CC BY
257
УЧЕНЫЕ ЗАПИСКИ КАЗАНСКОГО ГОСУДАРСТВЕННОГО УНИВЕРСИТЕТА
Том 149, кн. 2
Естественные науки
2007
УДК 577.113
ВНЕКЛЕТОЧНАЯ ДНК В КРОВОТОКЕ ЧЕЛОВЕКА. I. ПРОИСХОЖДЕНИЕ ВНЕКЛЕТОЧНОЙ ДНК
Н.О. Туаева, З.И. Абрамова
Аннотация
О факте существования внеклеточных нуклеиновых кислот в кровотоке человека известно довольно давно. Однако относительно их происхождения и функций в литературе нет единого мнения. В данном обзоре приводятся разные версии появления ДНК в плазме крови. Рассматривается возможность активной экскреции ДНК клетками иммунной системы, апоптотическое происхождение внеклеточной ДНК и некоторые другие мнения, описанные в литературе.
Светлой памяти научного руководителя, профессора
Виктора Георгиевича Винтера посвящается
Около 60 лет назад Mandel и Metais обнаружили внеклеточную ДНК (вкДНК) в плазме крови человека [1]. После этой ранней работы вопрос о плазменной и сывороточной ДНК был забыт почти на 20 лет. Только после того, как в 1996 г. [2] нуклеиновые кислоты были обнаружены в сыворотке крови пациентов с системной красной волчанкой (СКВ), интерес к вкДНК стал нарастать год от года.
В настоящее время практическая значимость вкДНК плазмы крови как прогностического и диагностического критерия является доказанной для онкологических, неврологических, аутоиммунных заболеваний, для выявления генетически детерминированных патологий плода и для мониторинга беременности у женщин группы риска по преэклампсии. Возможность использования вкДНК в медицине обусловлена тем, что указанные выше патологии в большинстве случаев сопровождаются изменением концентрации вкДНК в плазме и сыворотке крови, изменением размеров ДНК-фрагментов или наличием различных мутаций. Однако вопрос о происхождении вкДНК и ее функциях остается открытым.
1. Активная экскреция экстрахромосомной ДНК лимфоцитами
Происхождение вкДНК является одним из важнейших аспектов в изучении внеклеточных нуклеиновых кислот, так как непосредственно определяет их
свойства, а следовательно, и биологические эффекты. Происхождение вкДНК в кровотоке человека нельзя считать до конца выясненным. По данным литературы, некоторые процессы, протекающие в организме, способны приводить к появлению вкДНК в плазме крови. Один из них - активный процесс экскреции внехромосомных ДНК лимфоцитами. Гипотеза активной экскреции основана на ряде экспериментальных материалов, полученных при работе с лимфоцитами и некоторыми другими клетками in vitro, и свидетельствует о наличии механизмов синтеза ДНК в ядрах клеток и активной экскреции ее во внеклеточную среду. Одними из первых, кто наблюдал процесс выделения ДНК из лимфоцитов во внеклеточную среду, была группа исследователей под руководством Rogers [3]. Установлено, что подавляющее большинство (99.9%) лимфоцитов, циркулирующих в периферической крови человека и животных, находится в состоянии интерфазы и характеризуется очень низким уровнем «спонтанного» синтеза ДНК. Авторы культивировали лимфоциты на среде, содержащей [ Н]-тимидин, в присутствии таких фитомитогенов, как фитогемаг-глютинин (ФГА) или конканавалин-А (кон-А), а также в присутствии антигенов эпидемического паротита. Уже на третьи сутки 70-90% клеток претерпевали бласт-трансформацию и синтезировали ДНК, включая в ее состав [ Н]-тимидин. Когда лимфоциты тщательно отмыли от несвязавшегося тимидина и вновь прокультивировали на свежей среде в течение 3 дней, оказалось, что клетки потеряли от 35 до 90% вновь синтезированной [3Н]-ДНК. Одновременно в культуральной среде появлялась меченая [3Н]-ДНК, количество которой постепенно нарастало. В то время как 80-95% клеток оставались жизнеспособными, количество внеклеточной [3Н]-ДНК в случае с кон-А и антигеном превышало даже тот уровень, который мог бы образоваться при гибели всех клеток культуры. Экскретируемая ДНК при этом находилась в комплексе с белками и липидами. Аналогичный процесс происходил и без стимуляции, только количество ДНК как в культуральной среде, так и в самих лимфоцитах было в 4-6 раз меньше.
Работавшая независимо группа под руководством Anker [4] почти в то же самое время доказала возможность выхода ДНК из лимфоцитов без стимулирующих агентов. При этом концентрация экскретированной во внешнюю среду ДНК является, по-видимому, постоянной величиной. Эксперимент проходил по следующей схеме: после культивирования лимфоциты отделяли от среды инкубации и отмывали, а в среде определяли количество выделившейся ДНК. Если затем отмытые лимфоциты повторно помещали в ту же среду, то они ДНК не выделяли. Но если лимфоциты помещали в свежую инкубационную среду, то экскреция ДНК возобновлялась. Результаты двух восьмичасовых экспериментов показали, что при непрерывном культивировании в течение этого срока количество экскретируемой ДНК достигало 22 мкг в 200 мл среды. Если то же самое количество клеток инкубировалось с заменой инкубационной среды через каждые 2 часа, то суммарное количество ДНК, выделенное за те же 8 часов, составляло уже 87 мкг (в суммарных 800 мл среды). То есть в последнем случае имела место более интенсивная экскреция ДНК. Молекулярная масса экс-кретируемой ДНК находилась в пределах 3.5-105 - 3.7-106 Да.
В 1990 г. Н.А. Федоров и И.С. Янева [5] подтвердили возможность синтеза и экскреции ДНК лимфоцитами без фитомитогенов, хотя и отметили незначительную интенсивность этих процессов.
Имеются данные, доказывающие, что не только лимфоциты, но и фиброб-ласты способны экскретировать ДНК [6].
Пытаясь ответить на вопрос, что является клеточным предшественником вкДНК, группа Rogers [7] выделяла ДНК из лимфоцитов, активированных ФГА. Эксперименты показали, что эта ДНК была представлена высокомолекулярной хромосомной и экстрахромосомной фракциями. С помощью [ Н]-тими-дина было показано, что вновь синтезированная ДНК медленно перемещается из хромосомной фракции в экстрахромосомную, а затем выделяется в культу-ральную среду. Работы, выполненные Rogers et al., позволяют считать экстрахромосомную ДНК непосредственным предшественником внеклеточной ДНК.
Необходимо отметить, что сами экстрахромосомные ДНК представлены в клетках двумя классами. К первому классу относят митохондриальную ДНК, второй класс включает в себя кольцевые ядерные ДНК, гетерогенные по размеру, числу молекул на клетку и составу входящих в них нуклеотидных последовательностей. ДНК этого класса можно подразделить по размеру на большие кольцевые ДНК, называемые эписомами (100-900 т.п.н.), и малые гетерогенные кольцевые ДНК (мгкДНК) [8, 9]. Размеры мгкДНК варьируют от 150 п.н. до 20 т.п.н. и в клетке составляют от 0.030 до 0.001% от количества хромосомной ДНК. Так как основным методом препаративного получения мгкДНК является выделение по Хирту [10], то эта фракция получила название фракции Хирта. Эписомы, содержащие амплифицированные копии генов, - феномен чрезвычайно редкий даже в трансформированных клетках с присущей им нестабильностью генома. Они практически никогда не выявляются в нормальных клетках и не появляются во внеклеточном пространстве [11]. Напротив, фракция Хирта, как оказалось, по своему составу аналогична внеклеточной ДНК, а это означает, что именно она может быть предшественником ДНК, экскретиру-емой клетками. По этой причине в последующем, говоря об экстрахромосомной ДНК как предшественника вкДНК, будет подразумевается именно фракция Хирта.
Еще Rogers [3, 7] отметил, что репликация и экскреция экстрахромосомной ДНК - процессы необычные, сопровождающие активацию лимфоцитов, но не обязательно связанные с митозом. Чуть позже Distelhorts et al. [12] показали, что экскретируемая ДНК может синтезироваться в логарифмическую фазу роста клеток, а в 1980-е гг. вышел ряд работ, доказавших автономную репликацию ДНК фракции Хирта [8, 13-15]. Так, в синтезе новых молекул принимает участие ДНК-полимераза, отличная от ДНК-полимеразы а, так как процесс мало чувствителен к афидиколину и цитозинарабинозиду. Репликация мгкДНК может происходить по типу катящегося кольца при участии, например, ДНК-по-лимеразы у, и не приурочена к какой-либо фазе клеточного цикла [8].
Существование активной экскреции ДНК ставит вопрос о наличии механизма транспорта ДНК через мембрану. Высвобождению ДНК из лимфоцитов способствуют трипсин, проназа и плазмин, а также дефицит ионов Са2+ и Mg2+. Процесс выхода ДНК полностью, но обратимо ингибируется избытком Са2+ и
дибутирил-цАМФ. Тот факт, что клетки, обработанные трипсином в присутствии ионов Са2+, выделяют чрезвычайно мало ДНК, а в среде без Са2+ ее количество максимально, свидетельствует о важной роли мембранных структур в этом процессе [6, 12]. Предположительно, перенос нуклеиновой кислоты внутри и между клетками осуществляется с помощью везикулярного транспорта, так как размеры переносимых молекул ДНК велики. В работе Adams и Mcintosh [6] наблюдали экскрецию ДНК из фибробластов цыпленка. Через 3 ч после введения [3Н]-тимидина, комплекс, содержащий ДНК с молекулярной массой 5-10 Да, появляется в цитозоле, а через 5 ч - вне клеток. По мнению авторов, ДНК, покидая ядро, перемещается недиффузно по цитозолю, а по канальцам, соединяющим клеточную оболочку с ядром. Однако других сведений о механизмах трансмембранного переноса ДНК нет, и вопрос остается открытым.
Таким образом, возможность экскреторного происхождения вкДНК в культуре клеток является вполне доказанной. Что же касается непосредственно вкДНК плазмы, то обнаруживается одно противоречие: низкомолекулярные фрагменты ДНК, входящие в состав нуклеопротеидных комплексов при СКВ и других патологиях, имеют линейную форму [16], в отличие от кольцевых экстрахромосомных ДНК. В этом случае нельзя исключить вероятность внутриядерной деградации экстрахромосомной ДНК за счет активации ядерных нук-леаз [17, 18]. Другое объяснение может быть основано на выявлении нуклеаз-ной активности антител, реагирующих с ДНК непосредственно в плазме крови [19-23]. Такие антитела относятся к классу IgG и получили название абзимов. На сегодняшний день имеется ряд работ о присутствии абзимов в сыворотке крови больных различными заболеваниями [19, 20, 22].
2. Внеклеточная ДНК как результат гибели клеток
После серии экспериментов с лимфоцитами Stroun et al. в 1987 г. [24] сообщили о том, что помимо экскретированной ДНК, в культуральную жидкость может попадать 9-12% ДНК из погибших клеток. В 1990 г. И.С. Янева и Н.А. Федоров [5] при электрофорезе вкДНК, выделенной из среды культивирования лимфоцитов, помимо высокомолекулярной фракции (21 т.п.н.), наблюдали диффузное распределение исследуемого препарата ДНК в средней части геля. Однако радиоактивный [3Н]-тимидин, которым была помечена вкДНК, фиксировался практически полностью в участке геля, где располагалась полоса ДНК размером 21 т.п.н. Это позволило авторам утверждать, что только высокомолекулярная фракция ДНК является собственно экскреторной. Поскольку стимуляция лимфоцитов ФГА шла параллельно с нуклеолитическим процессом, генерирующим короткие фрагменты ДНК, то авторы предположили, что ДНК, располагающаяся в средней части геля и не содержащая радиоактивного тими-дина, представляет собой часть ДНК хроматина разрушенных лимфоцитов.
Таким образом, альтернативным источником плазменной вкДНК могут быть процессы гибели клеток и деградации их хроматина, происходящие в организме. Процесс естественной элиминации клеток получил название «апоп-тоз», а образующиеся при этом остатки клеток, упакованные в мембрану, названы апоптотическими тельцами. В норме апоптотические тельца фагоцитируются макрофагами, нейтрофилами и дендритными клетками сразу же после
их появления [25-28]. Активации процесса фагоцитоза способствуют уже сами клетки, вступающие в апоптоз, экспрессируя на своей поверхности фосфати-дилсерин [28]. Поэтому в норме апоптотические продукты в плазме не выявляются. Вероятно, при физиологической элиминации клеток они и не выходят в кровоток. Появление большого количества апоптотических телец в плазме крови свидетельствует либо о действии факторов, приводящих к усилению апоптоза в тканях, либо о нарушении фагоцитоза [25, 27]. Подтверждением апоптотиче-ской природы вкДНК при различных типах патологии служит тот факт, что при электрофорезе низкомолекулярной вкДНК обнаруживается в среднем четыре фракции возрастающей длины, при этом доминирующим является фрагмент, соответствующий размеру нуклеосомы (140-200 п.н.), а остальные фрагменты кратны его длине. Из таких субъединиц состоит хроматин ядер, и они могут образовываться под воздействием Са2+/Mg2+-зависимой эндонуклеазы, активация которой является доказанной при лучевой и других видах патологии [17, 18].
Единственный аргумент, противоречащий данной гипотезе, представлен в работе В.Г. Владимирова [29]. Авторы показали, что ДНК-комплексы, выделенные из плазмы крови облученных животных, имеют иной качественный состав и другие соотношения белков, липидов и РНК, нежели хроматин. Однако принимая во внимание то, что в работе рассматривается лучевая патология и то, что низкомолекулярная ДНК, появляющаяся в крови крыс после воздействия у-облучения, почти не гибридизуется с ДНК, выделенной из плазмы крови интактных животных [30, 31], можно констатировать существенные структурные различия между этими видами вкДНК [16]. Таким образом, гипотеза о происхождении вкДНК путем деградации хроматина апоптотических клеток не может быть отвергнута на основании работы [29].
Апоптотическое происхождение можно считать вполне доказанным для фе-тальной низкомолекулярной вкДНК, циркулирующей в плазме крови беременных женщин [32]. Эта ДНК по молекулярному весу кратна размерам нуклеосо-мы, появляется в плазме крови матери в результате постоянно идущего апопто-за трофобласта и элиминируется в течение нескольких часов после родов [33].
Выясняя происхождение вкДНК у новорожденных детей, мы наблюдали морфологические изменения некоторой части лимфоцитов новорожденных при внутриутробном инфицировании, пневмопатии и перинатальной патологии ЦНС (уменьшение площади ядра, увеличение конденсации хроматина и снижение содержания ДНК в ядре клетки). Такие изменения характерны для начала процесса апоптоза. Одновременно у детей обнаруживался высокий уровень внеклеточной ДНК низкой молекулярной массы [34]. Результаты исследования подтверждают, что апоптоз лимфоцитов является одной из причин появления вкДНК в плазме крови новорожденных детей при патологии.
По-видимому, причиной появления вкДНК в кровотоке может быть и некротическое поражение тканей под воздействием повреждающих факторов. Но так как размеры молекул вкДНК, выявляемых в плазме крови при патологии, соответствуют размерам нуклеосом, то авторы предпочитают объяснять это явление именно апоптозом.
3. Другие гипотезы появления вкДНК в плазме крови
Существует третья точка зрения, дополняющая две предыдущие. Еще в 1971 г. Lerner et al. [35] обнаружили особую фракцию внутриклеточной, но неядерной ДНК. Эта ДНК находится в цитоплазме и ассоциирована с мембраной диплоидных лимфоцитов человека. От ядерной и митохондриальной ДНК она отличается не только своим расположением в клетке, но и временем синтеза в клеточном цикле, а также некоторыми физическими свойствами. Функции этой ДНК не были установлены, но высказано предположение, что взаимодействие IgG-рецептора в мембране лимфоцита с иммуногеном может быть причиной конформационных изменений, приводящих к амплификации определенных генов, сопровождающих дифференцировку лимфоцитов. Другое предположение касается вовлечения цитоплазматической ДНК в межклеточные взаимодействия. В таком случае возможен транспорт этой ДНК через мембрану и появление ее в кровотоке в виде вкДНК. Эту гипотезу подтверждает и работа Anker et al. [4], в которой показано, что экскретируемая ДНК родственна ядерной, но содержит значительное количество уникальных последовательностей. По своим характеристикам она весьма напоминает цитоплазматическую ДНК, связанную с мембранами лимфоцитов.
Высказано мнение, согласно которому, внеклеточная ДНК может синтезироваться микроорганизмами, присутствующими в крови [36].
Stroun et al. [37] предположили, что некоторое количество вкДНК может синтезироваться в среде после удаления лимфоцитов. Для доказательства существования бесклеточного синтеза ДНК авторы использовали меченый дезок-сицитидин. Поскольку процесс ингибировался ДНКазой, РНКазой и актиноми-цином D, было высказано предположение, что синтез идет по репликативному механизму, а затравкой или даже матрицей в данном случае может служить РНК. В клетках эукариот ядерная ДНК ассоциирована с полимеразой, следовательно, фермент может попадать в экскретируемый комплекс вместе с ДНК. Представленные данные, включая предположение о защите репликативного комплекса мембранами, логично объясняют механизм внеклеточного синтеза ДНК [16]. Исходя из этого, можно было бы предположить, что репликация ДНК возможна и внутри апоптотических телец, содержащих необходимые для синтеза части ядерного аппарата клетки. Однако, кроме работы Stroun et al., других доказательств внеклеточного синтеза ДНК, тем более in vivo, на данный момент в литературе не представлено.
Заслуживает внимания работа отечественных авторов, [38], показавшая, что у здоровых доноров около 90% внеклеточных нуклеиновых кислот связано с поверхностью клеток крови. Напротив, у онкологических больных наблюдается отсутствие нуклеиновых кислот на внешней мембране форменных элементов при выраженном увеличении концентрации вкДНК в плазме. Видимо, такое «слущивание» ДНК вносит вклад в увеличение концентрации плазменной вкДНК, хотя большая часть вкДНК при раке представлена молекулами опухолевого происхождения, попадающими в кровоток либо за счет лизиса клеток на стыке между опухолью и кровотоком, либо за счет разрушения циркулирующих опухолевых клеток или микрометастазов [39].
Заключение
На наш взгляд, несколько приведенных гипотез не исключают друг друга, а лишь отражают различное происхождение вкДНК в норме и при патологии. Суммируя литературные данные, можно предположить, что физиологические концентрации вкДНК у здоровых лиц поддерживаются за счет экскреции лимфоцитами высокомолекулярной экстрахромосомной ДНК (фракции Хирта). Появление при патологии низкомолекулярных фрагментов может быть результатом: а) деградации высокомолекулярной ДНК внутриклеточными эндонук-леазами или внеклеточными абзимами, б) усиления репликации и экскреции низкомолекулярной фракции Хирта, как побочного продукта реаранжировок генома, в) усиления апоптоза клеток в организме при нарушении фагоцитарной функции или результатом некротического поражения тканей. Вероятно, в некоторых случаях указанные выше процессы могут протекать одновременно.
Summary
N.O. Tuaeva, Z.I. Abramova. The extracellular DNA in a human bloodstream. I. The origin of extracellular DNA.
The fact of extracellular nucleic acids existence is old-established. But the origin and functions of these nucleic acids are not yet clear. In present review the different hypothesis about origin of blood plasma cell-free DNA are discussed. In particular, the possibilities of DNA active excretion by immune system cells and apoptotic origin of cell-free DNA are considered. Some others opinions, which exist in literature sources, are briefly reviewed.
Литература
1. Mandel P., Metais P. Les acids nucleiques du plasma sanguine chez Homme // CR Acad. Sci. Paris. - 1948. - V. 142. - P. 241-243.
2. Tan E.M., Schur P.H., Carr R.H., Kunkel H.G. Deoxyribonucliec acid (DNA) and antibodies to DNA in the serum of patients with systemic lupus erythematosus // J. Clin. Invest. - 1996. - V. 45. - P. 1732-1740.
3. Rogers J.C., Boldt D., Kornfeld S. Excretion of deoxyribonuclein acid by lymphocytes stimulated with phytohemagglutinin or antigen // Proc. Nat. Acad. Sci. USA. - 1972. -V. 69, No 7. - P. 1685-1689.
4. Anker P., Stroun M., Mourice P.A. Spontaneous release of DNA by human blood lymphocytes in the course of as shown in an in vitro system // Cancer Res. - 1975. - V. 35, No 9. - P. 2375-2382.
5. Янева И.С., Федоров Н.А., Боровкова Т.В., Севастьянова М.Г. Выделение, идентификация и электрофоретические свойства ДНК, секретируемой лимфоцитами человека // Биохимия. -1990. - Т. 55, Вып. 4. - С. 745-753.
6. Adams D., Mdntosh A. Studies on the cytosolic DNA of chick embryo fibroblasts and its uptake by recipient cultured cells // Int. J. Biochem. - 1985. - V. 17, No 10. - P. 10411052.
7. Rogers J.C. Identification of an intracellular precursor to DNA excreted by human lymphocytes // Proc. Nat. Acad. Sci. USA. - 1976. - V. 73, No 9. - P. 3211-3215.
8. Сальников К.В. Экстрахромосомная ДНК в клетках млекопитающих // Цитология. - 1990. - Т. 32, № 11. - С. 1061-1071.
9. БелохвостовА.С. Экстрахромосомные ДНК в клетках млекопитающих // Успехи соврем. биол. - 1997. - Т. 177, Вып. 4. - С. 433-441.
10. Hirt B. Selective extraction of polyoma DNA form infected mouse cell-cultures // J. Mol. Biol. - 1967. - V. 26. - P. 365-369.
11. Сухова Т.И., Сердюк О.И., Алехина Р.П., Шелехов В.П., Моисеев В.Л., Арсенин С.Л., Раевская Г.Б., Лихтенштейн А.В. Свойства свободных ДНК, обнаруживаемых в клеточных ядрах // Молек. биол. - 1996. - Т. 30, Вып. 3. - С. 552-563.
12. Distelhorst C.W., Dennin R.H., Cramer K., Rogers J.C. Selective release of excreted DNA sequences from phytogemagglutinin-stimulated human peripheral blood lymphocytes // J. Clin. Invest. - 1978. - V. 62, No 5. - P. 1204-1217.
13. Kiyama R., Oishi M. Pulse-labeled small closed circular DNA in cultured mouse and human cells // Plasmid. - 1987. - V. 17. - P. 215-222.
14. Von Hoff D.D. Needham-Van Devanter D.R., Yncel J., Windle B.E., Wahl G.M. Amplified human myc oncogenes localized to replicating submicroscopic circular DNA molecules // Proc. Nat. Acad. Sci. USA. - 1988. - V. 85. - P. 2483-2490.
15. RuizI.C., Choi K., Von Hoff D.D., Roninson J.B., Wahl G.M. Autonomously replicating episomes contain mdr-1 genes in a multigrug-resistant human cell line // Mol. Cell. Biol. - 1989. - V. 9. - P. 109-116.
16. Владимиров В.Г., Васильева И.Н, Шарова Л.А. Внеклеточная ДНК и ее значение для современной медицины // Клин. мед. и патофизиол. - 1998. - № 1-2. - С. 112-119.
17. Cohen J., Duke R.C. Glucocorticoid activation of a calcium-dependent endonuclease in thymocyte nuclei leads to cell death // J. Immunol. - 1984. - V. 132. - P. 38-42.
18. Sellins K.S., Cohen J.J. Gene induction by y-irradiation leads to DNA fragmentation in lymphocytes // J. Immunol. - 1987. - V. 139. - P. 3199-3206.
19. Канышкова Т.Г., Власов А.В., Хлиманков Д.Ю., Барановский А.Г., Щипицын М.В., Ямковой В.И., Бунева В.Н., Семенов Д.В., Невинский Г.А. ДНК- и РНК-гидроли-зующие антитела из молока человека и их возможная биологическая роль // Молек. биол. - 1997. - Т. 31, № 6. - С. 1082-1091.
20. Невзорова Т.А., Темников Д.А., Винтер В.Г. Особенности ДНК-гидролизующей активности антител при системной красной волчанке // Биохимия. - 2003. - Т. 68, № 12. - С. 1616-1623.
21. Бунева В.Н., Кудрявцева А.Н., Гальвита А.В., Дубровская В.В., Хохлова О.В., Калинина И.А., Галенок В.А., Невинский Г.А. Динамика уровня нуклеазной активности антител крови женщины во время беременности и лактации // Биохимия. - 2003. -Т. 63, Вып. 8. - С. 1088-1100.
22. Burlingame R. W., Carvera R. Anti-chromatin (anti-nucleosome) autoantibodies // Autoimmunity Rev. - 2002. - No 1. - P. 321-328.
23. Винтер В.Г., Невзорова Т.А., Коновалова О.А., СалаховМ.Х. Применение атомно-силовой микроскопии для исследования ДНК-гидролизующей активности антител к ДНК // Доклады РАН. - 2005. - Т. 405, № 3. - С. 409-411.
24. Stroun M., Anker P., Lyautey J. Isolation and characterization of DNA from the plasma of cancer patients // Tur. J. Cancer Clin. Oncol. - 1987. - V. 23, No 6. - P. 707-712.
25. Lorenz H-M., Herrmann М., Winkler Т. Role of apoptosis in autoimmunity // Apoptosis. -2000. - V. 5, No 5. - P. 443-449.
26. Fadok V.A., Chimini G. The phagocytosis of apoptotic cells // Immunology. - 2001. -V. 13. - P. 365-372.
27. Pisetsky D.S. The immune response to cell death in SLE // Autoimmunity Rev. - 2004. -V. 3. - P. 500-504.
28. HuppertsB., Kingdom J.C.P. Apoptosis in the trophoblast - role of apopotsis in placenta morphogenesis // J. Soc. Ginecol. Investig. - 2004. - V. 11. - P. 353-362.
29. Владимиров В. Г., Тищенко Л.И., Суркова Е.А., Васильева И.Н. Внеклеточная ДНК крови после облучения // Радиационная биол. радиоэкология. - 1993. - Т. 33, Вып. 3(6). - С. 854-860.
30. Владимиров В.Г., Белохвостов А.С., Шерлина С.С., Васильева И.Н., Воскресенский А.М. Содержание внеклеточной ДНК в крови облученных крыс // Бюл. экспе-рим. биол. -1992. - Т. 113, № 2. - С. 188-191.
31. Белохвостов А. С., Лебедев С.Н., Шерлина С. С. Изменение фракционного состава нуклеиновых кислот сыворотки крови при радиационных поражениях. Нарушения в ранние сроки после g-обучения крыс // Радиобиол. - 1987. - Т. 27, Вып. 4. -С. 505-509.
32. Bishoff F.Z., Dang D., Horne C., Marquez-Do D., Brincley W.R., Levis D.E. Fetal DNA in maternal plasma circulates as apoptotic bodies: elucidations of structural nature of fetal DNA for non-invasive prenatal genetic diagnosis // Am. J. Hum. Genet. - 2003. -V. 73. - P. 189.
33. Bianchi D.W. Circulating fetal DNA: its origin and diagnostic potential - a review / Placenta. - 2004. - V. 25. - Supplement A, Trophoblast Research. - V. 18. - P. 93-101.
34. Туаева Н.О., Винтер В.Г., Софронов В.В., Емикеева В.А. Концентрация и фракционный состав внеклеточной ДНК у новорожденных детей с перинатальной патологией ЦНС // Учен. зап. Казан. ун-та. Сер. Естеств. науки. - 2005. - Т. 147, Кн. 2. -С. 196-200.
35. Lerner R.A., Meinke W., Goldstein D.A. Membrane-associated DNA in the cytoplasm of diploid human lymphocytes // Proc. Nat. Acad. Sci. USA. - 1971. - V. 68, No 6. -P. 1212-1216.
36. Stroun M., Anker P., Maurice P., Lyautey J., Ledderey C., Beljanski M. Neoplastic characteristics of the DNA found in the plasma of cancer patients // Oncology. - 1989. -V. 46. - P. 318-322.
37. Hung P.P., Mao J.C., Ling C.M., Overby L.R. Hybridization of Dane particle DNA with the free plasma DNA of hepatitis carriers // Nature. - 1975. - V. 253, No 5492. - P. 571-572.
38. Тамкович С.Н., Лактионов П.П., Брызгунова О.Е. Уровень внеклеточных нуклеиновых кислот, связанных с поверхностью форменных элементов крови, в диагностике рака молочной железы // Молек. медицина. - 2005. - № 2. - С. 46.
39. Stroun M., Lyautey J., Lederrey A. About the possible origin and mechanism of circulating DNA. Apoptosis and active DNA release // Clin. Chem. Acta. - 2001. - V. 313. -P. 139-142.
Поступила в редакцию 28.08.06
Туаева Наталья Олеговна - научный сотрудник лаборатории биохимии нуклеиновых кислот при кафедре биохимии Казанского государственного университета. E-mail: Natalya.Tuaeva@ksu.ru
Абрамова Зинаида Ивановна - доктор биологических наук, профессор, заведующий лабораторией БНК Казанского государственного университета. E-mail: Zinaida.Abramova@ksu.ru
