2. Chadwick B.J., Coelen B.J., Sammeis L.M. et al Genomic sequence analysis identities Jembrana disease virus as a new bovine lentivirus. J Gen Virol, 1995, 76, 1, 189—192.
3. Cho K.O., Meas S., Park N.Y. et al.. Seroprevalence of bovine immunodeficiency virus in dairy and beef cattle herds in Korea. J Vet Med Sei, 1999, 61,5, 549—551.
4. Jacobs R.M., Pollar F.L., McNab W.B. et al. A serological survey of bovine syncytial virus in Ontario: associations with bovine leukemia and immunodeficiency-like viruses, production records, and management practices. Can J Vet Res,1995, 59, 4, 271—278.
5. Horzinek M., Keldermans L., Stuurmans L. et al. Bovine immunodeficiency virus: immunochemical characterization and serological survey. J Gen Virol, 1991, 72, 12, 2923—2928.
6. Meas S„ Ruas J., Farias N.A. et al. Seroprevalence and molecular evidence for the presence of bovine immunodeficiency virus in Brazilian cattle, J Vet Res, 2002, 50, 1, 9—16.
7. Muluneh A. Seroprevalence of bovine immunodeficiency-virus (BIV) antibodies in the cattle population in Germany. Zbl Veterinarmed В., 1994, 41, 10, 679—684.
8. Nash J.W.. Hanson L.A., St Cyr Coats K. Bovine immunodeficiency virus in stud bull semen. Am J Vet Res, 1995, 56, 6, 760—763.
9. Polack В., Schwartz I., Berthelemy M. et al. Serologic evidence for bovine immunodeficiency virus infection in France. Vet Microbiol, 1996, 48,1—2,165—173.
10. Usui Т., Meas S., Konnai S. et al. Seroprevalence of bovine immunode-
ficiency virus and bovine leukemia virus in dairy and beef cattle in Hokkaido. J Vet Med Sei, 2003, 65, 2, 287—289.
11. van Regenmortel M.H., FauquetC.M., Bishop D.H.L. et al. (Eds) Virus Taxonomy Classification and Nomenclature of Virus, Acad Press, San-Diego, 2000, 381—384.
12. van der Maaten M.J, Boothe A.D, Seger C.L. Isolation of a virus from cattle with persistent lymphocytosis. J Natl. Cancer Inst, 1972, 49, 6, 1649—1657.
SUMMARY
V.V. Kolotvin, A.V. Kapitonov, N.F. Grinenko, L.M. Piska-reva, G.V. Pashvykina, G.O. Shaihaev, A.D. Altstein, A.F. Va-likhov. Discovery of Bovine Immunodeficiency virus infec-tion in Moscow region.
First in Russia screening of cattle blood was carried out to detect bovine immunodeficiency infection. Polymerase chain reaction with selected pair primers to the gag gene was used and the infection was detected at three different farms (11, 44 and 67% of positive animals). High level of bovine leukemia virus infection (72, 38 and 38 %, correspondingly) was found in the same farms. Bovine immunodeficiency virus, detected in the study, was different from reference isolate R-29 by the pol gene.
iK 6 9 6 6 9931 Подтверждение предотвращения вертикальной передачи Neospora caninum у крупного рогатого скота посредством трансплантации эмбрионов
Дж.К. Лендманн, Tick Fever Research Centre, Queensland (Австралия) Д. Джиллелла, Embryo Transfer Services of Queensland (Австралия) П.Дж. О'Донохью, M.P. МакГован, University of Queensland (Австралия)
Ключевые слова: крупный рогатый скот, неоспороз, простейшие
Сокращения: КРС — крупный рогатый скот; Эм — эмбрионы); N.0. — N. саптит
N.0. впервые изолировали в 1988 г. [5]. Это простейшее оказалось важным этиологическим агентом аборта коров [4]. Экономическое значение неоспороза связано не только с абортами, но также со снижением молочной и мясной продуктивности у инфицированного КРС [3, 9].
Заражение КРС происходит горизонтальным путем через окончательного хозяина, роль которого выполняет преимущественно собака, или внутриутробно. Около 80 % приплода инвазированных М.с. коров рождается зараженными; они, в свою очередь, вертикально передают паразита потомству. Такой цикл повторяется в ряде поколений животных [6]. Недавно установили, что вакцинация КРС не исключает возможность внутриутробного заражения плодов М.с. 11]. До настоящего времени был известен единственный метод предотвращения вертикального распространения инвазии в стадах КРС — недопущение использования в племенных целях телочек, рожденных зараженными матерями. Однако такой подход ведет к потере большого количества генетически ценных животных. В условиях эксперимента трансплантация неинвазированным реципиентам Эм, полученных от зараженных М.с. матерей, не сопровождалась вертикальным рас-
пространением паразита [2|. В этом опыте канадские исследователи воспользовались процедурой, рекомендованной Международным обществом трансплантации Эм. Она предусматривает промывание Эм 5 раз раствором без сыворотки, 2 раза 0,25%-м раствором трипсина, приготовленным на сбалансированном солевом растворе Хенкса, и 5 раз раствором без сыворотки.
Мы провели аналогичный эксперимент, но Эм промывали более простым принятым в Австралии способом. Корову-донора голштино-фризской породы взяли из стада, принадлежавшего Квинсландскому университету. На этой ферме находилось 186 коров, из которых у 24 % в реакции непрямой иммунофлюоресценции [7] выявили антитела к М.с. в титре 1 :200. Все серопозитивные животные (за исключением двух) относились к 4 материнским линиям. Поскольку серо-негативных животных этих линий в стаде не было, то уровень вертикальной передачи N.0. составлял 100 %. Корова-донор Эм ранее родила 3 телок, которые со временем стали серопо-зитивными к М.с., и 1 раз абортировала на пятом месяце стельности. У плода обнаружили типичный для неоспороза негнойный энцефалит.
Из того же стада выбрали 4 коровы-реципиента Эм, сыворотка которых дала отрицательную реакцию в разведении I : 100 на наличие антител к М.с. Эструс у донора и реципиентов Эм синхронизировали введением во влагалище капсулы эстрадиола и интравагинального средства для контролируемого высвобождения прогестерона С1Г)К"(Сепе11с8, Австралия). СЛОЯ" удалили через 9 дней. На 8-й день коровам-ре-
ципиентам внутримышечно ввели по 5 мл простагландина F2a (Lutalyse ®; Pharmacia & Upjohn) и во время извлечения CIDR®TeM же способом инокулировали 400 ME гонадотро-пина (Folligon Intervet). Чтобы вызвать суперовуляцию, корове-донору Эм 2 раза в день на протяжении 4 дней внутримышечно вводили фолликулостимулирующий гормон (Folltropin ® -V; Vetrepharm): в первые 2 дня (до извлечения CIDR®) по 2,5 мл/инъекцию, а затем дозу уменьшили до
0.5.мл/день. Сразу же после извлечения CIDR®ett ввели 5 мл простагландина F2a. Корову искусственно осеменили проверенной спермой быка, которую хранили в замороженном виде, 3 раза: через 12, 24 и 36 ч после начала эструса. Через 7 дней от нее получили Эм нехирургическим способом — промыванием матки под общей эпидуралыюй анестезией. Извлеченные Эм 3 раза промыли специальным раствором ViGro ® Holding Plus (RAB, Австралия) и оценили их качество. Отобрали 4 Эм класса А. Их немедленно трансплантировали нехирургическим методом коровам-реципиентам. О наступлении у последних стельности судили по результатам ректального исследования, проведенного на 42-й день после трансплантации Эм. В трех случаях трансплантация Эм привела к беременности. Однако 1 корова-реципиент абортировала на 8-м месяце стельности. Абортированный плод не исследовали. Корова оставалась серонегативной к N.c., но у нее появились антитела к вирусу чумы КРС.
Пробы крови для исследований брали у животных-реципиентов на 3- и 7-й мес стельности, затем при отеле, а у их телят сразу после рождения. Ни в одном случае у коров-реципиентов и их потомства не обнаружили антител к N.c.
Результаты нашего и проведенного в Канаде опытов подтвердили, что трансплантация Эм позволяет прервать вертикальную передачу N.c. Кроме того, мы установили, что для этого достаточно обычного метода промывания Эм. При отборе коров-реципиентов Эм необходимо обследовать на наличие антител к N.c. [8].
БИБЛИОГРАФИЯ
1. Adrianarivo A.G., RoweJ.D., BarrB.C. et al. A POLYGEN-adjuvanted killed Neospora caninum tachyzoite preparation failed to prevent foetal infection in pregnant cattle following i.vAm. experimental tachyzoite challenge. Int J Parasitol, 2000, 30, 985—990.
2. Baillargeon P., Fecteau G., Рагй J. et al. Evaluation of the embryo transfer procedure proposed by the International Embryo Transfer Society as a method of controlling vertical transmission of Neospora caninumin cattle. JAVMA, 2001, 218, 1803—1806.
3. Barling K.S., McNeill J.W., Thompson J.A. et al. Association of serologic status for Neospora caninum with postweaning weight gain and carcass measurements in beef calves. JAVMA, 2000, 217, 1356—1360.
4. Davidson H.C., Otter A., Trees A.J. Significance of Neospora caninumin British dairy cattle determined by estimation of seroprevalence in normally-calving cattle and aborting cattle. Int J Parasitol, 1999, 29, 1189—1194.
5. Dubey J.P., Lindsay D.S. A review of Neospora caninumand neosporosis. Vet Parasitol, 1996, 67, 1—59.
6. Parti J., Hietala S.K., Thurmond M.C. Congenital Neospora caninuminfection in dairy cattle and the associated calfhood mortality. Can J Vet Res, 1996,60,133—139.
7. Parti J., Hietala S.K., Thurmond M.C. Interpretation of an indirect fluorescent antibody test for diagnosis of Neospora sp. Infection in cattle. J Vet Diagn Invest, 1995, 7, 273—275.
8. Thurmond M.C., Hietala S.K. Strategies to control Neosporainfections in cattle. Bovine Pract, 1995, 29, 60—63.
9. Thurmond M.C., Hietala S.K. Effect of Neospora caninum infection on milk production of first-lactation dairy cows. JAVMA, 1997, 210, 672—674.
НАША
СПРАВКА
УДК 619:616.993.1
SUMMARY
J.K. Landmann, D. Jilleila, P.J. O'Donoghue, M.R. McGo-wan. Confirmation of the prevention of vertical transmission of Neospora caninum in cattle by the use of embryo transfer. Aust Vet J, 2002, 80, 8, 502—503.
This study has confirmed that embryo transfer can be used to prevent vertical transmission of N. caninum. Also, it has been shown that a routine embryo washing technique may be used. The recipient animals must be serologically tested prior to embryo transfer.
Неоспороз (прототекоз), гиардиоз и криптоспоридиоз крупного рогатого скота
Ключевые слова: гиардиоз, криптоспоридиоз, простейшие
Сокращения: Гд — гиардии; КРС — крупный рогатый скот; Кс — криптоспоридии; N.0. — Меоэрогит сапюит
Неоспороз
До 1984 г. N.c. путали с Toxoplasma gondii из-за их морфологического сходства. Однако генетические различия этих агентов послужили основанием для отнесения их к разным нозологическим единицам |4|.
Окончательным хозяином N.c. оказалась собака [5]. Выделяемые с ее фекалиями ооцис гы спорулируют во внешней среде в течение 3 дней. Заражение промежуточных хозяев происходит при проглатывании зрелых ооцист. Собаки заражаются алиментарно, поедая инвазированных промежуточных хозяев, их абортированные плоды и плодные оболочки.
Промежуточными хозяевами N.c. является широкий круг домашних и диких животных: КРС, верблюд, олень, овца, коза, лошадь, кошка, мышь, свинья, белка, обезьяны. Попытки экспериментального заражения N.c. птиц успеха не имели, но предполагают, что те могут механически переносить паразита. Вопрос об опасности этой инвазии для человека остается открытым, но ее удается воспроизвести на нечеловекообразных приматах. Имеются сообщения о выявлении специфических антител к N.c. в пробах крови людей [ 15]. Тем не менее описаний случаев клинического заболевания человека неоспорозом в доступной нам литературе не найдено.
В настоящее время инвазию N.c. регистрируют во многих странах мира: Австралии, Австрии, Бельгии, Бразилии, Великобритании, Вьетнаме, Германии, Дании, Испании, Италии, Канаде, Новой Зеландии, Норвегии, США, Тайване, Танзании, Турции, Франции, Швейцарии, ЮАР, Японии. Этот перечень постоянно пополняется, что в основном связано с появлением коммерческих диагностикумов инвазии.
У КРС заболевание сопровождается абортами и рождением нежизнеспособных или имеющих неврологические признаки поражения лимбической системы головного мозга телят. Течение и исход неосгюроза у КРС определяется многими факторами, в т.ч. наличием у животных иммунитета и временем заражения: если оно произошло в начале стельности неизбежен аборт, а если в середине или конце беременности, то рождаются инвазированные паразитом телята [2].
Криптоспоридиоз
На основании различий морфологии, генома, спектра чувствительных хозяев и тканевого тропизма Кс делят на 15 видов [14]. К этим простейшим восприимчивы 155 видов