Научная статья на тему 'Особенности межфазного каталитического гликозилирования салициловой кислоты'

Особенности межфазного каталитического гликозилирования салициловой кислоты Текст научной статьи по специальности «Химические науки»

CC BY
50
18
i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.
Ключевые слова
МЕЖФАЗНЫЙ КАТАЛИЗ / КРАУН-ЭФИР / ГЛИКОЗИЛИРОВАНИЕ / ГЛИКОЗИЛЬНЫЙ ЭФИР

Аннотация научной статьи по химическим наукам, автор научной работы — Чупахина Т.А., Гончаренко Ю.Н., Курьянов В.О., Астраханцева А.А.

В условиях межфазного катализа в системе «твердый карбонат калия-ацетонитрил» с использованием катализатора 15-краун-5 изучена реакция 2-ацетамидо-3,4,6-триО -ацетил-2-дезокси-α-D-глюкозаминилхлорида с салициловой кислотой. Приведены условия получения монои бисуглеводных производных салициловой кислоты, строение которых доказано с помощью 1Н ЯМР спектроскопии.

i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.
iНе можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.
i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.

Текст научной работы на тему «Особенности межфазного каталитического гликозилирования салициловой кислоты»

Ученые записки Таврического национального университета им. В. И. Вернадского Серия «Биология, химия». Том 24 (63). 2011. № 2. С. 396-401.

УДК 547.455.623'2:612.014.46

ОСОБЕННОСТИ МЕЖФАЗНОГО КАТАЛИТИЧЕСКОГО ГЛИКОЗИЛИРОВАНИЯ САЛИЦИЛОВОЙ КИСЛОТЫ

Чупахина Т.А., Гончаренко Ю.Н., Курьянов В.О., Астраханцева А.А.

Таврический национальный университет им. В.И. Вернадского, Симферополь, Украина

E-mail: tachup@rambler.ru

В условиях межфазного катализа в системе «твердый карбонат калия-ацетонитрил» с использованием катализатора 15-краун-5 изучена реакция 2-ацетамидо-3,4,6-три-О-ацетил-2-дезокси-а-Б-глюкозаминилхлорида с салициловой кислотой. Приведены условия получения моно- и бис-углеводных производных салициловой кислоты, строение которых доказано с помощью 1Н ЯМР спектроскопии.

Ключевые слова: межфазный катализ, краун-эфир, гликозилирование, гликозильный эфир.

ВВЕДЕНИЕ

Известно, что в живых системах углеводы являются субстратами специфических рецепторов в широком круге биологических процессов. Межклеточные взаимодействия, иммунный ответ, патогенез бактериальных и вирусных инфекций, рост и метастазирование опухолевых клеток реализуются вследствие связывания углеводных остатков с клеточной поверхностью посредством соответствующих рецепторов. Поскольку аффинитет единичного углеводного остатка к его рецептору обычно достаточно слаб, прочное связывание, наблюдающееся при этом распознавании, обусловлено одновременной координацией рецепторами, несущими ряд эквивалентных сайтов связывания -нескольких идентичных гликозидных остатков, находящихся на поверхности субстрата. Этот феномен назван мультивалентностью, или гликозидным кластерным эффектом и явился толчком к синтезу широкого круга полигликозилированных соединений - миметиков биологических лигандов и их функций. Избирательная модификация полифункциональных соединений создаёт предпосылки для молекулярного дизайна биологически активных веществ, несущих различное число углеводных остатков.

Важной разновидностью 1-О-производных сахаров являются гликозильные эфиры карбоновых кислот, представляющие определенный фармакологический интерес. Салициловая кислота, обладающая хорошо известным спектром биологической активности, выбрана нами как пример бифункционального соединения с целью получения веществ, содержащих различное количество остатков 2-ацетамидо-2-дезокси-0-глюкозы, связанных с кором неуглеводной природы О-гликозидной и сложноэфирной связями.

В настоящем сообщении обсуждаются особенности синтеза моно- и бис-углеводных производных салициловой кислоты.

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

Температуры плавления определяли на приборе ПТП, оптическое вращение -при 20-25 оС на поляриметре Polamat-A (l = 546 нм).

ТСХ проводили на пластинках Sorbfil-АФВ-УФ («Сорбполимер», Россия). Зоны веществ обнаруживали в УФ (254 нм), а также 5% раствором серной кислоты в этаноле с последующим нагреванием до 200-300 оС. Использовали хроматографическую систему растворителей: бензол-ацетон, 5:1 (А), бензол-изопропиловый спирт, 10:1 (Б), хлороформ-изопропиловый спирт, 15:1 (В). Колоночную хроматографию (КХ) проводили на силикагеле Merck 230-400 меш.

:Н ЯМР спектры получены на спектрометрах Varian Mercury-400 (400 МГц), Varian Mercury-300 (300 МГц), внутренний стандарт - Me4Si. Приведены химические сдвиги (ХС) (м.д., 5-шкала) и константы спин-спинового взаимодействия (КССВ, J, Гц).

схема 1

Синтез 2-ацетамидо-3,4,6-три-0-ацетил-1-0-(2-гидроксибензоил)-2-дезокси-Р^-

глюкопиранозы (2)

OAc

COOH

OAc HO.

О /^/ОН К2СО3 , 15К5 / 0 1

ЛсО^^А + сн3ск *

АсШ^ АсЫН О

1 2 Способ 1. Смесь 400 мг (1,10 моль) а-хлорида 1, 151 мг (1,10 моль) салициловой кислоты, 151 мг (1,1 моль) безводного карбоната калия и 48 мг (0,22 ммоль) 15К5 в 12 мл безводного ацетонитрила перемешивали при температуре 2022 оС до полной конверсии гликозил-донора (ТСХ, система А). Твердую фазу отделяли фильтрованием, осадок промывали на фильтре ацетонитрилом (2^5 мл), растворитель удаляли досуха при пониженном давлении. Продукт реакции 2 выделяли с помощью колоночной хроматографии, элюируя системой бензол-изопропиловый спирт (100:1) ^ бензол-изопропиловый спирт (30:1). Выход 2-ацетамидо-3,4,6-три-0-ацетил-1-0-(2-гидроксибензоил)-2-дезокси-Р-В-глюкопира-нозы составил 355 мг (69%); т.пл. 142 оС, [а]546 -50о (с 1,0; хлороформ).

:Н ЯМР (БЫ8О-аб, 300 МГц): 1,75с (3Н, ЫАс), 1,96с (3Н, ОАс), 2,00с (6Н, 2ОАс), 4,12м (4Н, Н-2, Н-5, Н-6а, Н-6Ь), 4,97дд (1Н, Н-4, ^5 10,2 Гц), 5,27дд (1Н, Н-3, 10,8 Гц), 5,92д (1Н, Н-1, 8,4 Гц), 6,96дд, 7,01д, 7,55дд, 7,68д, (4Н, СНаром.), 8,09д (1Н, ЯН, Лот 9,3 Гц), 10,19с (1Н, ОН).

Способ 2. По способу 1 из 400 мг (1,1 моль) а-хлорида 1 в отсутствие межфазного катализатора получили целевой продукт реакции 2 с выходом 205 мг (40%) после очистки колоночной хроматографией.

Схема 2

Синтез (2-ацетамидо-3,4,6-три-0-ацетил-2-дезокси-Р-Б-глюкопиранозил)-2-(2-ацетамидо-3,4,6-три-0-ацетил-2-дезокси-Р-Б-глюкопиранозилокси)бензоата (3)

и (2-ацетамидо-3,4,6-три-0-ацетил-2-дезокси-а-Б-глюкопиранозил)-2-(2-ацетамидо-3,4,6-три-0-ацетил-2-дезокси-Р-Б-глюкопиранозилокси)бензоата (4)

Смесь 500 мг (1,37 ммоль) а-хлорида 1, 94,4 мг (0,68 ммоль) салициловой кислоты, 517 мг (3,75 ммоль) безводного карбоната калия, 11 мг (0,05 ммоль) 15К5 в 15 мл безводного ацетонитрила перемешивали при температуре 20-22 оС до полной конверсии гликозил-донора (ТСХ, система Б). Выделение продуктов реакции 3 и 4 проводили по способу 1. Выход целевого продукт 3 после колоночной хроматографии (элюент: хлороформ-изопропиловый спирт 100:1 ^ хлороформ - изопропиловый спирт, 15:1) составил 45 мг (8%); т.пл. 134 оС, [а]546 -37,5° (с 0,9; хлороформ).

:Н ЯМР (БМ80^, 400 МГц) соединения 3:1,76с, 1,78с (6Н, КЛс), 1,97с, 1,98с, 2,01с, 2,02с (12Н, 40Лс), 2,00с (6Н, 30Лс), 4,11м (8Н, 2 Н-2, 2 Н-5, 2 Н-6а, 2 И-6Ь), 4,93дд, 4,96дд (2Н, 2 Н-4, 3,5 9,6 Гц, 3,5 10,0 Гц), 5,28 дд, 5,25дд (2Н, 2 Н-3 33,4 9,6 Гц), 5,54д, 5,92д (2Н, 2 Н-1, 3 8,8 Гц), 7,13т, 7,28д, 7,59дд, 7,74д (4Н, СН^), 7,95д, 8,06д (2Н, 2 Ж, 8,0 Гц, 9,6 Гц).

Выход целевого продукт 4 после колоночной хроматографии при градиентном элюировании системой хлороформ-изопропиловый спирт (100:1) ^ хлороформ-изопропиловый спирт (30:1) составил 38 мг (7%); т.пл. 211 оС, [а]546 -34о (с 1,0; хлороформ).

:Н ЯМР (БМ80^6,400 МГц) соединения 4: 1,72с, 1,81с (6Н, 2Ш.с), 1,96с (9Н, 30Лс), 1,99с, 2,01с, 2,02с (9Н, 30Лс), 4,18м (8Н, 2Н-2, 2Н-5, 2Н-6а, 2Н-6Ь), 4,97дд, 5,04дд (2Н, 2Н-4, 3,5 9,6 Гц), 5,28дд (2Н, 2Н-3, 33,4 9,6 Гц), 5,59д, 6,17д (2Н, 2Н-1, ^ 3,2 Гц, 8,4 Гц), 7,22т, 7,39д, 7,64т, 7,89д (4Н, СН аром.), 8,00д, 8,02д (2Н, 2Ж, 8,0 Гц, 8,4 Гц).

Схема 3

Синтез (2-ацетамидо-3,4,6-три-0-ацетил-2-дезокси-Р-Б-глюкопиранозил)-2-(2-ацетамидо-3,4,6-три-0-ацетил-2-дезокси-Р-Б-глюкопиранозилокси)бешоата (3)

Смесь 200 мг (0,55 ммоль) а-хлорида 1, 256 мг (0,55 ммоль) о-карбоксифенил-2-ацетамидо-3,4,6-три-О-ацетил-2-дезокси-Р^-глюкопиранозида, 76 мг (0,55 ммоль) безводного карбоната калия, 24 мг (0,11 ммоль) 15К5 в 6 мл безводного ацетонитрила перемешивали при температуре 20-22 оС до полной конверсии гликозил-донора (ТСХ, система Б). Продукт реакции 3 выделяли по способу 1, используя для колоночной хроматографии элюент хлороформ-изопропиловый спирт (100:1) ^ хлороформ-изопропиловый спирт (25:1). Выход производного 3 составил 255 мг (58%); т.пл. 133 оС, [а]546 -53о (с 1,0; хлороформ).

РЕЗУЛЬТАТЫ И обсуждение

С целью расширения круга объектов межфазного каталитического гликозилирования [1-5], нами изучено взаимодействие 2-ацетамидо-3,4,6-три-О-ацетил-2-дезокси-а^-глюкозаминилхлорида с бифункциональным О-нуклеофилом - салициловой кислотой. Гликозильный эфир 2 получили межфазной реакцией стехиометрических количеств а-хлорида 1, салициловой кислоты, безводного карбоната калия и 20% (мольн.) 15К5 при комнатной температуре, в среде сухого ацетонитрила. Реакция заканчивалась в течение 3 ч (ТСХ). Выход производного 2, выделенного колоночной хроматографией, составил 69%.

В отсутствие межфазного катализатора процесс шел медленнее, и полная конверсия глюкозаминилхлорида 1 в продукт реакции 2 завершалась за 6 ч с выходом 40%. Таким образом, использование 15К5 сокращало время реакции глюкозаминилирования и повышало выход целевого продукта, сравнительно с процессом, протекающим в отсутствие МФ-катализатора (рис. 1).

Способ 1:

Хлорид 1: 2 : К2СО3: 15К5 = 1:1:1:0,2 Способ 2:

Хлорид 1: 2: К2СО3 = 1:1:0,2

Рис. 1. Зависимость времени реакции и выхода продукта 2 от условий реакции.

Строение целевого продукта 2 доказано ПМР-спектроскопией. Об образовании гликозильного эфира свидетельствует наличие в :Н ЯМР спектре дублета аномерного протона с ХС 5,9 м.д. и синглета хелатированной фенольной гидроксильной группы с ХС 10,2 м.д. 1,2-транс-Диаксиальное расположение протонов в остатке ^-ацетилглюкозамина подтверждается величиной КССВ 8,4 Гц. В спектре также идентифицированы сигналы скелетных протонов, протонов О- и N

Выход, % Время, ч

ацетильных защитных групп углеводного остатка, а также сигналов ароматических протонов агликона с ХС 6,95, 6,99, 7,55 и 7,69 м.д.

Для введения второго остатка ^-ацетилглюкозамина по фенольной гидроксильной группе салициловой кислоты межфазную реакцию проводили по способу 1 с использованием избытка основания. Гликозилгалогенид 1 конвертировался с образованием бис-производных 3 и 4 за 3-4 ч. Невысокие выходы соединений 3 и 4 - 8% и 7%, соответственно, связаны с протеканием побочных реакций образования ацетатов 5 и 6 (рис. 2). Образование продукта реакции 4 с а-конфигурацией сложноэфирной связи, скорее всего, связано с аномеризацией.

0Лс

ЛсШ 5

Рис. 2. Структуры 1-О-ацетилглюкопираноз 5 и 6.

Строение бис-глюкозаминидов 3 и 4 доказано :Н ЯМР спектроскопией. Характерной особенностью ПМР-спектров является отсутствие сигналов протона фенольной гидроксильной группы и удвоение сигналов скелетных протонов углеводного остатка относительно сигналов протонов агликона. Образование димеров с различной конфигурацией гликозильной связи подтверждается дублетом аномерного протона с ХС 6,2 м.д. и КССВ 3,2 Гц, свидетельствующей об а-конфигурации ацилгликозидной связи бис-производного 4. 1,2-транс-Диаксиальное расположение протонов в остатке ^-ацетилглюкозамина бис-производного 3 подтверждается присутствием в его ПМР-спектре дублета аномерного протона с ХС 5.9 м.д. и КССВ 8,8 Гц. Химические сдвиги ароматических протонов в остатке салициловой кислоты продуктов реакции 3 и 4 соответствуют химическим сдвигам ароматических протонов гликозильного эфира 2.

Применение альтернативного подхода - синтез соединения 3 исходя из о-карбоксифенил-2-ацетамидо-3,4,6-три-О-ацетил-2-дезокси-Р-Б-глюкопиранозида завершалось образованием единственного продукта 3 с Р-конфигурацией аномерного центра в обоих углеводных остатках (сравнение с заведомыми образцами) с выходом 58%.

ВЫВОДЫ

1. Показана возможность применения межфазной системы «твердый К2СО3-безводный СН3С№> с использованием катализатора 15К5 для реакции глюкозаминилирования бифункционального соединения - салициловой кислоты.

2. В обсуждаемом межфазном процессе 15К5, являющийся катализатором межфазного переноса, в сравнении с процессом без катализатора обеспечивает

0Лс

6

сокращение времени реакции и повышение выхода 1-О-ацильного производного салициловой кислоты.

3. Подобраны условия получения моно- и бис-производных салициловой кислоты.

Список литературы

1. Glycosylation of mycotoxins / S. Grabley., M. Garies, W. Böckers, J. Thiem // Synthesis. - 1992. -Vol. 27, № 11. - P. 1078-1080.

2. Bliard C. Glycosylation of acids under phase transfer conditions. Partial synthesis of saponins / C. Bliard, G. Massiot, S. Nazabadioko // Tetrahedron Lett. - 1994. - Vol. 35, № 33. - P. 6107-6108.

3. Loganathan D. Phase-transfer catalysed glycosylation. Synthesis of 1-O-(p-methoxycinnamoyl)-2,3,4,6-tera-O-acetyl-ß-D-glycopyranose / D. Loganathan, A. Amonkar, G. Trivedi // Indian J. Chem. - 1983. -Vol. 22, № 4. - P. 400-401.

4. Катализируемый краун-соединениями синтез ß-арилгликозидов N-ацетилглюкозамина / В.О. Курьянов, Т.А. Чупахина, А.Е. Земляков, С.А. Котляр [и др.] // Биоорг. химия - 2001. - Т. 27, № 6. - С. 434-438.

5. Курьянов В.О. Межфазный катализ:синтез гликозильных эфиров N-ацетилглюкозамина / В.О. Курьянов, Т.А. Чупахина, В.Я. Чирва // Журн. орг. та фарм. х1ми - 2009. - T. 7, № 3. - С. 57-63.

Чупахша Т.О. Особливост м1жфазно1 каталггичних глжозилювання салщилово!" кислоти / Т.О. Чупахша, Ю.М. Гончаренко, В.О. Кур'янов, Г.О. Астраханцева // Вчет записки Тавршського нацюнального ушверситету iM. В.1. Вернадського. Серш „Бюлопя, xiMk". - 2011. - Т. 24 (63), № 2. -С. 396-401.

В умовах мiжфазного KaTari3y у racTeMi «твердий карбонат калта-ацетоштрил» з використанням KaTari3aTopa 15-краун-5 доанджена реакщя 2-ацетамщо-3,4,6-три-0-ацетил-2-дезокси-а-Б-глюкозамшшхлорида з сатцилово! кислотою. Приведет умови отримання моно- i бг'с-вуглеводних жшдних caлiциловоl кислоти, будову яких доведено за допомогою 1Н ЯМР cпeктроcкопil. Krn4oei слова: мiжфaзний кaтaлiз, краун-етер, глiкозилювaння, глiкозильний естер.

Chupakhina T.A. Features of the phase transfer glycosilation of salicylic acid / T.A. Chupakhina, U.N. Goncharenko, V.O. Kuryanov, A.A. Astrakhantseva // Scientific Notes of Taurida V.Vernadsky National University. - Series: Biology, chemistry. - 2011. - Vol. 24 (63), No. 2. - Р. 396-401. In the phase transfer system "solid potassium carbonate-acetonitrile" in presence of catalytic amounts of 15-crown-5 reaction of peracetate a-D-glucosaminilchloride with salicylic acid was studied. Conditions for obtaining mono-and ¿^-carbohydrate derivatives of salicylic acid whose structure was proved by 'H NMR spectroscopy were proved.

Keywords: phase transfer catalysis, crown-ether, glycosilation, glycosyl ether.

Поступила в редакцию 15.05.2011 г.

i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.