CC BY
22
_ВЕСТНИК ПНИПУ_
2020 Химическая технология и биотехнология № 2
Б01: 10.15593/2224-9400/2020.2.05 УДК 579.695
Я.А. Климова, Е.А. Фарберова, Е.А. Тиньгаева
Пермский национальный исследовательский политехнический университет, Пермь, Россия
РАЗРАБОТКА БИОХИМИЧЕСКОГО МЕТОДА ОЧИСТКИ СТОЧНЫХ ВОД ОТ 4-НИТРОФЕНОЛА
Работа посвящена разработке биохимического метода очистки сточных вод от 4-нитрофенола из водной среды с использованием микроорганизмов-деструкторов, иммобилизованных на углеродном сорбенте. Нитрофенолы являются высокотоксичными веществами и поступают в организм через органы дыхания, кожные покровы, а также через желудочно-кишечный тракт. Они вызывают поражение центральной нервной системы, печени и почек, нарушают обмен веществ, процессы терморегуляции.
В качестве сорбционных материалов исследован ряд активированных углей промышленного производства. Более высокие и стабильные результаты получены при использовании активированного угля марки АГ. Максимальная сорбционная емкость по 4-НФ на активированном угле данной марки составила 357,1 мг/г. Выделена культура микроорганизмов-деструкторов 4-нитрофенола. Известно, что фенолсодержа-щие соединения оказывают токсическое воздействие на многие микроорганизмы, определены скорости биодеградации 4-НФ интактной биомассой выделенного консорциума микроорганизмов и показано, что эффективное биоокисление 4-НФ происходит в интервале концентраций его в сточной воде 79-208 мг/дм3.
Максимальная степень биорегенерации отработанного сорбента консорциумом микроорганизмов составляет 89,9 %. Получен биокатализатор путем физической адсорбции клеток микроорганизмов на поверхности активированного угля марки АГ. Показана возможность многократного использования биокатализатора без промежуточной регенерации с ресурсом более 3,8 дм3/1г биокатализатора, при этом емкость биокатализатора составила 1,06 г 4-НФ на 1 г биокатализатора. Изучена кинетика удаления 4-НФ с использованием интактной культуры и биокатализатора. Установлена зависимость скорости процесса биорегенерации отработанных образцов активного угля АГ от степени его насыщения 4-НФ.
Ключевые слова: биодеградация, 4-нитрофенол, биокатализатор, биорегенерация, адсорбция.
Ya.A. Klimova, E.A. Farberova, E.A. Tingaeva
Perm National Research Polytechnic University, Perm, Russian Federation
DEVELOPMENT OF A BIOCHEMICAL METHOD FOR WASTEWATER TREATMENT FROM 4-NITROPHENOL
The work is devoted to the development of biochemical method of wastewater treatment from 4-nitrophenol from an aqueous medium using destructive microorganisms immobilized on a carbon sorbent. Nitrophenols are highly toxic substances and enter the body through respiratory organs, skin, and the gastrointestinal tract. It causes damage to the central nervous system, liver and kidneys, disrupt metabolism, thermoregulation processes.
A number of activated carbons of industrial production have been investigated as sorption materials. Higher and more stable results were obtained using AG activated carbon. The maximum 4-NP sorption capacity on activated carbon of this brand was 357.1 mg/g. A culture of microorganisms-destructors of 4-nitrophenol was isolated. It is known phenol-containing compounds have toxic effects on many microorganisms, so 4-NP biodegradation rates by intact biomass of an isolated consortium of microorganisms have been determined, and it has been shown that effective biooxidation of 4-NP occurs in the range of its concentration in wastewater from 79-208 mg/dm3.
The maximum degree of the spent sorbent bioregenation by consortium of microorganisms is 89.9%. Biocatalyst is obtained by physical adsorption of microorganisms' cells on AG activated carbon's surface. Possibility of repeated use of biocatalyst without intermediate regeneration with resource more than 3.8 dm3/1 g is shown, at the same time the capacity of biocatalyst was 1.06 g of 4-NP per 1 g of biocatalyst. The kinetics of 4-NP removal using intact culture and biocatalyst has been studied. The dependence of the rate of the AG active carnon spent samples bioregeneration process on the degree of its saturation by 4-NF was determined.
Keywords: biodegradation, 4-nitrophenol, biocatalyst, bioregenation, adsorption.
Загрязнение окружающей среды фенолами, в частности 4-нитро-фенолом (4-НФ), происходит при производстве лекарственных препаратов, взрывчатых веществ, красителей, гербицидов и фунгицидов [1]. Наличие этих веществ в природных водоемах или грунтовых водах оказывает неблагоприятное воздействие на окружающую среду [2, 3].
Содержание 4-НФ в воде водных объектов хозяйственно-питьевого и культурно-бытового водопользования согласно ГН 2.1.5.689-98 не должно превышать ПДК (0,02 мг/дм3), что диктует необходимость предотвращения его поступления в окружающую среду со сточными водами.
Нитрофенолы являются высокотоксичными веществами и поступают в организм через органы дыхания, кожные покровы, а также че-
рез желудочно-кишечный тракт. Они вызывают поражение центральной нервной системы, печени и почек, нарушают обмен веществ, процессы терморегуляции, попадая в кровь, приводят к гемолизу эритроцитов и к образованию метгемоглобина [4].
Известен ряд методов удаления 4-НФ из сточных вод, к ним относят адсорбцию на активированных углях, озонирование и биодеградацию. Каждому из перечисленных методов присущи определенные недостатки. Озонирование является дорогостоящим методом [5], а адсорбция на углях требует дальнейшей регенерации отработанных сорбентов, что значительно усложняет и удорожает процесс [6].
Наиболее перспективным методом удаления 4-НФ из водной среды является биодеградация. Существуют анаэробные и аэробные бактерии, которые используют нитроароматические соединения в качестве источников углерода. Такими организмами могут быть Futida, A. Calcoaceticum, Moraxella sp., Arthrobacter sp. [7, 8].
Целью данной работы является разработка биохимического метода очистки сточных вод от 4-нитрофенола.
Экспериментальная часть. Объектами исследования служили накопительная культура микроорганизмов-деструкторов 4-НФ, углеродные сорбенты (активные угли марок промышленного производства КАУ, АГ, БАУ-МФ, АР-В [9, 10].
Анализ параметров пористой структуры углеродсодержащих материалов проводился с использованием быстродействующего анализатора сорбции газов NOVA-1200 е. Концентрацию 4-НФ определяли на УФ-спектрофотометре UV-1800 Shimadzu при длине волны 317 нм.
Для выделения накопительной культуры в качестве инокулята был использован активный ил очистных сооружений ООО «ЛУКОЙЛ-Пермнефтеоргсинтез». Условия культивирования: 30 °С, 150 об/мин.
Состав питательной среды на 100 см [11]: KNO3 - 0,1 г; MgSO4-7H2O - 0,02 г; NaCl - 0,1 г; K2HPO4 - 0,1 г. В качестве единственного источника углерода использовали 4-нитрофенол - 0,139 г/дм3.
Микроскопирование выделенной культуры показало, что она представляет собой смесь кокков и палочковидных бактерий. Известно, что фенолсодержащие соединения оказывают токсическое воздействие на многие микроорганизмы. Исследования скорости биодеградации 4-НФ интактной биомассой выделенного консорциума микроорганизмов показали, что в интервале концентрации 4-НФ 79-208 мг/дм3 происходит увеличение продолжительности лаг-фазы процесса окис-
ления, а повышение начальной концентрации 4-НФ до 375 мг/дм3 приводит к полному ингибированию микроорганизмов. На рис. 1 представлены кинетические зависимости деградации 4-НФ в водной среде
Время, ч
Рис. 1. Кинетические кривые биодеградации 4-НФ при разных начальных концентрациях ксенобиотика (мг/дм3): 1 - 79;
2 - 127; 3 - 208; 4 - 375
Полученные результаты подтверждают токсическое воздействие 4-НФ на исследуемый консорциум микроорганизмов.
Принимая во внимание, что фенолсодержащие соединения хорошо сорбируются углеродными сорбентами, которые обладают развитой системой пор и высокой удельной поверхностью, в качестве носителя для иммобилизации клеток микроорганизмов-деструкторов 4-НФ были выбраны для исследований образцы промышленных АУ марок КАУ, АГ, БАУ-М, АР-В.
В табл. 1 представлены экспериментально полученные характеристики пористой структуры исследованных сорбентов.
Максимальная статическая сорбционная емкость образцов АУ по 4-НФ (мг/г) составила для КАУ - 367,8; АГ - 333,1; БАУ-МФ - 117,2; АР-В - 306,3. Из данных, представленных в табл. 1, видно, что меньшей удельной площадью поверхности обладает уголь марки БАУ-МФ, и его сорбционная емкость почти в 3 раза меньше по сравнению с ос-
тальными сорбентами. Более развитую микропористую структуру и максимальную сорбционную емкость имеет активный уголь марки КАУ.
Таблица 1
Характеристики пористой структуры сорбентов
Показатель Активный уголь
КАУ АР-В АГ БАУ-МФ
Сырье Фруктовая косточка Каменный уголь Каменный уголь Береза
Удельная площадь поверхности по БЭТ 5бЭТ, м2/г 1319,00 1046,00 892,70 608,40
Удельная площадь поверхности микропор Sш¡, м2/г 1508,00 1196,00 997,80 686,40
Предельный объем адсорбционного пространства W0, см3/г 0,570 0,490 0,554 0,299
Объем мезопор Vме, см /г 0,040 0,063 0,155 0,063
Объем микропор Vми, см3/г 0,536 0,425 0,355 0,244
Полуширина щели микропор по методу БЯ ^ми, нм 0,685 0,849 0,90 0,62
Характеристическая энергия адсорбции Еа, кДж/моль 18,967 15,320 14,496 20,974
В последнее время все больше внимания уделяется восстановлению адсорбционной способности сорбентов с помощью биорегенерации, которая является более дешевым методом по сравнению с термическими и реагентными методами.
Регенерацию отработанных образцов сорбента проводили биохимическим методом. Навеску насыщенного 4-НФ сорбента вносили в питательную среду в соотношении 1:100 без источника углерода с объемом инокулята 20 % от общего объема питательной среды. Условия культивирования: 30 °С, 150 об/мин. Биорегенерацию заканчивали, когда концентрация 4-НФ в растворе переставала изменяться. После завершения процесса биорегенерации сорбент обрабатывали физиологическим раствором (0,9 % №С1) для удаления клеток с его поверхности. Для определения степени биорегенерации проводили повторную стадию адсорбции 4-НФ на регенерированном сорбенте. В табл. 2 представлены данные по степени биорегенерации отработанного сорбента.
Таблица 2
Биорегенерация отработанного сорбента
Марка сорбента Время биорегенерации, сут Сорбционная емкость после регенерации, мг/г Степень регенерации, %
КАУ 13 268,0 72,8
АГ 7 294,1 88,3
БАУ-М 7 92,5 78,9
АР-В 13 280,0 91,4
Большая степень биорегенерации характерна для активных углей марок АР-В и АГ, однако время биорегенерации для АУ марки АГ значительно меньше.
В дальнейших экспериментах использовали уголь марки АГ, так как он обладает наибольшей сорбционной емкостью по отношению к 4-НФ, имеет наименьшее время биорегенерации и характеризуется высокой степенью биорегенерации после насыщения 4-НФ.
Изучен процесс биорегенерации отработанных образцов активного угля АГ с различной степенью насыщения 4-НФ. В табл. 3 представлены равновесные и кинетические параметры данного процесса.
Таблица 3
Параметры процесса бирегенерации АГ с различной степенью насыщения
Содержание 4-НФ в отработанном сорбенте, мг/г Концентрация 4-НФ в культураль-ной жидкости, мг/дм3 Время регенерации, сут Степень регенерации, % Скорость регенерации, мг/ дм3 •сут
245 119 4,1 89,9 533,6
275 205 4,7 88,9 515,8
305 297 7,8 88,9 347,8
333 343 12,9 88,3 227,6
345 438 13,9 75,5 187,0
Показано, что при биорегенерации отработанного сорбента, адсорбировавшего от 245 до 333 мг/г 4-НФ, степень биорегенерации практически не меняется. При дальнейшем увеличении адсорбированного 4-НФ наблюдается уменьшение степени его регенерации.
Отмечено, что при увеличении количества адсорбированного 4-НФ на поверхности АГ в процессе биорегенерации увеличивается ко-
личество 4-НФ, переходящего с поверхности сорбента в культуральную жидкость, и возрастает продолжительность процесса биорегенерации.
Повысить эффективность биодеградации 4-НФ возможно путем иммобилизации клеток микроорганизмов на носителе. Иммобилизация не оказывает стрессового влияния на клетки, а наоборот, делает систему более стабильной, носитель защищает микроорганизмы от неблагоприятных условий среды и от прямого токсичного воздействия самого ксенобиотика [12]. При использовании биокатализаторов повышается окислительная способность микроорганизмов-деструкторов, а следовательно, и общая эффективность очистки сточных вод [13-16].
По сравнению с интактной культурой иммобилизованные клетки сохраняют свою жизнеспособность и метаболическую активность в течение более длительного времени и могут многократно использоваться. Это объясняется стабилизацией активности ферментов за счет сохранения нативной организации полиферментных систем клеток [17].
Иммобилизация клеток имеет также положительный характер с точки зрения переноса генов между клетками, так как клетки на носителе располагаются с высокой плотностью. В литературных источниках имеются данные о том, что иммобилизация микроорганизмов на сорбенте может приводить к избирательной экспрессии генов, которые не индуцируются у интактной культуры [18].
Предполагается, что сорбция ксенобиотика на твердофазном носителе вблизи иммобилизованных клеток делает его более доступным для последующей его биодеградации микроорганизмами [19].
Иммобилизованные клетки (биокатализатор) можно использовать многократно, что позволяет перейти от периодических систем очистки к непрерывным, которые являются более производительными [20].
При иммобилизации клеток на поверхности носителя существенное влияние может оказывать пористая структура твердого адсорбента: величина удельной площади поверхности, размеры пор, доля пор разного размера.
Биокатализатор на основе выбранной марки сорбента (активный уголь АГ) получали путем иммобилизации клеток микроорганизмов методом физической адсорбции.
В коническую колбу с суспензией микроорганизмов-деструкторов 4-НФ вносили навеску твердого носителя и культуральной жидкости в соотношении 1: 20. Процесс проводили на качалке при условиях: T = 30 °С и N = 150 об/мин. По завершении эксперимента декантацией отделяли культуральную среду от носителя.
Изучена кинетика удаления 4-НФ с использованием интактной культуры и биокатализатора. Для сравнительной оценки процессов удаления 4-НФ с помощью деструкции интактной и иммобилизованной биомассой построены зависимости средней скорости деградации 4-НФ во втором цикле от его начальной концентрации (рис. 2).
С 4-НФ, мг/дм3
Рис. 2. Зависимость средней! скорости деградации 4-НФ (й7) от его начальной концентрации при использовании интактной биомассы (1)
и биокатализатора (2)
Как показывает полученная зависимость (см. рис. 2), скорость деградации 4-НФ с помощью биокатализатора в 3-9 раз выше по сравнению с интактной биомассой. Также полученный биокатализатор может работать в более широком диапазоне концентраций 4-НФ. Если ин-тактная биомасса полностью ингибируется при концентрации 4-НФ 369 мг/дм3, то для биокатализатора при начальной концентрации 4-НФ до 1350 мг/дм3 не происходит полной потери активности. Для биокатализатора наибольшая скорость удаления 4-НФ из среды наблюдается при начальной концентрации 4-НФ 455 мг/дм3.
В процессе использования биокатализатора показана возможность его многократного применения для удаления 4-НФ из раствора без промежуточной регенерации с ресурсом работы более 3,8 дм3 очищенной воды на 1 г биокатализатора, при этом окислительная способность по 4-НФ на 1 г биокатализатора составила 1,06 г 4-НФ без его
промежуточной регенерации при начальной концентрации 4-НФ 278 мг/дм3.
Заключение. В результате проведенных исследований предложен комбинированный метод очистки сточной воды от 4-НФ, включающий сорбцию полютанта активными углями с последующей биорегенерацией отработанного сорбента консорциумом специально выделенных микроорганизмов. Получен биокатализатор путем физической адсорбции клеток на активированном угле марки АГ. Изучена кинетика удаления 4-НФ в присутствии полученного биокатализатора в диапазоне концентраций 4-НФ 145-281 мг/дм3, показана возможность многократного использования биокатализатора без промежуточной регенерации с ресурсом более 3,8 дм3/г, при этом емкость биокатализатора составила 1,06 г 4-НФ на 1 г биокатализатора. Проведена сравнительная оценка средней скорости деградации 4-НФ в зависимости от его начальной концентрации при использовании интактной биомассы и биокатализатора. Показано, что скорость деградации 4-НФ с помощью биокатализатора в 3-9 раз выше по сравнению с интактной биомассой, при этом биокатализатор работает в более широком диапазоне концентраций 4-НФ. Для биокатализатора не наблюдается полной утраты активности при начальной концентрации 4-НФ 1350 мг/ дм3.
Работа выполнена с использованием научного оборудования Научно-образовательного центра технологий сорбентов и катализаторов (НОЦ СК) и ЦКП «Центр наукоемких химических технологий и физико-химических исследований» ПНИПУ.
Список литературы
1. Kinetics of biodégradation of p-nitrophenol by différent bacteria / B. Bhushan, A. Chauhan, S.K. Samanta, R.K. Jain // Biochemical and Biophysical Research Communications. - 2000. - Vol. 247, no. 3. - P. 626-630.
2. Шевченко М.А., Таран П.Н., Гончарук В.В. Очистка природных и сточных вод от пестицидов. - Л.: Химия, 1989. - 184 с.
3. Волгина Т.Н., Новиков В.Т., Регузова Д.В. Современные методы обезвреживания некондиционных пестицидов // Ползуновский вестник. -2010. - № 3. - С. 166-170.
4. Ядохимикаты, применяемые в сельском хозяйстве / под ред. проф. И.Э. Акопова. - М.: Медицина, 1967. - 192 с.
5. Beltran F.J., Rivas F.J., Gimeno O. Comparison between photocatalytic ozonation and other oxidation processes for the removal of phenols from water // Journal of Chemical Technology and Biotechnology. - 2005. - Vol. 80. - P. 973-984.
6. Сорбционные параметры производных фенолов на различных углеродных материалах / Г.Ф. Фазылова, Э.Р. Валинурова, Р.М. Хатмуллина, Ф.Х. Кудашева // Сорбционные и хроматографические процессы. - 2013. -Т. 13, № 5. - С. 728-735.
7. Spain J.S., Gibson D.T. Pathway for Biodegradation of p-Nitrophenol in a Moraxella sp. // Applied and environmental microbiology. - 1991. - Vol. 57, no.3. - P. 812-819.
8. Tamiya M.S., Annesinib M.S., Bussolett S. 4-nitrophenol biodegradation in a sequencing batch reactor: kinetic study and effect of filling time // Water Research. - 2004. - Vol. 38. - Р. 375-384.
9. Олонцев В.Ф., Безруков Р.А. Российские активные угли. - М.: Изд-во ГУ ВШЭ, 1999. - 90 с.
10. Фарберова Е.А., Тиньгаева Е.А., Кобелева А.Р. Технология получения активных углей и их применение. - Пермь: Изд-во Перм. нац. исслед. по-литехн. ун-та, 2018. - 147 с.
11. Нетрусов А.И., Егорова М.А., Захарчук Л.М. Практикум по микробиологии. - М.: Академия, 2005. - 612 с.
12. Егорова Т.А., Клунова С.М., Живухина Е.А. Основы биотехнологии. - М.: Академия, 2003. - 208 с.
13. Илялетдинов А.Н., Алиева Р.М. Микробиологическая очистка промышленных сточных вод иммобилизованными клетками микроорганизмов-деструкторов // Иммобилизованные клетки в биотехнологии: сб. науч. тр. / под ред. К.А. Кощеенко; АН СССР, Науч. центр биол. исслед., Науч. совет по пробл. биотехнологии, Ин-т биохимии и физиологии микроорганизмов. -Пущино, 1987. - С. 56-62.
14. Beyenal H., Lewandowski Z. Dynamics of lead immobilization in sulfate reducing biofilms // Water Research. - 2004. - Vol. 38, no. 11. - Р. 2726-2736.
15. Звягинцев Д.Г. Взаимодействие микроорганизмов с твердыми поверхностями. - М.: Изд-во МГУ, 1973. - 176 с.
16. Демаков В.А., Максимова Ю.Г., Максимов А.Ю. Иммобилизация клеток микроорганизмов: биотехнологические аспекты // Биотехнология. -2008. - № 2. - С. 30-45.
17. Егоров Н.С., Ландау Н.С., Борман Е.А. Биосинтез биологически активных веществ иммобилизованными клетками микроорганизмов // Прикладная биохимия и микробиология. - 1984. - Т. 20, № 5. - С. 579-592.
18. Сироткин А.С., Шагинурова Г.И., Ипполитов К.Г. Агрегация микроорганизмов: флоккулы, биопленки, микробные гранулы. - Казань: Фэн АН РТ, 2007. - 160 с.
19. Серебренникова М.К. Биодеградация нефтяных углеводородов иммобилизованными родококками в колоночном биореакторе: дис. ... канд. биол. наук. - Пермь, 2014. - 159 с.
20. Гвоздяк П.И. Иммобилизованные микроорганизмы в очистке сточных вод от ксенобиотиков // Иммобилизованные клетки в биотехнологии: сб. науч. тр. / под ред. К.А. Кощеенко; АН СССР, Науч. центр биол. исслед., Науч. совет по пробл. биотехнологии, Ин-т биохимии и физиологии микроорганизмов. - Пущино, 1987. - С. 57-61.
References
1. Bhushan B., Chauhan A., Samanta S.K, Jain R.K. Kinetics of biodégradation of p-nitrophenol by different bacteria. Biochemical and Biophysical Research Communications, 2000, vol. 247, no. 3, pp. 626-630.
2. SHevchenko M.A., Taran P.N., Goncharuk V.V. Ochistka prirodnyh i stochnyh vod ot pesticidov. [Treatment of natural and waste water from pesticides]. Leningrad, Himiya, 1989, 184 p.
3. Volgina T.N., Novikov V.T., Reguzova D.V. Sovremennye metody obezvrezhivaniya nekondicionnyh pesticidov. [Modern methods of neutralizing non-standard pesticides]. Polzunovskij vestnik, 2010, no. 3, pp.166-170.
4. YAdohimikaty, primenyaemye v sel'skom hozyajstve [Toxic chemicals used in agriculture]. Ed. I.E. Akopov. Moscow: Medicina, 1967, 192 p.
5. Beltran F.J. Rivas, F.J., Gimeno O. Comparison between photocatalytic ozonation and other oxidation processes for the removal of phenols from water. Journal of Chemical Technology and Biotechnology, 2005, vol. 80, pp. 973-984.
6. Fazylova G.F., Valinurova E.R., Hatmullina R.M., Kudasheva F.H. Sorbcionnye parametry proizvodnyh fenolov na razlichnyh uglerodnyh materialah.[Sorption parameters of phenol derivatives on different carbon materials]. Sorbcionnye i hromatograficheskieprocess, 2013, vol. 13, no. 5, pp.728-735.
7. Spain J.S., Gibson D.T. Pathway for Biodegradation of p-Nitrophenol in a Moraxella sp. Applied and environmental microbiology, 1991, vol. 57, no. 3, pp. 812-819.
8. Tamiya M.C., Annesinib M.S., Bussolett S. 4-nitrophenol biodegradation in a sequencing batch reactor: kinetic study and effect of filling time. Water Research, 2004, vol. 38, pp. 375-384.
9. Oloncev V.F., Bezrukov R.A. Rossijskie aktivnye ugli. [Russian active carbons]. Moscow, GU VSHE, 1999, 90 p.
10. Farberova E.A., Tin'gaeva E.A., Kobeleva A.R. Tekhnologiya polu-cheniya aktivnyh uglej i ih primenenie. [Technology of receiving active carbons and their application]. Perm', PNIPU, 2018, 147 p.
11. Netrusov A.I., Egorova M.A., Zaharchuk L.M. Praktikum po mikrobio-logii [Workshop on biotechnology ] Moscow, Akademiya, 2005, 612 p.
12. Egorova T.A., Klunova S.M., ZHivuhina E.A. Osnovy biotekhnologii. [Biotechnology bases]. Moscow, Akademiya, 2003, 208 p.
13. Ilyaletdinov A.N., Alieva R.M. Mikrobiologicheskaya ochistka promysh-lennyh stochnyh vod immobilizovannymi kletkami mikroorganizmov-destruktorov [Microbiological treatment of industrial waste water by immobilized cells of destructive microorganisms]. Immobilizovannye kletki v biotekhnologii. Vsesoiuznyi mezhvuzovskii sbornik. Pushchino, ZNBI, 1987, pp.56-62.
14. Beyenal H., Lewandowski Z. Dynamics of lead immobilization in sulfate reducing biofilms. Water Research, 2004, vol. 38, no. 11, pp. 2726-2736.
15. Zvyagincev D.G. Vzaimodejstvie mikroorganizmov s tverdymi poverh-nostyami.[Interaction of microorganisms with solid surfaces]. Moscow, MGU, 1973, 176 p.
16. Demakov V.A., Maksimova Y.G., Maksimov A.Y. Immobilizaciya kletok mikroorganizmov: biotekhnologicheskie aspekty [Immobilization of microorganism cells: biotechnological aspects]. Biotekhnologiya, 2008, no. 2, pp.30-45.
17. Egorov N.S., Landau N.S., Borman E.A. Biosintez biologicheski aktivnyh veshchestv immobilizovannymi kletkami mikroorganizmov [Biosynthesis of biologically active substances by immobilized cells of microorganisms]. Prikladnaya biohimiya i mikrobiologiya, 1984, vol.20, no. 5, pp. 579-592.
18. Sirotkin A.S., SHaginurova G.I., Ippolitov K.G. Agregaciya mikroorganizmov: flokkuly, bioplenki, mikrobnye granuly[Aggregation of microorganisms: floccules, biofilms, microbial granules]. Kazan', Fan AN RT, 2007, 160 p.
19. Serebrennikova M.K. Biodegradaciya neftyanyh uglevodorodov immobilizovannymi rodokokkami v kolonochnom bioreaktore [Biodegradation of petroleum hydrocarbons by immobilized rhodococci in a column bioreactor]. Ph. D. thesis, Perm, 2014, 159 p.
20. Gvozdyak P.I. Immobilizovannye mikroorganizmy v ochistke stochnyh vod ot ksenobiotikov.[Immobilized microorganisms in treatment of waste water from xenobiotics]. Immobilizovannye kletki v biotekhnologii. Vsesoiuznyi mezhvuzovskii sbornik, Pushchino, ZNBI, 1987, pp.57-61.
Получено 28.03.2020
Об авторах
Климова Яна Анатольевна (Пермь, Россия) - аспирант кафедры химии и биотехнологии Пермского национального исследовательского политехнического университета (614990, г. Пермь, Комсомольский пр., 29, e-mail: yana-klimova-1995@mail.ru).
Фарберова Елена Абрамовна (Пермь, Россия) - кандидат химических наук, доцент кафедры химии и биотехнологии Пермского национального исследовательского политехнического университета (614990, г. Пермь, Комсомольский пр., 29, e-mail: elenafarb@gmail.com).
Тиньгаева Елена Александровна (Пермь, Россия) - кандидат химических наук, доцент кафедры химии и биотехнологии Пермского национального исследовательского политехнического университета (614990, г. Пермь, Комсомольский пр., 29; e-mail: teengaeva@mail.ru).
About the authors
Yana A. Klimova (Perm, Russian Federation) - Postgraduate student, Department of Chemistry and Biotechnology, Perm National Research Polytechnic University (29, Komsomolsky av., Perm, 614990, e-mail: yana-klimova-1995@mail.ru).
Elena A. Farberova (Perm, Russian Federation) - Ph.D. in Chemical Sciences, Associate Professor, Department of Chemistry and Biotechnology, Perm National Research Polytechnic University (29, Komsomolsky av., Perm, 614990, e-mail: elenafarb@gmail.com).
Elena A. Tingaeva (Perm, Russian Federation) - Ph.D. in Chemical Sciences, Associate Professor, Department of Chemistry and Biotechnology, Perm National Research Polytechnic University (29, Komsomolsky av., Perm, 614990, e-mail: teengaeva@mail.ru).
