CC BY
5
женим года. Разовые концентрации ГХБД составляли 37, 5,8 и 0,6 мг/кг, что соответствует '/ю, '/«« и Чыо ЬОи/м [4]. В качестве контроля использовали интактиых животных, а также крыс, которые по той же схеме и в том же объеме получали подсолнечное масло.
У всех погибших крыс проводили гистологическое исследование органов и тканей. Частоту опухолей выражали в процентах от числа крыс в серии. При статистической обработке использовали критерии I и х2- Различия считали достоверными при 0,05.
Результаты оценки мутагенной активности, представленные в табл. 1, показывают, что среднее количество колоний-ревертантов на опытных чашках достоверно не отличается от контроля. Максимальное превышение опытных данных над контролем не превышало 1,5 раза. Для заключения даже о слабой мутагенной активности эта величина должна быть не менее 2,5. Мутагенную активность не проявил как сам ГХБД в опыте без метаболической активации, так и продукты его возможного расщепления в опыте с метаболической активацией. Эти данные коррелируют с результатами рассмотренной выше работы [3].
Количественная характеристика канцерогенных эффектов при длительном введении ГХБД представлена в табл. 2. Ее данные свидетельствуют о том, что ни при одной из использованных доз ГХБД не выявлено достоверного учащения злокачественных или доброкачественных опухолей по сравнению с иитактным контролем и с крысами, получавшими одно подсолнечное масло. Длительное пероральное введение подсолнечного масла не вызывало достоверного учащения опухолей по сравнению с интактным контролем. ГХБД не увеличил количества крыс — носителей опухолей, и суммарной частоты новообразований и опухолей отдельных локализаций. Учитывая данные литературы [4] о возможной индукции опухолей почек при введении ГХБД, мы
провели тщательное гистологическое исследование обенх почек у всех погибших крыс. При этом обнаружена одна аденома у крысы, погибшей через 671 день после введения ГХБД в дозе, равной '/e< LD». У 3 крыс, погибших после введения минимальной из испытанных доз {Чыо LDso)A* найдены регенераторные гепатоми (2) и аденома желчных^ ходов (1).
Таким образом, результаты исследования показали, что ГХБД в диапазоне изученных доз не оказывает выраженного мутагенного и канцерогенного действия. Наличие единичных доброкачественных опухолей почек и печени свидетельствует о том, что при использовании других доз ГХБД или при сочетании его с другими патогенными факторами не исключена возможность возникновения патологии этих органов [4). Мы фиксируем внимание на появлении опухолей почек и печени, поскольку новообразования в этих органах у крыс Вистар встречаются чрезвычайно редко [I].
Литература
1. Нифатов А. П., Кощурникова Н. А.— Вопр. онкол., 1973, № 12, с. 83—86.
2. Фонштейн Л. М., Калинина Л. М.. Полухина Г М. Тест-система оценки мутагенной активности загрязнителей среды на Salmonella typhimurium (Метод, указания). М.. 1976.
3. De Meesler С., Mercier M.. Poncelet F. — In: Industrial and Environmental Xenobiotics. Berlin, 1981, p. 195— 203.
4. Kociba R. L.. Keyes D. G.. Jersey G. C. et al. —Amer, induslr. Hyg. Ass. J., 1977, v. 38, p. 589—602.
Поступила 18.10.84
УДК 613.648:616-073.916)-07
Н. П. Панфилова, Г. П. Кочетова, Н. И. Зольникова, Б. В. Трунов
РАДИАЦИОННО-ГИГИЕНИЧЕСКАЯ ОЦЕНКА ГЕНЕРАТОРОВ "'»Тс Московский рентгеиорадиологический институт Минздрава РСФСР
За последнее десятилетие одним из наиболее важных и перспективных направлений в радионуклидной диагностике является использование генераторов короткоживущих ра-
Защитно-технологнческое оборудование: / — бокс 1К-НЖ; ? — стенка БС-50; 3 — столик: 4. 5 — стол лабораторный СТЛ-1: 6 — сейф стенной защитный 2ССЗ; 7 — контейнер для твердых отходов КТ010; » — умынальник: 5 — холодильник ЗИЛ; 10 — стол лабораторный с дозкалибратором; фасовочная — /: хранилище — //.
дионуклидов МтТс, Ч»т1п н др., позволяющих получать радионуклиды непосредственно в лаборатории.
В настоящее время в раднодиагностнческих лабораториях используются генераторы короткоживущих радионуклидов активностью от 3700 до 28 490 МБк. Постоянный рост их количества приводит к увеличению численности медицинского персонала, работающего с открытыми источниками излучения. В связи с этим возникает необходимость радиа-ционно-гигиенической оценки условий труда и степени облучения медицинского персонала при эксплуатации генераторов короткоживущих радионуклидов.
В работах советских и зарубежных авторов, посвященных этой проблеме [1—3], дается оценка лучевых нагрузок на персонал прн работе с генераторами только небольшг^ активности (до 3700 МБк М|пТс). Исследования проведены в отделе радиоиуклндной диагностики Московского научно-исследовательского реитгенорадиологнческого института, где широко используются генераторы 8>шТс. Экспериментальная часть работы выполнена совместно с сотрудниками Института гигиены труда и профзаболеваний АМН СССР. Мощность экспозиционной дозы излучения на рабочих местах определяли дозиметром 470А «Панорамик» (фирмы «Викторин», США), имеющим погрешность не более 10 % в энергетическом диапазоне у-излучеиия от 6 до 1250 кэВ. Замеры осуществляли на четырех уровнях (голова, грудь, таз, кисти рук).
Одновременно с измерением уровней мощности экспозиционных доз излучения вели пооперационный хронометраж на всех этапах технологического процесса.
Планировка помещений фасовочной I и хранилища II, где проводились работы, представлена на рис. 1, оборудо-
Ф
проведены с использованием 5—7 генераторов. Результаты замеров представлены в таблице. Для сопоставления результатов замеры выполняли в сроки, когда расчетная максимальная величина получаемой активности радионуклида для каждого генератора составляла 12 950 МБк.
Как видно из таблицы, длительность каждого этана достаточно велика. Этап монтаж генератора имеется лишь при работе с изделиями данного типа и состоит из 8 необходимых для сборки его в рабочее состояние трудовых операций, общая длительность которых в среднем 85 с.
Наиболее трудоемкими н продолжительными этапами являются транспортировка и вскрытие транспортной упаковки (166 с).
Получение элюата осуществляется в 2 приема: отбор первой и основной порнии, что объясняется низкой удельной активностью элюата в первой порции. Длительность всего этапа 156 с.
После получения элюата проводится его калибровка (измерение полученной активности) на дозкалнбраторе. Поскольку на данном этапе необходима транспортировка контейнера с пертехнетатом 8вшТс активностью до 18 500 МБк, дозкалибратор должен быть установлен в непосредственной близости от защитного блока.
Типовая схема технологического процесса работы с генераторами короткоживущих радионуклидов
I. Вскрытие транспортной упаковки
II. Монтаж генератора
III. Подготовка генератора к работе
IV. Получение элюата
V. Калибровка полученной порции
VI. Фасовка элюата для приготовления РФП VII. Калибровка фасованных порций VIII. Приготовление РФП
Длительность этапов калибровки полученного элюата, фасовки его для приготовления РФП, калибровки фасованных порций и приготовления РФП соответственно 2, 17, 25 и 603 с. Большая продолжительность последнего этапа объясняется тем, что после калибровки каждой порции (в зависимости от приготовляемого РФП) она переносится, например для нагрева, к термобане, возвращается в бокс для смешивания, переносится к охладителю, вновь возвращается в бокс и т. д. Рассмотренный пример позволяет констатировать, что одним из резервов снижения дозы облучения персонала является оптимальное размещение оборудования для фасовки, калибровки и приготовления РФП либо разработка специального устройства для получения пертехне-тата и приготовления РФП, обеспечивающего все операции
Характеристика мощностей доз, доз облучения персонала и продолжительность этапов технологического процесса при работ
с генераторами 99тТс
Этапы технологического процесса Продолжительность этапа, с Мощность экспозиционной дозы, Ыр/ч (Х7.17-10"»> А/кг) Экспозиционная доза, мР (Х2.58- 10"» Кл/кг)
кисти рук голова грудь таэ кисти рук голова грудь таз
Г Вскрытие транспортной
упаковки 166 40 5 8 6 1.84 0,23 0,34 0,28
Монтаж генератора 85 168 10,1 13,7 26,4 4 0,24 0,32 0,62
Установка генератора в за-
щитный бокс 30 168 10,1 13,7 26,4 1.4 0,1 0,1 0,22
Получение элюата 156 18 7,2 6 2,3 0.78 0,31 0,26 0.1
Калибровка элюата 25 28 14 5 5 0,2 0,1 0,03 0,03
Фасовка элюата для приго-
товления РФП 17 28 3 3,6 1.3 0,1 0,01 0,02 0,006
Калибровка фасованных 0,003
порций (1295 МБк) 25 2,8 1.4 0.5 0.5 0,02 0,001 0,003
Приготовление РФП 603 2,8-(236) 0,7 0.9 0.3 0,3 0,12 0,15 0,5
0,9 (367)
Примечание. Числитель — мощность экспозиционной дозы и время, в течение которого персонал проводит ианн-пуляцнн с флаконом элюата в боксе, знаменатель — данные для остадьвых операции.
а
генератором.
Защитное оборудование: б — стенка нз свинцовых кирпичей БС-50; а — просвиицованное стекло ТФ-5.
вание бокса — на рис. 2. Бокс 1К-НЖ (а), в котором установлен генератор, оборудован стенкой из свинцовых кирпичей БС-50 и иросвинцованным стеклом ТФ-5 толщиной 20 мм (см. рис. 2).
t Вскрытие транспортной упаковки и монтаж генератора проводятся в хранилище на полу и столе 5, подготовка генератора к работе и получение элюата — в фасовочной в боксе /, калибровка — на калибраторе 10. Приготовление раднофармацевтических препаратов (РФП) осуществляется в фасовочной на столах 3 и 4, причем стол 3 оборудован защитным экраном. В хранилище размешены стенные сейфы, контейнеры для твердых отходов, умывальник и холо-дилмшк ЗИЛ.
Схема технологического процесса работы с генераторами короткоживущих радионуклидов включает 8 основных этапов, начиная с вскрытии транспортной упаковки и кончая приготовлением РФП (см. схему н таблицу). Хронометраж технологического процесса и соответствующие измерения мощности экспозиционной дозы излучения на каждом этапе
с III по VIII этап технологического процесса на одном рабочем месте.
Наиболее важная сторона оценки радиационной характеристики генераторов короткоживущих радионуклидов — мощность экспозиционных доз излучения на рабочих местах персонала, представленная в таблице. Эти данные являются среднеарифметическими и подсчитаны по 5—7 измерениям первого дня работы генераторов.
Из анализа полученных данных видно, что мощность экспозиционных доз на рабочих местах персонала на первых 4 этапах работы с генераторами различна. Наибольшая мощность дозы на кисти рук и тело человека приходится на этапы вскрытия транспортной упаковки и монтаж генератора. Однако следует учесть, что эти этапы технологического процесса проводятся один раз за весь срок службы генератора.
Все манипуляции с полученным элюатом. связанные с его транспортировкой и фасовкой, осуществляются с применением переносных защитных контейнеров (стаканчиков), тем не менее мощность экспозиционной дозы на кисти рук работающих 28 мРуч (2-10"» А/кг).
Мощность экспозиционной дозы излучения уменьшается ежедневно в соответствии с законом распада исходного радионуклида ®»Мо. Поэтому суммарная дозовая нагрузка Dt,
полученная персоналом в каждый /-Й день работы с одним генератором, ежедневно будет снижаться.
Общую дозовую нагрузку О за все дни работы с генератором получим по формуле:
1 8 8
£> = 2 0«. = 2 а О,. ...£>,= 2 <
( = 1 п— 1 п — 3
где п — этапы технологического процесса.
По результатам расчета суммарная дозовая нагрузка на персонал в первый день работы с генераторами "тТс на кисти рук составляет 8,64 мР (Х2,58-10-7 Кл/кг), на голову — 1,12 мР, на грудь — 2,333 мР, на таз — 1,309 мР.
Литература
1. Голиков В. Я-, Коренков И. П. Радиационная защита при использовании ионизирующих излучений. М., 1975.
2. Гушак В., Лидова Л., Тросил И. и др. — Мед. радиол., 1976, № И, с. 33—36.
3. Зубовский Г. А.. Коренков И. П., Перцов В. А. и др.— Гиг. и сан., 1973, № 5, с. 47—50.
Поступила 11.04.84
УДК 618.94-022.7:579.841-022.369-078: [579.84:579.252.55:615.28
Г. М. Тру хина, Н. Ф. Соколова, А. Н. Иойриш, М. Н. Смирнова
ГРАМОТРИЦАТЕЛЬНАЯ УСЛОВНО-ПАТОГЕННАЯ МИКРОФЛОРА СТАЦИОНАРОВ И ЕЕ РЕЗИСТЕНТНОСТЬ К ХЛОРАМИНУ
Московский НИИ гигиены им. Ф. Ф. Эрисмана; Всесоюзный НИИ дезинфекции я стерилизации, Москва
В последние годы значительный удельный вес в патологии септических заболеваний стал приходиться на долю грамотрицательных условно-патогенных микроорганизмов [2, 3, 5]. В связи с этим созданы и разрабатываются новые методические приемы выделения и идентификации этих бактерий — возбудителей внутрибольничных инфекций из патологического материала и объектов окружающей среды, которые позволят своевременно диагностировать, целенаправленно лечить гнойно-септические инфекции и эффективно проводить профилактические мероприятия в лечебных учреждениях [4, 7]. В свою очередь контроль циркуляции госпитальных штаммов, уровня обсемененно-сти и устойчивости в окружающей среде даст возможность правильно выбрать дезинфицирующие средства, концентрацию и время воздействия при проведении дезинфекционных мероприятий в стационарах. Вопрос резистентности грамотрицательных условно-патогенных бактерий к дезинфицирующим средствам еще мало изучен и в основном касается устойчивости штаммов, выделенных из ран, носоглотки и кишечника больных [6, 8, 10). Имеются сообщения и о выделении госпитальных штаммов из растворов дезин-фектантов и антисептиков [9, 11, 12]. Однако при обосновании тактики проведения дезинфекционных мероприятий в лечебно-профилактических учреждениях важно знать чувствительность грамотрицательной микрофлоры, циркулирующей в больничной среде, к используемым дезинфектан-там и антисептикам.
Настоящая работа посвящена изучению циркуляции грамотрицательных условио-патогениых микроорганизмов в стационаре хирургического профиля и их резистентности к наиболее широко применяемому в медицинской практике дезинфицирующему средству — хлорамину.
Нами проводилось исследование с целью изучения об-семененности грамотрицательной микрофлорой сухих предметов обихода (поверхности прикроватных тумбочек, спинок кроватей, подоконников, мягкой и жесткой мебели, дверных ручек) и влажных объектов (поверхности раковин и ванн). Особое внимание было уделено изучению контаминации халатов и подошв обуви персонала как воз-
-у
можного фактора переноса инфекционного агента не только в палаты и отделения, но и за их пределы. Видовой состав грамотрицательных условно-патогенных микроорганизмов изучали методом смывов ватным тампоном, увлажненным мясо-пептонным бульоном, с последующим подращиванием в термостате при температуре 37 °С в течение 16—18 ч и пересевом на дифференциально-диагностические среды. Для выделения семейства Еп!егоЬас1епасеае использовались среды Эндо, К-2, П-2, а для группы нефер-ментирующих бактерий — модифицированный эозинметн-
Табл ица 1
Характеристика микрофлоры, выделенной с предметов обихода стационара
Грамотрицательные условно-патогенные
микроорганизмы
семейство группа нефер-
Enterobacter меитирующих всего
rlascea бактерий
абс. % абс. % абс.
Предметы окруже- 67 43 100
ния больного* 14 33 29
Поверхность рако- 51 65 100
вин, ванн 32 49 33
Халаты персонала 14 44 18 56 32 ' 100
Подошвы обувн 100
персонала 15 33 31 67 46
Итого . . . 75 40 111 60 186 100
* Прикроватные тумбочки, кровать, кресла, подоконник» дверные ручки.
