CC BY
25
Original articles Оригинальные статьи
Russian Journal of Infection and Immunity = Infektsiya i immunitet Инфекция и иммунитет
2018, vol. 8, no. 1, pp. 33-42 2018, Т. 8, № 1, с. 33-42
_ ____w
ОСОБЕННОСТИ ß-ЛАКТАМАЗНОИ АКТИВНОСТИ СРЕДНЕАЗИАТСКОГО ПОДВИДА ТУЛЯРЕМИЙНОГО МИКРОБА
И.В. Бахтеева, Т.Б. Кравченко, А.К. Рябко, Г.М. Титарева, И.О. Лев, А.Н. Мокриевич, В.С. Тимофеев
Государственный научный центр прикладной микробиологии и биотехнологии, п. Оболенск, Россия
Резюме. Возбудителем туляремии является мелкая грамотрицательная бактерия Francisella tularensis. Этот вид делится на четыре подвида: ssp. tularensis, holarctica, mediasiatica и novicida, которые различаются по географическому ареалу распространения, вирулентности и эпидемиологическому потенциалу. До недавнего времени на территории РФ выявлялся только подвид holarctica. Однако в 2013 г. на Алтае был обнаружен природный очаг туляремии, в котором циркулируют штаммы F. tularensis subsp. mediasiatica, выделяемые ранее только в Средней Азии. Данные лабораторных исследований свидетельствуют о способности штаммов этого подвида вызвать инфекцию у кроликов и мышей, сравнимую по тяжести с инфекцией, вызываемой штаммами голарктического подвида. Однако вирулентность и эпидемическая опасность среднеазиатского подвида F. tularensis для человека до сих пор остается неопределенной, так как случаев туляремии у человека, вызванных штаммами этого подвида, не было зарегистрировано, что может быть связано с особенностями его географического распространения — и Средняя Азия, и Горный Алтай являются крайне редконаселенными регионами. Основным фенотипическим признаком этого подвида является отсутствие активности фермента ß-лактамазы, отвечающего за природную устойчивость к ß-лактамным антибиотикам (пенициллинам, цефалоспоринам и карбапенемам). При этом, несмотря на отсутствие детектируемой ферментативной активности, штаммы среднеазиатского подвида сохраняют устойчивость к этим антибиотикам. В настоящей статье мы приводим данные о том, что штаммы F. tularensis subsp. mediasiatica, вопреки общепринятым представлениям, обладают ß-лактамазной активностью, но при этом скорость гидролиза ß-лактамов значительно снижена по сравнению со штаммами подвида holarctica. Кроме того, при снижении количества микробных клеток в питательной среде начинает проявляться и антибиотикочувствительность. Мы выявили единственную подвидоспеци-фичную для subsp. mediasiatica нуклеотидную замену G/A в 290 положении гена blaB, кодирующего активную сериновую ß-лактамазу. Эта замена приводит к аминокислотной замене Gly на Arg в 97 положении белка BlaB. Мы полагаем, что данная замена является наиболее вероятной причиной снижения активности этого фермента, обусловливая возможные конформационные изменения, приводящие либо к снижению сродства фермента к субстрату, либо к увеличению времени существования фермент-субстратного комплекса. Выявленная замена послужила основой для разработки аллель-специфичного ПЦР-теста, позволяющего определить принадлежность исследуемого штамма F. tularensis к подвиду mediasiatica.
Ключевые слова: Fransisella tularensis, среднеазиатский подвид, ß-лактамазная активность, антибиотикоустойчивость, гены ß-лактамаз, генетическое разнообразие.
Адрес для переписки:
Бахтеева Ирина Викторовна
142279, Россия, Московская область, Серпуховский район, п. Оболенск, ФБУН ГНЦ прикладной микробиологии и биотехнологии. Тел.: 8 (926) 478-37-54. E-mail: bahteeva@obolensk.org
Библиографическое описание:
Бахтеева И.В., Кравченко Т.Б., Рябко А.К., Титарева Г.М., Лев И.О., Мокриевич А.Н., Тимофеев В.С. Особенности ß-лактамазной активности среднеазиатского подвида туляремийного микроба // Инфекция и иммунитет. 2018. Т. 8, № 1. С. 33-42. doi: 10.15789/22207619-2018-1-33-42
© Бахтеева И.В. и соавт., 2018
Contacts:
Bakhteeva V. Irina
142279, Russian Federation, Moscow region, Serpukhov district,
Obolensk, State Research Center for Applied Microbiology and
Biotechnology.
Phone: +7 (926) 478-37-54.
E-mail: bahteeva@obolensk.org
Citation:
Bakhteeva I.V., Kravchenko T.B., Ryabko A.K., Titareva G.M., Lev I.O., Mokrievich A.N., Timofeev V.S. Features of beta-lactamase activity in Francisella tularensis subsp. mediasiatica // Russian Journal of Infection and Immunity = Infektsiya i immunitet, 2018, vol. 8, no. 1, pp. 33-42. doi: 10.15789/2220-7619-2018-1 -33-42
DOI: http://dx.doi.org/10.15789/2220-7619-2018-1-33-42
FEATURES OF BETA-LACTAMASE ACTIVITY IN FRANCISELLA TULARENSIS subsp. MEDIASIATICA
Bakhteeva I.V., Kravchenko T.B., Ryabko A.K., Titareva G.M., Lev I.O., Mokrievich A.N., Timofeev V.S.
State Research Center for Applied Microbiology and Biotechnology, Obolensk, Russian Federation
Abstract. Small Gram-negative bacteria Francisella tularensis is the tularemia causative agent. This species subdivides on four subspecies — ssp. tularensis, holarctica, mediasiatica and novicida, which have some differences in their distribution areas, pathogenicity and epidemical potencial. Until recently only subspecies holarctica was found on the territory of the Russian Federation, but in 2013 a natural focus of tularemia in which circulates F. tularensis subsp. mediasiatica was found on the Altai. Till now this subspecies was found only in Central Asia. The data of laboratory studies indicate the ability of strains of this subspecies to cause infection in rabbits and mice which is comparable in severity to infection caused by subsp. holarctica strains. However, the virulence of F. tularensis subsp. mediasiatica for humans and its epidemical potential are still unclear, since no cases of human infection caused by the strains of this subspecies have been recorded, probably due to the geographical aspects — mountainous Altai and Central Asia are extremely sparsely populated regions. The main phenotypic feature of this subspecies is the lack of activity of P-lactamase, which is responsible for the natural resistance to P-lactam antibiotics (penicillins, cephalosporins and carbapenems). Despite the absence of detectable enzymatic activity, subsp. mediasiatica strains are resistant to these antibiotics. In this article we report that subsp. mediasi-atica strains have P-lactamase activity despite to current opinion, but the of P-lactams hydrolysis rate is much more lower in comparison with reaction rate of subs. holarctica strains. In addition, in case of a decrease of the microbial cells number in the nutrient medium, antibiotic susceptibility appears. We identified a single specific for subsp. mediasiatica nucleotide substitution G/A at the 290 position of the blaB gene, which encodes the active serine P-lactamase. This substitution leads to the amino acid substitution Gly/Arg at the 97 position of the protein BlaB. We assume, that enzymatic activity decreasing is the most likely caused by this substitution), for example it may cause some conformational changes leading either to enzyme — substrate affinity decreasing or to in the lifetime of the enzyme-substrate complex increasing. On the basis of the found nucleotide substitution, we developed an allele-specific PCR test that makes it possible to determine whether the studied strain F. tularensis belongs to the subspecies mediasiatica.
Key words: Fransisella tularensis, subspecies mediasiatica, P-lactamase activity, antibiotic resistance, genes of P-lactamase, genetic diversity.
Введение
Возбудитель туляремии, Francisella tularensis, имеет внутривидовое разделение на 4 подвида, различающихся ареалами распространения, степенью патогенности и эпидемической значимостью [11], поэтому подвидовая идентификация культур F. tularensis является важным этапом диагностики туляремийной инфекции, обеспечивая предварительную оценку вирулентности и эпидемиологической опасности. До недавнего времени на территории РФ выявлялся в основном подвид holarctica, однако в 2013 г. на Алтае был обнаружен природный очаг туляремии, в котором циркулируют штаммы F. tularensis, относящиеся к среднеазиатскому подвиду (mediasiatica) [2]. Вирулентность и эпидемическая опасность среднеазиатского подвида F. tularensis для человека до сих пор остается terra incognita, так как случаев туляремии у человека, вызванных штаммами этого подвида, не было зарегистрировано. Вполне вероятно, что это связано с ареалом его распространения — в малонаселенных районах Средней Азии с низкоэффективным медицинским обслуживанием. Немногочисленные опубликованные данные лабораторных исследований свидетельствуют о его способности вызвать инфекцию у кроликов и мышей [18]. Эксперименты, проводимые в нашей лаборатории (данные не опубликованы), свидетельствуют о том, что его вирулентность для мышей сходна с вирулентностью подвида holarctica. Основным диагностическим признаком F. tularensis subsp.
mediasiatica является отсутствие в-лактамазной активности, отвечающей за природную устойчивость туляремийного микроба к антибиотикам в-лактамного ряда [4, 5].
Для туляремийного микроба характерна природная резистентность к в-лактамам [3, 6], и в ряде работ были охарактеризованы гены в-лактамаз F. tularensis, а также показано, что лишь один из этих генов ЬШВ кодирует функционально активный белок БТи-1, обеспечивающий резистентность к ампициллину [7, 8, 14]. Аналоги БТи-1 были обнаружены у всех четырех подвидов туляремийного микроба, включая F. tularemis подвида mediasiatica. в-лактамазная активность регистрируется как в тесте чувствительности к антибиотикам, так и в колориметрическом тесте с хромогеным субстратом нитро-цефином [15, 17]. В работе М.В. Цимбалистовой и Н.В. Павлович штаммы F. tularensis разных подвидов демонстрировали в диско-диффузионном тесте высокую резистентность к антибиотикам группы пенициллинов вне зависимости от под-видовой принадлежности и в-лактамазной активности в тесте с нитроцефином [5]. Таким образом, по данным литературы [4, 5], у штаммов туляремийного микроба среднеазиатского подвида, обладающих резистентностью к пеницил-линам и имеющих в своем геноме ген активной сериновой лактамазы БТи-1, не выявляется в-лактамазная активность, определяемая в колориметрическом тесте.
Наличие функционально активной в-лакта-мазы согласуется с устойчивостью штаммов
среднеазиатского подвида к пенициллинам, но вступает в противоречие с отсутствием в-лак-тамазной активности. Поиск причин этого противоречия послужил основанием для выполнения данного исследования. В данной работе мы приводим результаты сравнительного изучения кинетических характеристик в-лактамазной активности штаммов F. tularensis разных подвидов и вариабельности генетических детерминант, обуславливающих в-лактамазную активность F. tularensis. Частично результаты данной работы были доложены на II Национальном конгрессе бактериологов «Состояние и тенденции развития лабораторной диагностики инфекционных болезней в современных условиях» (20—22 сентября 2016 г., Санкт-Петербург).
Материалы и методы
Штаммы микроорганизмов, среды и условия культивирования. В работе использовали 29 природных штаммов F. tularensis из Государственной коллекции патогенных микроорганизмов «ГКПМ-Оболенск» ФБУН Государственный научный центр прикладной микробиологии и биотехнологии (26 — повида mediasiatica, 2 — пови-да holarctica и один штамм — подвида tularensis). Кроме того, в ряде экспериментов использовали полученные с помощью гомологичной рекомбинации варианты штамма F. tularensis 15 НИИЭГ ssp. holarctica с инактивированными в-лактамазами (для получения штамма 15А123, чувствительного к в-лактамам) и штамма 120 ssp. mediasiatica с инактивированным геном pur (для получения аттенуированного штамма 120A^ur). Штаммы F. tularensis культивировали при температуре 37°С на плотной питательной среде FT-агар (ФБУН ГНЦ ПМБ) и в жидкой питательной среде [2] с добавлением полимиксина B до концентрации 100 мг/л.
Анализ in silico. Поиск нуклеотидных и аминокислотных последовательностей проводили с использованием баз данных, доступных на информационном портале NCBI (www.ncbi.nlm.nih. gov). Множественное выравнивание нуклеотид-ных и аминокислотных последовательностей, дизайн олигонуклеотидных праймеров и зондов, расчет их температур плавления, трансляция in silico, анализ расположения на хромосоме исследуемых генов и их гомологов, а также их фрагментов проводились с помощью пакета программ Vector NTI 10.0.1. (Invitrogen Corporation).
Выделение нуклеиновых кислот из бактерий проводили с помощью набора реагентов Gen-Elute™ Bacterial Genomic DNA Kits (Sigma-Aldrich, США) согласно инструкциям производителя.
Олигонуклеотидные праймеры были синтезированы биотехнологической компанией «Синтол» (Москва, Россия).
Аллель-специфическая ПЦР (AS-ПЦР). Анализ нуклеотидной замены в гене blaB осуществляли
с помощью AS-ПЦР по схеме, предложенной Birdsell [9]. Учет результатов AS-ПЦР проводили в реальном времени по анализу кривых плавления в амплификаторе c оптическим ПЦР-модулем CFX96 (Bio-Rad Laboratories, Inc, США) с использованием «2,5-кратной реакционной смеси для проведения ПЦР-РВ в присутствии красителя SYBR Green I» (Синтол, Россия, Москва). Интенсивность SYBR Green-флуоресценции измеряли при длине волны 530 нм. Детекцию продуктов амплификации проводили с использованием оптического ПЦР-модуля по каналу FAM/SYBR.
Определение устойчивости к антибиотикам диско-диффузионным методом. Из суточной агаровой культуры F. tularensis готовили миллиардную микробную взвесь в забуференном физиологическом растворе с использованием стандарта мутности ОСО. На поверхность чашек с подсушенным FT-агаром наносили 1 мл взвеси, посредством покачивания чашки культуру равномерно распределяли по поверхности среды, подсушивали и затем на поверхность среды накладывали стандартные диски с антибиотиками (OXOID, Великобритания). Через 24 ч измеряли диаметр зоны торможения роста бактериальной культуры вокруг соответствующих дисков с антибиотиками (включая диаметр диска).
Определение устойчивости к антибиотикам методом серийных разведений. В 96-луночных планшетах готовили двукратные разведения антибиотиков в жидкой питательной среде для ту-ляремийного микроба [1] в объеме 100 мкл. Бактериальные суспензии использовали в конечных концентрациях от 2 х 103 до 2 х 108 м.к./мл, антибиотики от 0,05 до 10 000 мг/л.
Бактерицидный эффект антибиотика определяли через 48 ч с помощью колориметрического теста МТТ [12]. Для этого во все лунки 96-лу-ночного планшета добавляли по 10 мкл раствора MTT в забуференном физиологическом растворе (5 мг/мл) и дополнительно инкубировали в течение 4—6 ч при температуре 37°С, затем содержимое лунок растворяли добавлением 50 мкл 10%-ного раствора додецилсульфата натрия, приготовленного на 0,01 М соляной кислоте, и измеряли оптическую плотность полученного лизата при длине волны 595 с использованием спектрофотометра Ultrospec 3100 pro (Pharmacia, США). Бактерицидный эффект учитывали либо по минимальной бактерицидной концентрации (по лункам со 100% гибелью микроорганизмов), либо по проценту живых клеток по формуле OD595aб/OD595KонTроль х 100.
Истощение пула пенициллина в жидкой питательной среде в присутствии бактериальных клеток F. tularensis. В жидкую питательную среду, содержащую 400 мкг/мл пенициллина, вносили бактериальные суспензии сравниваемых штаммов F. tularensis и культивировали в течение 24 ч. Остаточное количество антибиотика в супер-
натанте измеряли через 4 и 24 ч по способности супернатанта ингибировать рост контрольного чувствительного к пенициллину штамма F. tularensis 15 Л123 с инактивированными в-лак-тамазами. В качестве контроля антибиотика использовали двукратные разведения пенициллина в питательной среде, начиная с 400 мкг/мл. Определяли титр супернатанта, при котором рост чувствительного штамма не ингибировал-ся, и по нему рассчитывали остаточное количество антибиотика в супернатанте
Подготовка проб для определения бета-лак-тамазной активности. Суспензии F. tularensis подвергали деструкции обработкой ультразвуком с помощью ультразвукового дезинтегратора (Cole-Parmer, США) при мощности 150 Вт дробно в течение 60 с. Полученные пробы осветляли центрифугированием при 13 000 об./мин и супернатанты ультразвуковых лизатов (УЗЛ) использовали для дальнейшей работы.
Кинетические параметры (3-лактамазной активности культур F. tularensis определяли на спектрофотометре Multiskan Ascent 96/384 Plate Reader (LabSystems, США), в качестве субстрата использовали хромогенный цефалоспо-рин нитроцефин с концентрацией 500 мкг/мл, гидролиз которого приводит к образованию окрашенного продукта, количество которого прямо пропорционально уровню в-лактамазной активности. Оптическую плотность раствора измеряли при длине волны 495 нм при температуре 37°С после добавления нитроцефина в течение первого часа — каждые 15 мин, далее — каждый час в течение суток. Измерение удельной активности фермента и скорости ферментативной реакции проводили с использованием спектрофотометра Ultrospec 3100 pro (Pharmacia, США) и термостатируемой спектрофотометрической ячейки (Biochrom, США) как описано [10].
Результаты
Чувствительность F. tularensis разных подвидов к антибиотикам группы бета-лактамов
Известно, что штаммы туляремийного микроба среднеазиатского подвида, в отличие от subsp. tularensis и holarctica, не обладают пени-циллазной активностью, определяемой в тесте с феноловым красным или нитроцефином [4, 5], хотя и имеют в своем геноме ген сериновой лак-тамазы FTU-1, ответственной за устойчивость к пенициллинам [7]. Используя диско-диффузионный метод, мы определили чувствительность к в-лактамным антибиотикам у 12 штаммов F. tularensis различных подвидов из коллекции ГНЦ ПМБ. Результаты экспериментов приведены в таблице 1.
Из данных таблицы видно, что штаммы F. tularensis subsp mediasiatica ничем не отличались от штаммов других подвидов по уровню рези-
стентности к в-лактамам. Полученные результаты соотносятся с данными М.В. Цимбалистовой и Н.В. Павлович [5], согласно которым штаммы F. tularensis среднеазиатского подвида резистентны к в-лактамным антибиотикам в диско-диффузионном тесте.
Однако использование метода стандартных разведений позволило выяснить, что устойчивость к ампициллину у штамма среднеазиатского подвида F. tularemis 120Apur значительно различается в зависимости от его концентрации: когда концентрация микробной взвеси снижалась до 106 м.к./мл, штамм F. tularensis 120Apur демонстрировал значительное повышение чувствительности к ампициллину по сравнению с референсным штаммом F. tularensis subsp. ^ШШка 15 НИИЭГ. Используя десятикратные разведения микробной суспензии в присутствии антибиотика, мы определили минимальную бактерицидную концентрацию (МБК) ампициллина для разных концентраций бактериальных клеток F. tularensis 120Арш" (табл. 2).
Для штамма 15 голарктического подвида МБК ампициллина составляла 2048 мкг/мл и не менялась при снижении концентрации до 105 м.к./ мл. Для штамма 120Арш" МБК ампициллина при снижении концентрации бактериальных клеток до 106 м.к./мл снизилась в 256 раз.
В последующих экспериментах мы установили, что штамм 120Арш" при концентрации микробных клеток ниже 106 м.к./мл приобретает чувствительность к антибиотикам группы пени-циллинов, но не других групп в-лактамов (цефа-лоспоринов и карбопенемов) (табл. 3).
Истощение пула пенициллина в жидкой питательной среде в присутствии бактериальных клеток штамма 15 НИИЭГ голарктического подвида и штамма 120Apur среднеазиатского подвида
Для сравнения способности бактериальных клеток F. tularensis разных подвидов к гидролизу пенициллина были поставлены эксперименты по истощению пенициллина в жидкой питательной среде в результате культивирования в ней клеток F. tularensis subsp. ЫШШка и mediasiatica (табл. 4).
Четырехчасовое культивирование штамма F. tularensis 15 НИИЭГ в среде с пенициллином в течение 4 ч снижало концентрацию антибиотика в 250 раз, штамма 120Арш" — в 2 раза. Однако последующее 24-часовое культивирование штамма 120Арш" subsp. mediasiatica приводило к снижению концентрации антибиотика в 125 раз (табл. 4). Таким образом, бактериальные клетки F. tularensis 120 Арш в течение суток утилизировали примерно столько же пенициллина, сколько клетки F. tularensis 15 НИИЭГ subsp. Ыааса гидролизовали за 4 ч культивирования.
Таблица 1. Чувствительность штаммов F. tularensis разных подвидов к антибиотикам группы бета-лактамов*
Table 1. Susceptibility of F. tularensis subspecies to antibiotics of the beta-lactam group*
Пенициллины Penicillins Карбапенемы Carbapenems Цефалоспорины Cephalosporins
Подвид Subspecies Штаммы Strains Ампициллин Ampicillin Амоксициллин Amoxicillin Меропенем Meropenem Имипенем Imipenem Эртапенем Ertapenem Цефтазидим Ceftazidime Цефотаксим Cefotaxime Цефуроксим Cefuroxime Цефазолин Cephazolin Цефтриаксон Ceftriaxone Цефепим Cefepime Цефокситин Cefoxytin
tularensis Schu 0** 0 0 0 0 0 0 0 0. 0 21 0
503 0 0 0 0 11 0 0 0 0 0 0 0
holarctica А-79 0 0 0 38 0 0 0 0 0 0 0 0
Х-3 0 0 11 26 28 37 0 0 0 0 0 11
А-1045 0 0 0 0 0 0 0 26 0 0 0 0
А-823 13 0 0 24 25 0 32 0 0 0 0 20
А-554 0 0 0 18 11 0 30 0 0 0 0 30
mediasiatica 678 0 0 0 16 0 0 0 0 48 0 0 0
120 0 0 0 18 15 0 0 0 0 0 0 0
120Apur 0 11 0 25 18 0 0 0 0 10 0 13
Примечания. *Диаметр (мм) зоны ингибирования микробного роста F. tularensis в диско-диффузионном тесте (включая диаметр диска — 6 мм). "Значение 0 мм обозначает отсутствие зоны ингибирования роста микроорганизма вокруг диска.
Notes. *The growth inhibition zone (mm) in the disc-diffusion test (including the diameter of the disc — 6 mm). **The value of 0 mm indicates that there is no zone of inhibition of microorganism growth around the disk.
Динамика р-лактамазной активности штаммов Р. 1и!агепэ13 120Дриг subsp. тед'1аз'1аИса и 15 НИИЭГ subsp. Ьо!агсИса
Динамику Р-лактамазной активности двух исследуемых штаммов В. Ш1агет1$ — 120Дрыг биЪбр шей1а$1аИеа и 15 НИИЭГ биЪбр Но1агсИеа — определяли в течение суток в нитроцефиновом тесте. Динамику оценивали как в живых микробных культурах В. Шагет1з, так и в соответствующих осветленных ультразвуковых лизатах (УЗЛ). В качестве отрицательного контроля использовали безлактамазный вариант штамма 15 НИИЭГ — 15Д6Ы23.
В качестве одной из кинетических характеристик Р-лактамазной активности использовали оптическую плотность (ОВ) раствора, как показатель общего количества продукта гидролиза нитроцефина (рис. 1).
Как видно из рис. 1, Р-лактамазная активность регистрировалась как у штамма голарктического подвида 15 НИИЭГ, так и, в меньшей степени, у штамма среднеазиатского подвида 120Дрыг. При этом характер кривых накопления продукта расщепления нитроцефина двух сравниваемых штаммов различен. В пробах, содержащих В. Шагет1з голарктического подвида, отмечается выраженный пик накопления продукта расщепления нитроцефина через 4—6 ч культивирования, в то время как для штамма среднеазиатского подвида характерно медленное нарастание количества продукта гидролиза нитроцефина в течение всего периода наблюдения (24 ч).
В качестве косвенного показателя скорости расщепления нитроцефина мы в течение суток определяли скорость изменения оптической плотности реакционной смеси в единицу времени (AOD) (рис. 2).
Из диаграммы на рисунке 2 видно, что основная часть нитроцефина расщепляется клетками F. tularensis 15 НИИЭГ подвида holarctica в течение первого часа реакции. В осветленных лизатах изменение оптической плотности реакционной смеси в первый час реакции достигало
Таблица 2. Чувствительность штаммов F. tularensis 15 НИИЭГ и 120Apur к ампициллину
Table 2. The susceptibility of F. tularensis 15 NIIEG and 120Apur strains to ampicillin
Концентрация бактериальных клеток/мл Bacterial cells concentration per ml МБК, мкг/мл (диапазон)* MBC, цд ml (range)*
15НИИЭГ 15 NIIEG 120Apur
108 > 2048 > 2048
107 > 2048 > 2048
106 > 2048 8
105 256-1024 2
104 32 0,125
103 2 0,125
Примечание.''Представлены значения МБК в двух независимых экспериментах, каждая проба в каждом эксперименте была поставлена в трех повторах.
Note. 'There indicated results of MBC measurement in two independent experiments, in each of which each sample was placed in three replicates.
Таблица 3. Чувствительность штаммов F. tularensis 15 НИИЭГ и 120Лpur к р-лактамам*
Table 3. The susceptibility of F. tularensis 15 NIIEG and 120Лриг to р-lactams*
Примечания. *Величина МБК определена для микробной взвеси с концентрацией 105 м.к./мл. "Представлены значения МБК в двух независимых экспериментах, каждая проба в каждом эксперименте была поставлена в трех повторах.
Notes. *Minimal bactericidal concentration (MBC) was determined for bacterial suspension 105 CFU/ml. **There indicated results of MBC measurement in two independent experiments, in each of which each sample was placed in three replicates.
1,3 единиц. Уже на второй час скорость расщепления нитроцефина падала до 0,2—0,3 единиц оптической плотности за час, а через 6 ч снижалась до уровня фоновых колебаний оптической плотности контрольной среды.
Скорость расщепления нитроцефина клетками штамма F. tularensis 120Лриг среднеазиатского подвида была намного ниже — в осветленных
Таблица 4. Реципрокные титры пенициллина в жидкой питательной среде, определенные после культивирования в ней F. tularensis 15 НИИЭГ и 120Лpur*
Table 4. Reciprocal penicillin titres in a liquid nutrient medium determined after growing of the F. tularensis strains 15 NIIEG and 120Лриг*
Примечание. *Титр определяли методом стандартных разведений на культуре чувствительного к пенициллину штамма F. tularensis 15ЛЫа123. Указано последнее разведение, при котором отсутствовал видимый рост соответствующего штамма при концентрации микроорганизмов 105 КОЕ/мл. Истощение пенициллина проводили путем 4- или 24-часового культивирования культур F. tularensis 15 НИИЭГ и 120Лригв среде с пенициллином 400 мкг/мл.
Note. *The titers were determined using penicillin-sensitive F. tularensis strain 15AWa123 in standard tenfold dilutions. The last dilution in which there was no visible growth of 105 CFU/ml indicated in the table. Penicillin depletion was performed by cultivation of F. tularensis 15 NIIEG and 120Лpur during 4 or 24 hours in the presence of penicillin (400 pg/ml).
УЗД изменение оптической плотности за час составляло от 0,17 до 0,11 единиц, но при этом скорость расщепления субстрата держалась выше фоновых изменений оптической плотности среды в течение 16 ч.
Следует отметить, что осветленные клеточные лизаты демонстрировали более высокие значения оптической плотности и большую скорость расщепления нитроцефина по сравнению с суспензиями живых микробных клеток.
Мы определили максимальную скорость гидролиза субстрата, обеспечиваемого ß-лактама-зами в составе УЗЛ штаммов F. tularensis, и удельную активность УЗЛ штаммов в расчете на мг общего белка. Для штамма F. tularensis голакти-ческого подвида 15 НИИЭГ эти показатели составили 0,2275 АА/мин и 2,8261 АА/мин, а для штамма среднеазиатского подвида 120Apur — 0,0007 АА/мин и 0,0086 АА/мин соответственно. Таким образом, относительная скорость реакции гидролиза ß-лактамов для штамма 120A^ur составила 0,3% от скорости расщепления нитроцефина клетками F. tularensis 15 НИИЭГ. Полученные данные свидетельствуют о том, что активность фермента лактамазы в штамме среднеазиатского подвида 120Apur снижена не менее чем на два порядка по сравнению со штаммом голактического подвида 15 НИИЭГ.
Поиск генетических маркеров гена blaB F. tularensis, специфичных для подвида mediasiatica
Для изучения вариабельности генетических детерминант, обуславливающих ß-лактамазную активность F. tularensis мы провели in silico анализ гена blaB (FTL_0879), кодирующего серино-вую лактамазу BlaB (Bla2, FTU-1, YP_513599.1) (рис. 3).
Подвидоспецифические отличия F. tularensis среднеазиатского подвида ограничивались единичной нуклеотидной заменой гуанина на аде-нин (рис. 3А), и, как следствие, одной аминокислотой заменой в 97 положении — глицина на аргинин (рис. 3Б).
Подвидоспецифичность этой замены мы проверили на 17 штаммах среднеазиатского подвида, имеющихся в нашей коллекции. Для этого мы воспользовались методом аллель-специфической (AS) ПЦР. Аллель-специфическая ПЦР осуществляется за счет двух AS-прямых праймеров, которые конкурируют за связывание с матрицей, и одного общего обратного праймера. При этом 3'-концевой нуклеотид каждого из прямых праймеров комплементарен одному из двух аллельных состояний изучаемого гена. При таком условии идеально совпадающий с матрицей праймер вытесняет из реакции несовпадающий из-за большей эффективности реакции.
Мы разработали пару AS-праймеров, которая позволила нам успешно определять методом AS-PCR нуклеотидную замену в гене
Антибиотик Antibiotic МБК, мг/л (диапазон)** MBC, mg/L (range)
15НИИЭГ 120Apur
Ампициллин/AmpicilNn 256-1024 2
Дмоксициллин/Amoxicillin 512 4-8
Пенициллин/Penicillin 32-64 4
Цефазолин/Cefazolin 64-128 256
Цефтриаксон/Ceftriaxon 2-4 2
Имипенем/Imipenem 32 16
Меропенем/Meropenem 4 8-64
Штаммы F. tularensis F. tularensis strains Время культивирования с пенициллином,ч Growing time with penicillin, h Реципрокные титры Reciprocal titres
15НИИЭГ 4 16
120Apur 4 1024
120Apur 24 32
Нет No 0 (control of penicillin) 2048
А (А)
2,00 1,80 1,60
0,00 J-
0 2 4 6 8 10 12 14 16 18 20 22 24
Время, ч/Time, h
- 15 НИИЭГ/NIIEG
- 15ДЙ/Э123
Б (В)
0 2 4 6 8 10 12 14 16 18 20 22 24
Время, ч/Time, h
-- 120Дриг
• • • • нитроцефин/nitrocefin
Рисунок 1. Динамика расщепления нитроцефина клетками F. tularensis
Figure 1. Dynamics of nitrosefin hydrolysis by F. tularensis cells
А) Живые культуры F. tularensis. Б) Осветленные УЗЛ живых культур F. tularensis. Оптическая плотность раствора отражает накопление продукта распада нитроцефина.
A) F. tularensis live cultures. B) Live cultures of F. tularensis clarified by ultrasound. The optical density (OD) of the solution represents the accumulation of the decomposition product of nitrocellin.
blaB, специфичную для среднеазиатского подвида F. tularensis: FA (forward ancestor) — ATCAAGATGATATTGGTAAACGCA; FD (forward derived) — cggggcggggcggggcgggcATCAAG ATGATATTGGTAAACCCG; R (reverse) — CAT CAGCAGTAAT TATAGTATCGTTATCAC C. Подчеркиванием обозначены аллель-специфичные нуклеотиды, жирным шрифтом — дестабилизирующие замены, строчными буквами — GC-последовательность, предназначенная для идентификации продукта реакции. Праймер
FA является аллель-специфичным для подвида mediasiatica F. tularensis, праймер FD — для подвидов tularensis, holarctica и novicida. Специфичность реакции была повышена за счет включения в последовательность праймеров дополнительной точечной дестабилизирующей замены основания на некомплементарное в (—3) положении с З'-конца обоих форвардных праймеров. Такой методический подход, называемый анализом амплификации с несоответствием — mismatch amplification mutation assay (Melt-MAMA), уве-
6 8 ю
Время, ч/Time, h
12 14 16 18 20
15 НИИЭГ/NIIEG 15Ab/a123
1,4
1,3 1,2 1,1 1
0,9 0,8 0,7 0,6 0,5 0,4 0,3 0,2 0,1 0
8 10 12 14 Время, ч/Time, h
-- 120Дpur
• • • • нитроцефин/nitrocefin
Рисунок 2. Изменение оптической плотности реакционной смеси в единицу времени (AOD)
Figure 2. Change in the optical density of the reaction mixture per unit time (AOD) А) Живые культуры F. tularensis. Б) Осветленные УЗЛ живых культур F. tularensis. A) Live cultures F. tularensis. B) Live cultures of F. tularensis clarified by ultrasound.
hVrl 201 290
LVS AGTTGGTGCAATTTTAGATTATGATATGCATAATCAAGGCTTCTTAGATAAAAAAATTCCAATAAATCAAGATGATATTGGTAAACTCGG OSU18 AGTTGGTGCAATTTTAGATTATGATATGCATAATCAAGGCTTCTTAGATAAAAAAATTCCAATAAATCAAGATGATATTGGTAAACTCGG SCHUS4 AGTTGGTGCAATTTTAGATTATGATATGCATAATCAAGGCTTCTTAGATAAAAAAATTCCAATAAATCAAGATGATATTGGTAAACTCGG WY96_3418 AGTTGGTGCAATTTTAGATTATGATATGCATAATCAAGGCTTCTTAGATAAAAAAATTCCAATAAATCAAGATGATATTGGTAAACTCGG FSC14 7 AGTTGGTGCAATTTTAGATTATGATATGCATAATCAAGGCTTCTTAGATAAAAAAATTCCAATAAATCAAGATGATATTGGTAAACTCAG U112 AGTTGGTGCAATTTTAGATTATGATATGCATAATCAAGGCTTCTTAGATAAAAAAATTCCGATAACTCAAGATGATATTGGTAAACTCGG
1 ^28 100
U 112 LENKYDGKIGIYTLNTDDKTNIKYNESYHFPICSVFKFLLVGAILDYDMHNQGFLDKKIPITQDDIGKLGYAP
OSU 18 LENKYDGKIGIYTLNTDDKTNIKYNESYHFPICSVFKFLLVGAILDYDMHNQGFLDKKIPINQDDIGKLGYAP
LVS LENKYDGKIGIYTLNTDDKTNIKYNESYHFPICSVFKFLLVGAILDYDMHNQGFLDKKIPINQDDIGKLGYAP
SCHU S4 LENKYDGKIGIYTLNTDDKTNIKYNESYHFPICSVFKFLLVGAILDYDMHNQGFLDKKIPINQDDIGKLGYAP
WY 9 6_3 418 LENKYDGKIGIYTLNTDDKTNIKYNESYHFPICSVFKFLLVGAILDYDMHNQGFLDKKIPINQDDIGKLGYAP
FSC147 LENKYDGKIGIYTLNTDDKTNIKYNESYHFPICSVFKFLLVGAILDYDMHNQGFLDKKIPINQDDIGKLRYAP
Рисунок 3. Множественное выравнивание нуклеотидных (А) и аминокислотных (Б) последовательностей p-лактамазы Bla2
Figure 3. Multiple alignment of nucleotide (A) and amino acid (B) sequences of p-lactamase Bla2 Штаммы F. tularensis подвидов: mediasiatica — FSC 147; tularensis — Schu S4, WY96-3418; holarctica — LVS, Osu 18; novicida — U 112.
Strains F. tularensis subspecies: mediasiatica — FSC 147; tularensis — Schu S4, WY96-3418; holarctica — LVS, Osu 18; novicida — U 112.
личивает преимущественную амплификацию фрагмента ДНК с того из прямых праймеров, чей З'-концевой нуклеотид комплементарен детектируемому аллельному состоянию матрицы [9].
Мечение одного из ЛБ-праймеров (РВ) ОС-последовательностью позволило нам увеличить размер получаемого с него ампликона, что, в свою очередь, дало возможность дифференцировать продукты ЛБ-ПЦР в реальном времени с помощью анализа кривых их плавления.
На рисунке 4 представлены кривые плавления продуктов амплификации ДНК 8 штаммов туляремийного микроба, 3 из которых принадлежат к подвидам Но1ага1еа (15 НИИЭГ), tыlагensis (БСНи Б4) и novicida (и 112), а пять — к подвиду шediasiatica.
На диаграмме кривых плавления видно, что амплификаты делятся на две группы, одна из которых имеет имеют кривую плавления с максимумом 80°С, другая — 82°С. Больший температурный максимум кривой плавления продукта амплификации соответствует большему размеру ампликона, то есть ампликону, меченному ОС-последовательностью. Соответственно, ампли-фикаты, имеющие максимум 80°С, получены с праймера РЛ, специфичного для аллеля А/Т. В свою очередь, амплификаты, имеющие максимум 82°С, получены с праймера РВ, специфичного для аллеля О/С. К первой группе принадлежат все пять штаммов В. tыlaгensis биЪбр. шediasiatica, ко второй — штаммы всех остальных подвидов. Аналогичные результаты были получены для всех 17-ти штаммов В. tulaгensis биЪбр. шediasiatica, использованных в данном исследовании.
Обсуждение
Определение кинетических характеристик Р-лактамазной активности В. tыlaгensis по накоплению продукта расщепления нитроцефина
и скорости его гидролиза показало, что штамм В. tыlaгensis 120Дрыг среднеазиатского подвида, вопреки современным представлениям специалистов по туляремии, обладает Р-лактамазной активностью, но при этом скорость гидролиза нитроцефина клетками этого штамма на порядки снижена по сравнению со штаммом В. tыlaгensis голарктического подвида 15 НИИЭГ. Об этом же свидетельствуют результаты теста по истощению пенициллина в питательной среде — культуры как штамма голарктического подвида, так и среднеазиатского подвида значительно снижали концентрацию пенициллина в среде — в 250 и 125 раз соответственно, однако в первом случае это происходило в течение 4 ч, во втором — в течение суток.
С результатами кинетических исследований согласуется тот факт, что снижение концентрации микробных клеток В. tulaгensis биЪбр. шеё1а81аИса 120Дрыг в питательной среде с антибиотиками группы пенициллинов приводит к появлению у них антибиотикочувствительнос-ти. По всей видимости, в условиях сниженной эффективности работы Р-лактамаз удельная концентрация антибиотика на одну бактериальную клетку приобретает решающее значение. Именно поэтому при определении чувствительности к Р-лактамным антибиотикам диско-диффузионным методом при использовании рекомендованных высоких концентраций микробных суспензий (108—109 м.к./мл) различий в уровнях резистентности штаммов В. tulaгensis биЪбр. шediasiatica от штаммов других подвидов не было выявлено. Полученные нами результаты согласуются с недавними исследованиями М.В Цимбалистова и Н.В. Павлович [6]. Мы показали, что снижение концентрации бактериальных клеток В. tulaгensis подвида шediasiatiсa до 105 м.к./мл и соотвествующее увеличение нагрузки молекул антибиотика на клеточную стен-
Melt Peak
70 75 80 85 90
Temperature, Celsius
Рисунок 4. Кривые плавления, полученные в результате аллель-специфической ПЦР с ДНК-матрицей штаммов F. tularensis разных подвидов, с использованием пары конкурирующих праймеров FA и FD
Figure 4. Melting curves obtained as a result of allele-specific PCR with the DNA matrix of F. tularensis strains of different subspecies, using a pair of competing primers FA and FD Примечание. Приведены данные одного репрезентативного эксперимента. Note. The data of one representative experiment are presented.
ку одной микробной клетки приводит к декомпенсации ее ß-лактамазного механизма и реализации бактерицидного эффекта антибиотика.
Следует отметить, что диагностическая ценность цветного нитроцефинового теста при под-видовой диагностике туляремии остается несомненной, позволяя дифференцировать штаммы F. tularensis subsp mediasiatica в первые часы исследования.
Исходя из того, что ß-лактамазная активность осветленных ультразвуковых лизатов культур F. tularensis была выше таковой живых культур, можно предположить, что активная ß-лактамаза F. tularensis расположена в пери-плазматическом пространстве, как у большинства грамотрицательных бактерий, и при лизисе высвобождается в окружающую среду. Данное предположение требует дальнейшего изучения путем выделения фермента непосредственно из периплазматического пространства и прямой оценкой его активности.
С нашей точки зрения, выявленная нами in silico единичная аминокислотная замена Gly на Arg в 97 положении белка бета-лактамазы BlaB
Список литературы/References
в штамме F. tularensis FSC147 subsp. mediasiatica является вероятной причиной снижения активности этого фермента, обусловливая возможные конформационные изменения, приводящие либо к снижению сродства фермента к субстрату, либо к увеличению времени существования фермент-субстратного комплекса. Для окончательного ответа на этот вопрос требуются дальнейшие исследования с использованием методов генной инженерии.
Разработанная нами аллель-специфическая ПЦР позволила показать на панели из 17 штаммов F. tularensis subsp. mediasiatica, что замена G/A в 290 положении гена сериновой лактамазы blaB является специфичной для среднеазиатского подвида туляремийного микроба и может быть использована в качестве мишени для его ПЦР-идентификации.
Данная работа финансируется отраслевой научно-исследовательской программой Роспотреб-надзора «Проблемно-ориентированные научные исследования в области эпидемиологического надзора за инфекционными и паразитарными болезнями» (2016-2020 гг).
1. Лапин А.А., Павлов В.М., Мокриевич А.Н., Домотенко Л.В., Храмов М.В. Простая жидкая питательная среда для молекулярно-генетических исследований Francisella tularensis // Проблемы особо опасных инфекций. 2009. № 4 (102). С. 66-67. [Lapin A.A., Pavlov V.M., Mokrievich A.N., Domotenko L.V., Khramov M.V. Simple liquid nutrient medium for molecular genetic investigations of Francisella tularensis. Problemy osobo opasnykh infektsiy = Problems of Particularly Dangerous Infections, 2009, no. 4 (102), pp. 66- 67. (In Russ.)]
2. Мокриевич А.Н., Тимофеев В.С., Кудрявцева Т.Ю., Уланова Г.И., Карбышева С.Б., Миронова Р.И., Вахрамеева Г.М., Губарева Т.И., Павлов В.М., Дятлов И. А. Выделение среднеазиатского подвида туляремийного микроба на территории Алтайского края // Проблемы особо опасных инфекций. 2013. № 1. С. 66-69. [Mokrievich A.N., Timofeev V.S., Kudryavtseva T.Yu., Ulanova G.I., Karbysheva S.B., Mironova R.I., Vakhrameeva G.M., Gubareva T.I., Pavlov V.M., Dyatlov I.A. Isolation of Central Asian subspecies of tularemia agent in the Altai territory. Problemy osobo opasnykh infektsiy = Problems ofParticularly Dangerous Infections, 2013, no. 1, pp. 66-69. doi: 10.21055/0370-1069-2013-1-66-69(In Russ.)]
3. Олсуфьев Н.Г. Таксономия, микробиология и лабораторная диагностика возбудителя туляремии. М.: Медицина, 1975. 192 с. [Olsufiev N.G. Taksonomiya, mikrobiologiya i laboratornaya diagnostika vozbuditelya tulyaremii [Taxonomy, microbiology and laboratory diagnostics of the causative agent of tularemia]. Moscow: Medicine, 1975, 192p.]
4. Павлович Н.В., Мишанькин Б.Н. Фосфатазная и пенициллиназная активности как стабильные признаки для дифференциации расовой принадлежности Francisella tularensis // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 1992. № 11—12. С. 5—7. [Pavlovich N.V., Mishan'kin B.N. Phosphatase and penicillinase activities as stable traits for the differentiation of the racial classification of Francisella tularensis. Zhurnal mikrobiologii, epidemiologii i immunobio-logii = Journal of Microbiology, Epidemiology andImmunobiology, 1992, no. 11—12, pp. 5-7. (In Russ.)]
5. Цимбалистова М.В., Павлович М.В. Особенности формирования устойчивости Francisella tularensis subsp. mediasiatica к бета-лактамным антибиотикам // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2014. № 1. С. 3—8. [Tsimbalistova M.V., Pavlovich M.V. Features of the formation of resistance Francisella tularensis subsp. mediasiatica to beta-lactam antibiotics. Zhurnal mikrobiologii, epidemiologii i immunobiologii = Journal of Microbiology, Epidemiology and Immunobiology, 2014, no. 1, pp. 3-8. (In Russ.)]
6. Ambler R.P. The structure of P-lactamases. Philos. Trans. R. Soc. Lond. B. Biol. Sci., 1980, vol. 289, iss. 1036, pp. 321-331. doi: 10.1098/rstb.1980.0049
7. Antunes N.T., Frase H., Tothet M., Vakulenko S.B. The class A P-lactamase FTU-1 is native to Francisella tularensis. Antimicrob. Agents Chemother., 2012, vol. 56, no. 2, pp. 666-671. doi: 10.1128/AAC.05305-11
8. Bina X.R., Wang C., Miller M.A., Bina J.E. The Bla2 P-lactamase from the live-vaccine strain of Francisella tularensis encodes a functional protein that is only active against penicillin-class P-lactam antibiotics. Arch. Microbiol., 2006, vol. 186, no. 3, pp. 219-228. doi: 10.1007/s00203-006-0140-6
9. Birdsell D.N., Pearson T., Price E.P., Hornstra H.M., Nera R.D., Stone N., Gruendike J., Kaufman E.L., Pettus A.H., Hurbon A.N., Buchhagen J.L., Harms N.J., Chanturia G., Gyuranecz M., Wagner D.M., Keim P.S. Melt analysis of mismatch amplification mutation assays (Melt-MAMA): a functional study of a cost-effective SNP genotyping assay in bacterial models. PLoS ONE, 2012, vol. 7, iss. 3:e32866. doi: 10.1371/journal.pone.0032866
10. Bou G., Oliver A., Ojeda M., Monzon C., Martinez-Beltran J. Molecular characterization of FOX-4, a new AmpC-Type plas-mid-mediated P-lactamase from an Escherichia coli strain isolated in Spain. Antimicrob. Agents Chemother., 2000, vol. 44, no. 9, pp. 2549-2553. doi:10.1128/AAC.44.9.2549-2553.2000
11. Champion M.D., Zeng Q., Nix E.B., Nano F.E., Keim P., Kodira C.D., Borowsky M., Young S., Koehrsen M., Engels R., Pearson M., Howarth C., Larson L., White J., Alvarado L., Forsman M., Bearden S.W., Sjostedt A., Titball R., Michell S.L., Birren B., Galagan J. Comparative genomic characterization of Francisella tularensis strains belonging to low and high virulence subspecies. PLoS Pathog., 2009, vol. 5, no. 5:e1000459. doi: 10.1371/journal.ppat.1000459
12. Grela E., Z^bek A., Grabowiecka A. Interferences in the optimization of the MTT assay for viability estimation of Proteus mirabilis. Avicenna J. Med. Biotechnol., 2015, vol. 7, no. 4, pp. 159-167.
13. Kugeler K.J., Mead P.S., Janusz A.M., Staples J.E., Kubota K.A., Chalcraft L.G., Petersen J.M. Molecular epidemiology ofFranci-sella tularensis in the United States. Clin. Infect. Dis, 2009, vol. 48, iss. 7, pp. 863-870. doi: 10.1086/597261
14. LoVullo E.D., Sherrill L.A., Perez L.L., Pavelka M.S. Genetic tools for highly pathogenic Francisella tularensis subsp. tularensis. Microbiology, 2006. vol. 152, no. 11, pp. 3425-3435. doi: 10.1099/mic.0.29121-0
15. Montgomery K., Raymundo J.L., Drew W.L. Chromogenic cephalosporin spot test to detect beta-lactamase in clinically significant bacteria. J. Clin. Microbiol., 1979, vol. 92, no. 2, pp. 205-207.
16. Morner T. The ecology of tularemia. Rev. Sci. Tech., 1992, vol. 11, no. 4, pp. 1123-1130.
17. O'Callaghan C.H., Morris A., Kirby S.M., Shingler A.H. Novel method for detection of P-lactamase by using a chromogenic cephalosporin substrate. Antimicrob. Agents Chemother., 1972, vol. 1, pp. 283-288. doi: 10.1128/AAC.1.4.283
18. Olsufjev N.G., Meshcheryakova I.S. Subspecific taxonomy of Francisella tularensis McCoy and Chapin 1912. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 1983, vol. 33, no. 4, pp. 872-874. doi: 10.1099/00207713-33-4-872
Авторы:
Бахтеева И.В., к.м.н., старший научный сотрудник лаборатории микробиологии сибирской язвы ГНЦ прикладной микробиологии и биотехнологии, п. Оболенск, Россия; Кравченко Т.Б., к.б.н., старший научный сотрудник лаборатории микробиологии сибирской язвы ГНЦ прикладной микробиологии и биотехнологии, п. Оболенск, Россия; Рябко А.К., младший научный сотрудник лаборатории молекулярной биологии ГНЦ прикладной микробиологии и биотехнологии, п. Оболенск, Россия; Титарева Г.М., к.м.н., старший научный сотрудник лаборатории микробиологии сибирской язвы ГНЦ прикладной микробиологии и биотехнологии, п. Оболенск, Россия; Лев И.О., к.б.н., младший научный сотрудник отдела биотехнологии ГНЦ прикладной микробиологии и биотехнологии, п. Оболенск, Россия;
Мокриевич А.Н., д.м.н., зав. отделом особо опасных инфекции ГНЦ прикладной микробиологии и биотехнологии, п. Оболенск, Россия;
Тимофеев В.С., к.б.н., зав. лабораторией микробиологии сибирской язвы ГНЦ прикладной микробиологии и биотехнологии, п. Оболенск, Россия.
Поступила в редакцию 11.07.2017 Отправлена на доработку 23.01.2018 Принята к печати 27.02.2017
Authors:
Bakhteeva I.V., PhD (Medicine), Senior Researcher, Laboratory of Microbiology of Anthrax, State Research Center for Applied Microbiology and Biotechnology, Obolensk, Russian Federation; Kravchenko T.B., PhD (Biology), Senior Researcher, Laboratory of Microbiology of Anthrax, State Research Center for Applied Microbiology and Biotechnology, Obolensk, Russian Federation; Ryabko A.K., Junior Researcher, Laboratory of Molecular Biology, State Research Center for Applied Microbiology and Biotechnology, Obolensk, Russian Federation;
Titareva G.M., PhD (Medicine), Senior Researcher, Laboratory of Microbiology of Anthrax, State Research Center for Applied Microbiology and Biotechnology, Obolensk, Russian Federation; Lev I.O., PhD (Biology), Junior Researcher, Department of Biotechnology, State Research Center for Applied Microbiology and Biotechnology, Obolensk, Russian Federation; Mokrievich A.N., PhD, MD (Medicine), Head of Department of Especially Dangerous Infection, State Research Center for Applied Microbiology and Biotechnology, Obolensk, Russian Federation; Timofeev V.S., PhD (Biology), Head of the Laboratory of Microbiology of Anthrax, State Research Center for Applied Microbiology and Biotechnology, Obolensk, Russian Federation.
Received 11.07.2017 Revision received 23.01.2018 Accepted 27.02.2017
