CC BY
87
УДК 619:616 ГРНТИ 68.41.53
А.П. Красиков, Н.М. Колычев, И.Ю. Земляницына (Бессонова)
ПРИМЕНЕНИЕ БЕТУЛИНА В ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫХ УСЛОВИЯХ ПРИ МИКОПЛАЗМОЗЕ, МИКОПЛАЗМОЗ-АССОЦИИРОВАННОЙ ИНФЕКЦИИ, ЦИРКОВИРОЗЕ И РОЖЕ СВИНЕЙ
Опыт, проведенный на свиноматках и поросятах ЗАО «Кам-Курское» Муромцевского района Омской области, показал, что применение препарата «Бетулин-Э» внутрь при микоплазмозе и микоплаз-моз-ассоциированной инфекции способствует выздоровлению 60 и 80 % животных, а при его сочетанном применении с комплексным антимикробным препаратом «Левотетрасульфин-ПЭГ» усиливает терапевтические свойства последнего на 40 и 20 % соответственно, что позволило в более ранние сроки купировать инфекционный процесс у животных опытных групп и обеспечило их полное клиническое и микробиологическое выздоровление. Препарат «Бетулин-ЭПГ» в 4 раза увеличивает уровень поствакцинальных антител против цирковироза и рожи свиней, повышает функциональную активность иммунокомпе-тентных клеток крови, прежде всего за счет активации нейтрофилов.
Ключевые слова: микоплазмоз, цирковироз, рожа свиней, респираторный и урогенитальный тракт, ассоциативные и смешанные инфекции, микропаразитоценоз, вирусы, хламидии, бетулин.
А.Р. Krasikov, N.M. Kolychev, I. Yu. Zemlyanitsyna (Bessonova)
APPLICATION OF BETULIN UNDER EXPERIMENTAL CONDITIONS WITH MYCOPLASMOSIS, MYCOPLASMOSIS-ASSOCIATED INFECTIONS, PORCINE CIRCOVIRUS AND ERYSIPELAS IN PIGS
The use of Betulin-E drug for the treatment per os of sows and pigs suffering from mycoplasmosis and mycoplasmosis-associated infections accelerates recovery of 60 and 80 % of the animals and increases the therapeutic properties of the last 40 and 20% respectively at its combined use with integrated antimicrobial Levo-tetrasulfin-PEG drug, which allowed to stop the infectious process in the animals of experimental groups earlier and provided them with a complete clinical and microbiological cure. Betulin-PGE drug increases the level of post-vaccine antibodies against circovirus and erysipelas by 4 times, increases the functional activity of blood immune cells, primarily due to the activation of neutrophils.
Keywords: mycoplasmosis, circovirus, swine erysipelas, respiratory and urogenital tract, associative and mixed infections, micro parasite cenosis, viruses, chlamydia, betulin.
Введение
Микоплазмозы широко распространены в природе и являются важным этиологическим агентом в патологии респираторного и урогенитального тракта свиней [1]. Микоплазмоз - серьезная экономическая проблема современного животноводства. Болезнь протекает чаще всего в форме ассоциативных и смешанных инфекций.
Установлено, что причиной патологии сельскохозяйственных животных в большинстве случаев являются ассоциации микроорганизмов с участием условно патогенной микрофлоры, а также вирусов, хламидий и других патогенных микроорганизмов [2].
Основным фактором, обусловливающим патогенность микоплазм, является их способность прикрепляться к клеткам респираторного эпителия и оказывать на них деструктивное действие, а также выделять токсические продукты метаболизма, конкурировать с клетками хозяина за отдельные субстраты энергетического и белкового обмена и нарушать иммунологическое состояние тканей [3].
Микоплазмы способны преодолевать иммунный контроль и не вызывать повреждений тканей, связанных с иммунореактивностью макроорганизма. Однако при некоторых условиях микоплазмы могут вызывать в организме хозяина патологические изменения, часто осложня-
© Красиков А.П., КолычевН.М., Земляницына (Бессонова) И.Ю., 2016
ющиеся иммунными расстройствами [4]. Внедрение микоплазм в клетку макроорганизма может приводить к изменению ее антигенной структуры, превращению ее в иммунологически чужеродную, что способствует развитию аутоиммунного процесса [5].
Микоплазмы вступают в синергические отношения с бактериальной, вирусной, патогенной и условно патогенной микрофлорой, создают условия для ее активного роста и развития. В связи с этим необходимо своевременно проводить диагностику, лечение и профилактику ми-коплазмоза, в том числе в ассоциации с другими возбудителями, с помощью современных и рациональных методов, принимая во внимание особенности течения и патогенез заболевания.
В комплексе лечебно-профилактических мероприятий при мультифакторных заболеваниях необходимо применение методов и средств, направленных на устранение иммунодефицит-ных состояний и повышение резистентности организма, а также средств, обеспечивающих экологическую и эпизоотологическую безопасность животных [6].
Бетулин - это природный пентациклический тритерпеноид лупанового ряда. Он содержится в большом количестве растений (орешник, календула, солодка и пр.), но в промышленных масштабах его получают экстракцией из бересты - наружного слоя коры березы белой (betula alba), повислой (betula pendula). В свободном виде вещество не встречается. Многочисленными исследованиями, проведенными более чем в 40 зарубежных и российских научно-исследовательских центрах, продемонстрирована эффективность использования тритерпено-вых соединений в качестве прямых регуляторов активности ферментативных систем организма. Тритерпеновый спирт управляет количеством ферментов в клетке организма путем регуляции их синтеза и распада и путем влияния на активность ферментов и их аллостерическую регуляцию [11].
Иммуностимулирующая активность бетулина проявляется в способности индуцировать выработку эндогенного интерферона в организме, а также повышать клеточный и гуморальный иммунитет, усиливать активность некоторых иммунокомпетентных клеток, в частности активизируя все показатели фагоцитоза (способность фагоцитов разрушать вирусы и бактериальные клетки), и увеличивать количество фагоцитов. Он является мощнейшим гепатопротектором. Бетулин - это антиоксидант с ярко выраженными желчегонными и бактерицидными свойствами. Также установлена его способность успешно противостоять различного рода новообразованиям, мутациям, токсинам (в основном вызванным неконтролируемым приемом фармакологических средств).
Препараты бетулина: «Бетулин-экстракт» (БЭ) для перорального применения и растворимая форма «Бетулин-ЭПГ» для парентерального применения - с положительным результатом были испытаны на лабораторных животных, птице, телятах и северных оленях [6-10].
Цель данной работы - разработать методы лечения при микоплазмозе и микоплазмоз-ассоциированной инфекции свиней и способы повышения напряженности поствакцинального иммунитета против рожи и цирковироза с применением бетулина.
Объекты и методы
Объектом исследования были свиноматки и поросята. Материалом для исследований служили пробы сыворотки крови, цервико-вагинальной слизи, носовых истечений, фекалий из прямой кишки. Для диагностики использовали эпизоотологический, клинический и лабораторный методы. Для индикации и идентификации возбудителей применяли серологические и бактериологические методы. Для выявления сывороточных антител крови, тканевых «местных» или локальных антител, а также антигенов возбудителей инфекционных болезней использовали реакцию непрямой (РНИФ) и прямой (РПИФ) иммунофлуоресценции. В качестве антигенов применяли: антигены вакцинных штаммов и стандартные антигены, используемые для постановки РА и РСК, а в качестве антител - гомологичные антигенам кроличьи и свиные антисыворотки, антивидовые для РНИФ и специфические сальмонеллезные, листериозные для РПИФ, люминесцентные сыворотки меченные ФИТЦ (ИЭМ им. Гамалеи).
Исследования микропаразитоценоза животных проводили, используя разработанные совместно с ФГУ «Омский НИИ природно-очаговых инфекций Роспотребнадзора» жидкие и твердые питательные среды для индикации и идентификации аргининзависимых (А), глю-козферментирующих (Г), микоплазм и уреаплазм (У), адаптированные для диагностики мико-плазмоза у свиней [9], а также серологический метод с помощью РНИФ, в которой применяли
полученные видоспецифические микоплазмозные сыворотки: M. hyosinoviae, M. hyorhinis, Ureaplasma sp. (Красиков А.П., Жонголович А.Е., патент № 2355422). Инкубацию посевов на питательных средах проводили при температуре 37 °С в течение 48-96 ч, учет роста оценивался визуально по изменению цвета жидких и характерному росту колоний на плотных средах в виде глазуньи. Исследования сыворотки крови, влагалищной, носовой слизи, фекалий проводили до и через 14 дней после санации животных.
Эффективность лечения оценивали по отсутствию гибели животных, клинических признаков болезни, возбудителей и их антигенов в цервико-вагинальной, носовой слизи и фекалиях.
Для изучения иммуностимулирующих свойств препарата «Бетулин-ЭПГ» свиньям 1-й, 2-й опытных групп прививали живую, сухую вакцину против рожи свиней из штамма ВР-2, а свиньям 3-й, 4-й групп - вакцину против цирковироза (цирковирусной инфекции) согласно наставлениям по их применению. Одновременно с применением вакцины животным 1-й и 3-й опытных групп вводили Бетулин-ЭПГ подкожно в дозе 0,2 мл/кг массы.
Кровь для исследования в РНИФ брали из ушной вены в различные периоды: до введения препарата и вакцинации, затем на 7, 15, 30, 60-й день после вакцинации. Иммунологические исследования проводили при высоком уровне антител на 15-й день после вакцинации. Число Т-лимфоцитов определяли с помощью спонтанного розеткообразования с эритроцитами барана (Е-рок); Т-киллеров - непрямого глобулинового розеткообразования с эритроцитами быка (ЕА-рок); В-лимфоцитов - комплементарного розеткообразования с эритроцитами быка. Функциональную активность нейтрофилов оценивали в НСТ-тесте: спонтанном без нагрузки и стимулированном с использованием антигена БЦЖ с последующей фиксацией реакции с помощью многоканального иммунохимического анализатора «Fluorofot STDLess-486-М». Оценку концентрации образовавшегося диформазана (ДФ) в нейтрофилах определяли при X = 630 нм. Содержание циркулирующих иммунных комплексов (ЦИК) определяли методом осаждения поли-этиленглюколем (ПЭГ-6000) с последующим фотометрическим определением оптической плотности образовавшегося преципитата на многоканальном иммунохимическом анализаторе при X = 450 нм. Окраску мазков крови, подсчет лейкоцитов и выведение лейкоцитарной формулы проводили по общепринятым методикам. Уровень специфических антител в сыворотке крови определяли в РНИФ.
Результаты исследований
Опыт, проведенный на свиноматках и поросятах ЗАО «Кам-Курское» Муромцевского района Омской области, показал, что при микоплазмозе и микоплазмоз-ассоциированной инфекции эффективность клинического и микробиологического выздоровления взрослых свиноматок и поросят с применением Левотетрасульфин-ПЭГ в сочетании с Бетулин-Э составила 100%, одного Левотетрасульфин-ПЭГ - 40 % у свиноматок и 60 % у поросят (табл. 1, 2). Бету-лин-Э в сочетании с Левотетрасульфин-ПЭГ купирует симптомы поражения органов дыхания (отек носовых ходов, уменьшение количества бронхиальной слизи, кашель) и опорно-двигательной системы быстрее, чем при использовании одного Левотетрасульфин-ПЭГ. Это объясняется противовоспалительными свойствами данного препарата.
Таблица 1
Схема опыта и эффективность лечения свиноматок при микоплазмозе и микоплазмоз-ассоциированной инфекции
Кол-во голов Эффективность лечения
Характеристика группы Клиническое Микробиологическое
выздоровление, кол-во/% выздоровление, кол-во/%
1-я опытная группа: хламидии + микоплазмы (А, Г)
5 Левотетрасульфин-ПЭГ+бетулин 5/100 5/100
2-я опытная группа: микоплазмы (А, Г) + уреаплазмы
5 Бетулин 5/100 3/60
3-я опытная группа: микоплазмы (А, Г) + уреаплазмы + лептоспиры
5 Левотетрасульфин-ПЭГ + бетулин 5/100 5/100
4-я опытная группа: микоплазмы (А, Г) + уреаплазмы + лептоспиры
5 Левотетрасульфин-ПЭГ 5/100 2/40
5-я контрольная группа (нелеченые): микоплазмы (А, Г) + уреаплазмы + лептоспиры + хламидии
5 0/0 0/0
5 6-я контрольная группа (здоровые животные)
После проведенного лечения во влагалищной слизи свиноматок, носовой слизи и фекалиях поросят отсутствовали возбудители хламидиоза, лептоспироза и микоплазмоза. В опытной группе, где вместо Бетулин-Э применяли Бициллин-3 (метод лечения, применяющийся в хозяйстве), выделяли лептоспир у свиноматок и лептоспир с пастереллами у поросят, а в контрольной группе обнаруживали возбудителей хламидиоза, лептоспироза, микоплазмоза и уреаплаз-моза. В опытной группе, где применяли только Бетулин-Э, процент выздоровления свиноматок составил 60 %, поросят - 80 %. Эти результаты свидетельствуют о противомикробном действии Бетулин-Э.
Таблица 2
Схема опыта и эффективность лечения поросят при микоплазмозе и микоплазмоз-ассоциированной инфекции
Кол-во голов Эффективность лечения
Характеристика группы Клиническое Микробиологическое
выздоровление, кол-во/% выздоровление, кол-во/%
1-я опытная группа: микоплазмы (А, Г)
5 Левотетрасульфин-ПЭГ + бетулин 5/100 5/100
2-я опытная группа: микоплазмы (А) + хламидии
5 Бетулин 5/100 4/80
3-я опытная группа: микоплазмы (А, Г) + хламидии + лептоспиры
5 Левотетрасульфин-ПЭГ + бетулин 5/100 5/100
4-я опытная группа: микоплазмы (А, Г) + пастереллы + лептоспиры
5 Левотетрасульфин-ПЭГ 5/100 3/60
5-я контрольная группа (нелеченые): микоплазмы (А, Г) + лептоспиры + хламидии
5 0/0 0/0
6-я контрольная группа (здоровые животные)
В контрольных несанированных группах у свиноматок и поросят через 14 дней после начала опыта естественная инокуляция возбудителей из организма не произошла.
Использование на свиноматках и поросятах Бетулина-Э внутрь при микоплазмозе и микоплазмоз-ассоциированной инфекции в экспериментальных условиях способствует выздоровлению 60 и 80 % животных, а при его сочетанном применении с комплексным антимикробным препаратом Левотетрасульфин-ПЭГ усиливаются терапевтические свойства последнего на 40 и 20 % соответственно, что позволило в более ранние сроки купировать инфекционный процесс у животных опытных групп и обеспечило их полное клиническое и микробиологическое выздоровление (табл. 1).
При изучении иммуномодулирующих свойств препарата «Бетулин-ЭПГ» в производственном контролируемом опыте, проведенном в условиях СТФ «Новоазовское» Азовского района Омской области, установлено, что на 15-й день после вакцинации в опытных группах, где применяли Бетулин-ЭПГ, количество Т-лимфоцитов на 19 и 23 % соответственно выше, чем в группах, где использовали только вакцину. Вероятно, после контакта с антигеном лимфоциты начинают активно размножаться, количество их достоверно увеличивается (Р < 0,05). Достоверным было количество В-лимфоцитов в крови поросят опытной группы на 16% ниже. По-видимому, это связано с их активной трансформацией в плазматические клетки и активизацией синтеза антител. Снижение ЦИК объясняется усилением фагоцитоза. Макрофаги активнее фагоцитируют комплекс «антиген - антитело», чем только антиген. Кроме этого регистрируется достоверное уменьшение количества Т-киллеров (Р < 0,05) и нейтрофилов (Р < 0,001). В опытных вакцинированных группах с применением Бетулин-ЭПГ (по сравнению с невакци-нированными) количество нейтрофилов снизилось (Р < 0,001) на 89 %, а в группах, где применяли только вакцины, - на 79 %. Первый этап воспалительной реакции характеризуется резким уменьшением в кровотоке числа нейтрофилов, которые мигрируют в регионарные лимфоузлы и очаг воспаления в месте введения вакцины. Нейтрофилы начинают активный процесс фагоцитоза чужеродных клеток. Лимфоциты, мигрировавшие в очаг, на первом этапе реакции активизируют фагоцитарную функцию нейтрофилов. Активность естественных киллеров, мигрировавших в очаг, усиливается антителами, специфически и неспецифически сорбирующимися на чужеродных клетках. При этом титр поствакцинальных антител после применения Бетулина-ЭПГ у свиней был в 4 раза выше, чем на одну вакцину (табл. 3).
Заключение
Использование на свиноматках и поросятах Бетулин-Э внутрь при микоплазмозе и мико-плазмоз-ассоциированной инфекции в экспериментальных условиях способствует выздоровлению 60 и 80 % животных, а при его сочетанном применении с комплексным антимикробным препаратом «Левотетрасульфин-ПЭГ» усиливает терапевтические свойства последнего на 40 и 20 % соответственно, что позволило в более ранние сроки купировать инфекционный процесс у животных опытных групп и обеспечило их полное клиническое и микробиологическое выздоровление. Препарат «Бетулин-ЭПГ» в 4 раза увеличивает уровень поствакцинальных антител против цирковироза и рожи свиней, повышает функциональную активность иммунокомпетент-ных клеток крови, прежде всего за счет активации нейтрофилов.
Таблица3
Показатели поствакцинального иммунного ответа у свиней
Характеристика группы 7-й день 15-й день 30-й день 60-й день
1. Вакцина против рожи свиней + Бетулин-ПГ 1:320 1:640 1:640 1:640
2. Вакцина против рожи свиней 1:80 1:160 1:160 1:80
3. Вакцина против цирковирусной инфекции свиней + Бетулин-ПГ 1:400 1:800 1:80 1:40
4. Вакцина против цирковирусной инфекции свиней 1:100 1:20 1:20 1:10
Список литературы
1. Микоплазмозы крупного рогатого скота и свиней : монография / А.П. Красиков, О.В. Вологодская, А.Н. Свиридова, А.Е. Жонголович. - Омск : Изд-во ИВМ ОмГАУ им. П.А. Столыпина. 2011. - 252 с.
2. Коромыслов, Г.Ф. Микоплазмы в патологии животных / Г.Ф. Коромыслов, Я. Месарош, Л. Штипкович. - М. : Агропромиздат, 1987. - 255 с.
3. Enzootic pneumonia: comparison of cough and lung lesions as predictors of weight gain in swine / C. Morris et al. // Can. J. Vet. Rec. - 1995. - №. 59. -P. 197-204.
4. Земляницына, И.Ю. Применение бетулина с лечебной и профилактической целью при микоплазмозе и микоплазмоз-ассоциированной инфекции свиней / И.Ю. Земляницына // Актуальные проблемы инфекционных и незаразных патологий животных : сб. науч. тр. / СО РАСХН ВНИИБТЖ. - Омск : Вариант-Омск, 2010. -С. 158-162.
5. Рысков, А.Р. Геномная «дактилоскопия» организмов различных таксономических групп. Использование в качестве гибридизационной пробы ДНК фага М-13 / А.Р. Рысков, А.Г. Джинчарадзе, М.И. Просняк // Генетика. - 1988. - № 2. - Т. 24. - С. 227-238.
6. Красиков, А.П. Профилактика, лечение и коррекция иммунной системы при микропаразитоценозах животных / А.П. Красиков, В.Э. Малошевич // Вестник ОмГАУ. - 2003. - № 4. - С. 101-104.
7. Задорожная, М.В. Эффективность применения бетулина в птицеводстве / М.В. Задорожная, С.Б. Лыско, А.П. Красиков // Ветеринарный врач. - 2012. - № 5. -С. 32-37.
8. Алексеева, И.Г. Иммуномодулирующие свойства бетулина и перспективы его применения в ветеринарной медицине / И.Г. Алексеева, А.П. Красиков, И.Ю. Земляницына // Патология продуктивных и непродуктивных животных, рыб и птиц : сб. науч. трудов / ВНИИБТЖ СО РАСХН. - Омск, 2011. - С. 179-186.
9. Применение бетулина для лечения телят при ассоциативных инфекциях / А.П. Красиков, И.Г. Алексеева, Л.Е. Деев, Р.Ю. Панфилов // Ветеринарная патология. - 2010. - № 1 (32). - С. 49-57.
10. Красиков, А.П. Способ получения мико-плазмозных диагностических сывороток для реакции
References
1. Mycoplasmoses of cattle and pigs: monograph / A.P. Krasikov, O.V. Vologodskaya, A.N. Sviridova, A.E. Zhongolovich. - Omsk: IVM OMGAU publishing house of P.A. Stolypin, 2011. - 252 p.
2. Koromyslov G.F. Mycoplasmas in pathology of animals / G.F. Koromyslov, Ya. Mesarosh, L. Shtipkovich. -M.: Agropromizdat, 1987. - 255 p.
3. Enzootic pneumonia: Comparison of cough and lung lesions as predictors of weight gain in swine / C. Morris et al. // Can. J. Vet. Rec. - 1995. - № 59. - P. 197-204.
4. Zemlyanitsyna I.Yu. Application of a betulin with the medical and preventive purpose at mycoplasmosis and mycoplasmosis - the associated infection of pigs / I.Yu. Zemlyanitsyna // Actual problems of infectious and noncontagious pathologies of animals / FROM Russian Academy of Agrarian Sciences of VNIIBTZh. - Omsk: Option Omsk, 2010. - P. 158-162.
5. Roamings A.R. Genomic "dactyloscopy" of organisms of various taxonomical groups. Use as gibridi-zatsionny test of DNA of a phage of M-13 / A.R. Roamings, A.G. Dzhincharadze, M.I. Prosnyak // Genetics. - 1988. - №. 2. - T. 24. - P. 227-238.
6. Krasikov A.P. Prevention, treatment and correction of immune system at the mikroparazitotsenozakh of animals / A.P. Krasikov, V.E. Maloshevich // Messenger of OMGAU, 2003. - № 4. - P. 101-104.
7. Zadorozhny M. V. Efficiency of application of a betulin in poultry farming / M.V. Zadorozhnaya, S.B. Lysko, A.P. Krasikov // The Veterinarian. - 2012. -№. 5. - P. 32-37.
8. Alekseeva I.G. Immunomodulatory properties of a betulin and prospect of its application in veterinary medicine / I.G. Alekseeva, A.P. Krasikov, I.Yu. Zemlyanitsyna // Pathology of productive and unproductive animals, fishes and birds: the collection of scientific works / VNIIBTZh from Russian Academy of Agrarian Sciences.- Omsk, 2011. - P. 179-186.
9. Application of a betulin for treatment of calfs at the assotsiativnvykh of infections / A.P. Krasikov, I.G. Alekseeva, L.E. Deyev, R.Yu. Panfilov // Veterinary pathology. - 2010. - № 1 (32). - P. 49-57.
10. Krasikov A.P. Sposob of receiving the mikoplazmoznykh of diagnostic serums for reaction of in-
непрямой иммунофлуоресценции путем гипериммунизации кроликов : патент на изобретение № 2355422 /
A.П. Красиков, А.Е. Жонголович // Бюллетень № 20. Изобретения. Полезные модели 2009.
11. Красиков, А.П. Стимуляция иммунного ответа с помощью бетулина при его сочетанном применении с вакцинами против лептоспироза и фузобактериоза животных / А.П. Красиков, И.Г. Алексеева, А.В. Ушаков // Ветеринарная патология. - 2014. - № 2 (48). - С. 45-50.
12. Василенко, Ю.К. Фармакологические свойства тритерпеноидов коры березы / Ю.К. Василенко,
B.Ф. Семенченко // Экспериментальная и клиническая фармакология. - 1993. - № 4. - С. 53-55.
Красиков Александр Пантелеевич, доктор вет. наук, профессор, Омский ГАУ, krasikovap1950@mail.ru; Колычев Николай Матвеевич, доктор вет. наук, профессор, Омский ГАУ; Земляницына (Бессонова) Ирина Юрьевна, аспирант, Омский ГАУ.
direct immunofluorescence by hyper immunization of rabbits: Patent for the invention No. 2355422 / A.P. Krasikov, A.E. Zhongolovich // Bulletin No. 20. Inventions. Useful models 2009.
11. Krasikov A.P. Stimulation of the immune answer by means of a betulin at its combined application with vaccines against leptospirosis and a fuzobakterioz of animals / A.P. Krasikov, I.G. Alekseeva, A.V. Ushakov // Veterinary pathology. - 2014. - № 2 (48). - P. 45-50.
12. Vasilenko Yu.K. Pharmacological properties of triterpenoid of birch / Yu.K. Vasilenko, V.F. Semenchenko // Experimental and clinical pharmacology. - 1993. - № 4. -P. 53-55.
Krasikov Alexander Panteleevich, Doctor. of Veterinary Sciences., Full Professor, Omsk SAU, krasikovap1950@mail.ru; Kolychev Nikolay Matveevich, Doctor. of Veterinary Sciences., Full Professor, Omsk SAU; Zemlyanitsyna (Bessonova) Irina Yurevna, Postgraduate, Omsk SAU.
Статья поступила в редакцию 16 марта 2016 г.
УДК 619:576.8 ГРНТИ 68.41.53
Ж.Г. Мачалова, В.И. Плешакова, И.Г. Алексеева, Н.А. Лещева, Н.М. Колычев
ХАРАКТЕРИСТИКА ПЕРСИСТЕНТНЫХ СВОЙСТВ КУЛЬТУР
МИКРООРГАНИЗМОВ STAPHYLOCOCCUS A UREUS, ВЫДЕЛЕННЫХ У СОБАК И КОШЕК ПРИ НАРУЖНОМ ОТИТЕ
В структуре болезней домашних плотоядных животных наружные отиты - одна из самых распространенных патологий органов слуха. В её патогенезе значителен феномен длительного персистирования возбудителей в макроорганизме, ведущая роль отведена стафилококковой инфекции. Изучены перси-стентные характеристики выделенных культур Staphylococcus aureus, а именно антилизоцимная (АЛА), антиинтерфероновая (АИА) и антикомплементарная активности (АКА). Установлена зависимость перси-стентных характеристик Staphylococcus aureus от свойств течения наружного отита у собак и кошек. При хроническом течении инфекции отмечено увеличение среднего показателя адгезивности по сравнению с острым процессом и уменьшение антилизоцимной активности.
Ключевые слова: персистентные свойства, наружный отит, антилизоцимная активность, антиин-терфероновая активность, антикомплементарная активность.
J.G. Mahalova, V.I. Pleshakova, I.G. Alekseeva, N.A. Lescheva, N.M. Kolychev
CHARACTERIZATION OF PERSISTENT PROPERTIES OF STAPHYLOCOCCUS AUREUS GERM CULTURES EXTRACTED FROM DOGS AND CATS HAVING OTITIS EXTERNA
In the structure of diseases of domestic carnivores otitis externa is one of the most common pathologies of hearing organs. The phenomenon of long-term persistence of pathogens in macroorganism plays the major role in the pathogenesis of this disease with the leading role assigned to staphylococcus infection. The persistent characteristics of the extracted Staphylococcus aureus germ culture have been studied, and namely anti-lysozyme activity (ALA), anti-interferon activity (AIA) and the anti-complementary activity (ACA). The dependence of the persistent characteristics of Staphylococcus aureus on the nature of the course of otitis externa in
© Мачалова Ж.Г., Плешакова В.И., Алексеева И.Г., Лещева Н.А., Колычев Н.М., 2016
