CC BY
10
средних значений по выборкам контроля и образца, обработанного нокадозолом, составляет 3,04/2,55 (Па/ Пд, при вычитании сплайна) и 2,97/2,99 (Па/Пд при вычитании параболы) при табличном значении t = 2,20, откуда можно сделать вывод о наличии статистически значимых различий между значениями шероховатости.
Сканирующая капиллярная микроскопия может быть перспективным методом для оценки чувствительности биопсионного материала к определенным препаратам и веществам, для оценки биомеханического и физико-химического воздействия.
Работа выполнена при финансовой поддержке РФФИ и Лондонского Королевского Общества (проект № 2158-10005), РФФИ, проект № 20-32-90036, Фонда содействия инноваций (проект № 71108).
Литература:
1. Советников Т.О., Тихомирова М.А., Ахметова А.И., Ямин-ский И.В. Наблюдение клеток карциномы человека в капиллярном микроскопе. Медицина и высокие технологии. 2022. № 2, С. 10.
2. Яминский И.В., Ахметова А.И., Советников Т.О., Тихомирова М.А., Янг Ш. Сканирующая капиллярная микроскопия: визуализация опухолевых клеток. Наноиндустрия. 2022. Т. 15. № 3-4. С. 168.
ОЦЕНКА ЭФФЕКТИВНОСТИ ТЕРАПИИ КРИОКОНСЕРВИРОВАННЫМИ МОНОНУКЛЕАРНЫМИ КЛЕТКАМИ ПУПОВИННОЙ КРОВИ ЧЕЛОВЕКА ТРАВМЫ СПИННОГО МОЗГА У КРЫС В ОСТРОМ ПЕРИОДЕ
С.А. Базанович1, М.А. Звягинцева1,
Я.В. Морозова1, С.М. Радаев2,
В.А. Смирнов2, А.А. Гринь2, С.И. Рябов1
1 ФГБУ Научный медицинский исследовательский центр кардиологии им. академика Е.И. Чазова Минздрава России, Москва, Россия
2 ГБУЗ НИИ скорой помощи им. Н.В. Склифосовского Департамента здравоохранения г. Москвы, Москва, Россия
e-mail: [email protected]
Ключевые слова: травма спинного мозга, клеточная терапия, мононуклеарные клетки пуповинной крови человека.
Цель исследования — оценка эффективности внутривенного введения криоконсервированных монону-клеарных клеток пуповинной крови человека (МКПКЧ) в остром периоде контузионной травмы спинного мозга у крыс на восстановление двигательной активности конечностей и формирование посттравматических кист [1].
Исследование выполнено на взрослых крысах-самках линии Спрег-Доули. Тяжелую контузионную травму спинного мозга моделировали по методу «weight-drop». Использовали крио-консервированный концентрат МКПКЧ, хранившийся 3-4 года при -196 C° [2]. Двигательную функцию конечностей исследовали в открытом поле, с оценкой опорно-двигательного аппарата по шкале ВВВ для крыс [3]. А также в плавательном тесте, с применением нового метода оценки движения задних конечностей, с использованием параметров дисперсии величин суставных углов [4], МРТ-сканирование проводили с применением МРТ высокого поля Clin Scan 7.0 T томография (Bruker BioSpin, Германия) [5].
Однократное внутривенное введение МКПКЧ в количестве 10 млн клеток в первые сутки после тяжелой контузионной травмы спинного мозга достоверно улучшает (р<0,05) восстановление двигательной функции задних конечностей (на 40-50 %) относительно уровня группы «самовосстановления» у крыс. Объем образующихся на 4-5 сутки посттраматических кистозных полостей достоверно (p<0,05) уменьшается в два раза после клеточной терапии.
Проведенное исследование показывает, что криокон-сервированные МКПКЧ могут быть использованы, как эффективное средство клеточной терапии в остром периоде контузионной травмы спинного мозга.
Литература:
1. Архадов Т.А. и др. Терапевтический потенциал клеток пуповинной крови при негематологических заболеваниях 2-е издание. Под ред. М.А. Пальцева, В.Н. Смирнова. Москва 2012. 176 с.
2. Рябов С.И., Звягинцева М.А., Смирнов В.А. и др. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины, 2014. Т. 157. № 1. С. 98.
3. Basso D.M., Beattie M.S., Bresnahan J.C. J. Neurotrauma. 1995.V.12. N 1. P. 1.
4. Bazanovich S.A. et al. Bulletin of Experimental Biology and Medicine. - 2022. - Т. 172. - № . 4. - С. 499-503.
5. Ядгаров М.Я., Смирнов В.А., Базанович С.А. и др. Нейрохирургия. 2022. Т24. № 1.С.38.
ТЕРАПИЯ КРИОКОНСЕРВИРОВАННЫМИ МОНОНУКЛЕАРНЫМИ КЛЕТКАМИ ПУПОВИННОЙ КРОВИ ЧЕЛОВЕКА ТРАВМЫ СПИННОГО МОЗГА В ОСТРОМ ПЕРИОДЕ: ЭКСПЕРИМЕНТ И КЛИНИКА
С.А. Базанович1, М.А. Звягинцева1,
Я.В. Морозова1, С.М. Радаев2,
В.А. Смирнов2, А.А. Гринь2, С.И. Рябов1
1 ФГБУ Научный медицинский исследовательский центр кардиологии им. академика Е.И. Чазова Минздрава России, Москва, Россия
2 ГБУЗ НИИ скорой помощи им. Н.В. Склифосовского Департамента здравоохранения г. Москвы, Москва, Россия
e-mail: [email protected]
Ключевые слова: травма спинного мозга, клеточная терапия, мононуклеарные клетки пуповинной крови человека.
Цель исследования — оценка эффективности внутривенного введения криоконсервированных монону-клеарных клеток пуповинной крови человека (КМКПКЧ) в остром периоде контузионной травмы спинного мозга (КТСМ) у крыс на восстановление движений конечностей и формирование посттравматических кист [1] и оценка неврологического статуса пациентов с ушибом спинного мозга после введения КМКПКЧ.
Исследование выполнено на крысах-самках линии Спрег-Доули. Тяжелую КТСМ моделировали по методу «weight-drop» [2]. Использовали КМКПКЧ, хранившиеся 3-4 года при -196°C [3]. Двигательную функцию конечностей крыс оценивали в открытом поле по шкале ВВВ [3], МРТ-сканирование проводили с применением МРТ высокого поля [5]. Проведено клиническое исследование пациентов с ушибами спинного мозга тяжелой степени и неврологическим дефицитом с применением КМКПКЧ. Пациентам вводили 300 млн клеток в/в 4 раза (1 раз в неделю).
Однократное в/в введение МКПКЧ 10 млн клеток в 1 сутки после тяжелой КТСМ достоверно улучшает восстановление двигательной функции задних конечностей относительно уровня группы «самовосстановления» у крыс, а объем образующихся на 4-5 сутки посттрама-тических кистозных полостей достоверно уменьшается в два раза.
Через 1 год средний прирост по шкале ASIA составил 2,2 балла в группе клеточной терапии и 0,9 в контрольной группе, суммарный показатель двигательной активности верхних и нижних конечностей составил 77 ± 19 и 33 ± 21,6 и самостоятельно могли передвигаться 78% и 30% пациентов соответственно в каждой группе.
Проведенное исследование показывает эффективность терапии КМКПКЧ в остром периоде КТСМ.
Литература:
1. Терапевтический потенциал клеток пуповинной крови при негематологических заболеваниях. Под ред. М.А. Пальцева,
B.Н. Смирнова.М. «Шико». 2012. 176 с.
2. Basso D.M., Beattie M.S., Bresnahan J.C. Exp. Neurology.1996, V. 139. P. 244.
3. Рябов С.И., Звягинцева М.А., Смирнов В.А. и др. Бюл.экспер. биол., 2014. Т. 157. № 1. С. 98.
4. Basso D.M., Beattie M.S., Bresnahan J.C. J. Neurotrauma. 1995.V.12. N 1. P. 1.
5. Ядгаров М.Я., Смирнов В.А., Базанович С.А. и др. Нейрохирургия. 2022. Т24. № 1. С. 38.
СТРУКТУРА И СВОЙСТВА ПОРИСТЫХ МАТЕРИАЛОВ, ПОЛУЧЕННЫХ МЕТОДОМ ЛИОФИЛИЗАЦИИ
К.Ю. Базылева1, 2, К.Г. Антипова2,
C.В. Крашенинников2, С.Н. Малахов2, Р.В. Шариков2, Т.Е. Григорьев2
1 Физический факультет, МГУ им. М.В. Ломоносова, Москва, Россия
2 Научный исследовательский центр Курчатовский институт, Москва, Россия
e-mail: [email protected]
Ключевые слова: лиофилизация, высокопористые материалы, тканевая инженерия.
Пористость в трехмерном каркасе является важным фактором для тканевой инженерии [1, 2]. Рост и внедрение клеток в значительной степени зависят от размера пор внутри каркаса, которыми необходимо тщательно управлять с учетом конкретных параметров в зависимости от материала и применения [1, 3, 4]. Роль пористости заключается в том, что клеточные сети полагаются на взаимосвязанные пути для транспортировки питательных веществ, передачи сигналов клетками и пролиферации, имитируя по структуре окружающую среду нативного внеклеточного матрикса [1, 5]. Одним из распространенных методов получения высокопористых материалов является лиофилизация. Этот метод позволяет получать материалы с высокой удельной поверхностью и различной структурой пор. Первым этапом лиофилиза-ции является заморозка, которая влияет на архитектуру будущих материалов. Таким образом, целью данной работы было создание замораживающей ячейки с контролированием условий заморозки для получения выспоко-пористых материалов с регулируемыми свойствами для тканевой инженерии.
Для синтеза материалов использовали водный раствор ПВС (Sigma-Aldrich, США, Mw = 130 кДа) с концентрацией 6%, в который добавляли сшивающий агент — глутаровый альдегид (Sigma-Aldrich, США, 50% водный раствор) в соотношении 0,005 и 0,01 к 1 осново-моль полимера в присутствии соляной кислоты (Компонент-Реактив, Россия, о.с.ч.). После смешивания полученную смесь замораживали при разных условиях в разработанной нами ячейки, состоящей из элементов Пельтье TB-127-1.0-1.3. После все замороженные материалы лиофилизировали на установке Martin Christ Alpha 2-4LSC installation в течении 72 ч при глубине вакуума
0.250.мбар.
Для изучения механических свойств образцы испытывали при одноосном сжатии на универсальной разрывной машине Instron 5965. Из полученных данных определяли модуль упругости полимерных материалов.
Исследование морфологии образцов проводили при помощи растрового электронного микроскопа Phenom XL (ThermoFisher Scientific, США). Изображения получали с использованием детектора обратно рассеянных электронов при ускоряющем напряжении 5 кВ и давлении 10 Па без предварительного нанесения токопрово-дящего покрытия на образец.
В работе измеряли удельную поверхность полученных материалов в зависимости от способа заморозки и концентрации сшивающего агента. Исследования проводили на анализаторе удельной поверхности и пористости Authosorb iQ (Quantachrome Instruments, США) путем обработки изотермы адсорбции паров азота при температуре 77 К в диапазоне относительных давлений от 10-5 до 0,99 методом Брюнера-Эммета-Теллера (БЭТ).
В результате работы была разработана и изготовлена замораживающая ячейка из элементов Пельтье. С помощью нее были созданы анизотропные и изотропные полимерные выскопористые материалы на основе ПВС с различной архитектурой.
Работа выполнена при поддержке государственного задания НИЦ «Курчатовский институт».
Литература:
1. Stratton S. et al. Bioactive materials. 2016. V. 1. No. 2. P.
93-108.
2. Bonfield W. Philosophical Transactions of the Royal Society A:
Mathematical, Physical and Engineering Sciences. 2006. V.
364. No. 1838. P. 227-232.
3. Zeltinger J. et al. Tissue engineering. 2001. V. 7. No. 5. P.
557-572.
4. O'Brien F.J. et al. Biomaterials. 2005. V. 26. No. 4. P. 433-441.
5. Chan B.P., Leong K.W. European spine journal. 2008. V. 17.
No. 4. P. 467-479.
ТКАНЕВАЯ ИНЖЕНЕРИЯ ПРИ СПИНАЛЬНОЙ
ТРАВМЕ — СЕГОДНЯ И ЗАВТРА
В.П. Баклаушев1, 2, О.В. Дуров1, В.А. Кальсин1, 2
1 ФГБУ ФНКЦ ФМБА России, Москва, Россия
2 ИМБ РАН, России, Москва, Россия
e-mail: [email protected]
Ключевые слова: спинальная травма, нейральные стволовые клетки, прямое репрограммирование, регенеративная
терапия, вызыванные потенциалы
В эксперименте на макаках-резусах исследовали эффективность трансплантации тканеинженерных
