CC BY
42
medical news of north caucasus
2019. Vоl. 14. Iss. 4
34. Weimar W., Zuidema W., de Klerk M., Haase-Kromwi-jk B., Jzermans J. Altruistic kidney donation. Lancet. 2006;368(9540):987.
https://doi.org/l0.1016/SO140-6736(06)69407-5
35. Alexander S. I., Clayton P. A., Chadban S. J. Organ Transplantation in Australia. Transplantation. 2017;101(5):891-892. https://doi.org/l0.1097/TP.0000000000001621
36. Roth A. E. Who Gets What and Why: The New Economics of Matchmaking and Market Design. Houghton Mifflin Harcourt, 2015.
37. Wall A. E., Veale J. L., Melcher M. L. Advanced Donation Programs and Deceased Donor-Initiated Chains-2 Innovations in Kidney Paired Donation. Transplantation. 2017;101(12):2818-2824. https://doi.org/10.1097/TP.0000000000001838
38. Toews M., Giancaspro M., Richards B., Ferrari P. Kidney Paired Donation and the «Valuable Consideration» Problem: The Experiences of Australia, Canada, and the United States. Transplantation. 2017;101(9):1996-2002. https://doi.org/10.1097/TP.0000000000001778
39. Kennedy C., Counihan A., Magee C. Transplantation in Ireland. Transplantation. 2017;101(1):1-4. https://doi.org/10.1097/TP.0000000000001479
Сведения об авторах:
Абаева Ольга Петровна, доктор медицинских наук, доцент, профессор кафедры социологии медицины, экономики здравоохранения и медицинского страхования; тел.: 89109925507; e-mail: abaevaop@inbox.ru
Романов Сергей Владимирович, кандидат медицинских наук, директор Приволжского окружного медицинского центра; тел.: (8314)218282; e-mail: info@pomc.ru
© Ж. В. Дайронас, В. В. Верниковский, 2019 УДК 615.322:582.628.2
DOI - https://doi.org/10.14300/mnnc.2019.14177 ISSN - 2073-8137
основные фармакологические свойства извлечений из сырья рода JUGLANS
Ж. В. Дайронас, В. В. Верниковский
Пятигорский медико-фармацевтический институт - филиал Волгоградского государственного медицинского университета, Российская Федерация
the main pharmacological properties of extraction from raw material JUGLANS
Daironas J. V., Vernikovsky V. V.
Pyatigorsk Medical and Pharmaceutical Institute - a branch of Volgograd State Medical University, Russian Federation
Цель работы - проанализировать и систематизировать современные сведения по изучению фармакологической активности извлечений из лекарственного растительного сырья видов рода Juglans (семейство Juglandaceae). Информационный поиск проводили в базах данных eLIBRARY, PubMed и Google Академия. Основное внимание исследователей привлекает не только подтверждение уже известных фармакологических эффектов, но изучение биохимических особенностей механизма действия различных групп биологически активных соединений, содержащихся в извлечениях из сырья видов рода Juglans.
Ключевые слова: орех, Juglans, фармакологические свойства
The aim of the work is to analyze and systematize the modern information on the study of the pharmacological activity of extracts from medicinal plant raw materials of the genus Juglans (family Juglandaceae). Information search was conducted in the databases eLIBRARY, PubMed and Google Academy. The main attention of researchers is attracted not only by confirmation of already known pharmacological effects, but also by the study of biochemical features of the mechanism of action of various groups of biologically active compounds contained in extracts from the raw material of species of the genus Juglans.
Keywords: Juglans, pharmacological effects
40. Jochmans I., van Rosmalen M., Pirenne J., Samuel U. Adult Liver Allocation in Eurotransplant. Transplantation. 2017;101(7):1542-1550. https://doi.org/10.1097/TP.0000000000001631
41. Detry O., Van Deynse D., Van Vlierberghe H., Pirenne J. Organ Procurement and Transplantation in Belgium. Transplantation. 2017;101(9):1953-1955. https://doi.org/l0.1097/TP.0000000000001866
42. Fortin M. C., Buchman D., Wright L., Chandler J., Dela-ney S. [et al.]. Public Solicitation of Anonymous Organ Donors: A Position Paper by the Canadian Society of Transplantation. Transplantation. 2017;101(1);17-20. https://doi.org/10.1097/TP.0000000000001514
43. Mandelbrot D. A., Pavlakis M. Living donor practices in the United States. Advances in Chronic Kidney Disease. 2012;19(4):212-219.
https://doi.org/10.1053Zj.ackd.2012.04.010
44. Reshetnikov A. V. Institutional analysis in sociology of medicine. In: Sociology of medicine. Textbook. Moscow: GEOTAR-Media, 2016.
Для цитирования: Дайронас Ж. В., Верниковский В. В. ОСНОВНЫЕ ФАРМАКОЛОГИЧЕСКИЕ СВОЙСТВА ИЗВЛЕЧЕНИЙ ИЗ СЫРЬЯ РОДА JUGLANS. Медицинский вестник Северного Кавказа. 2019;14(4):707-711. DOI - https://doi.org/10.14300/mnnc.2019.14177
For citation: Daironas J. V., Vernikovsky V. V. THE MAIN PHARMACOLOGICAL PROPERTIES OF EXTRACTION FROM RAW MATERIAL JUGLANS. Medical News of North Caucasus. 2019;14(4):707-711. DOI - https://doi.org/10.14300/mnnc.2019.14177 (In Russ.)
Богатый химический состав и, в первую очередь, разнообразие содержащихся феноль-ных соединений обусловливают широкий спектр фармакологической активности представителей рода Juglans (J. regia L., J. cinerea L., J. mandshurica Maxim., J. sinensis Dode, J. nigra L. и J. sigillata Dode), что привлекает внимание исследователей со всего мира, выражаемое в значительном количестве экспериментальных и обзорных статей, посвященных этим растениям. В ряде обзорных работ [1, 2, 3] спектр фармакологической активности орехов разделяется на следующие основные направления: антиокси-дантное, противоопухолевое, кардио-, нейро-, гепато- и нефропротекторное, противовоспалительное, антибактериальное и противогрибковое, антидиабетическое, гиполипидемическое, анти-гипертензивное действие, влияние на когнитивную функцию, использование при диабете и его осложнениях. Также освещаются вопросы токсичности, побочных эффектов и клинических испытаний.
В народной медицине различные части J. regia L. используются в качестве антидиарейных, антигель-минтных, антисептических и вяжущих средств [4].
Опыт народной медицины экспериментально изучается с позиций доказательности. Обнаружена антимикробная и противогрибковая активность экстрактов, полученных из листьев [5-11], коры [12-17] или околоплодника J. regia L. [18, 19].
V. Raja с соавт. (2017) установили, что противогрибковый эффект этанольного экстракта корней J. regia L. в отношении штаммов Candida реализуется путем повреждения клеточной стенки грибка и ин-гибирования секреции протеиназы и фосфолипа-зы [20]. Сухие экстракты зеленого околоплодника J. regia L., полученные экстракцией хлороформом с последующим выпариванием, также показали противогрибковую активность в отношении тестируемых объектов - патогенных грибов растений и пчел (Alternaria alternata (Fries) Keissler, Fusarium culmorum (Smith) Saccardo, Rhizoctonia solani Kuhn, Botrytis cinerea Persoon, Phytophthora infestans и Ascosphaera apis ATCC 13785). Результаты эксперимента подтвердили сведения о том, что юглон является основным действующим противогрибковым веществом в экстрактах околоплодника ореха грецкого. Однако при сравнении исследуемых экстрактов с модельными растворами чистого юглона активность первых в ряде случаев была выше, что может свидетельствовать о том, что юглон не является единственным химическим соединением, определяющим противогрибковую активность исследованных экстрактов. Установлено, что содержащиеся в экстрактах фенольные соединения влияют на противогрибковую активность юглона и могут ее потенцировать, несмотря на отсутствие собственной противогрибковой активности [21].
Антимикробное действие ореха грецкого обусловлено преимущественно его фенольными соединени-
ями [22]. S. Dolatabadia с соавт. (2018) обнаружили, что водный и метанольный экстракты листьев J. regia L. не только ингибировали рост Pseudomonas aeruginosa, но и препятствовали образованию микроорганизмом биопленки [23]. Этанольный экстракт незрелых плодов J. regia L. также проявлял антимикробную активность - угнетал адгезию и формирование биопленки Staphylococcus aureus [24].
Кроме того, экспериментально установлено противовирусное [25], антидиарейное [3] и гепатопро-тективное [26] действие извлечений из сырья видов рода Juglans. A. A. Kale с соавт. обнаружили анти-гельминтное действие экстрактов коры J. regia L. [27].
Результаты исследований экстрактов, полученных из листьев J. regia, показали также наличие антидиабетической активности [28, 29]. Исследования in vitro позволили установить высокую ингиби-рующую активность экстрактов из листьев J. regia L. по отношению к а-глюкозидазе и в меньшей степени - к а-амилазе. Эксперименты in vivo показали, что порошок листьев J. regia L., вводимый ежедневно в качестве пищевой добавки крысам со стрептозо-цин-индуцированным диабетом, способен снижать гипергликемию, гиперхолестеринемию и полиорганную недостаточность, обусловленные сахарным диабетом [30].
M. A. Ebrahimzadeh с соавт. в эксперименте in vitro на моделях гемолиза, вызванного воздействием водорода пероксида и кумола гидропероксида, установили, что метанольный экстракт цветков J. regia L. обладает антигемолитической активностью [31].
Многочисленные исследования показали анти-оксидантный потенциал сырья ореха грецкого, в том числе плодов и околоплодников [19, 32, 33], листьев [34], коры [11] или цветков [35]. Так, ги-дролизаты белков J. regia L., полученные с помощью панкретических трипсина и химотрипсина и микробной протеиназы K, показали высокую анти-оксидантную активность в отношении свободных радикалов 2,2'-анизо-бис-(3-этилбензтиазолин-6-сульфокислоты) (ABTS) и активных форм кислорода [36]. Пептиды J. sigilata Dode оказывали сильное нейропротективное действие при ухудшении обучения и памяти, воспалении и окислительном стрессе в модели болезни Альцгеймера у мышей, индуцированной пептидом AP25-35. Показано эффективное восстановление уровней антиоксидантных ферментов и медиаторов воспаления при применении пептидов грецкого ореха (400 или 800 мг/кг, per os). Полученные данные свидетельствовали о том, что пептиды из грецкого ореха могут оказывать защитное действие при болезни Альцгеймера, уменьшая воспалительные реакции и модулируя антиокси-дантную систему организма [37].
Многие работы посвящены изучению противоопухолевого действия соединений различной химической структуры, выделенных из плодов, коры, листьев и цветков видов рода Juglans. Так, R. Jah-anbani с соавт. впервые было изучено влияние бел-
medical news of north caucasus
2019. Vоl. 14. Iss. 4
ковых гидролизатов ореха на жизнеспособность клеточных линий рака молочной железы человека (MDA-MB231) и толстой кишки (HT-29). Для оценки жизнеспособности раковых клеток in vitro при обработке пептидными фракциями использовали анализ с 3-(4,5-диметилтиазолил)-2,5-дифенилтетразолия бромидом (MTT). Пептидные фракции показали инги-бирование роста клеток рака молочной железы и рака толстой кишки. При этом была установлена прямая корреляция между антиоксидантной и противоопухолевой активностью пептидных фракций грецкого ореха, что подтверждает их потенциальную терапевтическую ценность [36].
Из цветков J. regia L. выделен азоцикло-индол-(5,6,11,12-тетрагидропирроло[1' ,2' : 1,2] азепино[4,5-Ь]индол-3-карбальдегид), который in vitro показал значительное ингибирование роста раковых клеток линий HCT-116, HepG2, BGC-823, NCI-H1650 и A2780, причем IC50 составляли 2,87; 1,87; 2,28; 2,86 и 0,96 мкМ соответственно. При этом соединение обладало низкой цитотоксичностью по отношению к нормальным клеткам IEC-6, с выживаемостью 79,6 % при концентрации 10 мкМ [38].
Экстракты коры J. regia L. оказывали цитоток-сическое действие в отношении линий раковых клеток человека (толстой кишки, предстательной железы, молочной железы, кожи и легких), связываемое с содержанием в них юглона (5-гидрокси-1,4-нафтохинона) [39].
Выделенные из коры J. sinensis Dode соединения (8-гидрокси-2-метокси-1,4-нафтохинон и 5-гидрокси-2-метокси-1,4-нафтохинон) показали высокую цитотоксическую активность против шести линий рака человека: MCF7 (рак молочной железы), SNU423 (рак печени), SH-SY5Y (нейробластома), HeLa (рак шейки матки), HCT116 (колоректальный рак) и A549 (рак легких). Клетки рака молочной железы, толстой кишки и легких оказались более чувствительны к лечению с использованием 8-гидрокси-2-метокси-1,4-нафтохинона. Кроме того, оба соединения показали сильную цитотоксическую активность в отношении клеток рака молочной железы человека MCF7, HS578T и T47D, но не по отношению к нормальным клеткам MCF10A. Они также дозозависимо ингибировали образование колоний клеток MCF7, A549 и HCT116. Проточный цитометрический анализ показал, что процент апоптотических клеток значительно увеличивался в популяциях клеток MCF7 при лечении обоими соединениями. Механизм гибели клеток, вызванный исследуемыми соединениями, может быть связан с повышением активности проапоптотического белка Bax и подавлением антиапоптотического белка Bcl2, что указывает на индуцирование апоптоза клеток по ми-тохондриально-опосредованному пути [40].
Юглантрохинон C (1,5-дигидрокси-9,10-антра-хинон-3-карбоновая кислота), выделенный из стволовой коры J. mandshurica, индуцировал апоптоз клеток гепатоцеллюлярной карциномы (HCC) путем активации сигнального пути Akt/FOXO, ингибирова-ния экспрессии генов СОД2 и каталазы и увеличения внутриклеточных уровней активных форм кислорода [41].
Для лечения устойчивого к традиционным препаратам рака легких были предложены самоорганизующиеся наночастицы из амфифильного комплексного полимера, состоящего из поли(югланин-дитиодипропионовой кислоты)-Ь-полиэтиленгликоля в комплексе с малыми интерферирующими РНК про-
тив гена KRAS, с доксорубицином в качестве ядра. Проведенные исследования in vitro и in vivo показали, что наночастицы полиюгланина в сочетании с химиотерапией и малыми интерферирующими РНК имеют перспективы в лечении рака легких человека [42].
С целью получения перспективных соединений для терапии злокачественных глиом был исследован ряд синтетических производных юглона. В результате было установлено, что наибольшую активность проявил 2-(2,4-дигидроксифенил)-8-гидрокси-1,4-нафтохинон (DiNAF), показавший значительно более сильную индукцию апоптоза in vitro и снижение жизнеспособности клеток глиомы у крыс в сравнении с юглоном, темозоломидом и паклитакселом. При этом было показано, что даже незначительные изменения молекулярной структуры приводили к снижению ци-тотоксичности, что подтверждало особенность полученного соединения [43].
Противоопухолевой активностью обладают не только фенольные соединения орехов. Так, из коры J. mandshurica были выделены пять алкалоидов (N-метилфлиндерзин - 2,2,6-триметилпирано[3,2-с] квинолин-5-он;ориксалонD-(3R,4S)-3,4-дигидрокси-2,2,6-триметил-3,4-дигидропирано[3,2-с]квинолин-5-он; флиндерзин - 2,2-диметил-6Н-пирано[3,2-с] квинолин-5-он; диктамин - 4-метоксифуро[2,3-Ь] квинолин; 4-метокси-1-метил-2(1Н)-квинолинон), показавшие в эксперименте цитотоксическую активность по отношению к клеткам гепатоцеллюлярной карциномы линий Hep3B и HepG2. При этом было установлено, что наибольшую цитотоксическую активность проявил N-метилфлиндерзин (IC50 61,80 и 56,24 мкМ соответственно), что связывается с наличием в молекулярной структуре циклической изо-амильной группы и отсутствием водородной связи при C-1 [44].
Кора J. mandshurica послужила источником девяти фенилпропаноидных соединений, которые оценивали по их способности подавлять рост клеток рака печени линий HepG2 и Hep3B. Наибольшие ингиби-рующие активности продемонстрировали (2E)-3-[4-(4-гидрокси-3-метилбутокси)фенил]-2-пропеналь и бониненаль, которые при дальнейшем скрининге оказались активны в отношении клеток HepG2 со значениями IC50 58,58 и 63,70 мкМ соответственно и клеток Hep3B со значениями IC50 6 9,87 и 46,45 мкМ соответственно. Присутствие двойных связей при С-7 (1 против 3) обусловливало более сильное действие на линию Hep3B, чем на линию HepG2. Наличие 2'-двойных связей (7 против 9) увеличивало цитоток-сичность против обеих клеточных линий. Проведенные исследования также позволили сделать заключение, что ингибирование роста раковых клеток печени рассматриваемыми фенилпропаноидами обусловлено индуцированием апоптоза, вероятно, за счет изменения отношения Bax/Bcl-2 [45].
Заключение. Таким образом, результаты анализа литературных источников позволяют сделать заключение, что основное внимание исследователей привлекает не только подтверждение уже известных фармакологических эффектов или поиск новых, но изучение биохимических особенностей механизмов действия различных групп биологически активных соединений, содержащихся в извлечениях из сырья видов рода Juglans.
Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
AMTepaTypa/References 20.
1. Panth N., Paudel K. R., Karki R. Phytochemical profile and biological activity of Juglans regia. J. Integr. Med. 2016;14(5):359-373.
https://doi.org/10.1016/S2095-4964(16)60274-1
2. Delaviz H., Mohammadi J., Ghalamfarsa G., Mohamma- 21. di B., Farhadi N. A review study on phytochemistry and pharmacology applications of Juglans regia. plant. Phar-macogn. Rev. 2017;11(22):145-152. https://doi.org/10.4103/phrev.phrev_10_17
3. Taha N. A., Al-wadaan M. A. Utility and importance 22. of walnut, Juglans regia Linn: a review. Afr. J. Microbiol. Res. 2011;5(32):5796-5805. https://doi.org/10.5897/AJMR11.610
4. Tan S. Medicine in stamps. Avicenna (980-1037): prince of physicians. Singapore Med. J. 2002;43(9):445-446. 23.
5. Dolatabadi S., Moghadam H. N., Mahdavi-Ourtakand M. Evaluating the anti-biofilm and antibacterial effects of Juglans regia L. extracts against clinical isolates of Pseudomonas aeruginosa. Microb. Pathog. 2018;118:285-289. https://doi.org/10.1016Zj.micpath.2018.03.055
6. Pereira J. A., Oliveira I., Sousa A., Valentao P., Andrade P. B. 24. [et al.]. Walnut (Juglans regia L.) leaves: Phenolic compounds, antibacterial activity and antioxidant potential of different cultivars. Food. Chem. Toxicol. 2007;45(11):2287-2295. https://doi.org/10.1016/j.fct.2007.06.004
7. Stampar F., Solar A., Hudina M., Veberic R., Colaric M. Traditional walnut liqueur - cocktail of phenolics. Food 25. Chemistry. 2006;95(4):627-631. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2005.01.035
8. Sytykiewicz H., Chrzanowski G., Czerniewicz P., Leszczyn'ski B., Sprawka I. [et al.]. Antifungal activity of 26. Juglans regia (L.) leaf extracts against Candida albicans isolates. Pol. J. Environ. Stud. 2015;24(3):1339-1348. https://doi.org/10.15244/pjoes/34671
9. Noumi E., Snoussi M., Hajlaoui H., Valentin E., Bakhrouf A. Anti-fungal properties of Salvadora persica and Jug- 27. lans regia L. extracts against oral Candida strains. Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 2010;29(1):81. https://doi.org/10.1007/s10096-009-0824-3 28.
10. Ahmad S., Wahid M. A., Bukhari A. Q. Fungistatic action of Juglans. Antimicrob Agents Chemother. 1973;3(3):436-438.
11. Noumi E., Snoussi M., Trabelsi N., Hajlaoui H., Ksouri R., Valentin E., Bakhrouf A. Antibacterial, anticandidal and antioxidant activities of Salvadora persica and Juglans regia L. extracts. J. Med. Plants. Res. 2011;5(17):4138-4146.
12. Noumi E., Mejdi S., Noumi I., Valentin E., Aouni M., Al-sie-ni A. Comparative study on the antifungal and antioxidant 29. properties of natural and colored Juglans regia L. barks: a high activity against vaginal Candida strains. Life Sci. J. 2014;11(8):327-335.
13. Ara I., Shinwari M. M. A., Rashed S. A., Bakir M. A. Eva- 30. luation of anti-microbial properties of two different extracts
of Juglans regia tree bark and search for their compounds using gas chromatography-mass spectrum. Int. J. Biol. 2013;5(2):92-102. https://doi.org/10.5539/ijb.v5n2p92
14. Iqbal J., Siddiqui R., Kazmi S. U., Khan N. A. A simple 31. assay to screen antimicrobial compounds potentiating the activity of current antibiotics. Biomed. Res. Int. 2013;2013:927323. https://doi.org/10.1155/2013/927323 32.
15. Zakavi F., Golpasand Hagh L., Daraeighadikolaei A., Fara-jzadeh Sheikh A., Daraeighadikolaei A., Leilavi Shooshta-ri Z. Antibacterial Effect of Juglans Regia Bark against Oral Pathologic Bacteria. Int. J. Dent. 2013;2013:854765. https://doi.org/10.1155/2013/854765 33.
16. Upadhyay V., Kambhoja S., Harshaleena K. Antifungal activity and preliminary phytochemical analysis of stem bark extracts of Juglans regia Linn. IJPBA. 2010;1(5):442-447.
17. Noumi E., Snoussi M., Hajlaoui H., Valentin E., Bakhro- 34. uf A. Antifungal properties of Salvadora persica and Jug-
lans regia L. extracts against oral Candida strains. Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 2010;29(1):81-88. https://doi.org/10.1007/s10096-009-0824-3
18. Naseri A., Fata A., Shamsian S. A. A. In vitro anti-candidal 35. effects of aqueous and methanolic extracts of Walnut (Jug-lans regia) tree fruit peel in comparison with fluconazole. Int. J. Med. Res. Health. Sci. 2016;5(6):72-76.
19. Oliveira I., Sousa A., Ferreira I. C., Bento A., Estevinho L., 36. Pereira J. A. Total phenols, antioxidant potential and antimicrobial activity of walnut (Juglans regia L.) green husks. Food Chem. Toxicol. 2008;46(7):2326-2331. https://doi.org/10.1016/j.fct.2008.03.017
Raja V., Ahmad S. I., Irshad M., Wani W. A., Siddiqi W. A., Shreaz S. Anticandidal activity of ethanolic root extract of Juglans regia (L.): Effect on growth, cell morphology, and key virulence factors. J. Mycol. Med. 2017;27(4):476-486. https://doi.org/10.1016/j.mycmed.2017.07.002 Wianowska D., Garbaczewska S., Cieniecka-Ro-slonkiewicz A., Dawidowicz A. L., Jankowska A. Comparison of antifungal activity of extracts from different Juglans regia cultivars and juglone. Microb. Pathog. 2016;100:263-267. https://doi.org/10.1016/j.micpath.2016.10.009 Dolatabadia S., Moghadama H. N., Mahdavi-Ourta-kandb M. Evaluating the anti-biofilm and antibacterial effects of Juglans regia L. extracts against clinical isolates of Pseudomonas aeruginosa. Microb. Pathog. 2018;118:285-289. https://doi.org/10.1016/j.micpath.2018.03.055 Quave C. L., Plano L. R., Pantuso T., Bennett B. C. Effects of extracts from Italian medicinal plants on planktonic growth, biofilm formation and adherence of methicil-lin-resistant Staphylococcus aureus. J. Ethnopharmacol. 2008;118(3):418-28. https://doi.org/10.1016/j.jep.2008.05.005 Santos A., Barros L., Calhelha R. C., Dueñas M., Carval-ho A. M. [et al.]. Leaves and decoction of Juglans regia L.: different performances regarding bioactive compounds and in vitro antioxidant and antitumor effects. Ind. Crop. Prod. 2013;51:430-436. https://doi.org/10.1016/j.ind-crop.2013.10.003
Mouhajir F., Hudson J. B., Rejdali M., Towers G. H. N. Multiple antiviral activities of endemic medicinal plants used by Berber people of Morocco. Pharm. Biol. 2001;39(5):364-374. https://doi.org/10.1076/phbi.39.5.364.5892 Eidi A., Moghadam J. Z., Mortazavi P., Rezazadeh S., Olamafar S. Hepatoprotective effects of Juglans regia extract against CCl4-induced oxidative damage in rats. Pharm. Biol. 2013;51(5):558-565. https://doi.org/10.3109/13880209.2012.749920 Kale A. A., Sucheta A. G., Gayatri S. K., Deshpandea N. R., Salvekara J. P. In vitro anthelmintic activity of stem bark of Juglans regia L. J. Chem. Pharm. Res. 2011;3(2):298-302. Джафарова Р. Э., Гараев Г. Ш., Джафаркулиева З. С. Возможности использования лекарственных растений для профилактики развития сахарного диабета и его поздних осложнений. Медицинские новости Грузии. 2009;5(170):110-114. [Dzhafarova R. E., Garaev G. Sh., Dzhafarkulieva Z. S. The possibility of using medicinal plants to prevent the development of diabetes and its later complications. Medicinskie novosti Gruzii. - Medical News of Georgia. 2009;5(170):110-114. (In Russ.)]. Jelodar G., Mohsen M., Shahram S. Effect of walnut leaf, coriander and pomegranate on blood glucose and histopa-thology of pancreas of alloxan induced diabetic rats. Afr. J. Trad. CAM. 2007;4(3):299-305.
Mollica A., Zengin G., Locatelli M., Stefanucci A., Mace-donio G. [et al.]. An assessment of the nutraceutical potential of Juglans regia L. leaf powder in diabetic rats. Food Chem. Toxicol. 2017;107(Pt B):554-564. https://doi.org/10.1016/j.fct.2017.03.056 Ebrahimzadeh M. A., Nabavi S. F., Nabavi S. M. Antihemo-lytic activity and mineral contents of Juglans regia L. flowers. Eur. Rev. Med. Pharmacol. Sci. 2013;17(14):1881-1883. Ghasemi K., Ghasemi Y., Ehteshamnia A., Nabavi S. M., Nabavi S. F. [et al.]. Influence of environmental factors on antioxidant activity, phenol and flavonoids contents of walnut (Juglans regia L.) green husks. J. Med. Plants Res. 2011;5:1128-1133.
Rahimipanah M., Hamedi M., Mirzapour M. Antioxidant activity and phenolic contents of Persian walnut (Juglans regia L.) green husk extract. Afr. J. Food Sci. Technol. 2010;1:105-111.
Pereira J. A., Oliveira I., Sousa A., Valentao P., Andrade P. B. [et al.]. Walnut (Juglans regia L.) leaves: phenolic compounds, antibacterial activity and antioxidant potential of different cultivars. Food Chem. Toxicol. 2007;45(11):2287-2295. https://doi.org/10.1016/j.fct.2007.06.004 Nabavi S. F., Ebrahimzadeh M. A., Nabavi S. M., Mah-moudi M., Rad S. K. Biological activities of Juglans regia flowers. Rev. Bras. Farmacogn. 2011;21(3):465-470. https://doi.org/10.1590/S0102-695X2011005000092 Jahanbani R., Ghaffari S. M., Salami M., Vahdati K., Sepehri H. [et al.]. Antioxidant and anticancer activities of Walnut (Juglans regia L.) protein hydrolysates using different proteases. Plant Foods Hum. Nutr. 2016;71(4):402-409. https://doi.org/10.1007/s11130-016-0576-z
medical news of north caucasus 2019. Vol. 14. Iss. 4
37. Zou J., Cai P. S., Xiong C. M., Ruan J. L. Neuroprotective effect of peptides extracted from walnut (Juglans Sigilata Dode) proteins on Ap25-35-induced memory im- 42. pairment in mice. J. Huazhong Univ. Sci. Technolog. Med. Sci. 2016;36(1):21-30. https://doi.org/10.1007/s11596-016-1536-4
38. Li Q., Deng A. J., Li L., Wu L. Q., Ji M. [et al.]. Azacy-clo-indoles and phenolics from the flowers of Juglans regia. J. Nat. Prod. 2017;80(8):2189-2198. 43. https://doi.org/10.1021/acs.jnatprod.6b00887
39. Zhang X. B., Zou C. L., Duan Y. X., Wu F., Li G. Activity guided isolation and modification of juglone from Jug-lans regia as potent cytotoxic agent against lung cancer 44. cell lines. BMC Complement. Altern. Med. 2015;15:396. https://doi.org/10.1186/s12906-015-0920-0
40. Lee Y. J., Cui J., Lee J., Han A. R., Lee E. B. [et al..]. Cy-totoxic compounds from Juglans sinensis Dode display anti-proliferative activity by inducing apoptosis in human 45. cancer cells. Molecules. 2016;21(1):120. https://doi.org/10.3390/molecules21010120
41. Hou Y. Q., Yao Y., Bao Y. L., Song Z. B., Yang C. [et al.]. Juglanthraquinone C induces intracellular ROS increase and apoptosis by activating the Akt/Foxo signal pathway in
Сведения об авторах:
Дайронас Жанна Владимировна, доктор фармацевтических наук, профессор кафедры фармакогнозии, ботаники и технологии фитопрепаратов; тел.: 89187479369; e-mail: daironas@mail.ru
Верниковский Владислав Владиславович, кандидат биологических наук, доцент кафедры фармацевтической технологии с курсом медицинской биотехнологии; тел.: 89187478961; e-mail: v.v.vernikovsky@mail.ru
HCC cells. Oxid. Med. Cell. Longev. 2016;2016:4941623. https://doi.org/10.1155/2016/4941623 Wen Z. M., Jie J., Zhang Y., Liu H., Peng L. P. A self-assembled polyjuglanin nanoparticle loaded with doxorubicin and anti-Kras siRNA for attenuating multidrug resistance in human lung cancer. Biochem. Biophys. Res. Commun. 2017;493(4):1430-1437. https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2017.09.132 Pavan V., Ribaudo G., Zorzan M., Redaelli M., Pezzani R. [et al.]. Antiproliferative activity of Juglone derivatives on rat glioma. Nat. Prod. Res. 2017;31(6):632-638. https://doi.org/10.1080/14786419.2016.1214830 Lou L. L., Cheng Z. Y., Guo R., Yao G. D., Song S. J. Alkaloids from Juglans Mandshurica maxim induce distinctive cell death in hepatocellular carcinoma cells. Nat. Prod. Res. 2017;15:1-4.
https://doi.org/10.1080/14786419.2017.1413571 Cheng Z. Y., Yao G. D., Guo R., Huang X. X., Song S. J. Phenylpropanoids from Juglans mandshurica exhibit cy-totoxicities on liver cancer cell lines through apoptosis induction. Bioorg. Med. Chem. Lett. 2017;27(3):597-601. https://doi.org/10.1016Zj.bmcl.2016.12.005
© Коллектив авторов, 2019 УДК 616.6
DOI - https://doi.org/10.14300/mnnc.2019.14178 ISSN - 2073-8137
коморбидность почечной и кардиальнои патологии
Т. В. Зуева, Т. В. Жданова, С. Е. Уразлина
Уральский государственный медицинский университет, Екатеринбург, Российская Федерация
comorbidity of renal and cardiac pathology
Zueva T. V., Zhdanova T. V., Uraslina S. E.
Ural State Medical University, Ekaterinburg, Russian Federation
Сердечно-сосудистые заболевания являются основными причинами заболеваемости и смертности у пациентов с острыми и хроническими болезнями почек (ХБП). Численность пациентов с ХБП и сердечно-сосудистыми заболеваниями продолжает увеличиваться. Термин кардиоренальный синдром используется для определения различных клинических условий, при которых дисфункции сердца и почек возникают одновременно. В патогенезе кардиоренального синдрома играют роль тесная связь между сердцем и почками, общие традиционные и нетрадиционные факторы риска. Современные биомаркеры позволяют оценить сердечнососудистый риск у пациентов с нарушением функции почек. Представленный обзор дает представление о патофизиологии и диагностике кардиоренального синдрома.
Ключевые слова: хроническая болезнь почек, сердечно-сосудистые заболевания, кардиоренальный синдром, биомаркеры
Cardiovascular diseases are the main causes of morbidity and mortality in patients with acute and chronic kidney disease (CKD). The number of patients with CKD and cardiovascular disease continues to increase. The term car-diorenal syndrome is used to define various clinical conditions in which heart and kidney dysfunctions occur simultaneously. In the pathogenesis of cardiorenal syndrome, a close relationship between the heart and kidneys, common traditional and non-traditional risk factors play a role. Modern biomarkers allow assessing the cardiovascular risk in patients with impaired renal function. The presented review gives an idea of the pathophysiology and diagnosis of cardiorenal syndrome.
Keywords: chronic kidney disease, cardiovascular diseases, cardiorenal syndrome, biomarkers
