CC BY
3
УДК 614.774:5791:614.771:615.285.7
С. А. Ивашина
ВЗАИМОДЕЙСТВИЕ ДУРСБАНА С ПОЧВЕННЫМИ МИКРООРГАНИЗМАМИ
ВНИИ гигиены и токсикологии пестицидов, полимерных и пластических масс, Киев
Дурсбан (хлорпирифос) — инсектицид широкого спектра действия, применяется для борьбы с вредителями сахарной свеклы, картофеля и других культур. Препарат высокотоксичен, сохраняется в почве, адсорбируясь на органических веществах в течение 3 мес.
Физико-химические свойства препарата, в частности его незначительная растворимость в воде, способность адсорбироваться почвенно-поглощающим комплексом, способствуют тесному контакту дурсбана с почвенными микроорганизмами.
Целью настоящей работы явилось изучение влияния дурсбана на почвенный микробиоценоз и обратного (параллельного) процесса — трансформации препарата микроорганизмами почвы, свидетельствующего о способности почвы к самоочищению.
Для определения влияния дурсбана на микрофлору почвы проводили экспериментальные и натурные исследования с использованием следующих показателей: общая численность микроорганизмов на мясопептонном агаре и среде Громыко, численность микромицетов на сусло-агаре, актиномицетов на среде Чапека, количество нитрификато-ров, Е. coli и активность процессов минерализации азота П, 4].
Действие препарата в эксперименталь"ых исследованиях оценивали при внесепии его в почтенные образцы в концентрациях 0,1, 1 и 10 мг/кг па 5, 17 и 30-е сутки (бактерии, микромицеты, актиномицеты) и на 1, 7 и 24-е сутки (Е. coli) посте внесения: в натурных условиях — в концентрациях 0,37 (картофель) и 0,35 (свекла) мг/кг на 6, 13 и 17-е сутки в почве под картофелем и свеклой.
При оценке результатов воздействия дурсбана на численность аэробных сапрофитных бактерий отмечена стимуляция развития этой группы микроорганизмов под действием препарата. Однако несмотря на то что численность микроорганизмов в опытных образцах в отдельные периоды наблюдений превышала содержание их в контроле на 1—2 порядка, не было установлено зависимости доза — эффект и общая длительность стимулирования не превышала 30 сут. За этот период, видимо, заканчивался первый этап разложения препарата, связанный с накоплением и использованием легкоусвояемых продуктов трансформации дурсбана микроорганизмами.
Видовой состав микроорганизмов, принимающих активное участие в этом процессе, ограничен в основном споро-образующими бактериями видов В. megaterium, В. tnycoides, В. cereus.
Действие препарата на микромицеты выражалось в подавлении их развития (большие дозы на 17-е сутки ис-
Динамика разложения дурсбана почвенными микроорганизмами.
По оси абсцисс — время инкубирования (в сут): по оси ординат — содержание препарата (в мг/л); У — контроль; 2 — Bacillus sp. D-3; 3 — Trichoder-ma sp. D-2.
следования) и некоторой стимуляции развития в остальные сроки. Наиболее устойчивыми к действию препарата оказались микромицеты родов Trichoderma, Penicillium и Mucor.
При определении влияния дурсбана на численность актиномицетов выявлено наличие слабой стимуляции микроорганизмов только к концу эксперимента.
Сравнивая численность бактерий, микромицетов и актиномицетов па средах с дурсбаном и без него методом реплик, выявили стимулирующее воздействие на бактерии препарата в дозах 0,5 и 1 мг/кг соответственно на 150 и 200 % при высевах из всех опытных почвенных образцов. Аналогичную стимуляцию актиномицетов обнаружили при высеве из почвенных образцов, содержащих дурсбан в концентрации 10 мг/кг.
Изучение влияния дурсбана на Е. coli не выявило стимулирующего или угнетающего действия препарата на развитие кишечных палочек, численность которых в контрольных и опытных образцах в течение 24 сут исследований уменьшалась параллельно.
Под действием больших доз (1 и 10 мг/кг) происходило снижение численности нитрифицирующих бактерий и уменьшение активности процессов минерализации азота, что согласуется с данными литературы [5] о снижении активности нитрифицирующих процессов под действием реально применяемых доз дурсбана на заливных землях.
Натурные исследования подтвердили стимулирующее влияние дурсбана на аэробные бактерии, выразившееся в увеличении численности микроорганизмов более чем на порядок к 17-м суткам эксперимента. Однако не отмечено значительной разницы в численности микромицетов и актиномицетов в опытных и контрольных образцах почвы под обеими культурами, что связано, вероятно, с меньшими по сравнению с экспериментальными концентрациями дурсбана в натурных опытах.
Микробиологическую трансформацию дурсбана исследовали в жидких средах (минеральной для бактериальной культуры и среде Чапека для грибов) с исходным содержанием препарата 10 мг на 1 л среды в течение 2 нед. Количество препарата определяли методом тонкослойной хроматографии [2].
Результаты свидетельствуют о высокой разлагающей способности культур — деструкторов, усиливающейся при добавлении косубстратов (0,5 %) сахарозы для Trichoderma sp. D-2 и глюкозы для Bacillus sp. D-3 (см. рисунок). Подобные данные, указывающие на активное участие бактериальной микрофлоры в трансформации дурсбана, были получены при изучении разложения дурсбана в ав-токлавированной и нативной почве [3].
Таким образом, дурсбан в концентрациях 0,1, 1 и 10 мг на 1 кг почвы не оказывает остроотрицательного действия на почвенную микрофлору.
Учитывая, однако, отмеченное в некоторые сроки в экспериментальных и натурных исследованиях стимулирующее воздействие дурсбана на бактериальную флору почвы, снижение активности процессов нитрификации и минерализации азота, особенно выраженное при концентрациях препарата 1 и 10 мг/кг, что может привести к нарушению равновесия комплекса мнкробиоценоза, считаем возможным принять концентрацию дурсбана 1 мг/кг в качестве пороговой.
Литература
1. З&ягинцеи Д. Г., Асеева И. В., Бабьева И. П., Мирчинк, Т. Г. Методы почвенной микробиологии и биохимии.— ' М„ 1980.
2. Клисенко М. А., Александрова Л. Г. Определение оста- 4. Практикум но микробиологии. — М„ 1976.
точных количеств. — Киев. 1983. -С.. 108. 5. Sivasilhamparam /(. // Ргос. Ceylon Ass. Advanc. Sei. —
3. Новожилов К. В.. Петрова Т. М„ Евстигнеева Т. А. 1969. — Vol. 25. N 1.—Р. 1—7.
и др. // Бюл. ВНИИ с/х мнкробнол. — Л., 1979.—
Вып. 32. — С. 41—44. Поступила 10.06.86
УДК 6М.777:6С5.66И[628.1Э1:628.5'13.345
М. А. Галиев
ГИГИЕНИЧЕСКОЕ НОРМИРОВАНИЕ СОДЕРЖАНИЯ В ВОДЕ ВОДОЕМОВ КОРРЕКСИТА-7664, КОРРЕКСИТА ОС-3, ОКСИФОСА-Б, ДИПРОКСАМИНА-1571, ТЕХНИЧЕСКОЙ
ЖЕЛАТИНЫ
Уфимский НИИ гигиены и профзаболеваний
В последние годы в качестве диспергентов нефти предложено использовать такие препараты, как коррексит-7664, коррексит ОС;5, окснфос-Б, дипроксамнн-157 и техническую желатину, что послужило основанием для проведении экспериментальных исследований с целью обновления их предельно допустимых концентраций в воде водоемов.
Коррексит-7664 — импортный водорастворимый диспер-гент нефти — представляет собой светло-желтую вязкую жидкость, состоящую из смеси неионогенных поверхностно-активных веществ. В воде растворяется во всех соотношениях.
Коррексит ОС-5 — импортный водорастворимый диспер-гент нефти — представляет собой неионогенное поверхностно-активное вещество, жидкость янтарного цвета. 11ре-парат хорошо растворим в воде во всех соотношениях.
Оксифос-Б — неионогенное поверхностно-активное вещество. Представляет собой вязкую, хорошо растворимую в воде жидкость.
Дипроксамин-157 является иеионогенным поверхностно-активным веществом, хорошо растворимым в воде.
Желатина техническая (полиграфическая) — природное высокомолекулярное соединение животного происхождения. Представляет собой хорошо растворимые в воде частицы сыпучего вещества размером 0,5—2 мм. Цвет от слабожелтого до светло-коричневого.
В результате исследования влияния нормируемых веществ на органолептические свойства воды установлено, что перечисленные выше препараты обладают способностью придавать воде специфический запах моющих средств, горьковатый привкус и вызывают образован ¡е пены. Подогрев (до 60 °С) и хлорирование испытуемых растворов не изменяли интенсивности запаха и ценообразования. Результаты исследований позволили установить, что пороговыми уровнями по влиянию на запах, привкус и ценообразование соответственно являются концентрации коррек-сита-7664 — 0,22, 0,51 и 0,53 мг/л, для коррекента ОС-5 — 0,27, 0,92 и 3,2 мг/л, для оксифоса-Б — 6,2, 12,5 и 0.2 мг/л, для дипроксамина-157 — 9,0, 26,3, 0,4 мг/л, для технической желатины-—84,0, 160,5 и 0,72 мг/л.
Стабильность препаратов изучали косвенным методом — по изменению органолептических показателей (запаха и ценообразования). Полученные результаты свидетельствуют об относительно высокой, стабильности в воде нормируемых веществ.
При оценке характера и степени воздействия соединений на процессы самоочищения водоемов установлено, что пороговыми уровнями для коррексита-7664, коррекента ОС-5, окснфоса-Б, дипроксамииа-157 и технической желатины являются соответственно концентрации 0,6, 6,0, 1,0, 0,05 и 0,08 мк/л (по стимулирующему действию на БПК воды).
Токсические свойства веществ в условиях острого опыта изучали на белых мышах, белых крысах (самцах и
1 Препарат дипроксамин-157 исследован совместно с сотрудником Казанского медицинского института Р. А. За-кйевым.
самках) и морских свинках. В результате экспериментов установлено, что 1.05(, коррексита-7664, коррексита ОС-5, оксифоса-Б и дипроксамина-157 для исследуемых животных находятся соответственно в пределах 50,0—84,1, 15,0—30,0, 1,5—4,0 и 7,5—18,0 г па 1 кг массы тела. Различия в видовой и половой чувствительности у данных препаратов не выражены.
При изучении острой токсичности для технической желатины ьЬзо установить не удалось. При максимально возможном дробном введении (50 г на 1 кг массы) гибели животных не наступало, клинические проявления интоксикации отсутствовали.
Кожно-резорбтнвное действие веществ изучали в соответствии со схемой, рекомендованной методическими указаниями [5]. Для контроля использовали такие показатели, как гибель животных, клинические проявления интоксикации, содержание эритроцитов и гемоглобина, холестерина в сыворотке крови, активность каталазы крови. В ходе исследований гибели животных, клинических проявлений интоксикации, а также изменений других контролируемых показателей не отмечено.
Полученные параметры острой токсичности исследуемых веществ использованы нами для расчета диапазона доз препаратов в хроническом эксперименте, а также для оценки степени опасности веществ. Для этого мы воспользовались рекомендациями Г. Н. Красовского и соавт. |6]. Результаты расчета свидетельствуют о том, что расчетные максимальные недействующие дозы (МНД), полученные по различным формулам, для коррексита-7664, коррексита ОС-5, оксифоса-Б и дннроксамина-157 находятся на уровне от 0,1 до 2,2 мг/кг. Максимально недействующие концентрации (МНК) определены для данных веществ в пределах от 2 до 44 мг/л. Если условно принять величину ЬВ50 технической желатины равной 50 г на 1 кг массы, то значение ее МНД окажется на уровне 3,98 мг/кг, а значение МНК — 78,6 мг/л. Полученные результаты позволяют отнести коррексит-7664, коррексит ОС-5, оксифос-Б и дипроксамин-157 к 3-му классу опасности. Техническую желатину (если даже величину ЬО30 условно принять равной 50 г па 1 кг массы) можно отнести к 4-му классу опасности.
В условиях подострого месячного санитарно-токсиколо-гического эксперимента на белых крысах (самцах и самках) были испытаны 1/10,1/50 и 1/250 ЬОэо препаратов, что составило для коррексита-7664 соответственно 8000, 1600 и 320 мг/кг, для коррёкента ОС-5 — 1650, 330 и 66 мг/кг, для окснфоса-Б — 400, 80 и 16 мг/кг, для дипроксамина-157— 1400, 280 и 56 мг/кг. Поскольку механизм действия исследуемых веществ не изучен и данные литературы об их биологической активности отсутствуют, то при подборе тестов мы исходили из данных литературы о действии других неионогенных поверхностно-активных веществ на организм животных [7, 8].
В результате подострого эксперимента установлено, что испытанные дозы (1/10 и 1/50 ЬОи) коррексита-7664, коррексита ОС-5, окснфоса-Б и дипроксамина-157 вызывали со стороны различных органов и систем белых крыс
