CC BY
12
У подопытных животных после 1-го месяца затравки выявлены достоверные изменения в продолжительности отдельных стадий цикла. Так, после 1-го месяца затравки отмечено достоверное укорочение стадии течки: в 1-й и 2-й группах крыс на 1,03^=0,12 дня; в контроле—2,1 дня; Р<[0,05. Укорочение стадии течки наблюдалось на протяжении всех 4 месяцев эксперимента. После восстановительного периода астральный цикл в 1-й и 2-й группах нормализовался. Со 2-го месяца затравки отмечено достоверное удлинение межтечкового периода у крыс 1-й группы (4,78=^0,36 дня; Р<0,05; в контроле 2,72=^0,18 дня). На 3-м месяце затравки также отмечено достоверное удлинение межтечкового периода: контроль 2,02—0,12 дня, 1-я группа — 3,85=2=0,42 дня, 2-я группа —3,8=2=0,42 дня; Р<0,05; на 4-м месяце: контроль —2,77=^0,36 дня, 1-я группа —4,3=2=0,54 дня, 2-я группа —3,9=2=0,42 дня; Р<0,05. После восстановительного периода нормализации этого показателя не произошло, наблюдалось достоверное удлинение межтечкового периода (контроль — 2,2—0,33 дня, 1-я группа —6— 1,05 дня; Р<0,05; 2-я группа —3,4=г=0,11). Достоверного изменения общей продолжительности полового цикла на протяжении 4 месяцев затравки не выявлено. Важно подчеркнуть, что после периода восстановления наблюдалась тенденция к увеличению общей продолжительности цикла, хотя эти данные и не были достоверны (контроль—4,1 — =!=0,36 дня, 1-я группа —7,57=^1,05 дня, 2-я группа —5,4=!=0,84; Р>0,05). Число неправильных циклов в контрольной группе составило 25%, в 1-й группе — 42%, во 2-й группе —35%.
Выводы
1. Изменения полового цикла у самок белых крыс, подвергавшихся длительному воздействию малых концентраций фенола (5 и 0,5 мг!мл), могут быть связаны с его общетоксическим действием.
2. Наиболее выраженные изменения у животных, испытывавших воздействие малых концентраций фенола, обнаружены в нарушении функционального состояния яичников и печени.
3. Нарушения полового цикла выразились в укорочении стадии течки и удлинении стадии покоя.
4. Наибольшие изменения в функциональном состоянии яичников и печени выявлены при концентрации фенола 5 мг/м3.
ЛИТЕРАТУРА. Западнюк И. П., Западнюк В. И. Лабораторные животные, их разведение, содержание и использование в эксперименте. Киев, 1962.
Поступила 29/111 197;; г.
УДК в IS. 214.24:547.834.5|. 015.2:615.285.7
ВЛИЯНИЕ ФЕНОБАРБИТАЛА НА ТОКСИЧНОСТЬ И АНТИХОЛИНЭСТЕРАЗНУЮ АКТИВНОСТЬ ХЛОРОФОСА
Н. М. Линючее, Ю. П. Мима, В. В. Сергеев Военно-медицинская академия им. С. М. Кирова, Ленинград
При изучении метаболизма хлорофоса одни авторы считают, что этот инсектицид в организме теплокровных животных изомеризуется в более токсичное соединение — днхло-рДивинилфосфат (Metcalf и соавт., В. И. Вашков и Е. В. Шнайдер, и др.); другие авторы отмечают, что он подвергается полному гидролизу, образуя менее токсичные соединения — диметилфосфан и трихлорэтанол (Arthur и Casida). Между тем от характера метаболизма токсического агента в организме во многом могут зависеть профилактические мероприятия, особенно медикаментозные. Поэтому целью нашего исследования явилось установление роли печени экспериментальных животных в детоксикации хлорофоса и влияния стимуляторов активности (фенобарбитала) микросомальных ферментов печени на его токсичность и анти-холинэстеразную активность. Проведено 2 серии опытов на белых мышах-самцах весом 18—22 г. В 1 серии опытов изучали влияние фенобарбитала на устойчивость мышей к токсическому действию хлорофоса при внутрибрюшинном и внутрижелудочном его введении. В опытах использовано 120 мышей, разделенных на 4 группы по 30 особей. Мышам 2 опытных группы предварительно в течение 3 дней (раз в день) внутрибрюшинно вводили фенобарбитал в дозе 14 мг!кг (объем раствора 0,2 мл на 10 г веса животного); 2 группам мышей, которые служили контролем, в течение такого же срока вводили физиологический раствор в том же объеме. Через сутки после прекращения введения фенобарбитала определяли токсичность хлорофоса (сдвиг LDW) с помощью пробит-анализа. Хлорофос использовали в виде свежеприготовленного водного 2,5—5% раствора в объеме 0,1 мл на 10 г веса животного. Наблюдение за мышами после затравки проводили в течение 2 суток.
Фенобарбитал при введении хлорофоса внутрибрюшинно и в желудок вызывал статистически значимый защитный эффект (Р<0,05). Так, если для контрольных мышей LDi0 хлорофоса при внутрибрюшинном введении равнялась 394 мг!кг, то после предварительною
введения фенобарбитала эта доза составила уже 477 мк/кг. При введении хлорофоса в желудок LDjo для контрольных и подопытных мышей равнялась соответственно 514 и 701 мг/кг.
Различие отношений LD^, для подопытных мышей и контрольных (индекс защиты) при внутрибрюшинном введении (В. И. Вашков и Е. В. Шнайдер) и введении в желудок дает основания предполагать, что хлорофос в печени превращается в менее токсичное соединение. Стимуляция ферментных систем микросом печени с помощью фенобарбитала вызывает существенное повышение устойчивости экспериментальных животных к хлорофосу.
Полученные результаты показали, что токсичность хлорофоса для контрольных мышей при внутрибрюшинном введении выше, чем при введении его в желудок, и LD^, составляет соответственно 394 и 514 мг/кг.
Во II серии опытов, проведенной с 3 груплами мышей в аналогичных условиях, изучали влияние фенобарбитала на антихолинэстеразную активность хлорофоса. При этом хлорофос вводили в желудок в дозе LDle (455 мг/кг). Через час после введения хлорофоса мышей декапитировали и определяли активность холинэстеразы крови и мозга по методу Хестрина. Кровь брали в объеме 0,1 мл на пробу, термостатировали в течение часа при 37°. Из мозга готовили 5% гомогенат и брали 1 мл на пробу, термостатировали в течение 30 мин. Активность холинэстеразы интактных мышей принимали за 100.
Результаты II серии опытов показали, что введение хлорофоса в желудок в дозе 455 мг/кг (LDle) мышам,'обработанным фенобарбиталом, вызывает выраженное уменьшение степени угнетения активности холинэстераз мозга. Так, еелн у контрольных мышей остаточная активность холинэстеразы мозга составляла 24,5%, то на фоне фенобарбитала она равнялась 42%. Фенобарбитал не уменьшает антихолинэстеразной активности хлорофоса в крови.
Полученные данные согласуются с мнением Arthur и Casida, что предварительной обработкой фенобарбиталом удается повысить устойчивость экспериментальных животных к токсическому действию хлорофоса, по-видимому, за счет ускорения ферментативного гидролиза яда в печени с образованием нетоксических продуктов.
Выводы
1. Предварительное виутрибрюшинное введение мышам фенобарбитала в дозе 14 мг, к в течение 3 дней повышает устойчивость животных к последующему (через сутки) внутри-брюшинному (LDjo повышается с 394 до 477 мг/кг) или пероральному (LD^ повышается с 514 до 701 мг/кг) введению хлорофоса.
2. Фенобарбитал уменьшает степень угнетения активности холинэстеразы мозга мышей, отравленных хлорофосом.
ЛИТЕРАТУРА. Вашков В. И., Шнайдер Е. В. Хлорофос. М., 19(32. —Arthur В. W-, Casida J. Е., J. agricult. Food Chem., 195/, v. 5, p. 1Ö6. — Me tea If R. L., Fukuto T. R., Mach К. В., J. econ. Entom., 1959, 52, p. 44.
Поступила 8/XIi 1971 r.
УДК 613.488
ГИГИЕНИЧЕСКАЯ ОЦЕНКА ТЕКСТИЛЬНЫХ НАТУРАЛЬНЫХ И ПОЛИМЕРНЫХ МАТЕРИАЛОВ, ОБРАБОТАННЫХ СИНТЕТИЧЕСКИМИ МОЮЩИМИ СРЕДСТВАМИ
Доктор мед. наук А. И. Саутин, канд. мед. наук 3. С. Маркова,
Н. А. Быкова
Институт общей н коммунальной гигиены им. А. Н. Сысина АМН СССР, Москва
Быстрое развитие химии высокомолекулярных соединений способствует синтезу новых полимеров, которые находят все большее применение для изготовления текстильных материалов, а также средств ухода за ними. В настоящее время почти все текстильные материалы из целлюлозных волокон подвергаются заключительной отделке синтетическими смолами и другими химическими соединениями с целью улучшения их внешнего вида, повышения несминаемости, безусадочности и др.
Рождение текстильных полимерных материалов способствует бурному развитию производства различных синтетических моющих отбеливающих, подсинивающих, подкрахмаливающих и других средств ухода за ними.
Синтетические моющие средства (CMC) представляют собой сложные композиции, в состав которых входят, как правило, натриевые соли сульфированных высокомолекулярных спиртов и окисленных сульфированных углеводородов в сочетании с органическими щелочами, нейтральными перекисными солями и др. Поверхностноактивная моющая основа
