CC BY
64
показатели находились в пределах физиологической нормы с некоторыми различиями. В частности, у подопытных животных наблюдается незначительное увеличение каротина, общего белка по сравнению с контролем.
Выводы
Таким образом, скармливание разных доз минеральной подкормки (мергеля) в рационах дойных коров в большей степени оказало влияние на качественные показатели молока, чем на повышение продуктивности. Морфологические и биохимические показатели крови коров были в норме, в связи с тем, что не было нарушения соотношения между отдельными макро- и микроэлементами в организме животных, содержащихся в минеральной подкормки.
Литература
1. Баканов, В.Н. Летнее кормление молочных коров [Текст]/ В.Н.Баканов, Б.Р.Овсищер. - М.: «Колос», 1982. - 157 с.
2. Кащеев, П.С. Гематологические показатели крови при различных режимах доения [Текст]/ П.С. Кащеев / «Научные проблемы производства продукции животноводства и улучшения её качества // Сб. науч. Трудов.- Брянск.: Издательство Брянской ГСХА, 2007. - С. 440-443.
3. Лебедев, Н.Т. Методы исследования кормов, органов и тканей животных [Текст]/ Н.Т.Лебедев,
A.Т.Усович. - М.: Россельхозиздат, 1976. - 470 с.
4. Нормы и рационы кормления с.-х. животных. Справочное пособие. Издание переработанное и дополненное [Текст]/ Под ред. А.П. Калашникова,
B.И. Фисинина, В.В. Щеглова, Н.И. Клеймёнова. Москва, 2003. - 456 с.
5. Физиология животных и этология [Текст]/ В .Г. Скопичев и др. - М.: КолосС, 2003. - 720 с.
УДК 619:616.995.132.8+619:615.284]:636.028
Н.
Ф.И. Василевич, академик РАСХН
ФГОУ ВПО МГАВМиБ . Малахова, кандидат ветеринарных наук ФГОУ ВПО Орел ГАУ
ПОИСК ЭФФЕКТИВНЫХ СРЕДСТВ И СПОСОБОВ ЛЕЧЕНИЯ ОКСИУРАТОЗОВ
ЛАБОРАТОРНЫХ ЖИВОТНЫХ
По результатам проведенных испытаний предложены антгелъминтики и способы их применения для лечения инвазий лабораторных мышей и крыс, вызываемых Syphacia obvelata и Aspiculuris tetraptera. Ключевые слова: мыши, крысы, инвазия, Syphacia obvelata, Aspiculuris tetraptera, оксиуратозы, дегельминтизация, антгелъминтики.
Изучение естественных инвазий лабораторных животных является важным вопросом для теории и практики медико-биологического эксперимента. Проведенные нами ранее исследования свидетельствуют о том, что лабораторные животные довольно часто бывают заражены гельминтами [2]. Спонтанные гельминтозы осложняют проведение научных исследований, к тому же лабораторные животные могут быть источником инвазий для экспериментаторов и обслуживающего персонала [1]. Слабо проявляясь клинически, гельминтозы, тем не менее, обуславливают экспериментальную
неполноценность животных [3, 4]. Согласно требований к качеству конвенциональных лабораторных мышей, животные, используемые в медико-биологическом эксперименте, должны быть свободны от носительства возбудителей некоторых гельминтозов (гименолепидоза, стробилоцеркоза и альвеококкоза) [4].
Потребность в полноценных, качественных животных для медико-биологического эксперимента выдвинула задачу изучения спонтанных инвазий основных видов лабораторных грызунов и разработки мер борьбы с ними.
Цель работы заключалась в поиске эффективных средств и способов лечения выявленных
By results of the carried out tests are offered anthelminthics and ways of their application for treatment invasion laboratory mice and rats caused Syphacia obvelata and Aspiculuris tetraptera.
Key words: mice, rats, invasion, Syphacia obvelata, Aspiculuris tetraptera, oksiuratozy, deworming, anthelminthics.
гельминтозов с учетом специфики лабораторного животноводства.
Материалы и методы исследований
Работу проводили в 2003-2005 гг. в вивариях Всероссийского НИИ гельминтологии им. академика К.И.Скрябина (ВИГИС, Москва) и Московской государственной академии ветеринарной медицины и биотехнологии им. К.И.Скрябина (МГАВМиБ, Москва).
С целью поиска приемлемых для лабораторного животноводства антгельминтиков при оксиуратозах (Syphacia obvelata, Aspiculuris tetraptera) были испытаны: фебантел, фенбендазол, нилверм и ивермектин.
Апробацию нематодоцидов проводили на спонтанно зараженных крысах и мышах. В связи с чрезвычайной сложностью получения культуры инвазионных яиц сифаций и аспикулюрисов при низкой естественной зараженности мышей и крыс оксиуратами мы использовали методику контактного перезаражения животных по следующей схеме. Мышей и крыс 3-недельного возраста на 7-9 дней подсаживали к спонтанно зараженным донорам с интенсивной инвазией. Затем половину их оставляли для контроля, а другой половине вводили препараты. Антгельминтики назначали в течение 1-6 дней, после
Вестник ОрелГАУ 1'(11)
Научное обеспечение развития животноводства
чего через двое суток животных обеих групп вскрывали и учитывали число нематод.
Дозирование препаратов проводили по действующему веществу (ДВ). Групповую навеску антгельминтика смешивали с небольшим количеством воды для получения раствора или суспензии; полученной суспензией или раствором пропитывали измельченный корм. Для лучшей поедаемости и сокрытия вкуса лекарственных веществ в лечебный корм добавляли сахар, творог и другие продукты. Во время проведения курса лечения мыши и крысы получали только лечебный корм. Контрольные животные препаратов не получали. Всех подопытных и контрольных животных содержали в одинаковых условиях. Интенсивность инвазии (ИИ), экстенсэффективность (ЭЭ) и интенсэффективность (ИЭ) определяли после убоя животных и проведения гельминтологического вскрытия. Результаты исследований обрабатывали общепринятыми методами вариационной статистики.
Результаты исследований и их обсуждение При испытании фебантела (ринтала -10% гранулята фебантела) на мышах в качестве первоначальной дозы взяли 5 мг ДВ/кг, в которой препарат эффективен при большинстве нематодозов мелких жвачных. Ринтал вносили в корм групповым способом поклеточно 1 раз в день в течение двух дней подряд. кроме того, препарат назначали двухдневным курсом в дозах 7,5 и 10,0 мг ДВ/кг.
нами установлено, что при зараженности контроля сифациями на 52,63% ИИ=5,40 экз./особь) и аспикулюрисами на 100% (ИИ=11,84 экз./особь) двухдневное назначение препарата во всех трех дозах не дало желаемой эффективности при аспикулюриозе (ИЭ не выше 58,76%), хотя в этих дозах фебантел на 100% элиминировал сифаций.
Получив не удовлетворяющую нас эффективность при аспикулюриозе, фебантел в следующем опыте назначили 5-дневным курсом в дозах 5,0; 7,5; 10,0; 12,5; 15,0 и 17,5 мг ДВ/кг.
Полное освобождение мышей от оксиурат было достигнуто при назначении ринтала 5-дневным курсом в дозах 10,0 мг ДВ/кг и выше.
Учитывая результаты опытов, поставленных на мышах, крысам провели 5-дневный курс назначения ринтала (фебантела) в дозе 7,5; 10,0 и 12,5 мг ДВ/кг.
В дозе 7,5 мг ДВ/кг фебентел показал 100%-ный терапевтический эффект лишь в отношении 8. оЬуеЫа. При аспикулюриозе 100%-ная эффективность была достигнута в дозах 10,0 мг ДВ / кг и выше. В контрольной группе крыс установлена 50,00%-ная зараженность сифациями (ИИ=11,17 экз./особь) и 40,00%-ная -аспикулюрисами (ИИ=16,00 экз./особь).
Таким образом, при смешанной инвазии оксиуратами оптимальной дозой фебантела (ринтала) для мышей и крыс можно считать 10,0 мг ДВ/кг, назначаемой с кормом в течение 5 дней. Этот выбор сделан с учетом большей патогенности и жизнеспособности А8р1еи1ил8 1еИар1ега, а также короткого цикла развития 8урЬае1а оЬуеЫа (20-24 ч).
Для выявления оксиуратоцидного действия фенбендазола (панакура - 22,2% гранулята фенбендазола) за основу была взята минимальная доза, рекомендованная для сельскохозяйственных животных - 5 мг ДВ/кг. Препарат назначали мышам групповым способом с кормом поклеточно в течение 5 дней. курс лечения был выбран по аналогии с фебантелом, который является к фенбендазолу по механизму действия. кроме того, мы испытали фенбендазол в увеличенных до 7,5; 10,0; 12,5; 15,0 и 17,5 мг ДВ/кг дозах.
При зараженности контроля сифациями на 90,00% (ИИ=14,33 экз./особь) и аспикулюрисами - на 70,00 % (ИИ =15,57 экз./особь) фенбендазол (панакур) проявил выраженный эффект против 8урЬае1а оЬуеЫа при 5-дневном применении в дозе 5 мг ДВ/кг. Против А8р1еи1ил8 1е1гар1ега подобная эффективность была достигнута при назначении препарата в течение 5 дней в дозе 12,5 мг ДВ/кг и выше.
При испытании фенбендазола (панакура) на крысах, спонтанно инвазированных сифациями и аспикулюрисами, препарат назначали 5 дней групповым способом с кормом в дозе 7,5; 10,0; 12,5 и 15,0 мг ДВ/кг. В дозе 7,5 мг ДВ/кг препарат показал невысокую эффективность в отношении сифаций (ЭЭ=52,38%; ИЭ=91,95%) и аспикулюрисов (ЭЭ=28,57%; ИЭ= 66,22%) при 60,00%-ной зараженности контрольных животных сифациями (ИИ=14,50 экз./особь) и 60,00% - аспикулюрисами (ИИ=12,33 экз./особь). Полное освобождение от сифаций было достигнуто только при назначении панакура в дозе 10,0 мг ДВ/кг, от аспикулюрисов - в дозах 12,5 мг ДВ/ кг и выше.
Таким образом, для лечения оксиуратозов лабораторных мышей и крыс фенбендазол (панакур) можно рекомендовать в разовой дозе 12,5 мг ДВ/кг, назначаемой с кормом в течение 5 дней подряд.
Испытание антгельминтной активности нилверма при оксиуратозах мы провели на мышах. Препарат назначали 4-дневным курсом в дозах 7,5; 10,0; 12,5 и 15,0 мг /кг путем вольного выпаивания, так как препарат хорошо растворяется в воде. Однако ни в одной дозе препарат не показал должной эффективности: ЭЭ была в пределах 20,66 - 80,87%, максимальная ИЭ=96,77%.
на основании полученных результатов считаем нецелесообразно дальнейшее испытание нилверма при оксиур атоз ах л абор аторных грызунов в связи с его недостаточной эффективностью во всех проверенных нами дозах. Дальнейшее у величение дозы приводило к полному отказу мышей от приема лекарственного раствора.
Для изучения антгельминтного действия ивермектина при оксиуратозах мелких лабораторных грызунов из коммерческого 1-%-ного раствора нами были подготовлены растворы ивермектина с более низкими концентрациями ДВ: 0,1 и 0,05%-ные.
При оксиуратозах мышей были испытаны оба раствора. Препарат, соблюдая правила антисептики, инъецировали мышам подкожно в область спины в дозе 0,1 мл на особь, что примерно составляло соответственно 4,0 и 2,0 мг ДВ/кг. В результате
вскрытия в обоих случаях установлена 100%-ная эффективность и при сифациозе, и при аспикулюриозе. На основании полученных результатов можно считать оптимальным для мелких лабораторных грызунов 0,05%-ный раствор ивермектина, а терапевтической дозой его для мышей - 0,1 мл/особь (по ДВ примерно 2,0 мг/кг). Поскольку уменьшение концентрации ДВ в растворе, а также объема инъецируемой жидкости было практически неосуществимо, испытание ивермектина в более низких дозах на лабораторных животных не представлялось возможным.
На крысах был апробирован только 0,05%-ный раствор, который в дозе 0,2 мл/100 г массы животного (по ДВ примерно 1 мг/кг) вводили подкожно в область спины. В результате вскрытия установлена 100%-ная эффективность препарата при обоих оксиуратозах.
Заключение
При проведении поиска эффективных антгельминтных средств для лечения оксиуратозов лабораторных мышей и крыс мы учитывали не только безвредность препаратов (отсутствие токсического, эмбриотропного и мутагенного свойств), но и своеобразие применения лекарственных препаратов таким высокочувствительным к запаху и вкусу животным, как крысы и мыши. В связи с этим при разработке оптимальных схем лечения гельминтозов мышей и крыс мы, не прибегая к увеличению разовых доз того или иного препарата, делали ставку на удлинение курса дегельминтизаций. Проведенные эксперименты полностью оправдали наше
предположение: при более длительном курсе лечения грызуны свободно поедали корм с антгельминтиками.
На основании проведенных нами испытаний в качестве средств дегельминтизации при оксиуратозах мышей и крыс мы рекомендуем к применению: фебантел и фенбендазол в дозах соответственно 10,0 и 12,5 мг ДВ/кг в течение 5 дней подряд с кормом групповым способом; а также 0,05%-ный раствор ивермектина подкожно в дозе 2,0 мг/кг для мышей и в дозе 1,0 мг/кг для крыс (соответственно 0,1 мл/25 г массы мышам и 0,2 мл/100г массы крысам) однократно.
Литература
1. Астафьев, Б.А. Экспериментальные модели паразитозов в биологии и медицине [Текст]/ Б.А. Астафьев, Л.С Яроцкий, М.Н Лебедева. - М.: Наука, 1989. - 279 с.
2. Малахова, Н.А. Гельминты лабораторных животных в условиях питомников и вивариев [Текст]/ Н.А. Малахова // Тез. конф. «Лаб. животные для медико-биологических и биотехнологических исследований». - М., 1990. - С.74.
3. Подопригора, Г.И. Концепция стандартизации лабораторных животных и роль новых биотехнологий в ее практическом осуществлении [Текст]/ Г.И. Подопригора // Тез. Всес. конф. «Актуальные вопросы стандартизации лаб. животных для медико-биологических исследований». - М., 1988. - 4.1. -С.33-35.
4. Требования к качеству конвенциональных лабораторных мышей: Отраслевые методические указания /временные/ [Текст]. - М.,19877. - 82 с.
УДК: 636.4:577.2
В.И. Крюков, доктор биологических наук А.В. Пикунова, младший научный сотрудник Н.Г. Друшляк, кандидат биологических наук ФГОУ ВПО Орел ГАУ
ИСПОЛЬЗОВАНИЕ ДНК МАРКЕРОВ В СЕЛЕКЦИИ СВИНЕЙ
Описаны методы выявления ДНК маркеров хозяйственно ценных признаков свиней: MC4R, ESR, RYR-1, H-FABP, освоенные в ИНИИЦ ОГАУ. Показаны возможности их использования в селекции.
Ключевыге слова: свиньи, ДНК-диагностика, ДНК-маркеры, MC4R, ESR, RYR-1, H-FABP.
В соответствии с Доктриной продовольственной безопасности Российской Федерации, Указ об утверждении которой был подписан президентом России в феврале 2010 года, Россия должна перейти на самообеспечение сельскохозяйственной продукцией к 2020 году
(http://www.kremlin.ru/news/6752). Одним из условий реализации этой Доктрины должна стать интенсификация производства свинины. В Орловской области развитию этой отрасли животноводства уделяется большое внимание. Стабильное производство свинины требует активного использования современных достижений генетики и селекции [1].
В настоящее время в селекции свиней используют около 100 ДНК маркеров хозяйственно ценных 36
Methods of revealing of DNA of markers of economic valuable signs of pigs are described: MC4R, ESR, RYR-1, H-FABP, mastered in INIIC OGAU. Possibilities of their use in selection are shown.
Key words: pigs, DNA-diagnostics, DNA-markers, MC4R, ESR, RYR-1, H-FABP.
признаков. [2]. Целый ряд анализов доступен для коммерческого использования в России и за рубежом. В свиноводстве используют маркеры, связанные с качеством мяса (HAL1843 (CRC1), RN, CAST), размером приплода/плодовитостью (ESR, PRLR, RBP4), окраской (KIT, MC1R), параметрами роста и содержанием жира (MC4R, AFABP, HFABP, IGF2), устойчивостью к болезням (FUT1) и др. [2]. Большой вклад в развитие ДНК диагностики хозяйственно ценных признаков у свиней сделан в нашей стране специалистами Центра биотехнологии и молекулярной диагностики Всероссийского ГНИИ животноводства академиком РАСХН Л.К. Эрнстом, Н.А. Зиновьвой, Е. А. Гладырь [3, 4].
Для оказания помощи свиноводческим предприятиям Орловской области лаборатория
