CC BY
10
нить механизм кумулятивного действия органических со-^ единений олова — развитие функциональной и материальной кумуляции. Это согласуется с данными литературы о способности длительного нахождения оловоорганических соединений в организме животных при проведении опытов с меченными '"Бп изотопами [8].
Полученные данные коррелируют с результатами проведенных нами ранее биохимических исследований, свидетельствующими об угнетении активности НАДФ-Н-завнси-мых монооксигеназ — одного из чувствительных показателей при оценке воздействия этой группы соединений на организм теплокровных в условиях острого и хронического экспериментов.
Представленные материалы отчетливо демонстрируют воздействие некоторых оловоорганических стабилизаторов на ультраструктуру гепатоцнтов печени крыс. Ультраструктурные изменения в печени более выражены и имеют большую распространенность при воздействии серусодержащих оловоорганических соединений.
Выводы. 1. При однократном поступлении в организм теплокровных животных токсических доз оловоорганических стабилизаторов (тиооксидиоктилолова, диоктнл-тиогликолята диоктилолова и дналкилмалеата олова) происходят ультраструктурные изменения в гепатоцитах, зависящие от химического строения данных соединений. При этом тиосодержащие органические соединения олова наиболее токсичны.
2. Результаты изучения ультраструктурных изменений
гепатоцитов печени крыс прн воздействии оловоорганических стабилизаторов могут быть использованы при разработке гигиенических нормативов для этой группы соединений.
Литература
1. Беляева H. Н.. Быстрова Т. А., Ревазова Ю. А. и др — Гиг. и сан.. 1976, № 5, с. 36—39.
2. Заварова Т. В. Исследование алкил- и арилоловопроиз-водных в качестве термостабнлизаторов ПВХ. Дне. канд. Уфа, 1970.
3. Левицкая В. Н. — В кн.: Научная сессия по химии и технологии органических соединений серы и сернистых нефтей. 14-я. Тезисы докладов. 14-я. Рига, 1976. с. 96-97.
4. Мазаев В. Т., Игумнов А. С., Пай В. Н. и др — Гиг и сан., 1977, № 4, с. 24—28.
5. Стацек Н. К.. Кучеренко Т. В. — В кн.: Гигиена применения полимерных материалов. Киев, 1976, с. 61—62.
6. Чарыев О. Г. — Изв. АН ТССР. Серия биол. наук, 1975 № 1, с. 93—94.
7. Aldridge W. N. — In: New Chem. and Appl. Symp 17-st meeting. New York, 1976, p. 6—7.
8. H er ok J., Gotte H. — In: Biol, and Sei. Mexico. 1961,
p. 177—188.
9. Seinen W. №.. Ellems M. I. — Toxicol, appl. Pharmacol. 1976, v. 35. p. 63-75.
Поступила 10.01.84
УДК 614.7:579.842.14]-078:616.98:579.842.14/-022.3
Л. П. Плахотя
ВЫЖИВАЕМОСТЬ САЛЬМОНЕЛЛ В АЭРОЗОЛЬНОМ СОСТОЯНИИ В УСЛОВИЯХ ЭКСПЕРИМЕНТА
Минский медицинский институт
Повсеместное распространение сальмонеллезной инфекции, неуклонный рост заболеваемости с преимущественным вовлечением в эпидемический процесс детей раннего возраста, усиление внутрибольиичного распространения саль-монеллезов диктуют необходимость дальнейшего изучения путей и факторов передачи этой инфекции среди людей.
Основным путем передачи возбудителя инфекции при сальмонеллезах является пищевой, что обусловлено заражением исходного пищевого сырья или обсеменением пищевых продуктов в процессе обработки, транспортировки и реализации [4, 9]. Ввиду высокой резистентности сальмонелл к неблагоприятным факторам внешней среды не исключены случаи заражения сальмонеллезом через воду [6, 10]. Особую актуальность в настоящее время приобретают внутрибольничные заболевания, вызываемые преимущественно госпитальными штаммами сальмонеллы тнфиму-риум. Внутрибольничные вспышки охватывают чаще всего детей раннего возраста, ослабленных больных, пожилых людей и распространяются контактно-бытовым путем [1, 7]. В последние годы в литературе широко обсуждается вопрос о возможности аэрогенного пути распространения сальмонеллезной инфекции [1, 2]. Имеется ряд сообщений, указывающих на участие пылевого фактора в возникновении госпитальных вспышек сальмонеллезов, вызываемых различными сероварамн сальмонелл [8, 12, 14, 15].
Распространение сальмонелл аэрогенным путем возможно и при использовании бытовых сточных вод для дождевания полей орошения прн определенных способах очистки отработанных вод на очистных сооружениях, что приводит к загрязнению атмосферного воздуха кишечной микрофлорой, в том числе и патогенной, и распространению патогенных бактерий токами воздуха на значительные расстояния [3, II, 13]. Несмотря на наличие неблагоприятных факторов внешней среды, сальмонеллы выживают в воздухе лучше, чем коли-бактерии, используемые в качестве индикаторных бактерий микробного загрязнения воздуха [16].
В связи с возможностью участия воздуха в качестве фактора передачи сальмонеллезной инфекции мы сочли необходимым изучить длительность сохранения сальмонелл в воздухе в условиях статической герметичной камеры.
Для изучения длительности сохранения сальмонелл в искусственно созданном аэрозоле нами была использована установка для получения полидисперсного бактериального аэрозоля [5]. В качестве тест-микроорганизма применяли эталонный штамм сальмонеллы тнфимуриум 433, типичный по морфологическим, серологическим и биохимическим свойствам. Культуру выращивали на мясо-пептонном агаре прн температуре 37 °С в течение 18—20 ч, после чего смывали физиологическим раствором и готовили бактериальную суспензию для расчета 200 млн. микробных клеток на 1 мл по оптическому стандарту мутности Института им. Л. А. Тарасевича. Для получения суспензии требуемой концентрации в качестве растворителя использовали 0,85 % раствор хлористого натрия и 0,1 % раствор желатина в физиологическом растворе. Приготовленную бактериальную взвесь заливали в приемник генератора аэрозоля, в качестве которого служил пневматический распылитель от аэрозольного ингалятора АИ-1 с отбойником. При подаче в генератор воздуха со скоростью 6 л/мни в течение 20 мин в камере создавался бактериальный аэрозоль в концентрации 100—200 тыс. жизнеспособных микробных клеток в 1 м-' (по результатам посева воздуха после распыления). Исследуемые пробы воздуха с частицами бактериального аэрозоля отбирали с помощью аппарата Кротова через каждые 30 мни на чашки со средой Эндо, которые выдерживали в термостате при 37 °С в течение 48 ч, после чего подсчитывали число выросших колоний н делали пересчет на 100 л воздуха. Выборочно проверяли биохимические и серологические свойства выросших на среде колоний микроорганизмов. Рассчитав затем количество микробных клеток, приходящихся на единицу объема воздуха в исходном аэрозоле (сразу после распыления) и после экспонирования
его при определенных микроклиматических условиях (относительной влажности 60% и температуре 18—20 °С), вы- Ц числяли относительное содержание (ОС) сальмонелл в воздухе камеры через каждые 30 мин по формуле
количество бактерий в воздухе после экспонирования
ОС =---;—:---V
количество бактерии в исходном аэрозоле
Х100.
Опыты повторяли 5 раз.
Результаты экспериментальных исследований по изучению длительности сохранения сальмонелл в искусственно созданном аэрозоле в условиях статической герметичной камеры при постоянных микроклиматических условиях позволили установить зависимость устойчивости аэрозолиро-ванных микробных клеток от состава дисперсной фазы. Так, бактериальные аэрозоли, генерированные на 0,1 % растворе желатина, обладали большей устойчивостью по сравнению с аэрозолями на физиологическом растворе. Количество сальмонелл, высеваемых нз воздуха камеры при использовании 0,1 % раствора желатина, в 2,5—3,5 раза превышало количество их в воздухе камеры при применении физиологического раствора (см. таблицу).
При оценке относительного содержания сальмонелл в воздухе камеры через каждые 30 мин было установлено, что в начальный период после распыления происходило резкое снижение числа сальмонелл по отношению к исходному количеству. Так, через 30 мин после распыления в воздухе камеры обнаруживалось 16,9 % сальмонелл при использовании в качестве дисперсной фазы 0,85 % раствора хлористого натрия и 42,4 % при применении 0,1 % раствора желатина, через 60 мин — 7,9 и 24,1 % соответственно. В последующие промежутки времени процент высеваемо-стн сальмонелл продолжал снижаться, но снижение носило более постепенный характер: через 2 ч в воздухе обнаруживалось уже 3,4 и 9,0% сальмонелл, через 3 ч—1,2 и 3,2 % соответственно. Незначительная часть сальмонелл ^ (0,22 и 0,71 %) высевалась нз воздуха в течение длительного периода времени — 4,5 ч (срок наблюдения).
Культуры сальмонелл, выросшие на чашках со средой Эндо при посеве проб воздуха с частицами бактериального аэрозоля, обладали теми же культуральными, серологическими и биохимическими свойствами, что и исходный штамм сальмонеллы тнфимурнум.
Таким образом, длительность сохранения сальмонелл в искусственно созданном аэрозоле зависит от состава дисперсной фазы. Прн одинаковых режимных условиях статической герметичной камеры бактериальные аэрозоли, генерированные на 0,1 % растворе желатина, были в 2,5—3,5 раза более устойчивы по сравнению с аэрозолями на физиологическом растворе. Прн оценке относительного содержания сальмонелл в воздухе камеры установлено, что 0,22—0,71 % сальмонелл от исходного количества обнаруживалось в воздухе длительно — в течение 4,5 ч. Полученные данные свидетельствуют о возможности реализации аэрогенного пути распространения сальмонеллезов в условиях закрытых, плохо проветриваемых помещений при несоблюдении необходимых санитарно-гигиенических требовании.
Литература
1. Арбузов В. А. — В кн.: Острые кишечные инфекции. Л., 1978, вып. 2, с. 31—38.
2. Бургасов П. Я.— Ж. микробиол., 1979, № 1, с. 3—17.
3. Влодавец В. В., Баубинас А. К., Немыря В. И. — Там же, 1975, № 6, с. 126—128.
4. Гребенникова Н. 3. — Там же, 1978, № 6, с. 125—129.
5. Драбеня В. В. — Здравоохр. Белоруссии, 1980, № 7, с. 58—59.
6. Калина Г. П. —Ж. микробиол., 1977, № 3, с. 15—19.
7. Килессо В. А., Воротынцева Н. В., Выдрина Е. И. и др. — В кн.: Актуальные вопросы эпидемиологии и инфекционных болезней. (Сальмонеллезы). Саратов, 1976, с. 15—19.
8. Килессо В. А., Стерлина Е. Н„ Кауфман И. А. и др. — Там же, с. 30—36.
9. Лебедев Н. И. Сальмонеллезы. Эпидемиология, клиника и профилактика. Минск, 1980, с. 37—40.
10. Лебедев Н. И., Чистенко Г. Н„ Иванютенко М. И. и др. — Здравоохр. Белоруссии, 1978, X» 2, с. 39—40.
11. Adams А. P.. Spendlove J. С. — Science, 1970, v. 169, p. 1218—1220.
12. Bate J. G.. James U. — Lancet, 1958, v. 2, p. 713—715.
13. Crunnet К-. Transen C. — Rev. int. Oceonogr. med., 1974, v. 34, p. 117—126.
14. Neter E. — Am. J. Publ. Hlth, 1950, v. 40, p. 929—933.
15. Rubbo S. D — J. Hyg., 1948, v. 48, p. 158—163.
16. Teltsch В., Kedmi S„ Bonnet L. et al. — Appl. environm. Microbiol., 1980, v. 39, p. 1183—1190.
Поступила 09.11.83
УДК 614.771:546.161-07:631.5
Э. И. Гапонюк, М. В. Кузнецова
ВЛИЯНИЕ ФТОРИСТОГО НАТРИЯ НА СВОЙСТВА ПОЧВЫ И РАЗВИТИЕ НЕКОТОРЫХ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ
КУЛЬТУР
Соединения фтора, попадающие на почву с осадками или в виде сухих выпадении, изменяют свойства почвы и повреждают растительность. Отрицательное влияние фтора на растения может быть связано как с нарушением в них биологических процессов, так и с изменением физико-хнми-ческих и агрохимических свойств почвы. Знание характера и степени изменения свойств почвы под влиянием фтористых соединений необходимо для решения вопросов нормирования токсикантов и проведения экологической экспертизы в промышленных и сельскохозяйственных районах.
Данная работа посвящена изучению влияния различных концентраций фтористого натрия (Кар) на физико-химические, биологические свойства почвы, всхожесть и биохимическую активность прорастающих семян некоторых сельскохозяйственных культур.
Исследования проводили в лабораторных условиях на дерново-подзолистой .глееватой среднесуглиннстой почве, отобранной с контрольного участка поля Бабенского отделения учебно-опытного хозяйства «Михайловское» (рН 7,05, Собщ 1,05%, Са и М£ 13,1 мг-экв/100 г). Почву отбирали из верхнего горизонта (0—20 см), высушивали до воздуш-но-сухого состояния, перетирали в фарфоровой ступке, просеивали через сито с отверстиями диаметром 2 мм. Подготовленную таким образом пробу (2 кг) помещали в полиэтиленовые сосуды с неплотно закрытыми крышками с отверстиями, допускающими газообмен, но ограничивающими высыхание. Фторид натрия вносили в виде соли в количествах, соответствующих 100, 200, 500, 700, 1000, 1500, 2000, 3000 мг Р-/кг (т. е. обнаруживаемых в промышленных и сельскохозяйственных районах). Пробы выдерживали при комнатной температуре и постоянной влажности, равной 60 % полной влагоемкости. Контролем служила почва без внесения Кар. Показатели, использованные для оценки влияния ЫаЯ на свойства почвы, представлены в табл. 1. Опыты с растениями выполняли четырехкратно в лабораторных условиях с искусственным освещением в вегетационных сосудах, заполненных 1 и 4 кг почвы.
КаР вносили прн набивке сосудов в дозах 100, 200, 500, 1000, 1500, 2000 и 3000 мг Р~/кг. Полив в сосудах проводили из расчета 60 % от полной влагоемкости. После внесения Кар и первоначального увлажнения сосуды выдерживали месяц для развития процессов, протекающих под влиянием Кар, после чего осуществляли посев. Фнтоток-сичность почвы определяли в соответствии с методическими рекомендациями по обоснованию ПДК химических веществ [2]. Исследования, проводили на следующих культурах: зерновых (пшенице, овсе, кукурузе), бобовых (горохе), овощных (огурцах, патиссонах). Для выявления характера повреждающего действия изучали ферментативную активность прорастающих семян общепринятыми методами [3].
Изучение последствий загрязнения показало, что интенсивность и характер изменения свойств почвы в значительной мере определяются концентрацией Кар. По влиянию на свойства почвы определено 3 диапазона концентраций фтора: от 0 до 500, от 500 до 1000 и более 1000 мг/кг.
В первом диапазоне концентраций изменения физико-
химических, агрохимических и 15иологических свойств почвы отсутствовали или были слабо выражены. Активность почвенных оксидоредуктаз и гидролаз в большинстве случаев не имела достоверных отличий от контроля (табл. 2).
Изменения рН, ЕЙ почвы и содержания водорастворимых органических веществ (при определении бихроматным методом) незначительны. Обращает на себя внимание уменьшение содержания суммы водорастворимых веществ прн малых— 100 и 200 мг/кг — концентрациях фтора соответственно на 40 и 50%, в то время как при более высоких концентрациях сумма водорастворимых веществ значительно возрастает и при 3000 мг Р~/кг на порядок превышает контроль (см. табл. 2).
Таблица 1
Показатели, используемые для оценки влияния фторида натрия на свойства почвы
Показатели
рН
ЕЬ, мВ
Водорастворимое органическое
вещество почвы, С % Сухой остаток водной вытяжки, %
Азот аммиака, мг К—КН3/
/100 г Карбонаты, С02,% Суммы обменных кальция и
магния, мг-экв/100 г Активность:
каталазы, мл 0,1 КМп04/ /г-ч
дегидрогеназы, мкл Н2/г-сут нитратредуктазы, мг К—К03/100 г гидроксиламинредуктазы, мг КН2ОН/ЮО г-ч уреазы, мг К—КН3/100 г-ч фосфатазы, мг фенолфталеина/г-ч
Интенсивность выделения С02,
мг/100 г-сут Подвижные формы (0,1 М Н2504), мг-экв/100 г: железа марганца алюминия Ферментативная активность прорастающих семян
Метод определения
Потенциометрический [1] Потенциометрический [1]
Бихроматный по Тюрину
Весовой [1]
Колориметрический [1] Объемный [1]
Объемный [1]
Объемный [5] Колориметрический [5]
Колориметрический [5]
Колориметрический [5] Колориметрический [51
Колориметрический [5]
Адсорбционный [1]
Колориметрический [4| С 2,2-дипиридилом Персульфатный С эрихоомцианином
Колориметрический [31
Примечание, вый потенциал.
ЕЬ — окислительно-восстановитель-
