CC BY
11
Науковий в1сник Льв1вського нацюнального ушверситету ветеринарно'1 медицини та бютехнологш 1меш С.З. Гжицького.
Сер1я: Ветеринарш науки
Scientific Messenger of Lviv National University of Veterinary Medicine and Biotechnologies. Series: Veterinary sciences
ISSN 2518-7554 print ISSN 2518-1327 online
doi: 10.32718/nvlvet9402 http://nvlvet.com.ua
UDC 636:576.8:631.427.2
Industrial tests of different methods of soil samples testing for the presence of eggs of nematodes - pathogens of parasitic diseases of sheep
V.V. Melnychuk, I.D. Yuskiv
Stepan Gzhytskyi National University of Veterinary Medicine and Biotechnologies Lviv, Ukraine
Article info
Received 19.03.2019 Received in revised form
19.04.2019 Accepted 22.04.2019
Stepan Gzhytskyi National University oof Veterinary Medicine and Biotechnologies Lviv, Pekarska Str., 50, Lviv, 79010, Ukraine. Tel.:+38-066-674-78-09 E-mail: melnychyk86@ukr.net
Melnychuk, V.V., & Yuskiv, I.D. (2019). Industrial tests of different methods of soil samples testing for the presence of eggs of nematodes - pathogens of parasitic diseases of sheep. Scientific Messenger of Lviv National University of Veterinary Medicine and Biotechnologies. Series: Veterinary sciences, 21(94), 914. doi: 10.32718/nvlvet9402
Under current conditions, livestock farming, where a large number of animals are kept in restricted areas, creates all the prerequisites for intensive parasitic contamination of the environment. The objects of the environment, including the soil, are an important link in the development of pathogens of parasitic diseases. Out of all objects, soil plays a major role in the emergence oof invasive diseases, since it is the main factor in the transmission of diseases. In this regard, the issue of studying contamination oof soil with invasive elements remains relevant. Knowledge oof the level of soil contamination with invasive elements enables to develop strategies for conducting economic activity taking into account its actual pollution and to plan well-grounded measures to overcome invasive diseases. However, it remains important to choose an effective research method, which today has a large number. In this regard, the purpose of our research was to find out the sensitivity of the methods of soil study on nematode eggs, in particular regarding the digestive system strontium, and the species Trichuris sp., S. papillosus, S. ovis and A. bovis. The obtained data indicate that the use of well-known (Romanenko-Hudzhabidze, Dolbin et at.) and advanced methods of sanitary-parasitological research proved to be suitable for the establishment of soil contamination by eggs of nematodes. However, the most effective method was the improved method, as it allows to detect the greatest number of nematode eggs in the samples under investigation (by 30.41 and 68.21%, as compared with the methods of Dolbin et al. and Romanenko-Gudzhabidze, respectively). In addition, the proposed method is more effective than the number of eggs per kg of soil (30.41 and 64.68%o, respectively, for Dolbin et al. and Romanenko-Gudzhabidze). The high efficiency of the new method is also confirmed by the indicators of the ommogram, according to which it allows to find in the samples of soil eggs the strontium of the digestive organs, in particular Nematodirus sp., as well as nematodes of species Trichuris sp., S. papillosus, S. ovis, A. bovis. Their number was higher than Dolbin et al. and Romanenko-Gudzhabidze. Thus, the data obtained have an important theoretical and practical significance, since they allow a well-grounded choice of the method of soil study to establish its contamination with nematode eggs, taking into account the effectiveness of a particular species of the parasite.
Key words: soil research, efficiency, contamination, egg nematodes, efficiency oof the method.
Виробничi випробування pi3H^ cnoco6iB дослщження проб Грунту на наявшсть ясць нематод - збудниюв паразитарних захворювань овець
В.В. Мельничук, 1.Д. Юськ1в
Лъвiвсъкий нацюналънийутверситет ветеринарно'1 медицини та бютехнологш iMeHi С.З. Гжицького, м. Лъвiв, Украгна
За сучасних умов ведення галузi тваринництва, де на обмежених територiях утримуетъся значна шлъюстъ тварин, створю-ютъся soi передумови до появи ¡нтенсивного паразитарного забруднення зовншнъого середовища. Об'екти довктля, у тому числi
й Грунт - важлива ланка у циKni розвитку збуднитв паразитарних захворювань. 1з всХ npeÖMemie та об 'eKmie Грунт eiö^pae най-cymmeeiwy роль у появi твазтних захворювань, оскльки е основним i3 факторiв передачi хвороб. У зв 'язку з цим актуальним залишаеться питання вивчення контамтацп Грунту твазтними елементами. Знання рiвня контамтацп Грунту твазтними елемен-тами дае змогу здтснювати розробку стратегт ведення господарськог дiяльностi з урахуванням його фактичного забруднення та проводити планування обГрунтованих заходiв з метою подолання твазтних хвороб. Однак важливим залишаеться питання вибору ефективного способу до^дження, яких на сьогодт кнуе велика ктьюсть. У зв'язку з цим метою наших до^джень було з 'ясувати чутлив^ть способiв до^дження Грунту щодо яець нематод, зокрема стронгтят оргатв травлення, а також видiв Trichuris sp., S. papillosus, S. ovis та A. bovis. Отримат дат свiдчать, що використання загальновiдомих (Романенко-Гуджабидзе, Долбта й т.) та удосконаленого способiв санiтарно-паразитологiчних до^джень виявилися придатними для встановлення контамтацп Грунту яйцями нематод. Однак за ктьксним показником найбтьш ефективним виявився удосконалений споЫб, оскльки вт дозволяе виявити найбтьшу ктьюсть яець нематод у до^джуваних зразках (на 30,41 та 68,21% порiвняно зi способами Долбта й т. та Романенко-Гуджабiдзе вiдповiдно). Також запропонований споЫб е ефективншим за показником кiлькостi яець у перерахунку на кг Грунту (на 30,41 та 64,68%> порiвняно зi способами Долбта й т. та Романенко-Гуджабiдзе вiдповiдно). Висока ефективтсть нового способу тдтверджуеться й показниками омограми, згiдно з якою вт дозволяе виявляти в пробах Грунту яйця стронгтят оргатв травлення, зокрема Nematodrus sp., а також нематод видiв Trichuris sp., S. papillosus, S. ovis, A. bovis. 1х кль-тсть була вищою порiвняно зi способами Долбта й т. та Романенко-Гуджабiдзе. Таким чином, отриман дан мають важливе теоретичне та практичне значення, оскльки дозволяють здшснити обГрунтований вибiр способу до^дження Грунту з метою встановлення його контамтацп яйцями нематод з урахуванням ефективностi до того чи тшого виду паразита.
Ключовi слова: до^дження Грунту, ефективтсть, контамтащя, яйця нематод, ефективтсть способу.
Вступ
Паразитарне забруднення об'екпв довкшля яйцями гельмшпв ниш залишаеться важливим питанням для фахiвцiв pi3rnix галузей, у тому числ й лiкарiв ветеринарно! медицини, що потребуе додаткового вивчення (Roeber et al., 2013; Stets & Voloshyna, 2016). Загальновщомо, що до найб№ш контамшованих швазшними елементами об'екпв довкшля належить грунт, особливо його поверхневi шари. Зпдно з лтге-ратурними даними, для нематод, яш е геогельмштами, грунт вщграе важливе значення у цикл бюлопчного розвитку (Gaasenbeek & Borgsteede, 1998; Dubna et al., 2007; Romero et al., 2010).
Збудники паразитарних захворювань на рiзних стадях екзогенного розвитку мають широке розпов-сюдження у зовшшньому середовищг При цьому вони здатш довго час залишатися у життездатному сташ, не втрачаючи швазшно! здатносп (Dubey, 1998; Lassen et al., 2013). У зв'язку з вищенаведеним, сис-темний мониторинг за рiвнем контамшацп довшлля, особливо мюць утримання тварин, е одним з основних моменпв, яш необхщно включати у систему заходiв, спрямованих на лшування та профшактику паразитарних хвороб тварин (Collender et al., 2015; Steinbaum et al., 2016; Amoah et al., 2017).
На сьогодш у доступнш науковш лiтературi досль дники з рiзних кра!н свпу пропонують способи та методи, спрямоваш на вивчення рiвня паразитарного забруднення довкшля. Варто зазначити, що бшьшють запропонованих способiв грунтуються на флотацшнш здатносп використовуваних розчишв (Dada, 1979; Loh & Israf, 1998; Zilberman et al., 2009; Oge & Oge, 2010). Водночас, науковщ, пропонуючи власш методики дослщжень грунту, орiентувалися на виявлення конкретного виду збудника (Barwick et al., 2000; Lelu et al., 2011; Sroka et al., 2018). У зв'язку з цим вщкри-тим залишаеться питання чутливосп пропонованих методик до яець чи ооцист шших видiв паразипв.
Враховуючи вищенаведене, вважаемо, що досль дження з приводу визначення ефективностi рiзних способiв дослiдження грунту з метою встановлення
р1вня паразитарного обшменшня е актуальним напря-мом роботи. Тому метою наших дослщжень було з'ясувати чутливють способ1в дослщження грунту щодо яець нематод - збуднишв паразитарних захворювань овець.
MaTepia™ i методи досл1джень
Дослщження проводили упродовж 2018 р. на баз1 лабораторй' кафедри паразитологй' та ветеринарно-сангтарно! експертизи Полтавсько! державно! аграрно! академп.
З метою визначення ефективносп удосконаленого та загальновщомих способ1в дослщження грунту на наявшсть яець нематод р1зних вид1в проведено виро-бниче дослщження. В умовах в1вцегосподарств Полтавсько! обласп вщбирали проби поверхневого шару грунту (з мюць утримання та випасання овець) зпдно з загальноприйнятими методиками. Ус проби досль джували на наявшсть яець нематод за методом Рома-ненко (1968) та Гуджабщзе (1969). 1з загально1' кшь-косп проб вщбрано 20 зразшв, у яких одночасно виявляли яйця нематод ряду Strongylida (зокрема Nematodirus sp.), вид1в Trichuris sp., S. papillosus, S. ovis та A. bovis. Одну й ту ж пробу дослшжували за методом: Романенко-Гуджабщзе (Kotelnikov, 1984); Долбша та ш. (Dolbin et al., 2014) та запропонованим удосконаленим способом (за основу взято споаб Ро-маненко-Гуджабщзе). Показниками ефективносп визначено: кшьшсть позитивних проб, загальна кшь-шсть виявлених швазшних елеменпв у дослшжува-них пробах, кшьшсть у перерахунку на 1 кг грунту (екз./кг), 1'хш мшмальш та максимальш значення.
Статистичну обробку отриманих результапв екс-периментальних дослщжень здшснювали шляхом визначення середнього арифметичного (М) та його похибки (m).
Результата та ix обговорення
За результатами експериментальних дослщжень встановлено, що найбшьш ефективним з метою вияв-
лення яець нематод у пробах грунту виявився запро-понований споаб (табл. 1).
Зареестровано, що споаб Романенко-Гуджабщзе за його застосування у виробничих дослщженнях проявив найнижч1 результати ефективностг Так, з 20-ти дослщжуваних проб позитивними виявилось 18. Тобто, за показником кшькосл позитивних проб ефе-ктившсть способу склала 90%. Загалом у дослщжува-них пробах виявлено 2750 екз. яець нематод, що в середньому склало 152,78 ± 14,66 екз./кг проби грунту, за коливань вщ 40 до 260 яець/кг.
Кращ1 показники отримано за використання способу Долбша та ш. Так, споаб проявив 100% ефекти-вшсть за кшьшстю позитивних проб вщносно досль джуваних. 3i зб1льшенням числа позитивних проб також пщвищувалася й загальна кшьшсть виявлених яець нематод, яка сягнула 6020 екз., що на 54,32% б№ше порiвняно з попереднiм способом. Варто за-значити, що в середньому кшьшсть яець нематод у однш пробi грунту склала 301,00 ± 17,29 екз./кг (на 49,24% бтше порiвняно з попереднiм способом), за коливань вщ 140 до 530 яець/кг.
Таблиця 1
Порiвняльна ефектившсть рiзних способiв дослщження проб грунту з метою виявлення яець нематод, n = 20
Споиб дослщження Юльюсть позитивних проб, екз./% всього, екз. Виявлено яець нематод M ± m, екз./кг min- -max , екз./кг
Романенко (1968) та Гуджабщзе (1969) 18/90,0 2750 152,78 ± 14,66 40- 260
Долбiна та ш. (2012) 20/100,0 6020 301,00 ± 17,29 140- 530
Запропонований спосiб 20/100,0 8650 432,50 ± 28,85 150- 675
Використання запропонованого способу досль дження виявилося найбiльш ефективним. Як i в попе-редньому випадку, з 20-ти дослщжуваних проб всi виявилися позитивними. За використання способу в дослщжуваних пробах зафшсовано найбiльшу шль-кiсть яець нематод - 8650 екз., що на 30,41 та 68,21% бшьше порiвняно зi способами Долбiна й ш. та Рома-ненко-Гуджабщзе вщповщно. Також збiльшилося й середне число яець нематод в однш пробi та в середньому становило 432,50 ± 28,85 екз./кг дослщжувано-го грунту (на 30,41 та 64,68% бшьше порiвняно зi
способами Долбша й ш. та Романенко-Гуджабщзе вiдповiдно), за коливань вiд 150 до 675 яець/кг.
Таким чином, дослщження проб грунту з викорис-танням запропонованого способу за шльшсним показником виявилося найбiльш ефективним порiвняно iз загальновщомими способами Долбша й ш. та Рома-ненко-Гуджабщзе.
Незважаючи на вiдносну схожесть способiв у пос-лщовносп виконання, за наслщками овограми вста-новлено, що ва вони володiють неоднаковою ефекти-внiстю щодо виявлення яець нематод рiзних таксоно-мiчних одиниць (табл. 2, рис. 1).
Таблиця 2
Результати овограми за використання рiзних способiв дослщження проб грунту на наявшсть яець нематод, n = 20
Спосiб Iнвазiйнi елементи збудника Позитивних проб, Виявлено яець
екз./% всього, екз. M ± m, екз./кг
Стронг1ляти орган1в травлення 18 / 90 1750 97,22 ± 12,12
у т. ч. Nematodirus sp. 13 / 65 530 40,77 ± 6,35
Романенко-Гуджабщзе Trichuris sp. 13 / 65 580 44,62 ± 7,65
S. papillosus 8 / 40 210 26,25 ± 4,60
S. ovis 7 / 35 210 30,00 ± 6,55
Стронгшяти оргашв травлення 20 / 100 3540 177,00 ± 12,31
у т. ч. Nematodirus sp. 15 / 75 1020 68,00 ± 8,57
Долбша та ш. Trichuris sp. S. papillosus 19 / 95 14 / 70 1280 660 67,37 ± 7,64 47,14 ± 7,12
S. ovis 10 / 50 320 32,00 ± 6,11
A. bovis 6 / 30 220 36,67 ± 9,55
Стронгшяти оргашв травлення 20 / 100 4250 212,50 ± 20,78
у т. ч. Nematodirus sp. 18 / 90 1450 80,56 ± 11,62
Запропонований Trichuris sp. S. papillosus 20 / 100 16 / 80 1975 1175 98,75 ± 10,13 73,44 ± 11,17
S. ovis 14 / 70 700 50,00 ± 8,49
A. bovis 11 / 55 550 50,00 ± 10,25
Так, використання способу Романенко-Гуджабщзе призводило до виявлення у пробах грунту яець нематод збуднишв нематодозiв травного каналу овець, що належить до 4 рядiв: Trichurida, Strongylida, Rhabditida
та Oxyurida. Так, у 18 пробах (90%) виявлено яйця стронгiлят травного каналу, загальна шльшсть яких становила 1750 екз., що в середньому склало 97,22 ± 12,12 екз./кг дослщжуваного грунту. Серед яець стро-
нплят в 13 пробах (65%) було зареестровано яйця нематод роду Nematodirus, загальна кiлькiсть яких склала 530 екз., що в середньому склало 40,77 ± 6,35 екз./кг проби грунту.
О^м стронгiлят, в 13 пробах (65%) виявляли яйця нематод представнишв ряду Trichurida -Trichuris sp. у шлькосл 580 екз., що в середньому склало 44,62 ± 7,65 екз./кг грунту. Яйця представнишв ряду Rhabditida та Oxyurida - S. papillosus та S. ovis реестрували у 8 та 7 пробах вщповщно (40 та 35%), загальна шльшсть швазшних елеменпв для кожного з них становила 210 екз., що в середньому склало для яець стронгшощеав - 26,25 ± 4,60 екз./кг, а для скря-бiнем - 30,00 ± 6,55 екз./кг.
Аналiзуючи показники овограми за використання способу Долбша й iн. встановлено, що вказана методика дозволяе виявити яйця нематод представнишв 5 рядiв, а саме: Trichurida, Enoplida, Strongylida, Rhabditida та Oxyurida. Яйця стронгшят травного каналу овець виявлено у 20 пробах грунту (100%), загальна 1'х кiлькiсть сягала 3540 екз., що в середньому склало 177,00 ± 12,31 екз./кг. Варто зауважити, що серед яець стронгшят за морфолопчною будовою у 15 пробах (75%) було диференцшовано яйця нематод роду Nematodirus, загальна шльшсть останшх досягала 1020 екз., що в середньому склало 68,00 ± 8,57 екз./кг проби грунту. Варто зауважити, що досить часто (95 та 70%) у пробах грунту виявляли яйця нематод видiв Trichuris sp. та S. papillosus, у 19 та 14 пробах вщповщно, гх шльшсть сягала 1280 та 660 екз., що в середньому складало 63,37 ± 7,64 та 47,14 ± 7,12 екз./кг. Менше реестрували яйця нематод видiв S. ovis та A. bovis - у 10 та 6 пробах грунту яець вщповщно (50 та 30%), загальна шльшсть яких становила 320 та 220 екз., що в середньому склало 32,00 ± 6,11 та 36,67 ± 9,55 екз./кг у пробi грунту.
Використання пропонованого способу дозволило отримати найкращу ефектившсть показнишв овограми. Яйця стронплят травного тракту овець зареестровано у 20 пробах грунту (100%), загальна шльшсть виявлених у пробах грунту досягла 4250 екз. В серед-ньому у шлограш грунту виявляли 212,50 ± 20,78 екз. яець. Поряд з тим, у 18 пробах (90%), серед яець стронгшят травного каналу виявляли яйця нематодь руав, загальна шльшсть яких становила 1450 екз., що в середньому склало 80,56 ± 11,62 екз./кг проби грунту. Також, у 100% дослщжуваних проб грунту виявляли яйця трихуриав, загалом !х було виявлено у шлькосп 1975 екз., що в середньому на кг грунту склало 98,75 ± 10,13 екз. Дещо менше (80 та 70%) виявляли яйця стронгшощеав та скрябшем, у 16 та 14 пробах. Загальна шльшсть яець вказаних видiв становила 1175 та 700 екз., що в середньому складало 73,44 ± 11,17 та 50,00 ± 8,49 екз./кг дослщжуваного грунту. Що стосуеться яець збуднику виду A. bovis, то гх виявляли у 11 пробах (55%), загальна шльшсть яець капшярш, виявлених в уах позитивних пробах становила 550 екз., що в середньому склало 50,00 ± 10,25 екз./кг грунту.
Таким чином, характеризуючи способи досль дження проб грунту, можна зробити висновок, що за вама дослшжуваними характеристиками запропоно-ваний споаб мав найвищi показники.
Як видно з рис. 1, за числом позитивних проб за-пропонований споаб виявився ефектившшим за методики Романенко-Гуджабщзе та Долбша й ш. при виявлення яець нематод видiв: A. bovis (на 100 та 45,5%), S. ovis (на 50,0 та 28,5%), S. papillosus (на 50,0 та 12,5%), Trichuris sp. (на 35,0 та 5,0%), ряду Strongylida (на 10,0%), зокрема роду Nematodirus (на 27,8 та 16,7%).
100.0 80.0 60,0 40.0 20.0 0.0 20,0 40.0 60.0 80,0
Л. bovis
S. ovis
S. papillosus
Trichuris sp.
У т. ч.
Nematodirus sp.
Стронгшяти ШКТ
■ юльюсть П031ГГ1ШН11Х проб
■ юлыасть яець на 1 кг грунту (екз. / кг);
■ кшьюсть вгавленнх яець
Рис. 1. Ефектившсть удосконаленого способу дослщження проб грунту вщносно загальновщомих, %: злiва - споаб Романенко-Гуджабщзе; справа - споаб Долбша й ш
Запропонований cnoci6 також виявився ефектив-нiшим за методики Романенко-Гуджабщзе та Долбiна й ш. за показником загально! кшькосл виявлених у пробах яець нематод видiв: A. bovis (на 100,0 та 60,0%), S. ovis (на 70,0 та 54,3%), S. papillosus (на 82,1 та 43,8%), Trichuris sp. (на 70,6 та 35,2%), ряду Strongylida (на 58,8 та 16,7%), зокрема роду Nematodirus (на 63,5 та 29,7%).
Варто зазначити, що ефектившсть запропонованого способу також тдтверджувалась показниками шлькосп виявлених яець нематод у перерахунку на 1 кг грунту (екз./кг). Зпдно з дослщженнями, споаб виявився ефектившшим за методики Романенко-Гуджабщзе й Долбша та ш. щодо яець нематод видiв: A. bovis (на 100,0 та 26,7%), S. ovis (на 40,0 та 36,0%), S. papillosus (на 64,3 та 35,8%), Trichuris sp. (на 54,8 та 31,8%), ряду Strongylida (на 54,3 та 16,7%), зокрема роду Nematodirus (на 49,4 та 15,6%).
Отже, за показниками ефективносп запропонований споаб перевищуе ефектившсть загальновщомих методiв i тому може бути рекомендований для вста-новлення контамшаци грунту яйцями нематод.
Впровадження у практику нових високоефектив-них способiв дослщжень об'екпв довшлля, у тому чи^ й грунту, з метою виявлення швазшних елемен-пв е актуальним напрямом, над яким активно працю-ють науковцi багатьох кра!н свггу (Dada, 1979; Novo-zhilov, 2014; Collender et al., 2015). Варто зазначити, що в Укрш'ш робп, пов'язаних з удосконаленням способiв дослщження проб грунту та вивченням !х ефективностi у виробничих умовах, не виявлено. Тому актуальшсть проведених нами дослщжень не ви-кликае сумнiву.
Отриманi нами данi свщчать, що використовуванi санiтарно-паразитологiчнi способи дослщження ви-явилися придатними для встановлення контамшаци грунту яйцями нематод, що знаходить тдтвердження у роботах науковщв (Dolbin et al., 2014; Novozhilov & Chernikova, 2014). Водночас у нашш роботi наведенi данi щодо ефективносп як загальновщомих способiв дослщження грунту, так й авторсько! розробки. Авте-нтичнiсть проведених дослiджень полягае у тому, що у робоп запропоновано удосконалений спосiб дослi-дження грунту з метою виявлення яець нематод. Ок-рiм того, наведено данi вгдносно ефективносп запропонованого та вщомих способiв дослiдження грунту щодо яець нематод, як належать до ряду Strongylida (зокрема Nematodirus sp.) та видiв Trichuris sp., S. papillosus, S. ovis, A. bovis - збуднишв паразитарних захворювань овець.
Таким чином, отримаш даш дозволяють здiйснити обгрунтований вибiр способу дослщження грунту з метою встановлення його контамшаци яйцями нематод з урахуванням ефективносп до того чи шшого виду паразита.
Висновки
В умовах виробничих випробувань встановлено, що загальновiдомi санiтарно-паразитологiчнi способи
gocnig®eHHH rpyHTy PoMaHeHKo-ryg®a6ig3e, ,3,ofl6iHa h iH., a TaKo® ygocKoHajeHHÜ cnoci6 BojogioTb 3gaTHic-to BHaB^HTH aÜHa HeMaTog. ,3,oBegeHo, mo ygocKoHaje-hhh cnoci6 gocnig®eHHH rpyHTy bhhbhbc3 e^eKTHBHi-mHM nopiBHHHO 3i cnoco6aMH PoMaHeHKo-ryg®a6ig3e Ta ^o^6iHa h iH. 3a noKa3HHKaMH KijbKocri BuaBjeHHx aem> HeMaTog y gocjrig®yBaHHx 3pa3Kax (Ha 30,41 Ta 68,21% BignoBigHo) Ta i'x KijjbKicTio y nepepaxymcy Ha Kr rpyHTy (Ha 30,41 Ta 64,68% BignoBigHo). TaKo® 3a-^iKCOBaHO, mo ygocKoHajeHHÖ cnoci6 e 6ijbm Hyran-bhm nopiBHHHo 3i cnoco6aMH PoMaHeHKo-ryg®a6ig3e Ta ^oj6iHa h iH., npn BHaBjeHHH ae^ HeMarog pi3HHx
TaKcoHoMinHHx ogнннцb: Strongylida (Ha 10,0-58,8%); Nematodirus (Ha 16,7-63,5%); Trichuris (Ha 5,0-70,6%); S. papillosus (Ha 12,5-82,1%); S. ovis (Ha 28,5-70,0%); A. bovis (Ha 26,7-100,0%), 3a noKa3HHKaMH KijbKocTi no3HTHBHHx npo6, 3arajbHoi' KijbKocri BuaBjeHHx iHBa-3iÖHHx ejeMeHTiB y gocnig®yBaHHx npo6ax Ta i'x KijbKi-CTO b nepepaxyHKy Ha 1 Kr rpyHTy.
nepcnexmueu nodcwbwux docrndwenb. npoBegeHi gocjig®eHHH e nepegyMoBoo gja npoBegeHHa KoMnjeK-CHoro gocjig®eHHa rpyHTy TepHTopii' вiвцeгoсnogapств 3 MeToo BCTaHoBjeHHH piBHH napa3HTapHoro 3a6pyg-
HeHHH.
References
Amoah, I.D., Singh, G., Stenström, T.A., & Reddy, P. (2017). Detection and quantification of soil-transmitted helminths in environmental samples: A review of current state-of-the-art and future perspectives. Acta Tropica, 169, 187-201. doi: 10.1016/j.actatropica.2017.02.014. Barwick, R.S., Mohammed, H.O., White, M.E., & Bryant, R.B. (2000). Detection of Cryptosporidium parvum and Cryptosporidium muris in soil samples. Biology and Fertility of Soils, 31(5), 385-390. doi: 10.1007/s003749900185. Collender, P.A., Kirby, A.E., Addiss, D.G., Freeman, M.C., & Remais, J.V. (2015). Methods for Quantification of Soil-Transmitted Helminths in Environmental Media: Current Techniques and Recent Advances. Trends in Parasitology, 31(12), 625-639. doi: 10.1016%2Fj.pt.2015.08.007. Dada, B.J.O. (1979). A new technique for the recovery of Toxocara eggs from soil. Journal of Helminthology, 53(2), 141-144. doi: 10.1017/s0022149x00005873. Dolbin, D.A., Lutfullin, M.H., & Sokolina, F.M. (2014). Obsledovanija pochvy na jajca gel'mintov. Rossijskij parazitologicheskij zhurnal, 2, 70-76 (in Russian). Drab, R.R., Guschuk, I.V., Safonov, R.V., Byalkovsky, A.V., & Brezetska, O.I. (2017). Monitoring the epidemic process at geohelminthism among children in Rivne region. CHILD'S HEALTH, 12(3), 360-365. doi: 10.22141/2224-0551.12.3.2017.104227. Dubey, J.P. (1998). Toxoplasma gondii Oocyst Survival under Defined Temperatures. The Journal of Parasitology, 84(4), 862-865. doi: 10.2307/3284606. Dubna, S., Langrova, I., Jankovska, I., Vadlejcha, J., Pekarb, S., Napravnika, J., & Fechtner, J. (2007).
Contamination of soil with Toxocara eggs in urban (Prague) and rural areas in the Czech Republic. Veterinary Parasitology, 144(1-2), 81-86. doi: 10.1016/j.vetpar.2006.09.023.
Gaasenbeek, C. P., & Borgsteede, F.H. (1998). Studies on the survival of Ascaris suum eggs under laboratory and simulated field conditions. Veterinary Parasitology, 75(2-3), 227-234. doi: 10.1016/s0304-4017(97)00198-2.
Kotelnikov, G.A. (1984). Gelmintologicheskie issledovanija zhivotnykh i okruzhajushchej sredy. Moscow: Kolos (in Russian).
Lassen, B., Lepik, T., & Bangoura, B. (2013). Persistence of Eimeria bovis in soil. Parasitology Research, 112(7), 2481-2486. doi: 10.1007/s00436-013-3413-4.
Lélu, M., Gilot-Fromont, E., Aubert, D., Richaume, A., Afonso, E., Dupuis, E., Gotteland, C., Marnef, F., Poulle, M. L., Dumètre, A., Thulliez, P., Dardé, M.L., & Villena, I. (2011). Development of a sensitive method for Toxoplasma gondii oocyst extraction in soil. Veterinary Parasitology, 183 (1-2), 59-67. doi: 10.1016/j.vetpar.2011.06.018.
Loh, A.G., & Israf, D.A. (1998). Tests on the centrifugal flotation technique and its use in estimating the prevalence of Toxocara in soil samples from urban and suburban areas of Malaysia. Journal of Helminthology, 72(01), 39. doi: 10.1017/s0022149x0000095x.
Novozhilov, K.A., & Chernikova, E.A. (2014). Ak-tual'nost' i sovershenstvovanie sanitarno-gel'mintologicheskikh metodov issledovaniya pochvy. Meditsinskaya parazitologiya i parazitarnye bolezni, 1, 58-59 (in Russian).
Novozhilov, K.A. (2014). Optimizacija metodov sanitar-no-parazitologicheskih issledovanij obektov sredy obitanija cheloveka: diss. ... kand. med. nauk: 03.02.11. Moskva, 99 (in Russian).
Oge, H., & Oge, S. (2000). Quantitative comparison of various methods for detecting eggs of Toxocara canis in samples of sand. Veterinary Parasitology, 92(1), 75-79. doi: 10.1016/s0304-4017(00)00276-4.
Roeber, F., Jex, A.R., & Gasser, R.B. (2013). Impact of gastrointestinal parasitic nematodes of sheep, and the role of advanced molecular tools for exploring epidemiology and drug resistance - An Australian perspective. Parasites & Vectors, 6(1), 153. doi: 10.1186/1756-3305-6-153.
Romero, C., Mendoza, G.D., Bustamante, L.P., Yanez, S., & Ramirez, N. (2010). Contamination and Viability of Toxocara sp. in Feces Collected from Public Parks, Streets and Dogs in Tejupilco at the Subhumid Tropic of Mexico. Journal of Animal and Veterinary Advances, 9(23), 2996-2999. doi: 10.3923/javaa.2010.2996.2999.
Sroka, J., Karamon, J., Dutkiewicz, J., Wojcik-Fatla, A., & Cencek, T. (2018). Optimization of flotation, DNA extraction and PCR methods for detection of Toxoplasma gondii oocysts in cat faeces. Annals of Agricultural and Environmental Medicine, 25(4), 680-685. doi: 10.26444/aaem/97402.
Steinbaum, L., Njenga, S.M., Kihara, J., Boehm, A.B., Davis, J., Null, C., & Pickering, A.J. (2016). Soil-Transmitted Helminth Eggs Are Present in Soil at Multiple Locations within Households in Rural Kenya. PLOS ONE, 11(6), e0157780. doi: 10.1371/journal.pone.0157780.
Stets, G., & Voloshyna, N. (2016). Toxocara canis -Bioindicator of Parasitic Soil Contamination of Technogenically Transformed Territories. The Advanced Science Journal, 2016(3), 41-44. doi: 10.15550/asj.2016.03.041.
Zilberman, A., Zimmels, Y., Starosvetsky, J., Zuckerman, U., & Armon, R. (2009). A Two-Phase Separation Method for Recovery of Cryptosporidium Oocysts from Soil Samples. Water, Air, and Soil Pollution, 203(1-4), 325-334. doi: 10.1007/s11270-009-0015-y.
