CC BY
2ВЕТЕРИНАРИЯ
УДК 619:616-089.5:[618.1-089.87:636.8]
СРАВНИТЕЛЬНАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА СПОСОБОВ АНЕСТЕЗИИ ПРИ ЭНДОСКОПИЧЕСКОЙ ОВАРИОГИСТЕРЭКТОМИИ КОШЕК
Куевда Е.Н., кандидат ветеринарных наук;
Лизогуб М.Л., кандидат биологических наук;
Шведова А.Д., обучающаяся Институт «Агротехнологическая академия» ФГАОУ ВО «КФУ имени В.И.Вернадского».
Поиск эффективных способов анестезии является актуальной проблемой для современной ветеринарии мелких домашних животных. Использование комбинации медитина и золетила при эндоскопической ова-риогистереэктомии кошек позволяет получить глубокий управляемый наркоз в течение всего времени операции, применение антимедина при этом позволяет сократить срок реверсии. Сочетание профола с эпидуральной анестезией у части животных вызывает апноэ с последующей реанимацией, требует индивидуальной под-титровки дозировки препарата, что в совокупности с реанимационными мероприятиями удлиняет время операции и затрудняет ее.
COMPARATIVE CHARACTERISTICS OF ANESTHESIA METHODS IN QUEEN ENDOSCOPIC OVARIOHYSTERECTOMY
Kuevda E.N., Candidate of Veterinary Sciences;
Lizogub M.L., Candidate of Biology Sciences;
Shvedova A.D., studying Institute "Agrotechnological Academy" FSAEI HE «V. I. Vernadsky Crimean Federal University».
The search for effective methods of anesthesia is an urgent problem for modern small pets veterinary medicine. The use of a combination of meditine and zoletil in queen endoscopic ovariohysterectomy allows you to get deep controlled anesthesia during the entire operation, the use of antimedin at the same time allows you to shorten the period of reversion. The combination of propofol with epidural anesthesia in some animals causes apnea with subsequent resuscitation, requires individual adjustment of the dosage of the drug, which in combination with resuscitation measures lengthens the operation time and complicates it.
167
Ключевые слова: анестезия, меди- Keywords: anesthesia, medicine, тин, золетил, антимедин, пропофол. zoletil, antisedin, propofol.
Введение. Эндоскопическая овариогистерэктомия - плановая хирургическая операция, которая выполняется с целью полного прекращения репродуктивной функции животных. Ее основное преимущество - малая травматизация тканей, сравнительно быстрое выполнение и отсутствие необходимости послеоперационного ухода за раной. Это становится приоритетным, когда оперируют бездомных животных. Однако, оперативное вмешательство - полостное, требующее тщательного обезболивания. Разрез мягких тканей (кожи и мышц) при этом не превышает 0,5-0,8 см, но раздражение брюшины, растяжение связок и брыжейки, коагуляция матки вызывают значительные болезненные ощущения у животных. Продолжительность операции без осложнений обычно не превышает 30-45 мин в зависимости от состояния животного. При наличии осложнений (пиометре, спонтанной беременности и др.) эндоскопическая овариогистерэктомия становится невозможной и операция проводится открытым способом [1, 2].
Разнообразие лекарственных препаратов для анестезии и возможность сочетать их в различных комбинациях позволяют использовать самые разнообразные методы обезболивания при операциях.
Однако практически ни один препарат не является идеальным и не обеспечивает всех требований предъявляемых к наркозу (полная аналгезия, сон, мио-релаксация, отсутствие побочных эффектов и реакций, отсутствие метаболиза-ции, простота контроля и применения и др.). Поэтому невозможно однозначно рекомендовать определенный препарат для наркоза, возникает необходимость поиска комбинаций, удовлетворяющих потребности пациента и хирурга для максимального достижения поставленной цели. Выбор метода наркоза и применяемых препаратов должен соответствовать, прежде всего, состоянию пациента, а также характеру и продолжительности запланированной операции. При этом следует учитывать в первую очередь максимальную безопасность лекарственных средств для животного [3].
Материал и методы исследований. При выполнении работы использовали клинические, гематологические и статистические методы исследований. Экспериментальные исследования были организованы и выполнены на кафедре внутренней патологии животных Институт «АТА» ФГАОУ ВО «КФУ имени В.И.Вернадского» в период март-июль 2023 г.
Объектом исследования были 12 кошек разных пород и различного возраста (3-6 лет). Содержание животных было преимущественно домашнее (в квартире) с ограничением или отсутствием свободного выгула на улице, кормление - сухими (коммерческими) кормами. Клиническое обследование животных проводили по общепринятой схеме. Особое внимание при этом обращали на состояние сердечно-сосудистой системы и состояние гидратации. Все животные перед операцией были клинически здоровы.
168
Операцию осуществляли с использованием троакара для эндоскопической овариогистерэктомии (ЭОГЭ) (Казань, Россия) в спинном положении. Контроль жизненных показателей (температуру тела, частоту сердечных сокращений и дыхания, давление крови, электрокардиографию и пульсоксиметрию) проводили с использованием монитора пациента «Сторм 5770 Вет» (Dixion, Россия), кровяное давление дополнительно контролировали ветеринарным тонометром petMAP graphic II (Cardio Command Inc, США). Эти показатели регистрировали постоянно, но учитывали через 5, 15 и 30 мин после введения анестетиков. Для ОГЭ использовали электрокоагулятор хирургический ТД ВЕТ 400 (НПО «Никор», Россия). Во время операции вводили раствор Рингера ИПС 10 мл/кг*ч при помощи насоса инфузионного ветеринарного Zoomed SN-1600V (Китай). Клинически определяли дополнительно глубину анестезии по клиническим признакам, состояние животного при выходе из наркоза.
Для анестезии кошек первой группы использовали комбинацию медитина (Арюеппа,Росссия; д.в. - медетомидин, 1 мг/мл) - до 0,1 мл/гол и «Золетила 100» (Virbac, Франция; д.в. - тилетамин и золазепам - по 250 мг) - до 1,5 мг/ кг, вводимых внутривенно через венозный катетер 22G. Для реверсии использовали 0,1% антимедин (Apicenna, Россия; д.в. - атипамезол, 5 мг/мл) в эквивалентной медитину дозе. Для кошек второй группы использовали «Пропофол» в следующих дозировках: загрузочная доза - 5 мг/кг, далее - ИПС 0,2-0,3 мг/кг*ч через венозный катетер 22G [3, 4] в комбинации с эпидуральной анестезией (4,4 мг/кг 2% лидокаина) [3, 5]. Для ИПС использовали насос инфузионный шприцевой «ИНСТИЛАР 1438» (Dixion, Россия).
Перед анестезией в крови определяли величину гематокрита микроцентрифугированием, общий белок и плотность мочи - на клиническом портативном рефрактометре АТС (Китай).
Статистическую обработку результатов проводили оценкой достоверности различий средних связанных (зависимых) выборок, учитывая индивидуальные изменения исследуемых показателей [6].
Результаты и обсуждение. Клиническое состояние животных перед операцией в обеих группах было хорошим. При сборе анамнеза, клиническом обследовании признаков заболеваний не регистрировали, противопоказаний к анестезии и оперативному вмешательству не выявляли. Показатели гидратации были без отклонений (табл.1).
Таблица 1. Лабораторные показатели кошек
пе ред анестезией, M±m (n= 12)
Гематокрит, % Общий белок, г/л Плотность мочи, г/мл
38,36±0,97 69,36±1,04 1,04±0,003
30-45 60-75 1,015-1,065
Основные жизненные показатели кошек первой подгруппы в течение операции отображены в таблице 2.
169
Таблица 2. Основные клинические показатели кошек первой подгруппы при анестезии, M±m (п=6)
Показатель До анестезии При анестезии Норма
Через 5 мин Через 15 мин Через 30 мин
Температура тела, °С 38,28±0,12 37,58±0,16*** 37,27±0,15 36,88±0,11*** 38-39,5
Пульсоксиметрия, % 96,0±0,63 92,0±0,82*** 91,8±0,40 92,7±0,33* 95-100
ЧСС, мин-1 160,2±6,30 142,8±6,13*** 137,3±5,5*** 127,7±6,16*** 110-140
ЧДД, мин-1 30,50±1,06 19,83±0,48*** 18,83±0,48** 19,50±0,43 20-30
МАР, мм рт.ст. 125,7±2,72 120,2±2,85*** 118,7±2,79*** 114,5±2,68*** 80-130
Примечание: * - р<0,05, ** - р<0,01, *** - р<0,001 относительно предыдущего периода исследований.
По данным таблицы 2 видно, что у животных очень быстро наступала глубокая анестезия, которая клинически проявлялась отсутствием реакции на раздражения, полным расслаблением мускулатуры и отсутствием реакции роговицы и зрачков. Через 5 минут после введения анестетиков все жизненные показатели значительно снизились. При этом температура тела, частота сердечных сокращений и МАР постепенно снижались в течение всего наркоза (до конца операции), температура тела уже через 5 мин была ниже нормальной и максимально низкой - к концу операции - на 1,4°С, или на 3,7% (р<0,001). Пульсоксиметрия и частота дыхания в течение операции имели схожую динамику. Так, через 5 мин эти показатели снизились значительно - на 4,2 и 35,1% соответственно (р<0,001), через 15 мин пульсоксиметрия практически не изменилась, а ЧДД еще понизилась - на 5,1% (р<0,01). В конце операции оба этих показателя незначительно повысились - на 1% (р<0,05) и 3,5% соответственно. Продолжительность операции у животных этой группы не превысила 30 мин. Реверсия животных после анестезии продолжалась сравнительно быстро - в течение 1,5-2 ч.
Динамика основных клинических показателей кошек второй группы приведена в таблице 3.
По данным таблицы 3 видно, что динамика анестезии варьировала. Так,
температура тела постепенно снижалась в течение анестезии (как и у животных первой группы), однако - менее значительно, постепенно - на 0,37-0,48°С в каждый период. У трех животных под влиянием загрузочной дозы возникло апноэ продолжительностью до 2-3 минут, что значительно отразилось на значениях пульсоксиметрии и ЧДД, которые имели сходную динамику: резкое снижение через 5 минут анестезии и постепенное повышение через 15 и 30 минут после начала исследований. Через 5 минут эти показатели снизились на 9,9 и 40,9% соответственно (р<0,001), через 15 минут пульсоксиметрия увеличилась на 4,0% (р<0,05), а ЧДД - почти не изменилось - на 1,0%, через 30 ми-
170
нут анестезии оба показателя увеличились на 2,7 (р<0,01) и 7,7% (р<0,05) соответственно. МАР изменялось в течение анестезии достаточно нестабильно. Так, вследствие апноэ у трех животных и гипотензии в среднем через 5 минут этот показатель снизился значительно - на 21,6% (р<0,001), однако через 15 и 30 минут наблюдалось тенденция постепенного повышения этого показателя. При этом, трем животных потребовалось повышение дозы препарата ИПС во время анестезии вследствие повышения болезненности и нарастания ЧСС и МАР. В целом, время, затраченное на поддержку дыхания, подтитровку дозировки препарата во время анестезии удлинили продолжительность операции до 40-43 минут, против 30-35 минут у кошек, не имеющих подобных проблем.
Реверсия животных после наркоза в среднем составляла 3,5-4 ч.
Таблица 3. Основные клинические показатели
кошек второй подгруппы при анестезии, M±m (п=6)
Показатель До анестезии При анестезии Норма
Через 5 мин Через 15 мин Через 30 мин
Температура тела, °С 38,32±0,17 37,95±0,14** 37,58±0,09*** 37,10±0,11*** 38-39,5
Пульсокси-метрия, % 96,3±0,71 86,8±2,41*** 90,3±0,95* 92,7±0,33** 95-100
ЧСС, мин-1 158,3±3,67 146,5±3,85*** 126,5±1,84*** 121,2±4,19 110-140
ЧДД, мин-1 30,83±1,08 17,67±1,84*** 19,50±0,72 21,00±0,45* 20-30
МАР, мм рт.ст. 120,5±3,01 94,5±3,75*** 104,7±6,47 106,2±4,79 80-130
Примечание: * - р<0,05, ** - р<0,01, *** - р<0,001 относительно предыдущего периода исследований.
Выводы. Использование комбинации медитина и золетила обеспечивает глубокий наркоз необходимой продолжительности. Клиническое состояние животных при этом стабильное, все контролируемые показатели нормальные. Применение пропофола для анестезии у половины животных сопровождается осложнениями в виде апноэ, что вызывает необходимость применения дополнительных поддерживающих мер (искусственного дыхания до появления спонтанного дыхания). Сочетание профола с эпидуральной анестезией у части животных требует индивидуальной подтитровки дозировки препарата, что в совокупности с реанимационными мероприятиями удлиняет время операции и затрудняет ее. Использование препаратов для реверсии (антимедина) обеспечивает более быстрый и стабильный выход животных из наркоза после оперативного вмешательства.
Список использованных источников References:
1. Шебиц Х. Оперативная хирур- 1. Schebitz H. Operative surgery
гия собак и кошек / Х.Шебиц, В.Брасс. of dogs and cats / H.Schebitz, W.Brass.
171
Перев. с нем. В. Пулинец, М.Степкин.
- М.: ООО «Аквариум-Принт», 2007.
- 512 с.
2. Fossum T.W. SMALL ANIMAL SURGERY/ T.W.Fossum. - ELSEVIER, 2019. - 5th Ed. - 1629 p.
3. Shelby A.M. Small Animal Anesthesia Techniques / A.M.Shelby, C.M.McKune. - Wiley Blackwell, 2014.
- 333 p.
4. Papich M. PAPICH HANDBOOK OF VETERINARY MEDICINE, Fifth ed. / M.Papich. -Elsevier, 2021. - 1060 p.
5. Handbook of Small Animal Regional Anesthesia and Analgesia Techniques / P.Lerche, T.K.Aaarnes, G.Covey-Crump, F.M.Taboada. - Wiley Blackwell, 2016. - 103 p.
6. Юнкеров В.И. Математи-ко-статистическая обработка данных медицинских исследований / В.И. Юнкеров, С.Г. Григорьев. - С.-Пб., 2002. - 134 с.
- M.: Aquarium-Print, 2007. - 512 p.
2. Fossum T.W. SMALL ANIMAL SURGERY/ T.W.Fossum. - ELSEVIER, 2019. - 5th Ed. - 1629 p.
3. Shelby A.M. Small Animal Anesthesia Techniques / A.M.Shelby, C.M.McKune. - Wiley Blackwell, 2014.
- 333 p.
4. Papich M. PAPICH HANDBOOK OF VETERINARY MEDICINE, Fifth ed. / M.Papich. -Elsevier, 2021. - 1060 p.
5. Handbook of Small Animal Regional Anesthesia and Analgesia Techniques / P.Lerche, T.K.Aaarnes, G.Covey-Crump, F.M.Taboada. - Wiley Blackwell, 2016. - 103 p.
6. Junkerov V.I. Mathematical and statistical processing of medical research data / V.I. Junkerov, S.G. Grigoriev. - S.-Pb., 2002. - 134 p.
Сведения об авторах:
Куевда Екатерина Николаевна -кандидат ветеринарных наук, доцент кафедры внутренней патологии животных факультета ветеринарной медицины Института «Агротехнологи-ческая академия» ФГАОУ ВО «КФУ имени В.И. Вернадского», e-mail: terapy-catu@yandex.ru, 295492, п. Аграрное, Институт «Агротехнологи-ческая академия» ФГАОУ ВО «КФУ им. В.И.Вернадского».
Лизогуб Михаил Леонидович -кандидат биологических наук, доцент кафедры внутренней патологии жи-
Information about the authors:
Kuevda Ekaterina Nikolaevna - Candidate of Veterinary Sciences, Associate Professor of the Department of Animal Internal Pathology of the Faculty of Veterinary Medicine of the Institute "Agrotechnological Academy" FSAEI HE «V. I. Vernadsky Crimean Federal University», e-mail: terapy-catu@ yandex.ru, Institute "Agrotechnological Academy" FSAEI HE «V. I. Vernadsky Crimean Federal University» 295492, Republic of Crimea, Simferopol, Agrarnoe.
Lizogub Michail Leonidovich
172
вотных факультета ветеринарной медицины Института «Агротехнологи-ческая академия» ФГАОУ ВО «КФУ имени В.И. Вернадского», e-mail: zareros@yandex.ru 295492, п. Аграрное, Институт «Агротехнологиче-ская академия» ФГАОУ ВО «КФУ им. В.И.Вернадского».
Шведова Алла Дмитриевна - обучающаяся 5 курса направления специальности 36.05.01, Институт «Агро-технологическая академия» ФГАОУ ВО «КФУ имени В.И. Вернадского», e-mail: terapy-catu@yandex.ru, 295492, п. Аграрное, Институт «Агротехноло-гическая академия» ФГАОУ ВО «КФУ им. В.И.Вернадского».
- Candidate of Biology Sciences, Associate Professor of the Department of Animal Internal Pathology of the Faculty of Veterinary Medicine of the Institute "Agrotechnological Academy" FSAEI HE «V.I. Vernadsky Crimean Federal University», Institute "Agrotechnological Academy"FSAEI HE «V.I. Vernadsky Crimean Federal University» 295492, Republic of Crimea, Simferopol, Agrarnoe.
Schvedova Alla Dmitrievna -is a 5th-year student of the student in the specialty 36.05.01, Institute "Agrotechnological Academy" FSAEI HE «V. I. Vernadsky Crimean Federal University», e-mail: terapy-catu@ yandex.ru, Institute "Agrotechnological Academy" FSAEI HE «V. I. Vernadsky Crimean Federal University» 295492, Republic of Crimea, Simferopol, Agrarnoe.
173
