables. Journal of the American College of Nutrition. 2000. Vol. 19. Supp. 3. Pp. 312S-319S. DOI: 10.1080/07315724.2000.10718966.
21. Koshelev, Yu.A.; Ageeva L.D.; Batashov, E.S.; Sevodin, V.P.; Rozhnov, E.D.; Kuleshova, N.I. Sea Buckthorn: Monograph. Biysk: Publishing House of Polzunov Altai State Technical. 2015. 410 p. ISBN: 978-59257-0301-4.
22. Дугарова И.К., Цыбикова Г.Ц., Александрова И.Т. Комплексное использование плодов облепихи в производстве пищевых продуктов // Известия вузов. Прикладная химия и биотехнология. 2016. Т. 6, № 3. С. 128-134. DOI: 10.21285/2227-2925-2016-6-3-128134.
23. Терещук Л.В., Павлова С.С. Получение биологически ценных продуктов из плодов облепихи // Известия вузов. Пищевая технология. 2000. № 1. С. 46-48.
24. Ranjith, A.; Kumar, K.S.; Venugopalan, V.V.; Arumughan, C.; Sawhney, R.C.; Singh, V. Fatty Acids, Tocols and Caratenoides in Pulp Oil of Three Sea Buckthorn Species (H. Rhamnoides, H. Salicifolia, and H. Tibetana) Grown in the Indian Himalayas. Journal of the American Oil Chemists' Society. 2006. Vol. 83, iss. 4. Pp. 359-384. DOI: 10.1007/s11746-006-1213-z.
25. Parimelazhagan, T.; Chaurasia, O.P.; Raut, B. Bioactive Substances of Sea Buckthorn. Souvenir and Book of Abstracts: National Seminar on Cultivation, Harvesting and Scientific Exploitation of Sea Buckthorn, Field Research Laboratory (DRDO), Leh (Ladakh), India. 2004. 23 p.
12. Frankel, E.N.; German, J.B.; Kinsella, J.E.; Parks, E.; Kanner, J. Inhibition of Oxidation of Human Low-Density Lipoprotein by Phenolic Substances in Red Wine. Lancet. 1993. Vol. 341, iss. 8843. Pp. 454-457. DOI: 10.1016/0140-6736(93)90206-V.
13. Teissedre, P.L.; Frankel, E.N.; Waterhouse, A.L.; Peleg, H.; German, J. B. Inhibition of In Vitro Human LDL Oxidation by Phenolic Antioxidants from Grapes and Wines. Journal of the Science of Food and Agriculture. 1996. Vol. 70, iss. 1. Pp. 55-61.
14. Kyriakopoulou, K.; Pappa, A.; Krokida, M.; Detsi, A.; Kefalas, P. Effects of Drying and Extraction Methods on the Quality and Antioxidant Activity of Sea Buckthorn (Hippophae Rhamnoides) Berries and Leaves. Drying Technology. 2013. Vol. 31, iss. 9. Pp. 1063-1076. DOI: 10.1080/07373937.2013.773907.
15. Papuc, C.; Diaconescu C.; Nicorescu, V. Antioxidant Activity of Sea Buckthorn (Hippophae Rhamnoides) Extracts Compared with Common Food Additives. Romanian Biotechnological Letters. 2008. Vol. 13, no. 6. Pp. 4049-4053.
16. Kim, J.-S.; Kwon, Y.S.; Sa, Y.J.; Kim, M.-J. Isolation and Identification of Sea Buckthorn (Hippophae Rhamnoides) Phenolics with Antioxidant Activity and a-Glucosidase Inhibitory Effect. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 2011. Vol. 59, iss. 1. Pp. 138-144. DOI: 10.1021/jf103130a.
17. Parsaeimehr, A.; Sargsyan, E.; Javidnia, K. A Comparative Study of the Antibacterial, Antifungal and Antioxidant Activity and Total Content of Phenolic Compounds of Cell Cultures and Wild Plants of Three Endemic Species of Ephedra. Molecules. 2010. Vol. 15, iss. 3. Pp. 1668-1678. DOI: 10.3390/molecules15031668.
18. Geetha, S.; Ram, M.S.; Sharma, S.K.; Ilavazhagan, G.; Banerjee, P.K.; Sawhney, R.C. Cytoprotective and Antioxidant Activity of Seabuck-thorn (Hippophae Rhamnoides L.) Flavones Against tert-Butyl Hy-droperoxide-Induced Cytotoxicity in Lymphocytes. Journal of Medicinal Food. 2009. Vol. 12, iss. 1. Pp. 151-158. DOI: DOI: 10.1089/ jmf.2007.0612.
19. Guo, R.; Chang, X.; Guo, X.; Brennan, C.S.; Li, T., Fu, X.; Liu, R.H. Phenolic Compounds, Antioxidant Activity, Antiproliferative Activity and Bioaccessibility of Sea Buckthorn (Hippophae Rhamnoides L.) Berries as Affected by In Vitro Digestion. Food & Function. 2017. Vol. 8, iss. 11. Pp. 4229-4240. DOI: 10.1039/c7fo00917h.
20. Miller, H.E.; Rigelhof, F.; Marquart, L.; Prakash, A.; Kanter, M. Antioxidant Content of Whole Grain Breakfast Cereals, Fruits and Vegetables. Journal of the American College of Nutrition. 2000. Vol. 19. Supp. 3. Pp. 312S-319S. DOI: 10.1080/07315724.2000.10718966.
21. Koshelev, Yu.A.; Ageeva L.D.; Batashov, E.S.; Sevodin, V.P.; Rozhnov, E.D.; Kuleshova, N.I. Sea Buckthorn: Monograph. Biysk: Publishing House of Polzunov Altai State Technical. 2015. 410 p. ISBN: 978-59257-0301-4.
22. Dugarova, I.K.; Cybikova, G.C.; Aleksandrova, I.T. Kompleksnoe Is-pol'zovanie Plodov Oblepihi v Proizvodstve Pishchevyh Produktov [Complex Use of Sea Buckthorn Fruits in Food Production] Izvestiya Vuzov. Prikladnaya Himiya i Biotekhnologiya. 2016. Vol. 6, No. 3. Pp.128-134. DOI: 10.21285/2227-2925-2016-6-3-128- 134.
23. Tereshchuk, L.V.;Pavlova, S.S. Poluchenie Biologicheski Cennyh Produktov iz Plodov Oblepihi [Obtaining Biologically Valuable Products from Sea Buckthorn Fruits]. Izvestiya Vuzov. Pishchevaya Tekhnologiya. 2000. No. 1. Pp.46-48.
24. Ranjith, A.; Kumar, K.S.; Venugopalan, V.V.; Arumughan, C.; Sawhney, R.C.; Singh, V. Fatty Acids, Tocols and Caratenoides in Pulp Oil of Three Sea Buckthorn Species (H. Rhamnoides, H. Salicifolia, and H. Tibetana) Grown in the Indian Himalayas. Journal of the American Oil Chemists' Society. 2006. Vol. 83, iss. 4. Pp. 359-384. DOI: 10.1007/s11746-006-1213-z.
26. Tkacz, K.; Chmielewska, J.; Turkiewicz, I.P.; Nowicka, P.; Wojdyto, A. Dynamics of Changes in Organic Acids, Sugars and Phenolic Compounds and Antioxidant Activity of Sea Buckthorn and Sea Buckthorn-Apple Juices during Malolactic Fermentation. Food Chemistry. 2020. Vol. 32, iss. 1. Article Number: 127382. DOI: 10.1016/j. food- chem.2020.127382.
27. Rozhnov, E.; Shkolnikova, M.; Popov, V. Fermented Drinks of Hippophae Rhamnoides as a Way of Innovative Development of Agriculture in Altai Region: E3S Web of Conferences; International Scientific and Practical Conference «From Inertia to Develop: Research and Innovation Support to Agriculture» (IDSISA 2020). 2020. Vol. 176. Article Number: 01013. DOI: 10.1051/e3sconf/202017601013. URL: https://www.e3s-conferences.org/articles/e3sconf/pdf/2020/36/e3s-conf_idsisa2020_01013.pdf.
28. Chaâbani, G.; Tabart, J.; Kevers, C.; Dommes, J.; Khan, M.; Zaoui, S.; Chebchoud, L.; Lachaal, M.; Karray-Bouraoui, N. Effects of 2,4-Di-chlorophenoxyacetic Acid Combined to 6-Benzylaminopurine on Callus Induction, Total Phenolic and Ascorbic Acid Production, and Antioxidant Activities in Leaf Tissue Cultures of Crataegus Azaro-lus L. Var. Aronia. Acta Physiologiae Plantarum. 2015. Vol. 37, iss. 2. Pp. 1769-1778. DOI : 10.1007/s11738-014-1769-4.
29. Granato, D.; Shahidi, F.; Wrolstad, R.; Kilmartin, P.; Melton, L.D.; Hidalgo, F.J.; Miyashita, K.; van Camp, J.; Alasalvar, C.; Ismail, A.B.; Elmore, S.; Birch, G.G.; Charalampopoulos, D.; Astley, S.B.; Pegg, R.; Zhou, P.; Finglas, P. Antioxidant Activity, Total Phenolics and Fla-vonoids Contents: Should We Ban In Vitro Screening Methods. Food Chemistry. 2018. Vol. 264. Pp. 471-475. DOI: 10.1016/j.food-chem.2018.04.012.
30. Lalicic-Petronijevic, J.; Komes, D.; Gorjanovic, S.; Belscak-Cvitano-vic, A.; Pezo, L.; Pastor, F.; Ostojic, S.; Popov-Raljic, J.; Suznjevic, D. Content of Total Phenolics, Flavan-3-Ols and Proanthocyanidins, Oxidative Stability and Antioxidant Capacity of Chocolate During Storage. Food Technology and Biotechnology. 2016. Vol. 54, iss. 1. Pp. 13-20. DOI: 10.17113/ft b.54.01.16.4014.
31. Muneer Alsayadi, S.M.; Jawfi, Y.A.; Belarbi, M.; Sabri, F.Z. Antioxidant Potency of Water Kefir. The Journal of Microbiology, Biotechnology and Food Sciences; Nitra. 2013. Vol. 2, iss. 6. Pp. 2444-2447.
25. Parimelazhagan, T.; Chaurasia, O.P.; Raut, B. Bioactive Substances of Sea Buckthorn. Souvenir and Book of Abstracts: National Seminar on Cultivation, Harvesting and Scientific Exploitation of Sea Buckthorn, Field Research Laboratory (DRDO), Leh (Ladakh), India. 2004. 23 p.
26. Tkacz, K.; Chmielewska, J.; Turkiewicz, I.P.; Nowicka, P.; Wojdyto, A. Dynamics of Changes in Organic Acids, Sugars and Phenolic Compounds and Antioxidant Activity of Sea Buckthorn and Sea Buckthorn-Apple Juices during Malolactic Fermentation. Food Chemistry. 2020. Vol. 32, iss. 1. Article Number: 127382. DOI: 10.1016/j. food- chem.2020.127382.
27. Rozhnov, E.; Shkolnikova, M.; Popov, V. Fermented Drinks of Hippophae Rhamnoides as a Way of Innovative Development of Agriculture in Altai Region: E3S Web of Conferences; International Scientific and Practical Conference «From Inertia to Develop: Research and Innovation Support to Agriculture» (IDSISA 2020). 2020. Vol. 176. Article Number: 01013. DOI: 10.1051/e3sconf/202017601013. URL: https://www.e3s-conferences.org/articles/e3sconf/pdf/2020/36/e3s-conf_idsisa2020_01013.pdf.
28. Chaâbani, G.; Tabart, J.; Kevers, C.; Dommes, J.; Khan, M.; Zaoui, S.; Chebchoud, L.; Lachaal, M.; Karray-Bouraoui, N. Effects of 2,4-Di-chlorophenoxyacetic Acid Combined to 6-Benzylaminopurine on Callus Induction, Total Phenolic and Ascorbic Acid Production, and Antioxidant Activities in Leaf Tissue Cultures of Crataegus Azaro-lus L. Var. Aronia. Acta Physiologiae Plantarum. 2015. Vol. 37, iss. 2. Pp. 1769-1778. DOI : 10.1007/s11738-014-1769-4.
29. Granato, D.; Shahidi, F.; Wrolstad, R.; Kilmartin, P.; Melton, L.D.; Hidalgo, F.J.; Miyashita, K.; van Camp, J.; Alasalvar, C.; Ismail, A.B.; Elmore, S.; Birch, G.G.; Charalampopoulos, D.; Astley, S.B.; Pegg, R.; Zhou, P.; Finglas, P. Antioxidant Activity, Total Phenolics and Fla-vonoids Contents: Should We Ban In Vitro Screening Methods. Food Chemistry. 2018. Vol. 264. Pp. 471-475. DOI: 10.1016/j.food-chem.2018.04.012.
30. Lalicic-Petronijevic, J.; Komes, D.; Gorjanovic, S.; Belscak-Cvitano-vic, A.; Pezo, L.; Pastor, F.; Ostojic, S.; Popov-Raljic, J.; Suznjevic, D. Content of Total Phenolics, Flavan-3-Ols and Proanthocyanidins, Oxidative Stability and Antioxidant Capacity of Chocolate During Storage. Food Technology and Biotechnology. 2016. Vol. 54, iss. 1. Pp. 13-20. DOI: 10.17113/ft b.54.01.16.4014.
31. Muneer Alsayadi, S.M.; Jawfi, Y.A.; Belarbi, M.; Sabri, F.Z. Antioxidant Potency of Water Kefir. The Journal of Microbiology, Biotechnology and Food Sciences; Nitra. 2013. Vol. 2, iss. 6. Pp. 2444-2447.
Информация об авторах / Information about Authors
Рожнов
Евгений Дмитриевич
Rozhnov,
Evgeny Dmitrievich
Тел./Phone: +7 (3854) 43-53-05 E-mail: [email protected]
Кандидат технических наук, доцент кафедры биотехнологии
Бийский технологический институт (филиал) Алтайского государственного
технического университета им. И.И. Ползунова
659305, Российская Федерация, г. Бийск, ул. им. Героя Советского Союза Трофимова, 27
Candidate of Technical Science, Associate Professor of the Biotechnology Department Biysk Technological Institute (branch) of the Altay State Technical University n.a. Ivan I. Polzunov
659305, Russian Federation, Biysk, St. n.a. the Soviet Union Hero Trofimov, 27 ORCID: https://orcid.org/0000-0002-3982-9700
