CC BY
45
УДК 619:615.37:636.22/.28.083.37
ВЛИЯНИЕ СХЕМ СКАРМЛИВАНИЯ АРКУСИТА НА УРОВЕНЬ ЕСТЕСТВЕННОЙ РЕЗИСТЕНТНОСТИ ОРГАНИЗМА И ПРОДУКТИВНОСТЬ У ТЕЛЯТ
A.B. АРХИПОВ, М.А. ЗАХАРЧЕНКО МГАВМиБ им. К. И. Скрябина
Е.В. КРАПИВИНА, Г.Д. ЗАХАРЧЕНКО, A.B. КРИВОПУШКИН ФГБОУ ВПО «Брянская государственная сельскохозяйственная академия»
Изучение эффективности скармливания Аркусита по двум схемам (с рождения в течение 14 суток по 5 мкг/кг живой массы и с рождения в течение 21 суток по 12 мкг/кг живой массы) показало, что скармливание Аркусита телятам по обеим использованным схемам обусловило существенное увеличение живой массы, валового и среднесуточных приростов живой массы с тенденцией к более высокой продуктивности у животных, получавших с рождения в течение 21 суток препарат в дозе 12 мкг'кг живой массы. Эта же схема использования Аркусита способствовала повышению уровня естественной резистентности организма, на что указывает увеличение активности кислородозависимой микробицидности нейтрофилов крови у 60-суточных телят.
Неспецифическая защита (естественная резистентность) - это совокупность механизмов, обеспечивающих на неспецифической основе элиминацию из организма чужеродной генетической информации или ликвидацию последствий ее воздействия. Количество нейтрофилов и их функциональная активность являются важнейшим критерием состояния естественной резистентности организма [1]. Это связано с тем, что фагоциты определяют базаль-ный уровень резистентности, а также опосредуют активность других эффекторов, в частности антител и сенсибилизированных лимфоцитов [2]. Воздействие неблагоприятных факторов внешней среды различной природы приводит к снижению резистентности и продуктивности животных. В связи с этим следует считать оправданным применение таких адаптоге-нов, как Аркусит. Это негормональный препарат, созданный на основе синтетических анти-оксидантов нового поколения - дигидрохлорид 2 - метил - 4 - димитриламинометилбензи-митазол-5-ола [3].
Аркусит - мощный антиоксидант, обладающий стрессопротекторными свойствами. В организме животных он ингибирует образование и токсическое действие продуктов пере-кисного окисления липидов) и предотвращает избыточное накопление их в тканях, тем самым защищая от разрушения жирорастворимые витамины, половые гормоны и ферменты, участвующие в расщеплении перекисей, что создает благоприятные условия для нормализа-
ции лигшдного и белкового обмена, функций биомембран, способствует ускорению роста и повышению продуктивности животных [4]. Установлено положительное влияние Аркусита на физиологическое состояние телят и приросты живой массы [5, б].
Целью эксперимента являлось изучение влияния схем скармливания аркусита на уровень естественной резистентности организма и динамику живой массы у телят.
Материалы и методы. Научно-производственный опыт проводился в СПК «Красный рог» Поченского района Брянской области на телятах швицкой породы с рождения до 60-суточного возраста. По принципу аналогов были сформированы три группы. Первая группа - контрольная (10 голов), телята этой группы получали в качестве основного рациона (ОР) молоко. Животные 2 группы (7 голов) дополнительно к ОР с 1-суточного возраста в течение 14 суток ежедневно утром получали Аркусит по 5 мкг/кг живой массы. Телята 3 группы (10 голов) дополнительно к ОР с 1-суточного возраста в течение 21 суток ежедневно утром получали Аркусит по 12 мкг/кг живой массы. Содержание подопытных телят соответствовало ветеринарно-зоогигиеническим требованиям. При рождении и в 60 суточном возрасте проводили индивидуальное взвешивание всех подопытных животных, в 60- суточном возрасте у 5 телят из каждой группы до утреннего кормления брали пробы крови из яремной вены для анализа.
Фагоцитарный показатель (ФП, %) рассчитывали как процент нейтрофилов, способных к поглощению частиц латекса, фагоцитарный индекс (ФИ, у.е.) - среднее число частиц латекса, поглощенных одним активным нейтрофилом [7]. Кислородозависимую микроби-цидную активность нейтрофилов определяли с помощью НСТ-теста, основанного на восстановлении поглощешюго растворимого красителя нитросинего тетразолия в нерастворимый диформазан [8, 9]. Индекс активации нейтрофилов (ИАН) вычисляли согласно инструкции "Риакомплекс" по использованию НСТ-тес:т набора. Поглотительную способность нейтрофилов (ФП, %. ФИ, у.е.) и активность их оксидазных систем (+НСТ, %, ИАН) оценивали в двух состояниях: базальном (баз.) - в свежевзятой крови, стабилизированной гепарином, и стимулированном (стим.) - после внесения в пробы крови зимозана, что моделирует условия бактериального заражения и характеризует адаптационные резервы поглотительной и мик-робицидной способности нейтрофильных гранулоци гов [10]. Показатель резерва оксидазной способности нейтрофилов периферической крови (ПР) и коэффициент их метаболической активации (К) рассчитывали по Пахмутову И.А., Ульяновой М.С. [11]. Содержание популяции Т-лимфоцитов (Е-РОЛ %) определяли с помощью реакции розеткообразования лимфоцитов с эритроцитами барана, В-лимфоцитов (М-РОЛ, %) - с эритроцитами мыши [12]. Субпопуляции иммунорегуляторных Т-лимфоцитов, обладающих преимущественно хелперной (Е-РОЛтр, %) и киллерно/супрессорной (Е-РОЛ™ %) активностью, - в тесте с теофиллином
[13]. Для выявления статистически значимых различий использован критерий Стьюденга-Фишера по Н. А. Плохинскому [14]. В качестве значений физиологической нормы принимали интервалы соответствующих показателей, приведенные в литературе [7, 15].
Результаты исследований. Изучение поглотительной способности нейтрофилов крови у телят подопытных групп показало (табл. 1). чго фагоцитарный показатель (ФП) в ба-зальном состоянии у животных превышал нормативные значения без существенных межгрупповых различий, что указывает на наличие в их организме факторов, активирующих нейтрофилы. ФП в стимулированных условиях (после внесения в пробы крови зимозана) у телят всех подопытных групп не имел достоверно значимых отличий от величины ФГ1 в ба-зальных условиях. Однако в нейтрофилах крови телят 1 группы отмечена тенденция к снижению ФП в стимулированных условиях по сравнению с базальными, на 10,63%, что свидетельствует о переактивации нейтрофилов крови телят контрольной группы под влиянием зимозана и, следовательно, отсутствии у них адаптационного резерва этого защитного механизма. У телят 2 и 3 групп, напротив, отмечена тенденция к повышению ФП в стимулированных условиях по сравнению с базальными, на 14,69 и 19,63% соответственно. Это указывает на тенденцию к повышению адаптационного резерва поглотительной способности нейтрофилов крови телят под влиянием Арку сита.
Фагоцитарный индекс (ФИ) в базальных условиях у животных всех подопытных групп существенно не различался и был несколько выше, чем в стимулированных условиях, что указывает на отсутствие адаптационного резерва интенсивности поглощения нейтрофи-лами крови чужеродного материала.
Анализ активности кислородозависимых ферментных систем микробицидности нейтрофилов крови показал (табл. 1), что у телят 3 группы относительное количество нейтрофилов крови, проявляющих в базатьных условиях оксидазную активность соответствовало нормативным значениям и было достоверно ниже, чем у животных 1 и 2 групп на 63,18 и 83,57% соответственно. Это свидетельствует о более благополучном состоянии организма у телят, получавших с 1 по 21 сутки жизни Аркусит в дозе 12 мкг/кг живой массы в сутки. Относительное количество нейтрофилов, проявляющих кислородозависимую микробицидность после внесения в пробы крови зимозана. по сравнению с базальными условиями, достоверно значимо повышалось только у телят 3 группы (на 857,14%), у животных 1 и 2 групп отмечена лишь тенденция к увеличению числа таких клеток на 95,79 и 44,13% соответственно.
Таблица 1
Функциональная активность нейтрофилов крови подопытных телят
Показатели I группа, п=5 2 группа, п=5 3 фуппа, п=5
ФП баз., % 50,80*3,56 42,20*6,77 43,80±5,30
ФП стим., % 45,40*6,27 48,40*6,54 52,40*7,79
ФИ баз., у.е. 5,46±0,39 5,02*0,37 4,72±0,30
ФИ стим., у.е 4,74*0,13 4,89*0,36 4,65*0,39
+НСТ баз., % 9,50*1,68 21,30*6,51 3,50*0,76"
+НСТ стим., % 18,60*5,52 30,70*5,47 33,50x2,16
ИАП баз. 0,11*0,03 0,27*0,10 0,04*0,01'
ИАН стим. 0,22*0,08 0,39*0,08 0.44^0,04
К 0,41*0,15 0,36*0,10 0,89*0,03"
ПР 2,39*0,79 1,65*0,25 11,76*2,68"
Примечание: здесь и далее - * - р<0,05 по отношению к телятам контрольной группы, ' - р<0,05 по отношению к телятам 2-ой группы.
У телят 3 группы по сравнению с животными 1 и 2 групп были достоверно выше коэффициент метаболической активации (на 117,07 и 147,22%) и показатель резерва (на 392,05 и 612,73% соответственно). Это свидетельствует о стимулирующем воздействии Аркусита на активность кислородозависимых механизмов микробицидности нейтрофилов при использовании его с рождения в течение 21 суток в дозе 12 мкг/кг живой массы в сутки.
Изучение динамики живой массы телят подопытных групп показало (табл. 2) отсутствие при рождении существенных межгрупповых различий. Через 60 суток живая масса у тенят 2 и 3 групп была лиитоверно выше, чем у контрольных животных на 23,35 и 26,83% со-ответствешю. Валовой прирост живой массы и среднесуточные приросты живой массы за опытный период у животных 2 и 3 групп также были достоверно выше, чем контрольных животных на 44,90 и 48,15% и 44,78 и 47,74% соответственно. При этом следует отметить тенденцию к более высоким значениям изученных показателей, характеризующих продуктивность у животных 3 группы по сравнению с телятами 2 группы: живой массы в 60-суточном возрасте на 2,82%; валового и среднесуточных приростов живой массы за опытный период на 2,24 и 2,05 соответственно.
Таблица 2
Динамика живой массы подопытных телят
Показатели 1 группа, п=10 2 группа, п=7 3 группа, п=10
Живая масса при рождении, кг 26,40*0,31 25,00 * 0,62 26,10*0,43
Живая масса в 60-суточном возрасте, кг 61,50* 1,19 75,86* 1,39* 78,00 * 0,84*
Валовой прирост живой массы за опыт, кг 35,10* 1,18 50,86* 1,56* 52,00 * 0,70*
Среднесуточный прирост живой массы за ; опыт, г 585,40 * 19,58 847,57* 26,09* 864,90* 10,97*
Таким образом, скармливание Аркусита телятам по обеим использованным схемам обусловило существенное увеличение живой массы, валового и среднесуточных приростов живой массы с тенденцией к более высокой продуктивности у животных, получавших с рождения в течение 21 суток препарат в дозе 12 мкг/кг живой массы. Эта же схема использования Аркусита способствовала повышению уровня естественной резистентности организма, на что указывает увеличение активности кислородозависимой микробицидности нейтрофи-лов крови у 60-суточных телят.
ЛИТЕРАТУРА
1. Сапов И.А., Новиков B.C. Неспецифические механизмы адаптации человека. Л.: Наука, 1984,- 146 с.
2. Петров Р.В. Иммунология.- М.: Медицина, 1987,- 415 с.
3. Аркусит. ТУ 9325-005-51022776-2007. Вводится без ограничения срока действия. Разработаны Институтом биохимфизики им. Н.М.Эмануэля и МГАВМиБ им. К.И.Скрябина.
4. Архипов A.B., Кузнецов Ю.В. Инструкция по применению Аркусита для повышения резистентности, воспроизводительных функций и профилактики стресса у с.-х. животных / Россельхознадзор. М., 2007. - 3 с.
5. Архипов A.B., Захарченко М.А., Захарченко Г.Д., Храмкова Е.Г. Эффективность антиоксидантов в рационах телят. / Современные научно-практические достижения в морфологии животного мира // Материалы 1 ?\4еждународной научно-практической Интернет-конференции 13 декабря 2010-13 февраля 2011 года. Брянск, 2011. - С. 10-11.
6. Храмкова Е.Г,, Захарченко Т.Д. Влияние препарата Аркусит на рост и разви тие телят / Совершенствование технологии производства продукции животноводства, лечения и профилактики болезней сельскохозяйственных животных // Материалы 26 научно-практической конференции студентов и аспирантов. Брянск. Из-во Брянской ГСХА, 2010. - С. 86-87.
7. Чумаченко В.Е., Высоцкий A.M., Сердюк H.A., Чумаченко В.В. Определение естественной резистентности и обмена веществ у сельскохозяйственных животных.- Киев: Урожай, 1990.- 136 с.
8. Шубич М.Г., Нестерова И.В., Сгарченко В.М. Тест с нитросиним тетразолием в оценке иммунологического статуса детей с гнойно-септическими заболеваниями // Лаб. дело, 1980.-№7,- С. 342-344.
9. Шубич, М.Г., Медникова В.Г. НСТ-тест у детей в норме и при гнойно-бактериальных инфекциях // Лаб. дело, 1978. - № 1. - С.663-666.
10. Хаитов Р.Б., Пинегин Б.В., Истамов Х.И. Экологическая иммунология. М.: ВНИ-РО, 1995.-219 с.
11. Пахмутов И.А., Ульянова М.С. Оценка функциональной активности нейтрофилов крови животных // Ветеринария, 1984.- № 3,- С. 68-69.
12. Понякина И.Д., Лебедев К.А., Васенович М.И. и др. Способ определения иммунологического состояния организма. //А. с. 1090409 (РФ) МКИ3 А 61 К 39/00.- Моск. науч.-исслед. ин-туха, горла и носа (РФ).- № 3429.198/28-13; заявл. 23.04.82; опубл. 07.05.84, Вюл. №17.
13. Петров Р.В., Хаитов P.M., Пенегян Б.В. и др. Оценка иммунного статуса человека при массовых обследованиях (методология и методические рекомендации).- М.: Медицина, 1989,- 32 с.
14. Плохинский, H.A. Биометрия. - Из-во Сибирского отделения АН СССР, Новосибирск, 1961.-362 с.
15. Методы ветеринарно-клинической лабораторной диагностики: Справочник / И.П. Кондрахин, A.B. Архипов, В.И. Левченко и др.; Под ред. И.П. Кондрахина. - М.: КолосС., 2004. - 520 с.
A.V. Arhipov1, E.V. Krapivina", MA. Zaharchenko1, G.D. Zaharchenko2,
A.V. Krivopushkin2 1 - MGAVMiB them. K.I. Scriabin 2 - Bryansk Stats Agricultural Academy Summary
Study of the effectiveness of two schemes of feeding Arkusita (from birth for 14 days to 5 mg / kg body weight and from birth for 21 days to 12 mg / kg body weight) showed that feeding calvcs Arkusita on both schemes used resulted in a significant increase in live masses, Total and duily gain of body weight with a trend towards higher productivity in animals treated from birth for 21 days in the drug dose of 12 mg / kg bw. The same scheme using Arkusita helped raise the level of natural resistance, as indicated by increased oxidize microbicidal activity of blood neutrophil in 60-day-old calves.
