CC BY
52
104 Технология производства, качество продукции и экономика в мясном скотоводстве
УДК 636.52/58:612.432:636.06
Состояние гипофизарно-тиреоидной системы в организме кур в ходе яйцекладки Л.Ш. Горелик1, О.В. Горелик2, С.Ю. Харлап2
1 Сибайский мясокомбинат
2 ФГБОУВО «Уральский государственный аграрный университет»
Аннотация. Тиреоидные гормоны регулируют процессы развития, созревания, специализации и обновления почти всех тканей организма, обеспечивают нормальный энергетический обмен.
Целью работы явилось установить уровень гормонов гипофизарно-тиреоидной системы в организме кур на разных стадиях яйцекладки. Тиреотропный гормон в организме несушек влияет на развитие тиреоидных фолликулярных клеток в щитовидной железе и определяет скорость высвобождения из фолликулярного коллоида в кровоток тироксина и трийодтиронина.
В результате исследований было установлено, что содержание тиреотропного гормона гипофиза (ТТГ) в крови кур достоверно не зависело от срока репродуктивного периода и колебалось в интервале 0,40-0,41 мкМЕ/мл. Степень влияния тиреотропного гормона на скорость секреции и дейодирования тироксина планомерно уменьшалась в ходе яйцекладки, что подтверждалось снижением величины соотношения трийодтиронина и тироксина (Т3/Т4) с 0,44 (26-недельный возраст) до 0,34 усл. ед. (Р<0,05) (80-недельный возраст) и повышением Т4/Т3 с 2,32 до 2,92 усл. ед. Ослабление регулирующего воздействия ТТГ на Т4 сопровождалось уменьшением яйценоскости несушек. Основным действующим тиреоидным гормоном в организме кур является Т3, а тироксин - его предшественник - прогормон, обеспечивающий постоянный запас гормона в малоактивной форме. Тиреоидный профиль оказывает влияние на активность и соотношение процессов анаболизма и катаболизма в белковом обмене организма кур-несушек.
Ключевые слова: куры, яйцекладка, тиреоидные гормоны, гипофизарно-тиреоидная система.
Введение.
Показателями функциональных возможностей организма служат параметры отдельных органов и систем, взаимосвязь между которыми, а также протекание в них метаболических реакций определённой интенсивности, объединение их в единое целое - живой организм, состояние «го-меостаза» обеспечивается с помощью биологического действия гормонов [1-3], в том числе и ти-реоидных, необходимых для нормального развития, роста и функционирования органов.
Тиреоидные гормоны регулируют процессы развития, созревания, специализации и обновления почти всех тканей организма, обеспечивают нормальный энергетический обмен (увеличивают количество митохондрий, стимулируют образование энергии и тепла, повышают потребность тканей в кислороде; влияют на образование более 100 различных ферментов; участвуют в обмене углеводов, жиров, витаминов, кальция и магния и др.) [4]. Высокая продуктивность несушек в условиях промышленной технологии обеспечивается за счёт повышения интенсивности обменных процессов в их организме [3, 5-7]. Поддерживать её можно только благодаря координированию метаболических потоков на клеточном, органном и организменном уровнях. При этом регулирующим фактором будут гормоны, в том числе и тиреоидные.
Гормональная регуляция в организме животных и птиц, в том числе и гипофизарно-тиреоидная, осуществляется по принципу обратной связи [8-12].
Цель исследования.
Установить уровень гормонов гипофизарно-тиреоидной системы в организме кур на разных стадиях яйцекладки.
Технология производства, качество продукции и экономика в мясном скотоводстве 105
Материалы и методы исследований.
Объект исследования. Куры-несушки одновозрастного промышленного стада кросса «Ломан белый» в ходе яйцекладки.
Обслуживание животных и экспериментальные исследования были выполнены в соответствии с инструкциями Russian Regulation 1987 (Order No. 755 on 12.08.1977 the USSR Ministry of Healthy) and «The Guide for Care and Use of Laboratory Animals (National Academy Press Washington, D.C. 1966)». При выполнении исследований были приняты усилия, чтобы свести к минимуму страдания животных и уменьшения количества используемых образцов.
Схема эксперимента. Экспериментальная часть работы выполнена на базе ОАО «Челябинская птицефабрика» и в лаборатории ФГБОУ ВО «Уральская государственная академия ветеринарной медицины» органической, биологической и физколлоидной химии.
По принципу сбалансированных групп была сформированы три опытные группы (n=10). Первая группа кур-несушек - в возрасте 26 недель (начало репродуктивного периода), вторая - в 52 недели (пик яйцекладки), третья - 80 недель (конец яйцекладки). Образцы проб брали в разные периоды методом случайной выборки из каждой группы.
Куры-несушки содержались в основных производственных корпусах, оборудованных клеточными батареями.
Концентрацию тироксина, трийодтиронина и тиреотропного гормона в сыворотке крови определяли методом твердофазного иммуноферментного анализа (ИФА) с применением монокло-нальных антител. При добавлении исследуемого образца и конъюгата Т4-пероксидаза во время инкубации эндогенный Т4 сыворотки крови конкурирует с Т4, входящим в состав конъюгата, за связывание с моноклональными антителами к Т4, иммобилизованными на внутренней поверхности лунок планшета.
При удалении из лунок происходит разделение свободного и связанного антителами конъ-югата Т4-пероксидаза, причём количество связанного антителами конъюгата обратно пропорционально количеству свободного Т4 в образце сыворотки крови.
Во время инкубации с ТМБ-субстратным раствором происходит окрашивание раствора в лунках. Степень окраски прямо пропорциональна количеству связанного антителами конъюгата Т4-пероксидаза. После измерения оптической плотности раствора в лунках на основании калибровочного графика рассчитывается концентрация свободного Т4 в исследуемых образцах. Концентрацию гормона рассчитывали по колибровочному графику, единица измерения - пмоль/л.
Метод определения трийодтиронина основан на твердофазном конкурентном иммунофер-ментном анализе с применением моноклональных антител. При добавлении исследуемого образца и конъюгата Тз-пероксидаза во время инкубации эндогенный Тз сыворотки крови конкурирует с Т3, входящим в состав конъюгата, за связывание с моноклональными антителами к Т3, иммобилизованными на внутренней поверхности лунок планшета.
При удалении из лунок происходит разделение свободного и связанного антителами конъ-югата Тз-пероксидаза, причём количество связанного антителами конъюгата обратно пропорционально количеству свободного Тз в образце сыворотки крови.
Во время инкубации с ТМБ-субстратным раствором происходит окрашивание раствора в лунках. Степень окраски прямо пропорциональна количеству связанного антителами конъюгата Тз-пероксидаза. После измерения оптической плотности раствора в лунках на основании калибровочного графика рассчитывается концентрация свободного Тз в исследуемых образцах. Концентрацию гормонов рассчитывали по калибровочному графику, единица измерения - пг/мл.
Метод определения ТТГ основан на применении «сэндвич» — варианта твёрдофазного ИФА. Для его реализации использованы два моноклональных антитела с разной специфичностью к двум доменам молекулы ТТГ: первые антитела иммобилизованы на твёрдой фазе, вторые (меченые пероксидазой хрена) входят в состав конъюгата. В лунках при добавлении исследуемого образца и конъюгата анти-ТТГ-пероксидаза, во время инкубации одновременно происходят иммобилизация ТТГ, содержащегося в исследуемом образце, и связывание его с конъюгатом. Количество связавшегося конъюгата прямо пропорциональна количеству ТТГ в исследуемом образце.
106 Технология производства, качество продукции и экономика в мясном скотоводстве
Во время инкубации с ТМБ-субстратным раствором происходит окрашивание раствора в лунках. Степень окраски прямо пропорциональна концентрации ТТГ в анализируемых пробах. После измерения оптической плотности раствора в лунках на основании калибровочного графика рассчитывается концентрация ТТГ в исследуемых образцах. Концентрацию гормонов рассчитывали по калибровочному графику, единица измерения - мкМЕ/мл.
Оборудование и технические средства. Исследования проведены в лаборатории ФГБОУ ВО «Уральская государственная академия ветеринарной медицины». Для исследований использовали иммуноферментный анализитор Cobas e 411 («Roche», Швейцария), в комплекте с StatFax 2100 и комплектом восьмиканальных дозаторов Колор; штатив; комплект наконечников для дозаторов.
Статистическая обработка. Экспериментальный цифровой материал, полученный в опыте, был подвергнут статистической обработке с помощью офисного программного комплекса «Microsoft Office» с применением программы «Ехсе1» и обработкой данных в «Statistika 6.0» («Stat Soft Inc.», США). Статистический анализ включал расчёт средней арифметической величины и её ошибки, анализ связи двух признаков параметрическим методом Пирсона и анализ вида зависимости одного признака от нескольких признаков построением линейного регрессионного уравнения с использованием прямого пошагового алгоритма. Достоверность различий между признаками оценивали с учётом парного критерия t-Стьюдента для нормального распределения переменных и F-кри-терия Фишера.
Результаты исследований.
Тиреотропный гормон в организме несушек влияет на развитие тиреоидных фолликулярных клеток в щитовидной железе и определяет скорость высвобождения из фолликулярного коллоида в кровоток тироксина и трийодтиронина. В результате исследований было установлено, что содержание тиреотропного гормона гипофиза (ТТГ) в крови кур достоверно не зависело от срока репродуктивного периода (табл. 1) и колебалось в интервале 0,40-0,41 мкМЕ/мл.
Таблица 1. Возрастная динамика гормонов (n=10), Х±Sx
Показатель Возраст кур-несушек, нед
26 (начало яйцекладки) 52 (пик яйцекладки) 80 (конец яйцекладки)
ТТГ, мкМЕ/мл Тз, пг/мл Т4, пмоль/л 0,41±0,009 0,40±0,003 0,40±0,003 3,25±0,16 3,35±0,19 3,00±0,11 7,45±0,85 9,10±0,26 8,75±0,55
Примечание: Тг Г - тиреотропный гормон; Т3 - трийодтиронин; Т4 - тироксин
Несмотря на постоянство концентрации ТТГ, в организме кур-несушек формировалась определённая скорость реализации его действия в системе «гипофиз-щитовидная железа», что регулировало функциональную активность щитовидной железы и кооперативно включало каскад реакций секреции, активации, транспорта, клеточного захвата и рецепторного связывания йодти-ронинов. Всё это обеспечивало изменение концентрации гормонов в зависимости от возраста и срока репродуктивного периода кур.
При этом количество трийодтиронина (Т3) колебалось практически на одном и том же уровне, составляя 3,00-3,25 пг/мл (табл. 1), хотя и имело тенденцию к снижению в ходе яйцекладки. Более значительно зависела от возраста кур концентрация тироксина (Т4), хотя и недостоверно. Минимальный уровень гормона содержался в крови 26-недельных несушек (7,45±0,85 пмоль/л), повышаясь к 52 неделе в 1,22 раза и составляя 9,10±0,26 пмоль/л. В конце яйцекладки (возраст -80-недель) количество Т4 составило 8,75±0,55 пмоль/л (табл. 1).
Технология производства, качество продукции и экономика в мясном скотоводстве 107
Концентрация тироксина во все периоды яйцекладки превышала содержание трийодтиро-нина более чем в 2 раза. Об этом свидетельствовала величина отношения Т4/Т3, имеющая минимальное значение и, как следствие, наименьшую разницу между концентрациями тиреоидных гормонов в начале (26 недель) репродуктивного периода. Величина отношения Т4/Т3 постепенно возрастала с возрастом кур за счёт увеличения концентрации тироксина (табл. 2). Логично предположить, что в организме несушек более строго контролируется уровень трийодтиронина, чем тироксина, что, вероятно, являлось результатом их разной биологической роли в организме птиц (трийодтиронин более активно использовался клетками тканей и органов - мишеней биологического действия гормона). Вероятно, собственно гормональный эффект принадлежит, главным образом, трийодтиронину. При этом чем ниже величина соотношения тироксина и трийодтиронина, тем выше конверсия Т4 в Т3, осуществляемая с помощью ферментов дейодиназ (периферическое монодейодирование Т4) и более выражено биологическое действие тиреоидных гормонов на процессы метаболизма в организме кур.
Для проверки данного предположения мы рассчитали величину соотношения Т3/Т4, которая отражала проявление физиологического действия тиреоидных гормонов. На протяжении всего репродуктивного периода наблюдалась тенденция к понижению этого показателя в зависимости от возраста кур [11]. При этом наибольшее значение она имела у несушек в возрасте 26-недель (0,44±0,11 усл. ед.), а минимум - в 80 недель (0,34±0,11 усл. ед.; Р<0,05) (табл. 2).
Таблица 2. Соотношения тиреоидных гормонов (п=10), Х±Sx
Возраст кур-несушек, нед.
Показатель 26 52 80
(начало яйцекладки) (пик яйцекладки) (конец яйцекладки)
Т4/Т3, усл. ед. 2,32±0,26 2,77±0,14 2,92±0,26
Т3/Т4, усл. ед. 0,44±0,11 0,37±0,01* 0,34±0,11*
ТТГ/Т3, усл. ед. 0,13±0,02 0,12±0,0,1 0,13±0,01
Т3/ТТГ, усл. ед. 7,93±0,46 8,37±0,10 7,50±0,31
ТТГ/Т4, усл. ед. 0,055±0,01 0,043±0,001* 0,046±0,002*
Т4/ТТГ, усл. ед. 18,17±0,26 22,75±0,24* 21,87±0,42*
Т3+Т4/ТТГ, усл. ед. 26,09±2,46 31,12±0,93* 29,37±2,54
ТТГ/Т3+Т4, усл. ед. 7,61±0,38 9,24±0,74 8,98±0,33
Продуктивность по стаду, % 95,0 97,0 80,0
Примечание: ТТГ - тиреотропный гормон; Тз - трийодтиронин; Т4 - тироксин;
* - Р<0,05 по отношению к 26 неделе репродуктивного периода
На основании величин соотношений Т4/Т3 и Т3/Т4 можно сделать вывод, что тироксин в организме кур является гормоном-предшественником и подвергается постоянному «периферическому» дейодированию до трийодтиронина, обеспечивая его содержание в крови [12].
Дейодирование тироксина, кроме печени и почек, протекает и в клетках гипофиза, где под действием фермента дейодиназы происходит синтез Т3. Поэтому ТТГ в значительной степени регулирует скорость данной реакции посредством механизма обратной связи в системе гипофиз-щитовидная железа, а также образование и секрецию Т4 [8-10].
С целью оценки доли влияния ТТГ на взаимопревращения тироксина и трийодтиронина, а также их секрецию были рассчитаны соотношения концентраций между ТТГ, с одной стороны, и Тз и Т4 - с другой.
Установлено, что величина соотношения ТТГ/Тз и Тз/ТТГ достоверно не зависела от возраста кур и срока репродуктивного периода (табл. 2). Следовательно, ТТГ не оказывал прямого влияния на концентрацию трийодтиронина в крови несушек и его секрецию.
108 Технология производства, качество продукции и экономика в мясном скотоводстве
Значение отношения ТТГ/Т4 и Т4/ТТГ изменялось в ходе репродуктивного периода соответственно с 0,055 и 18,17 усл. ед. в 26-недельном возрасте кур до 0,043±0,001 (Р<0,05), 22,75±1,44 (Р<0,05) в 52-недельном и 0,46±0,002 (Р<0,05), 21,87±0,42 (Р<0,05) усл. ед. в 80-недельном (табл. 2). Значит, ТТГ оказывал прямое влияние на концентрацию и секрецию тироксина. Вероятно, поэтому и динамика величины Т3+Т4/ТТГ имеет такой же характер изменчивости, как Т4/ТТГ.
Максимально воздействие тиреотропного гормона на данные процессы было выражено в начале яйцекладки, что соответствовало наивысшей яйценоскости кур. Степень влияния тирео-тропного гормона на скорость секреции и дейодирования тироксина планомерно уменьшалась в ходе яйцекладки, что подтверждалось снижением величины соотношения трийодтиронина и тироксина (Т3/Т4) с 0,44±0,11 (26-недельный возраст) до 0,34±0,11 усл. ед. (Р<0,05) (80-недельный возраст) и повышением Т4/Т3 с 2,32±0,26 до 2,92±0,26 усл. ед. Ослабление регулирующего воздействия ТТГ на Т4 сопровождалось уменьшением яйценоскости несушек и свидетельствовало о наличии взаимосвязи между продуктивностью кур и внутриклеточным метаболизмом Т4.
Обсуждение полученных результатов.
В организме кур-несушек кросса «Ломан белый» между ТТГ и трийодтирони-ном/тироксином функционирует отрицательная обратная связь, которая обеспечивает высокий уровень секреции тиреоидных гормонов в щитовидной железе, а также скорость дейодирования тироксина в трийодтиронин. В совокупности данные факторы определяют секрецию и высвобождение ТТГ из гипофиза в кровь, а также функциональное состояние связи в системе «гипофиз-щитовидная железа».
Основным действующим тиреоидным гормоном в организме кур является Т3, а тироксин -его предшественник - прогормон, обеспечивающий постоянный запас гормона в малоактивной форме.
Состояние гипофизарно-тиреоидной системы в организме несушек зависит от возраста кур (периода яйцекладки) и уровня яйценоскости. Яичная продуктивность формируется на фоне постоянства тиреотропной функции гипофиза и изменяющемся уровне гормонов щитовидной железы. Это объясняется тем, что уровень яйценоскости сопряжён с активностью основного обмена, в регуляции которого принимает участие процесс периферического превращения Т4 в Т3.
На следующем этапе нашей работы мы выполнили корреляционный анализ и выявили корреляционные взаимосвязи с помощью линейного коэффициента корреляции по методу Пирсона между биохимическими показателями крови, характеризующими направленность и активность белкового обмена в организме кур-несушек, и уровнем тиреоидных гормонов.
Было установлено, что независимо от возраста, срока репродуктивного периода и уровня яйценоскости кур-несушек в организме птиц формируются следующие корреляционной структуры гормонов:
1. Независимо от уровней тироксина и трийодтиронина в крови несушек выявлен однотипный вид прямой, достоверной корреляции между Т3 и Т4, с одной стороны, и альбуминами, с другой стороны, в ходе репродуктивного периода. Значение корреляций колебалось на уровне г=0,71-0,82 (Р<0,05).
2. Трийодтиронин в ходе яйцекладки достоверно коррелировал с активностью АсАТ. Значения коэффициентов корреляции колебались в пределах 0,79-0,98 (Р<0,05). Считаем, что данный вид связи в системе тиреоидных гормонов имеет основополагающее значение, определяющее направленность биохимических реакций в обмене белков, так как фермент АсАТ является метабо-лоном цикла Кребса, поставляя в него субстраты для окислительного распада (продукты дезамини-рования аминокислот - а-кетокислоты), что формирует энергетическую основу метаболического статуса организма кур и, соответственно, яичной продуктивности. Поэтому трийодтиронин, регулируя каталитическую активность АсАТ, поддерживает соответствующую интенсивность катабо-лических процессов, синтеза энергии и её распределения.
3. Количество достоверных корреляций было наибольшим в возрасте несушек 26 и 52 недель, соответствующих периодам максимальной яичной продуктивности.
Технология производства, качество продукции и экономика в мясном скотоводстве 109
Следовательно, яйценоскость несушек - это результат скоординированности тиреоидного профиля организма птиц с интенсивностью обменных процессов. Конечно, в данные сроки яйцекладки тиреоидные гормоны в большей степени влияют на активность анаболических реакций в обмене белков, преобладающих в организме кур. Это предположение подтверждается отсутствием достоверных корреляционных связей между Тз, Т4, ТТГ и мочевиной.
4. Между показателями тиреоидного профиля и биохимическими параметрами крови установлены, в основном, только положительные корреляционные связи, что свидетельствует о непосредственном действии тироксина, трийодтиронина и тиреотропного гормона на процессы метаболизма белка.
5. Во все сроки репродуктивного периода Тз и Т4 достоверно коррелировали с концентрацией мочевой кислоты на уровне r=0,73-0,83 (P<0,05). Мочевая кислота - это один из конечных и для птиц основных продуктов, в виде которого удаляется азот, высвобождаемый в обмене белков.
Таким образом, активность обмена белка в организме птиц является одним из эффектов действия тиреоидных гормонов. Именно данные гормоны определяют направленность белкового обмена, так как их влияние может быть как анаболическим, так и катаболическим. Полученные нами в процессе исследования данные свидетельствуют о том, что яйценоскость есть результат регуляции тиреоидными гормонами обмена белков.
Деятельность щитовидной железы в организме птиц контролируется сложным нейро-гуморальным механизмом, составляющим гипоталамо-гипофизарно-тиреоидную систему, работающую по принципу обратных связей.
Впервые «принцип обратной связи» сформулировал в 1933 г. отечественный учёный М.М. Зава-довский. Под обратной связью подразумевается система, в которой конечный продукт деятельности этой системы (например, гормон) модифицирует или видоизменяет функцию компонентов, составляющих систему, направленную на изменение количества конечного продукта (гормона) или активности системы. Жизнедеятельность всего организма является следствием функционирования многочисленных саморегулируемых систем, находящихся, в свою очередь, под контролем нейро-эндокринно-иммунной системы. Конечный результат или активность системы может модифицироваться двумя путями, а именно путём стимуляции для увеличения количества конечного продукта (гормона) или повышения активности эффекта, или путём угнетения (ингибирования) системы с целью уменьшения количества конечного продукта или активности [6, 8, 9].
Основным регулятором активности щитовидной железы является ТТГ, выработка и секреция которого находится под двойным контролем как центрального механизма (гипоталамического тиреотропинрилизинг — гормона), так и периферического (циркулирующий в крови пул тиреоидных гормонов). Уровень тиреоидных гормонов в периферических тканях и крови определяет выработку гипоталамического тиреолиберина, который, в свою очередь, регулирует биосинтез и освобождение в портальную систему гипофиза тиреотропного гормона [13]. За счёт функционирования данного механизма в крови кур-несушек поддерживалась практически постоянная концентрации ТТГ в ходе всего периода исследований, хотя содержание тироксина и трийодтиронина изменялось.
Выводы.
Тиреоидный профиль оказывает влияние на активность и соотношение процессов анаболизма и катаболизма в белковом обмене организма кур-несушек, что определяет количественную изменчивость показателей и характер их корреляционной взаимосвязи с уровнем гормонов. Данная структура взаимосвязей, формируемая в биосистеме (организме кур), является, с одной стороны, характеристикой реализации её продуктивного потенциала, с другой - основой для формирования качественного и количественного состава яиц.
Литература
1. Гончаров Н.П. Тиреоидные гормоны // Проблемы эндокринологии. 1995. № 3. С. 31-35.
2. Ветщев В.С., Мельниченко Е.А., Кузнецов Н.С. Заболевания щитовидной железы. М.: Медицина, 1996. С. 125-160.
110 Технология производства, качество продукции и экономика в мясном скотоводстве
3. Старков Н.Т. Руководство по клинической эндокринологии. Спб.: Питер, 1996. 360 с.
4. Середа Т.И., Дерхо М.А. Особенности метаболического профиля кур в репродуктивный период //Фундаментальные и прикладные проблемы науки: материалы VII междунар. симпозиума. М.: РАН, 2012. Т. 3. С. 160-168.
5. Балаболкин М.И. Достижения в изучении биосинтеза тиреоидных гормонов // Проблемы эндокринологии. 1988. Т. 34. № 2. С. 46-50.
6. Булатова C.B. Сезонная изменчивость гормонов щитовидной железы как отражение процессов адаптации у жителей Урала // Эколого-физиологические проблемы адаптации: материалы X междунар. симпозиума. М., 2001. С. 156-158.
7. Коршунова Л.Г. Фенотипическая характеристика серых перепелов эстонской породы // Птица и птицепродукты. 2011. № 3. С. 45-52.
8. Туракулов Я.Х., Ташходжаева Т.П. Внутритиреоидное дейодирование тироксина: влияние ТТГ и денервации щитовидной железы // Проблемы эндокринологии. 1986. Т. 32. № 5. С. 7276.
9. Туракулов Я.Х., Ташходжаева Т.П., Артыкбаева Г.М. Активность конверсии тироксина в трийодтиронин в печени и почках крыс // Проблемы эндокринологии. 1991. Т. 37. № 4. С. 44-46.
10. Рахимов И.Х., Дерхо М.А. Влияние технологии содержания на формирование тиреоид-ного и метаболического статуса у бычков симментальской и чёрно-пёстрой пород // Учёные записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины. 2013. Т. 214. С. 336-341.
11. Шарипкулова, Л.Ш. Гипофизарно-тиреоидный статус кур-несушек кросса «Ломанн-белый // Научные труды Уральской государственной академии ветеринарной медицины. 2011. Т. XVI. С. 20-24.
12. Горелик Л.Ш., Дерхо М.А. Роль гипофизарно-тиреоидной системы в формировании продуктивности и метаболического профиля организма кур-несушек // Вестник Казанского государственного аграрного университета. 2013. № 2(28). С. 116-119.
13. Falk S.A. Thyroid Disorders // Clinica Chimica Acta. 1997. № 223. Р. 159-167.
Горелик Ляля Шагитовна, кандидат биологических наук, технолог Сибайского мясокомбината, 453839, Республика Башкортостан, г. Сибай, ул. Белова, 1-3, тел.: 8-9127934513, e-mail: [email protected]
Горелик Ольга Васильевна, доктор сельскохозяйственных наук, профессор ФГБОУ ВО «Уральский государственный аграрный университет», 460075, г. Екатеринбург, ул. Карла Либкне-хта, 42, тел.:8-9221309590, e-mail: [email protected]
Харлап Светлана Юрьевна, кандидат биологических наук, заведующий кафедрой химии и агроэкологий ФГБОУ ВО «Уральский государственный аграрный университет», 460075, г. Екатеринбург, ул. Карла Либкнехта, 42, тел.: 8-9920109678, e-mail: [email protected]
Поступила в редакцию 21 февраля 2018 года
UDC 636.52/58:612.432:636.06
Gorelik Lilya Shagitovna1, Gorelik Olga Vasilievna2, Kharlap Svetlana Yurievna2
1 Sibaysky meat processing plant, e-mail: [email protected]
2 FSBEIHE «Ural State Agrarian University», e-mail: [email protected] The state of the pituitary-thyroidal system of chickens during the laying period
Summary. Thyroid hormones regulate the processes of development, maturation, specialization and turnover of almost all tissues of the body ensuring normal energy metabolism.
Технология производства, качество продукции и экономика в мясном скотоводстве 111
The aim of this study was to determine the level of the pituitary-thyroidal system hormones in the body of chickens at different laying stages. Thyroid-stimulating hormone in the organism of laying hens affects the development of thyroid follicular cells in the thyroid gland and determines the rate of release from follicular colloid of thyroxine and triiodothyronine in the bloodstream.
As a result of studies it was found that the content of a thyroid-stimulating pituitary hormone (TSH) in the blood of chickens was not significantly dependent on the duration of the reproductive period and varied in the range of 0.40-0.41 ulU/ml. The degree of thyroid stimulating hormone influence on the rate of secretion and thyroxine deiodination gradually decreased during the laying period which was confirmed by a decrease of the triiodothyronine and thyroxine ratio (T3/T4) from 0.44 (26-week age) to 0.34 relative units (P<0.05) (80-week age) and an increase in T4/T3 from 2.32 to 2.92 relative units. Weakening of the regulatory effect of TSH on T4 was accompanied by a decrease in the egg production of laying hens. The main active thyroid hormone in the organisms of chickens is T3 and thyroxine, its predecessor, prohormone, providing a constant supply of hormone in a low-activity form. Thyroid profile affects the activity and the relation of the processes of anabolism and catabolism in the protein metabolism of laying hens. Key words: chickens, egg-laying, thyroid hormones, pituitary-thyroidal system.
