CC BY
63
© Коллектив авторов, 2016 УДК 616-001.4-002.3-08
Б. С. Суковатых1, А. И. Бежин1, Т. А. Панкрушева1, А. Ю. Григорьян1, А. В. Иванов1, Л. В. Жиляева1, Е. В. Кобзарева1, Е. Г. Андрюхина1, А. А. Дубонос2
ОЦЕНКА ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЙ И КЛИНИЧЕСКОЙ ЭФФЕКТИВНОСТИ ИММОБИЛИЗИРОВАННОЙ ФОРМЫ ХЛОРГЕКСИДИНА В ЛЕЧЕНИИ ГНОЙНЫХ РАН
1 ГБОУ ВПО «Курский государственный медицинский университет» Минздрава России; 2 ОБУЗ Городская клиническая больница скорой медицинской помощи (главврач — доц. В. Е. Ивакин), г. Курск
Ключевые слова: гнойная рана, заживление, лечение, форма хлоргексидина биглюконата
Введение. Лечение гнойных ран остается актуальной проблемой современной хирургии. Среди всех хирургических больных раневая инфекция встречается у 35-45% пациентов [2, 9]. Поверхность раны не является стерильной и колонизирована многочисленными патогенными микроорганизмами. За последние годы микрофлора ран и ее биологические свойства претерпели существенные изменения, проявляющиеся быстрой потерей чувствительности к современным антибактериальным препаратам [5, 7]. Широко применяемые в практическом здравоохранении мази («Левомеколь», «Банеоцин», 1% йодопиро-новая, 5% диоксидиновая, 0,5% мирамистиновая, 1% повидон-йодная, 10% манифидина ацетата), хотя и сохранили антимикробную активность в отношении основных возбудителей хирургической инфекции, однако перестали существенно влиять на уменьшение длительности раневого процесса [1]. Поэтому для лечения гнойных ран разрабатывают новые группы антисептиков, к которым сохраняется высокая чувствительность микрофлоры. Одним из наиболее эффективных современных антисептиков является хлоргекси-дин биглюконат [4]. В химическом отношении он является дихлорсодержащим производным бигуа-нида. Хлоргексидин оказывает быстрое и сильное бактерицидное действие на грамположительные
и грамотрицательные бактерии, не действует на вирусы и споры. Препарат сохраняет активность в присутствии крови, гноя. Водные растворы антисептиков для санации ран разбавляют раневым отделяемым и высыхают в течение 3-6 ч [4]. Действие водного препарата оказывается кратковременным, а необходимая для подавления микрофлоры концентрация в ране, как правило, не создается [8]. Одним из условий эффективной санации гнойной раны является создание оптимальной концентрации антисептика в патологическом очаге на длительное время [10, 11]. Поэтому ряд авторов предлагают использовать иммобилизированные (полимерные) антисептики, которые способны пролонгировано высвобождать активные вещества [3, 6].
Цель исследования — дать экспериментальную и клиническую оценку эффективности иммобили-зированной формы хлоргексидина биглюконата в лечении гнойной раны.
Материал и методы. Материалом для исследования послужила иммобилизированная форма хлоргексидина биглюконата, разработанная на кафедре фармацевтической технологии Курского государственного медицинского университета следующего состава: хлоргексидин биглюконат 0,5% — 30,0; метилурацил — 2,0; полиметилсилоксана полигидрат — 70,0.
Для решения поставленной задачи были проведены экспериментальные исследования in vivo и клинические исследования течения раневого процесса у больных с гнойными ранами.
Сведения об авторах:
Суковатых Борис Семенович (e-mail: SukovatykhBS@kursksmu.net), Бежин Александр Иванович (e-mail: BezhinAI@kursksmu.net), Панкрушева Татьяна Александровна (e-mail: PankrushevaTA@kursksmu.net), Григорьян Арсен Юрьевич (e-mail: GrigorjanAu@kursksmu.net), Иванов Александр Викторович (e-mail: IvanovAV@kursksmu.net), Жиляева Людмила Владимировна (e-mail: ZhilyaevaLV@kursksmu.net), Кобзарева Елена Викторовна (e-mail: KobzarevaEV@kursksmu.net), Андрюхина Елена Геннадьевна (e-mail: AndruhinaEG@kursksmu.net), Курский государственный медицинский университет, 305041, г. Курск, ул. К. Маркса, 3;
Дубонос Александр Анатольевич (e-mail: dubonos.A@yandex.ru), Городская клиническая больница скорой медицинской помощи, 305035, г. Курск, ул. Пирогова, 14
Эксперименты in vivo выполнены на 120 белых крысах-самцах породы «Вистар». Для исследования отбирали животных массой 180,0±20,0 г без внешних признаков заболевания, прошедших карантин в виварии ГБОУ ВПО «Курский государственный медицинский университет». Всех животных содержалих в одинаковых условиях на стандартном пищевом рационе. Все исследования проводили с соблюдением принципов, изложенных в Конвенции по защите прав позвоночных животных, используемых для экспериментальных и других целей (г. Страсбург, Франция, 1986) и согласно правилам лабораторной практики РФ (приказ МЗ РФ № 267 от 19.06.2003 г.).
Животным под наркозом в стерильных условиях моделировали гнойную рану по следующей методике. На выбритом от шерсти участке спины, обработанном антисептиком, иссекали кожу с подкожной клетчаткой размером 16x16 мм. В полученную рану вводили марлевый шарик, содержащий
1 млрд микробных тел суточной культуры Staphylococcus aureus ATCC 6538-P, и рану ушивали. На 3-и сутки (через 48 ч) после моделирования у всех животных формировался абсцесс со всеми характерными признаками воспаления. После снятия швов края раны разводили, марлевый тампон удаляли, эвакуировали гной.
Экспериментальные животные были разделены на
2 группы: контрольную и основную по 60 особей в каждой.
В контрольной группе ежедневно производили обработку раны 3% раствором перекиси водорода и наложение марлевой салфетки с официнальной мазью «Левомеколь». В основной группе ежедневно производили обработку раны 3% раствором перекиси водорода и наложение марлевой салфетки с иммобилизированной формой хлоргексидина биглюконата. Перевязки экспериментальным животным в обеих группах производили 1 раз в день ежедневно в течение 14 сут.
Для решения поставленной задачи нами были обследованы 58 больных с гнойными ранами мягких тканей, находившихся на лечении в отделении гнойной хирургии ОБУЗ ГКБ БСМП г. Курска. Возраст варьировал от 32 до 57 лет и, в среднем, составил (48,3±1,8) года. Из них мужчин было 46 (79%), а женщин — 12 (21%). Из исследования исключали пациентов, имеющих в анамнезе сахарный диабет и облитерирующий атеросклероз сосудов нижних конечностей.
Больные были разделены на две статистически однородные группы по полу, возрасту, размерам ран. Первую (контрольную) группу составили 30 пациентов, которым для местного лечения использовали многокомпонентную мазь на гидрофильной основе «Левомеколь». Во вторую (основную) группу вошли 28 больных, которым для местного воздействия на гнойную рану применили иммобилизированную форму хлоргексидина биглюконата.
Всем больным проводили хирургическое лечение — частичную хирургическую обработку гнойных очагов с последующей медикаментозной терапией [антибактериальной, дезинтоксикационной (по показаниям), общеукрепляющей и симптоматической]. Разница в проводимой терапии между обследуемыми группами заключалась только в используемом местном лечении. Изначально средняя площадь гнойных ран в контрольной группе составляла (176±1,6) мм2, а в основной группе — (178±1,2) мм2.
Динамику течения раневого процесса изучали при помощи планиметрического, бактериологического и цитологического методов исследования.
При планиметрии гнойной раны оценивали динамику уменьшения площади и скорость заживления. Процент уменьшения площади ран (ПУП) от исходного размера вычисляли по формуле:
ПУП=
Vs
x100%,
S
где 80 — исходный средний уровень площади на начало лечения, мм2; 8 — средняя площадь ран на момент измерения, мм2.
Скорость заживления ран (СЗ), т. е. процент уменьшения площади раны, сут:
СЗ=
пуп1-пуп0
T
где ПУП: — процент уменьшения площади ран от исходной на момент измерения; ПУП0 — процент уменьшения площади ран при предыдущем измерении; Т — количество дней между измерениями.
Во время бактериологического исследования определяли микробную обсеменённость раны (КОЕ в 1 г ткани), вид возбудителя и его чувствительность к антибактериальным препаратам. Микробную обсеменённость ран пациентов обеих групп определяли на 1-, 3-, 5-, 7-, 10-, 15-е сутки лечения. Стерильные бакотпечатки с плотной питательной средой (мясо-пептонный агар с глюкозой) площадью 4 см2 прикладывали к поверхности раны на 15-20 с. Далее бакотпе-чатки помещали в термостат при температуре 37 °С на 24 ч. Через 1 сут на поверхности питательной среды отмечали рост колоний. Микробное число определяли путем подсчета колоний в 1 см2. Идентификацию микроорганизмов проводили по морфологическим, тинкториальным, культуральным свойствам.
При цитологическом исследовании определяли клеточный состав раневого отделяемого и характер цитограммы на 3-, 5-, 7-, 10-е сутки. Для объективизации течения раневого процесса рассчитывали клеточный индекс по формуле:
Клеточный макрофаги+фибробласты+полибласты индекс гранулоциты+лимфоциты
Клетки, расположенные в числителе, характеризуют репаративные процессы, а в знаменателе — выраженность воспалительных процессов. Чем меньше индекс, тем более выражены воспалительные процессы в ране.
Статистическую обработку результатов исследования проводили с использованием методов однофакторного дисперсионного анализа. Вычисляли средние величины количественных показателей (М) и среднюю ошибку средней (т). Распределение признаков определяли по критерию Шапиро—Уилка. Достоверность различий оценивали по критерию Даннета, Ньюмена—Кейлса.
Результаты и обсуждение. Динамика площади и скорости заживления ран в группах экспериментальных животных представлена в табл. 1.
Из табл. 1 видно, что процент уменьшения площади ран в основной группе был больше, чем в контрольной на 3-и сутки на 14,2%, на 5-е сутки — на 9,1%, на 10-е сутки — на 12,8%, на 15-е сутки — на 11,1%.
Таблица 1
Динамика площади и скорости заживления ран в эксперименте (М±т)
Контрольная группа (n=60) Основная группа (n=60)
Сроки наблюдения, сутки Процент уменьшения площади раны Скорость заживления раны (%/сут) Процент уменьшения площади раны Скорость заживления раны (%/сут)
3-и 21,2±4,84 10,5±0,51 35,6±2,64* 16,5±0,47*
5-е 44,9±3,52 12,0±0,69 54,0±2,44* 9,9±0,40*
10-е 78,4±3,07 10,1±0,54 91,2±1,20* 6,9±0,42*
15-е 88,9±2,13 2,0±0,12 100" -
Здесь и в табл. 2, 3: р<0,05 при сравнении основной и контрольной группы (по критерию Ньюмена—Кейлса).
В опытной серии скорость заживления — стабильно высокая на протяжении всего срока наблюдения, что указывает на высокую активность в предлагаемой комбинации препаратов в фазу гидратации и дегидратации раневого процесса.
Анализ полученных результатов (n=10) на каждом сроке наблюдения микробиологического исследования ран представлен в табл. 2.
Начальная микробная обсемененность ран на 1-е сутки составляла, в среднем, (14,6±1,98)х107 колониеобразующие единицы/г (КОЕ/г). В основной группе животных микробная обсемененность ран была меньше, чем в ранах контрольной группы на 3-и сутки лечения на 7х106, на 5-е сутки — на 8-е сутки — 6,2х104 и на 10-е
сутки — 62,5х103.
Статистически значимые различия отмечались между основной и контрольной группами на 8-е и 10-е сутки. Анализ полученных данных свидетельствует, что использование при лечении гнойных ран иммобилизированной формы хлор-гексидина биглюконата способствует скорейшему уменьшению микробной обсемененности ран по сравнению с контрольной группой.
Динамика изменения клеточного состава гнойных ран (n=10) в каждый срок наблюдения представлена в табл. 3.
Из табл. 3 видно, что в процессе лечения в обеих группах происходит увеличение количества фибробластов по сравнению с макрофагами, лимфоцитами и гранулоцитами. Так, количество фибробластов (клеток репаративного ряда) в ранах основной группы было больше на 3-и сутки
на 0,5%, на 5-е сутки — на 10,6%, на 8-е сутки — на 12,1% и на 10-е — на 9,4%.
Преобладание фибробластов над остальными клеточными элементами раньше всего отмечается в основной группе по сравнению с контрольной, что говорит о раннем развитии репаративных процессов в ране. Поэтому на 8-е и 10-е сутки клеточный индекс в ранах основной группы в 1,2 раза выше, чем в контрольной, что позволяет быстро завершить течение раневого процесса, длительность которого уменьшена на 20%.
На следующий день у больных после проведения частичной хирургической обработки выраженная гиперемия краев гнойной раны была отмечена в 77,5% случаев в контрольной (у 23 из 30 человек) и в 68,4% в основной (19 из 28 человек) группе.
Результаты планиметрического исследования в клинических группах представлены в табл. 4.
Процент уменьшения площади ран в основной группе был больше, чем в контрольной на 3-и сутки на 1,59%, на 5-е сутки — на 3,16%, на 7-е сутки — на 5,86%, на 10-е сутки — на 6,85%, на 14-е сутки — на 7,82%, на 21-е сутки — на 7,62%.
Скорость заживления гнойных ран при использовании нового способа лечения в основной группе несколько выше скорости заживления гнойных ран у пациентов контрольной группы. Так, разница составила: на 3-и сутки — 0,53% ; на 5-е сутки — 0,79%; на 7-е сутки — 1,35%; на 10-е сутки — 0,33%; на 14-е сутки — 0,25%; а на 21-е сутки скорость заживления на 0,03% выше в контрольной группе.
Таблица 2
Динамика микробной обсемененности ран в экспериментальных группах (КОЕ/г) (M±m)
Группы Сроки лечения, сутки
1-е 3-и 5-е 8-е 10-е
Контрольная 14,7±1,09х107 19,2±2,55х106 16,6±1,29х105 15,5±0,38х104 7,3±0,60х104
Основная 14,5±2,13х107 13,2±1,83х106 12,3±1,91х105 9,3±1,12х104* 10,5±1,74х103*
Таблица 3
Динамика состава инфильтрата ран в процессе лечения в экспериментальных группах (%) (М±т)
Показатели Группы животных Сроки лечения, сутки
3-и 5-е 8-е 10-е
Фибробласты Контрольная 31,9±1,17 32,2±0,94 43,3±1,96 51,4±0,57
Основная 32,4±2,29 42,8±1,36* 55,4±2,32* 60,8±2,18*
Макрофаги Контрольная 20,6±1,51 21,4±1,26 18,4±1,51 14,7±1,64
Основная 16,4±0,75 12,2±0,58 10,6±0,68 8,2±0,49
Лимфоциты Контрольная 17,5±1,27 19,1±2,13 16,5±2,42 15,4±1,58
Основная 19,6±0,51 16,0±0,45 15,2±0,58 15,5±1,00
Гранулоциты Контрольная 32,1±1,91 29,2±1,66 24,4±2,01 20,4±0,97
Основная 33,0±2,28 30,8±1,55 20,6±1,36 16,8±0,86
Клеточный индекс Контрольная 1,06±0,034 1,10±0,027 1,51±0,041 1,85±0,027
Основная 0,93±0,017 1,18±0,022 1,85±0,036* 2,14±0,031*
Таблица 4
Динамика площади и скорости заживления ран в клинических группах (М±т)
Контрольная группа(п=30) Основная группа (п=28)
Срок наблюдения, сутки Процент уменьшения площади раны Скорость заживления раны (%/сут) Процент уменьшения площади раны Скорость заживления раны (%/сут)
3-и 8,520,7 2,84±1,4 10,11±1,0 3,37±1,8
5-е 18,75±0,5 5,11±1,7 21,91±0,7 5,90±1,2
7-е 28,40±0,7 4,82±1,3 34,26±1,0* 6,17±1,1*
10-е 40,34±0,9 3,98±1,9 47,19±0,5* 4,31±1,6*
14-е 53,97±0,8 3,40±1,6 61,79±0,8* 3,65±1,4*
21-е 72,15±0,5 2,59±1,2 79,77±0,5* 2,56±1,2
Здесь и в табл. 5, 6: р<0,05 между показателями у больных основной и контрольной группы.
Суммарная скорость заживления гнойных ран в основной группе на 3,25% выше скорости заживления в контрольной группе.
Динамика микробной обсемененности ран в клинических группах представлена в табл. 5.
Из табл. 5 видно, что в основной группе пациентов микробная обсеменённость ран (КОЕ в 1 г ткани) была меньше, чем в ранах у пациентов контрольной группы на 3-и сутки лечения — на 1,бх106, на 5-е сутки — на 25,1х105, на 7-е сутки — на 76,9х104, на 10-е сутки — на 2,4х104 и на 15-е сутки — на 0,5х103 (р<0,05).
В основной группе пациентов отмечается тенденция к более быстрому снижению микробного числа в первые 10 суток лечения, что по срокам соответствует воспалительной фазе раневого процесса. После 10-х суток лечения показатели микробной обсеменённости ран в обеих группах пациентов выравниваются.
Для возможности динамического наблюдения за течением раневого процесса во время комплексного лечения исследованы цитологические отпечатки с поверхности гнойных ран.
На момент поступления анализ результатов проведенных цитологических исследований показал, что у 55 (94,8%) пациентов цитологическая картина соответствовала воспалительному типу цитограмм, у 3 (5,2%) пациентов (2 пациента основной и 1 пациент контрольной группы) — воспалительно-регенераторному.
В мазках отпечатках клеточный состав при воспалительном типе цитограмм был представлен лейкоцитами (87,4±2,8)%, лимфоцитами (3,7±1,20)%, макрофагами (4,5±1,2)%, полибластами (3,9±1,5)%, отмечалось отсутствие фибробластов и эпителиальных клеток.
При воспалительно-регенераторном типе количество лейкоцитов уменьшалось до (72±2,8)%, макрофагов — увеличивалось до (12±0,0)%, поли-бластов — до (9±1,4)%, наблюдались отдельные скопления соединительнотканных элементов — фибробластов.
Динамика изменений клеточного состава раневого отделяемого у больных представлена в табл. 6.
Таблица 5
Динамика микробной обсеменённости ран в клинических группах (КОЕ в 1 г ткани)
Группа Сутки раневого процесса
3-и 5-е 7-е 10-е 15-е
Контрольная (п=30) Основная (п=28) 16,8±2,1х106 15,2±1,7х106* 4,3±1,9х106 17,9±2,0х105* 9,0±1,6х105 13,1±1,8х104* 10,2±0,9х104 7,8±1,2х104* 13,2±1,3х103 12,7±1,6х103
Таблица 6
Динамика клеточного состава раневого отделяемого в клинических группах (М±т)
Показатель Группы больных Сроки лечения, сутки
3-и 5-е 7-е 10-е
Гранулоциты Контрольная 84,5±1,2 81,4±1,4 69,2±1,3 63,7±1,9
Основная 72,7±2,0* 67,2±1,6* 60,4±1,3* 58,5±1,5*
Фибробласты Контрольная 3,4±0,6 4,5±0,9 9,7±1,8 11,7±1,5
Основная 6,1±0,8* 10,3±1,6* 13,3±1,1* 16,1±0,9*
Макрофаги Контрольная 3,8±0,7 4,7±1,2 8,6±2,2 10,3±1,7
Основная 8,3±0,4* 10,1±0,4* 11,3±2,1* 10,4±1,2
Лимфоциты Контрольная 3,7±0,5 3,6±0,1 3,2±0,6 2,9±0,4
Основная 4,7±0,1 3,4±0,1 2,4±0,1 2,1±0,8
Полибласты Контрольная 5,6±1,1 5,8±1,7 9,3±1,4 11,4±1,9
Основная 7,2±1,4 9,0±1,1* 12,6±0,8* 12,9±1,5
Клеточный индекс Контрольная 0,15 0,17 0,38 0,5
Основная 0,28* 0,41* 0,59* 0,65*
Из табл. 6 видно, что основной клеточный показатель воспаления (гранулоциты) во все сроки лечения был достоверно ниже в основной группе. Так, на 3-и сутки гранулоцитов в основной группе было меньше на 11,8%, на 5-е сутки — на 14,2%, на 7-е сутки — на 8,8%, на 10-е сутки — на 5,2%. В те же сроки количество фибробластов (клеток репаративного ряда) в основной группе было больше на 4,55, 5,8, 3,6, 4,4% соответственно. Клеточный индекс в основной группе был выше на 3-и сутки в 1,9 раза, на 5-е сутки — в 2,4 раза, на 7-е сутки — в 1,6 раза, на 10-е сутки — в 1,3 раза.
Уже с 3-х суток у некоторых пациентов основной группы наблюдался переход цитограмм из воспалительного в воспалительно-регенераторный тип. Клинически это проявлялось уменьшением гиперемии и количеством серозно-гнойного отделяемого с поверхности гнойной раны, регрессированием отека.
В контрольной группе у пациентов на 3-и сутки лечения существенного различия цито-грамм по сравнению с исходными не отмечали. Цитограммы по-прежнему носили воспалительный характер. Сохранялись гиперемия, отек в области раны, значительное количество серозно-гнойного отделяемого.
В дальнейшем на протяжении лечения переход воспалительно-регенераторного типа цитограмм в регенераторный наблюдался в основной группе на 15-е сутки, в то время как в контрольной группе регенераторный тип цитограммы был отмечен лишь на 20-е сутки, что свидетельствовало о более медленных процессах регенерации и эпите-лизации.
Переход воспалительно-регенераторного типа цитограмм в регенераторный наблюдался у пациентов обеих групп при уменьшении площади раневого дефекта >(0±1,7)% от исходной площади, что характеризовалось снижением количества лейкоцитов и скоплением клеток молодого плоского эпителия по всем полям зрения.
Каких-либо негативных последствий во время лечения у больных основной группы иммобилизи-рованной формой хлоргексидина биглюконата не зарегистрировано.
Таким образом, результаты планиметрических, бактериологических и цитологических исследований гнойных ран свидетельствуют о более выраженном положительном эффекте санации раны иммобилизированной формой хлор-гексидина биглюконата, чем стандартной мазью «Левомеколь». Применение антисептиков на геле-вой основе обладает рядом преимуществ: они легко
наносятся, долгое время остаются на поверхности за счет хорошей адгезии, обладают крайне низкой летучестью. Механизм противомикробного действия заключается в том, что, адсорбируясь на поверхности микробной клетки, хлоргексидин нарушает структуру клеточной мембраны и, как хлорсодержащее соединение, вызывает хлорирование белка микробной клетки, что приводит к ее гибели.
Вывод. Результаты экспериментальных и клинических исследований позволяют рекомендовать иммобилизированную форму хлоргексидина биглюконата для лечения первой фазы раневого процесса гнойной раны.
БИБЛИОГРАФИЧЕСКИЙ СПИСОК
1. Блатун Л. А. Местное медикаментозное лечение ран // Хирургия. 2011. № 4. С. 51-59.
2. Блатун Л. А., Жуков А. О., Амирасланов Ю. А. и др. Клинико-лабораторное изучение разных лекарственных форм банео-цина при лечении раневой инфекции // Хирургия. 2009. № 9. С. 63-69.
3. Воленко А. В., Менщиков А. Л., Титова Г. П. и др. Профилактика раневой инфекции иммобилизированными антибактериальными препаратами // Хирургия. 2004. № 10. С. 54-58.
4. Гостищев В. К. Инфекции в хирургии: Руководство для врачей. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2007. 761 с.
5. Ерюхин И. А. Хирургические инфекции: новый 5-й уровень познания и новые проблемы // Инфекции в хир. 2003. № 1. С. 2-7.
6. Коган А. С., Григорьев Е. Г. Хирургия тяжелых гнойных процессов. Новосибирск: Наука, 2000. 313 с.
7. Плотников Ф. В. Комплексное лечение пациентов с гнойными ранами в зависимости от способности микроорганизмов-возбудителей формировать биопленку // Новости хир. 2014. № 5. С. 575-582.
8. Чекмарева И. А., Блатун Л. А., Терехова Л. П. и др. Морфо-функциональные аспекты регенерации ран при лечении йод-содержащими мазями // Хирургия. 2014. № 1. С. 54-58.
9. George K. Are quantitative bacterial wound cultures useful? // J. Clin. Microbiol. 2014. Vol. 52. P. 2753-2756.
10. John T. S. Innovative therapies in wound healing // J. Cutaneous Med. Surg. 2003. Vol. 7, № 3. Р. 217-224.
11. Reilly J. Evidence-based surgical wound care on surgical wound infection // Br. J. Nurs. 2002. № 11. Р. 4-12.
Поступила в редакцию 14.08.2015 г.
B. S. Sukovatykh1, A. I. Bezhin1, T. A. Pankrusheva1, A. Yu. Grigor'yani, A. V. Ivanovi, L. V. Zhilyaevai, E. V. Kobzareva, E. G. Andryukhinai, A. A. Dubonos2
ASSESSMENT OF EXPERIMENTAL AND CLINICAL EFFICACY OF IMMOBILIZED FORM OF CHLORHEXIDINE IN TREATMENT OF PURULENT WOUNDS
1 Kursk State Medical University; 2 Municipal clinical hospital of emergency medicine, Kursk
The authors made an analysis of the results of experimental course of wound process on 120 rats of Vistar line and clinical research of 58 patients with purulent wounds, which were treated by ointment of following composition: chlorhexidine bigluconate 0,5-30,0; methyluracil -2,0; polymethylsiloxane polyhydrate -70,0. The animals and people were divided into 2 statistically uniform groups. The control group had a local treatment of wound by the ointment «Levomekol'». The experimental group used the immobilized forms of chlorhexidine. Dynamics of wound process was studied by planimetric, bacteriological and cytological methods of research. Results of planimetric, bacteriological and cytological investigations proved the more expressed positive effect of purulent wound treatment using immobilized form of chlorhexidine bigluconate.
Key words: purulent wound, wound healing, form of chlorhexidine bigluconate
