CC BY
114
СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННАЯ БИОЛОГИЯ, 2018, том 53, № 5, с. 1037-1044
УДК 579.64:631.461.52:57.044 doi: 10.15389/agrobiology.2018.5.1037rus
О ФАКТОРАХ, ВЛИЯЮЩИХ НА ТОКСИЧНОСТЬ ПРОТРАВИТЕЛЕЙ СЕМЯН ДЛЯ СИМБИОТИЧЕСКИХ АЗОТФИКСАТОРОВ В СОСТАВЕ
БИОПРЕПАРАТОВ*
Ю.В. КОСУЛЬНИКОВ, Ю.В. ЛАКТИОНОВ
Основой современного производства биопрепаратов азотфиксаторов служат симбиоти-ческие микроорганизмы семейства Rhizobiaceae, так как свободноживущие микроорганизмы, не проявляющие хозяйской специфичности в отношении вида возделываемой культуры, обладают значительно меньшей азотфиксирующей способностью, чем бобово-ризобиальный симбиоз, формируемый видоспецифичными клубеньковыми бактериями. Однако распространению предпосевной инокуляции семян бобовых и более широкому применению биопрепаратов клубеньковых бактерий мешает ряд объективных недостатков таких препаратов, например сравнительно низкая устойчивость ризобий к неблагоприятным факторам среды. К таким факторам относится прямой контакт бактерий с агрессивными веществами, например с химическими фунгицидам, используемыми для протравливания семян. Мы впервые показали, что выживаемость ризобий зависит от температуры баковых растворов, а метод производства протравителя существенно влияет на совместимость инокулянтов и протравителей на основе одного и того же действующего вещества. Нашей целью было определение влияния марки протравителя, его концентрации в растворе, времени выдержки раствора и температурного режима на количество выживших в растворе клубеньковых бактерий сои, люпина, гороха и чечевицы. Были изучены бактериальные суспензии клубеньковых бактерий сои (Bradyrhizobium japonicum 634б), люпина (Bradyrhizobium lupini 367а), гороха (Rhizobium leguminosarum 261б), чечевицы (Rhizobium leguminosarum 712) и химические фунгициды Maxim, КС (д.в. флудиоксонил, 25 г/л; «Syngenta International AG», Швейцария), Протект, КС (д.в. флудиоксонил, 25 г/л; ООО «Агро Эксперт Груп», Россия, «Agro Expert Group Kft.», Венгрия), Протект Форте, ВСК (д.в. флудиоксонил, 40 г/л + флутриафол, 30 г/л; ООО «Агро Эксперт Груп», Россия, «Agro Expert Group Kft.», Венгрия). Совместимость определяли после приготовления баковых растворов биопрепаратов и протравителей с последующей оценкой процента выживших ризобий в зависимости от вида протравителя, его концентрации (10 и 20 %), времени выдержки раствора (2, 4, 8 ч) и температурного режима (2-5, 16-18, 27 °C). Показано, что устойчивость клубеньковых бактерий разных зернобобовых культур к пестицидам неодинаковой и уменьшается в последовательности соя > люпин > горох > чечевица. Токсичность пестицидов увеличивалась в порядке Maxim > Протект > Протект Форте. Нахождение ризобий в одном растворе с протравителями негативно сказывалось на выживаемости бактерий: чем дольше выдерживали смесь, тем меньше в ней оставалось жизнеспособных ризобий. С ростом температуры смеси и концентрации протравителей в растворе их токсичность увеличивается. Низкие температуры (2-5 °C) значительно повышали выживаемость ризобий. Протравители Maxim и Протект, приготовленные на основе одного и того же действующего вещества с одинаковой его концентрацией, резко различались по токсичности.
Ключевые слова: симбиотические азотфиксаторы, Bradyrhizobium, Rhizobium, биопрепараты, протравители семян, совместимость и токсичность.
Бобовые культуры — это главный источник растительного белка (1). Средняя урожайность бобовых в России сильно уступает (иногда в разы) аналогичному показателю в странах Европы и в США (2, 3). Одна из существенных причин — малая эффективность технологий, применяемых в большинстве случаев. Парадоксальность ситуации в том, что именно в суровых климатических условиях, которые характерны для большей части российских сельскохозяйственных угодий (Урал, Сибирь), необходимость в самых современных агротехнических приемах многократно возрастает (4, 5). К ним, в частности, относится использование препаратов симбиотиче-ских клубеньковых бактерий, которые, заселяя корневую систему растения, обеспечивают ему способность фиксировать атмосферный азот (6-8). На российском рынке они представлены, но пока не получили широкого распространения. В числе прочих причин — отсутствие обоснованных регла-
* Работа выполнена при финансовой поддержке Министерства образования и науки Российской Федерации (Соглашение № 14.607.21.0178, RFMEFI60717X0178).
ментов применения микробиологических препаратов совместно с химическими средствами защиты растений. На практике это неизбежно снижает эффективность и рентабельности биопрепаратов, ведет к прямым экономическим потерям и необоснованно дискредитирует метод, который признается одним из важных элементов биологизации, экологизации и повышения устойчивости современного сельскохозяйственного производства.
В состав протравителей входят токсичные для микроорганизмов вещества, поэтому бактерии, на основе которых готовят микробиологические препараты, попадают в неблагоприятные условия. К сожалению, изучение совместимости биопрепаратов и протравителей явно отстает от появления новых потенциально пригодных для практики штаммов, форм биопрепаратов (9, 10) и изменений в технологии производства протравителей под одной и той же маркой (11, 12). Протравители (гербициды, фунгициды, инсектициды и т.д.) уже давно показали эффективность, технологии их применения отработаны (13, 14) и закрепились в отечественном сельском хозяйстве. Поэтому, если существуют сомнения в результативности совместного применения биологических и химических препаратов, на практике предпочтение отдается последним (15, 16). Иными словами, дефицит научных работ по оценке совместимости микробиологических и химических методов обработки семян зернобобовых (17, 18) может стать причиной отказа от биопрепаратов, несмотря на их экологичность (19, 20), экономичность (21) и эффект (22, 23) при повышения урожайности зернобобовых. Следует отметить, что отечественные публикации по этой проблеме крайне немногочисленны (24, 25).
В настоящем исследовании впервые представлены реузльтаты, подтверждающие, что на совместимость инокулянтов и протравителей на основе одного и того же действующего вещества существенно влияет метод производства протравителя, то есть качественный и количественный состав (формуляция) дополнительных компонентов (полимеры-пленкообра-зователи, адъюванты, поверхностно-активные вещества и т.д., которые, по мнению производителей, повещают технологичность протравителя), а также температурный режим бакового раствора. Эти данные дополняют те ограниченные сведения, которые касаются совместимости препаратов клубеньковых бактерий и химических средств защиты бобовых.
Нашей целью было определение влияния марки протравителя, его концентрации в растворе, времени выдержки раствора и температурного режима на количество выживших в растворе клубеньковых бактерий сои, люпина, гороха и чечевицы.
Методика. Штаммы клубеньковых бактерий сои (Bradyrhizobium ja-ponicum 634б), люпина (Bradyrhizobium lupini 367а), гороха (Rhizobium legu-minosarum 261б) и чечевицы (Rhizobium leguminosarum 712) были получены из ведомственной коллекции полезных микроорганизмов сельскохозяйственного назначения Всероссийского НИИ сельскохозяйственной микробиологии (ВНИИСХМ, г. Санкт-Петербург). Препараты готовили на полусинтетической среде (0,5 г/л K2HPO4, 0,2 г/л MgSO4'7H2O, 0,1 г/л NaCl, 1,0 г/л дрожжевого экстракта, 10,0 г/л маннита) с последующим культивированием (28 °С, 170 об/мин, орбитальный шейкер-инкубатор ES-20/60, «BioSan», Латвия).
Были использованы следующие химические фунгициды: Maxim, КС (д.в. флудиоксонил, 25 г/л; «Syngenta International AG», Швейцария), Протект, КС (д.в. флудиоксонил, 25 г/л; ООО «Агро Эксперт Груп», Россия, «Agro Expert Group Kft.», Венгрия), Протект Форте, ВСК (д.в. флудиоксонил, 40 г/л + флутриафол, 30 г/л; ООО «Агро Эксперт Груп», Россия,
«Agro Expert Group Eft.», Венгрия).
Фунгициды и клубеньковые бактерии смешивали (20 % раствор бактериальной суспензии с 10 % и 20 % растворами протравителя каждой исследуемой марки). Через определенные интервалы (0, 1, 2, 4 и 8 ч) титры бактерий определяли высевом на чашки Петри с полусинтетической средой (состав указан выше) с добавлением 20 г/л агар-агара. Смеси культур и фунгицидов выдерживали в холодильной камере (2-5 °C), при комнатной температуре в условиях лаборатории (16-18 °C) и в термостате (27,5 °C). Через 10 сут (время роста клубеньковых бактерий на чашках Петри) подсчитывали образовавшиеся колонии (КОЕ).
Статистическую обработку данных проводили с использованием программы Microsoft Excel 10. Для подтверждения достоверности различий между вариантами на рисунках и в таблице представлены средние значения (M) и стандартные ошибки средних (±SEM). Различия оценивали по t-критерию Стьюдента и считали статистически значимыми при р < 0,05. По-вторность опыта 3-кратная.
Результаты. Выбор наибольшей практической значимостью культур (соя, люпин, горох, чечевица) в современной России и странах СНГ. В России на основе этих штаммов выпускают биопрепараты для бобовых под коммерческим наименованием Ризоторфин® (производитель ВНИИСХМ).
Смешивание химических протравителей с препаратами ризобий негативно влияло на выживаемость последних. Устойчивость клубеньковых бактерий разных зернобобовых культур к пестицидам была различной и уменьшалась в последовательности клубеньковые бактерии сои, люпина, гороха, чечевицы. Токсичность пестицидов увеличивалась в таком порядке: Maxim, Протект, Протект Форте (рис. 1).
Выживаемость ризобий в смеси с протравителями также в значительной степени зависела от температуры, при которой выдерживали смесь. Чем токсичнее для ризобий был протравитель (рис. 2), тем нагляднее проявлялось положительное влияние низких температур на выживаемость клубеньковых бактерий. Роль температурного фактора возрастала с увеличением концентрации протравителя. Так, доля выживших клубеньковых бактерий сои в смеси с 10 % раствором фунгицида Maxim спустя 8 ч после смешения при 2-5 и 16-18 °C составляла соответственно 72,02 и 68,88 %. В то же время для 20 % раствора фунгицида получили значения 65,73 и 31,12 %. Выявленная закономерность оказалась справедлива для каждой исследованной пары биопрепарат—протравитель.
В ряде случаев действующее вещество фунгицида не было главным фактором, определяющим динамику сокращения числа ризобий. Например, в состав самого малотоксичного для всех исследованных видов ризо-бий протравителя Maxim входит то же действующее вещество и в той же концентрации, что и в состав значительно более токсичного препарата
Рис. 1. Доля выживших ризобий Bradyrhizobium japonicum 634б (I), Bradyrhizobium lupini 367а (II), Rhizobium legumi-nosarum 261б (III) и Rhizobium leguminosarum 712 (IV) в смеси с 10 % (а) и 20 % (б) растворами фунгицидов Maxim (1), Протект (2) и Протект Форте (3) (смесь культур и фунгицидов выдерживалась 8 ч при 16-18 °C).
штаммов микроорганизмов был обусловлен
Рис. 2. Число колоний Bradyrhizobium japonicum 634б в растворе с 20 % фунгицидами Maxim (А) и Протект Форте (Б) в зависимости от времени выдержки и температурного режима смеси: 1 — комнатная температура (контроль), 2 — 2-5 °C, 3 — 16-18 °C, 4 — 27,5 °C.
Протект (табл.). При этом токсичность фунгицида Протект для ризобий сои и люпина оказалась сопоставима с токсичностью препарата Про-тект Форте, несмотря на то, что у последнего концентрация флудиоксонила практически в 2 раза больше, а также присутствует второе действующее вещество — флут-риафол (см. табл.). Контролем служил 20 % рабочий раствор бактериальных суспензий в водопроводной воде; все различия между опытными и соответствующими контрольными вариантами статистически значимы при р < 0,05.
Доля выживших ризобий в смеси с 10 и 20 % растворами фунгицидов в зависимости от времени с момента смешения (смесь выдерживали при температуре 16-18 °C) (M±SEM)
Ризобии и концентрация фунгицида
Время, ч Bradyrh izobium Rhizobium
japonicum 634 lupini 367а leguminosarum 261б leguminosarum 712
10 % 1 20 % 10 % 1 20 % 10 % 1 20 % 10 % 1 20 %
79,02±4,95 67,31±3,56 75,52±4,20 65,91±3,24 68,88±3,98 31,12±1,72
82,56±5,64 75,36±4,58 64,48±3,67
75,20±4,45 58,57±2,89 36,25±1,97
50,30±3,12 32,47± 1,32 18,23±0,45
Maxim КС 73,76±4,26 83,43±5,23 74,11±4,13 70,19±3,98 КС
62,58±3,09 52,02±2,27 32,52±1,67
81,6±5,26 67,2±3,89 34,7±1,94
81,67±5,27 63,33±3,21 71,67±7,13 60,00±3,14 41,67±2,10 23,33±0,79
69,73±3,64 52,93±3,16 46,12±2,31 27,73±0,86 28,68±0,95 22,03±0,69
31,11± 1,21 22,14±0,76 13,98±1,05
17,00±0,54 14,00±0,34 1,00±0,12
81,67±5,28 13,41±0,26 71,67±7,16 3,66±0,19
41,67±2,13
2,62±0,16 1,07±0,12 0,12±0,10
0,00
0,00 0,00 0,00
69,92±3,98 47,36±2,58 Протект 60,69±3,33 33,49± 1,49 48,43±2,98 25,63±0,71 35,06± 1,73 9,43±0,14
Протект Форте ВСК 55,03±3,57 38,76±2,03 39,00±1,99 46,64±2,75 18,12±0,41 36,00±1,75
__22,65±0,74 3,69±0,10 22,00±0,68
Примечание. Все различия между опытными и соответствующими контрольными вариантами статистически значимы при р < 0,05.
Анализ данных отечественной и зарубежной литературы по факторам токсичности протравителей для бактерий показал, что действующие вещества большинства протравителей (в чистом виде) определены исследователями, как в той или иной степени токсичные по отношению к ри-зосферным микроорганизмам (26, 27), в том числе к клубеньковым бактериям (28, 29). Сообщается (30), что контакт ризобий сои на инокулиро-ванных семенах с такими распространенными фунгицидными веществами, как каптан и тирам (контактные фунгициды), а также беномил, кар-бендазим, дифеноконазол и тебуконазол (системные фунгициды), вызывает значительное сокращение числа жизнеспособных бактерий. Не все дей-
ствующие вещества протравителей однозначно токсичны по отношению ко всем видам и штаммам ризобий. Так, в работе M. Tariq с соавт. (31) ризобии гороха определены как устойчивые к бензимидазолам. По данным другого исследования (32), флудиоксонил оказывает значительное токсическое действие на ризобии сои. Авторы утверждают (32), что контакт ризобий сои с флудиоксонилом на инокулированных семенах значительно снижает число выживших бактерий по сравнению с контролем через 24 и 48 ч после инокуляции. Добавление к инокулянту полимера аль-гината значительно повышало выживаемость ризобий в контакте с флуди-оксонилом (32). Это позволяет предположить, что в нашем опыте лучшая выживаемость ризобий в смеси с протравителем Maxim по сравнению с протравителем Протект связана не с большей токсичностью дополнительных компонентов в составе последнего, а с защитным действием на ризо-бии полимеров в препарате Maxim. В пользу такого предположения говорит тот факт, что некоторые водорастворимые полимеры действительно повышают общую стойкость ризобий к неблагоприятным условиям среды, в частности добавление в бактериальную суспензию альгината натрия и кар-боксиметилцеллюлозы значительно увеличивает сроки хранения бактериального препарата (33). По-видимому, важен не только состав и концентрации действующих веществ протравителя, но и состав и концентрации дополнительных компонентов (полимеры-пленкообразователи, поверхностно-активные вещества — ПАВ, эмульгаторы, антисептики и т.д.), то есть так называемая формуляция препаративной формы протравителя. В ряде исследований подтверждается сильнейшее влияние полимеров-пленкообразовате-лей, адъювантов и ПАВ на выживаемость бактерий в биопрепаратах (34).
Есть сообщения, что разные марки протравителей (35) и различные температурные режимы при хранении баковых растворов заметно влияют на выживаемость бактерий в таких растворах. В ряде работ показана способность ризобий разлагать пестициды (36), что, впрочем, достаточно распространено среди ризосферных микроорганизмов (37). По имеющимся данным (38, 39), медленнорастущие ризобии сои Bradyrhizobium japonicum и быстрорастущие ризобии сои Sinorhizobium fredii могут расти на минерально-растительной агаризованной среде с добавлением производственной концентрации фунгицида Maxim. При этом интенсивность их роста либо не уступает таковой в контроле (38), либо незначительно снижается (39).
Стоит отметить, что отсутствие явного токсического эффекта протравителя в отношении ризобий в совместном баковом растворе вовсе не гарантирует от негативных последствий для клубенькообразования (40, 41). В ряде работ описано ингибирующее действие фунгицида Maxim на интенсивность формирования клубеньков у инокулированых растений сои (24), при том что протравливание семян и их инокуляция были разделены во времени. В то же время некоторые авторы указывают (39), что инокуляция семян сои с протравливанием фунгицидом Maxim обеспечивает более интенсивное клубенькообразование, прирост надземной массы и достоверную прибавку урожайности по сравнению с инокуляцией «в чистом виде».
Таким образом, мы можем утверждать, что среди исследованных ризобий наиболее устойчивыми к протравителям оказались клубеньковые бактерии сои (Bradyrhizobium japonicum 634б), наименее устойчивыми — клубеньковые бактерии чечевицы (Rhizobium leguminosarum 712). В свою очередь, среди использованных протравителей самым малотоксичным для ризобий был фунгицид Maxim, самым токсичным — Протект Форте. Протравители Maxim и Протект, приготовленные на основе одного и того же действующего вещества с одинаковой его концентрацией, резко различа-
лись по токсичности. Вероятно, токсичность этих фунгицидов для клубеньковых бактерий связана не только и не столько с действующими веществами в их составе, сколько с теми дополнительными компонентами (полимеры-пленкообразователи, поверхностно-активные вещества, эмульгаторы, антисептики и т.д.), которые производители добавляют в протравитель той или иной марки для улучшения ее технологических свойств (формуляция препаративной формы протравителя). Нахождение ризобий в одном растворе с протравителями негативно сказывается на выживаемости бактерий: чем дольше выдерживалась смесь, тем меньше оставалось жизнеспособных ризобий. С ростом температуры смеси и концентрации протравителей в растворе их токсичность увеличивается. Низкие температуры (2-5 °C) значительно повышают выживаемость ризобий.
ЛИТЕРАТУРА
1. Зотиков В.И., Грядунова Н.В., Наумкина Т.С., Сидоренко В.С. Зернобобовые культуры в экономике России. Земледелие, 2014, 4: 6-8.
2. John R.P., Tyagi R.D., Brar S.K., Prevost D. Development of emulsion from rhizobial fermented starch industry wastewater for application as Medicago sativa seed coat. Eng. Life Sci., 2010, 10(3): 248-256 (doi: 10.1002/elsc.201000002).
3. Suzaki T., Yoro E., Kawaguchi M. Leguminous plants: inventors of root nodules to accommodate symbiotic bacteria. Int. Rev. Cel. Mol. Bio., 2015, 316: 111-158 (doi: 10.1016/bs.ircmb.2015.01.004).
4. Никитин С.Н., Завалин А.А. Влияние удобрений и биопрепаратов на продуктивность зернопарового севооборота, потоки элементов питания и свойства чернозема выщелоченного в лесостепи среднего Поволжья. Агрохимия, 2017, 6: 12-29.
5. Жеруков Б.Х. Биологический азот в сельском хозяйстве: проблемы, решения и перспективы развития. Известия Горского государственного аграрного университета, 2010, 47(2): 43-47.
6. Миркин Б.М., Наумова Л.Г. Основы общей экологии. М., 2003.
7. Beveridge C.A., Mathesius U., Rose R.J., Gresshoff P. Common regulatory themes in meristem development and whole-plant homeostasis. Curr. Opin. Plant Biol., 2007, 10(1): 44-51 (doi: 10.1016/j.pbi.2006.11.011).
8. Marra L.M., Fonsecs Sousa Soares C.R., Oliveira S.M., Avelar Ferreira P.A., Soares B.L. Biological nitrogen fixation and phosphate solubilization by bacteria isolated from tropical soils. Plant Soil, 2012, 357: 289-307 (doi: 10.1007/s11104-012-1157-z).
9. Кожемяков А.П., Лактионов Ю.В., Попова Т.А., Орлова А.Г., Кокорина А.Л., Вайшля О.Б., Агафонов Е.В., Гужвин С.А., Чураков А.А., Яковлева М.Т. Агротехнологические основы создания усовершенствованных форм микробных биопрепаратов для земледелия. Сельскохозяйственная биология, 2015, 50(3): 369-376 (doi: 10.15389/agrobiology.2015.3.369rus).
10. Лактионов Ю.В., Попова Т.А., Андреев О.А., Ибатуллина Р.П., Кожемяков А.П. Создание стабильной формы ростстимулирующих микробиологических препаратов и их эффективность. Сельскохозяйственная биология, 2011, 3: 116-118.
11. Rashmi P.A., Dayana J. Isolation of pesticide tolerating bacteria from cultivated soil in Kerala andthe study of the role of plasmid in pesticide tolerance. International Journal of Pure & Applied Bioscience, 2015, 3(1): 109-114.
12. Налиухин А.Н., Лактионов Ю.В. Эффективность применения микроэлементного комплекса Аквамикс-Т при возделывании козлятника восточного в северной части Нечернозёмной зоны. Земледелие, 2015, 2: 25-27.
13. Лаптиев А.Б., Кунгурцева О.В. Предпосылки и основы химической защиты гороха от болезней. Зернобобовые и крупяные культуры, 2016, 2: 99-103.
14. Пимохова Л.И., Царапнева Ж.В. Комплексная защита люпина белого от антракноза. Зернобобовые и крупяные культуры, 2016, 3: 89-94.
15. Potera C. Agriculture: pesticides disrupt nitrogen fixation. Environ. Health Persp., 2007, 115(12): A579 (doi: 10.1289/ehp.115-a579a).
16. Moorman T. Effects of herbicides on the survival of Rhizobium japonicum Strains. Weed Sci., 1986, 34(4): 628-633 (doi: 10.1017/S0043174500067564).
17. Reganold J.P., Papendick R.I., Parr J.F. Sustainable agriculture. Scientific American, 1990, 262: 112-120 (doi: 10.1038/scientificamerican0690-112).
18. Vance C.P. Symbiotic nitrogen fixation and phosphorous acquisition. Plant nutrition in the world of declining renewable resources. Plant Physiol., 2001, 127: 390-397.
19. Gopalakrishnan S., Sathya A., Vijayabharathi R., Varshney R.K., Gowda C.L.L., Krishnamurthy L. Plant growth promoting rhizobia: challenges and opportunities. 3 Biotech, 2015, 5(4): 355-377 (doi: 10.1007/s13205-014-0241-x).
20. Эседуллаев С.Т., Шмелева Н.В. Особенности аккумуляции азота многолетними бобовыми травами в чистых и смешанных посевах в Верхневолжье. Плодородие, 2016, 6(93): 16-18.
21. Mmbaga G.W., Mtei K.M., Ndakidemi P.A. Yield and fiscal benefits of rhizobium inoculation supplemented with phosphorus (P) and potassium (K) in climbing beans (Phaseolus vulgaris L.) grown in Northern Tanzania. Agricultural Sciences, 2015, 6(8): 783-797 (doi: 10.4236/as.2015.68076).
22. Лактионов Ю.В., Белоброва С.Н., Кожемяков А.П., Воробьёв Н.И., Сергалиев Н.Х., Аме-нова Р.К., Тлепова А.С. Эффективность бобово-ризобиального симбиоза нут Cicer arientium L.—бактерии Mezorizobium cicer при использовании минеральных удобрений. Плодородие, 2013, 5: 24-25.
23. Тихонович И.А., Завалин А.А., Благовещенская Г.Г., Кожемяков А.П. Использование биопрепаратов — дополнительный источник элементов питания растений. Плодородие, 2011, 3: 9-13.
24. Борзенкова Г.А., Васильчиков А.Г. Применение эффективных протравителей и иноку-лянтов в технологии возделывания различных сортов сои. Земледелие, 2014, 4: 37-39.
25. Борзенкова Г.А. Оптимизация технологии предпосевного протравливания и возможность его сочетания с инокуляцией для защиты сои от семенной инфекции. Зернобобовые и крупяные культуры, 2014, 1: 22-30.
26. Yousaf S., Khan S., Aslam M.T. Effect of pesticides on the soil microbial activity. Pakistan J. Zool., 2013, 45(4): 1063-1067.
27. Alam S., Kumar A., Kumar A., Prasad S., Tiwari A., Srivastava D., Srivastava S., Tiwari P., Singh J., Mathur B. Isolation and characterization of pesticide tolerant bacteria from brinjal rhizosphere. Int. J. Curr. Microbiol. App. Sci., 2018, Special Issue-7: 4849-4859.
28. Drouin P., Sellami M., Prevost D., Fortin J., Antoun H. Tolerance to agricultural pesticides of strains belonging to four genera of Rhizobiaceae. Journal of Environmental Science and Health, Part B, 2010, 45(8): 780-788 (doi: 10.1080/03601234.2010.515168).
29. Deshmukh V.V., Raut B.T., Mane S.S., Ingle R.W., Josh M.S. Compatibility of Bradyrhizobium japonicum isolates with agrochemicals. American International Journal of Research in Formal, Applied & Natural Sciences, 2014, 6(1): 55-62.
30. Campo R.J., Araujo R.S., Hungria M. Nitrogen fixation with the soybean crop in Brazil: compatibility between seed treatment with fungicides and bradyrhizobial inoculants. Symbiosis, 2009, 48: 154-163.
31. Tariq M., Hameed S., Shahid M., Yasmeen T., Ali A. Effect of fungicides and bioinoculants on Pisum sativum. Research & Reviews: Journal of Botanical Sciences, 2016, 5(2): 36-40.
32. Romero-Perdomo F.A., Camelo M., Bonilla R. Response of Bradyrhizobium japonicum to alginate in presence of pelleted fungicides on soybean seeds. Revista U.D. C.A Actualidad & Divulgaciyn Científica, 2015, 18(2): 359-364.
33. Rivera D., Obando M., Barbosa H., Tapias D.R., Buitrago R.B. Evaluation of polymers for the liquid rhizobial formulation and their influence in the Rhizobium—cowpea interaction. Universitas Scien-tiarum, 2014, 19(3): 265-275 (doi: 10.11144/Javeriana.SC19-3.eplr).
34. Leo Daniel A.E., Venkateswarlu B., Suseelendra D., Praveen Kumar G., Mir Hassan Ahmed S.K., Meenakshi T., Uzma S., Sravani P., Lakshmi Narasu M. Effect of polymeric additives, adjuvants, surfactants on survival, stability and plant growth promoting ability of liquid bioinoculants. J. Plant Physiol. Pathol, 2013, 1: 2.
35. Ahemad M., Khan M.S. Ecotoxicological assessment of pesticides towards the plant growth promoting activities of Lentil (Lens esculentus)-specific Rhizobium sp. strain MRL3. Ecotoxicolo-gy, 2011, 20(4): 661-669 (doi: 10.1007/s10646-011-0606-4).
36. Moawad H., Abd El-Rahim W.M., Shawky H., Higazy A.M., Daw Z.Y. Evidence of fungicides degradation by rhizobia. Agricultural Sciences, 2014, 5(7): 618-624 (doi: 10.4236/as.2014.57065).
37. McGuinness M., Dowling D. Plant-associated bacterial degradation of toxic organic compounds in soil. Int. J. Environ. Res. Public Health, 2009, 6(8): 2226-2247 (doi: 10.3390/ijerph6082226).
38. Якименко М.В., Бегун С.А., Сорокина А.И. Совместимость коллекционных штаммов ризобий сои с фунгицидами и ростостимулирующими препаратами. Дальневосточный аграрный вестник, 2016, 2(38): 38-41.
39. Якименко М.В. Совместное применение штаммов ризобий и некоторых препаратов для предпосевной обработки семян сои. Земледелие, 2016, 6, 46-48.
40. Gomes Y.C.B., Dalchiavon F.C., Valadao de Assis F.C. Joint use of fungicides, insecticides and inoculants in the treatment of soybean seeds. Rev. Ceres, 2017, 64(3): 258-265 (doi: 10.1590/0034-737x201764030006).
41. Fox J.E., Gulledge J., Engelhaupt E., Burow M.E., McLachlan J.A. Pesticides reduce symbiotic efficiency of nitrogen-fixing rhizobia and host plants. PNAS USA, 2007, 104(24): 10282-10287 (doi: 10.1073/pnas.0611710104).
ФГБНУ Всероссийский НИИ сельскохозяйственной Поступила в редакцию
микробиологии, 17 июля 2018 года
196608 Россия, г. Санкт-Петербург—Пушкин, ш. Подбельского, 3, e-mail: Laktionov@list.ru, kullavayn@gmail.com Н
Sel'skokhozyaistvennaya biologiya [Agricultural Biology], 2018, V. 53, № 5, pp. 1037-1044
FACTORS WHICH INFLUENCE TOXICITY OF LEGUME SEED
DISINFECTANTS TOWARDS BIOLOGICALS BASED ON SYMBIOTIC
NITROGEN FIXERS
Yu.V. Kosulnikov, Yu.V. Laktionov
All-Russian Research Institute for Agricultural Microbiology, Federal Agency for Scientific Organizations, 3, sh. Pod-bel'skogo, St. Petersburg, 196608 Russia, e-mail laktionov@list.ru, kullavayn@gmail.com (H corresponding author) ORCID:
Laktionov Yu.V. orcid.org/0000-0001-6241-0273 Kosulnikov Yu.V. orcid.org/0000-0003-1134-3503
The authors declare no conflict of interests
Acknowledgements:
Supported financially by the Ministry of Education and Science of the Russian Federation (Agreement № 14.607.21.0178, RFMEFI60717X0178)
Received July 17, 2018 doi: 10.15389/agrobiology.2018.5.1037eng
Abstract
Symbiotic nitrogen fixers of Rhizobiaceae family serve as biologicals for agriculture. This is due to the fact that free-living inoculants which are not crop-specific possess much less nitrogen-fixing ability than the legume—rhizobial symbiosis of a plant and its species-specific symbiont. Despite this, the seedbed inoculation and a wider use of biopreparations of nodule bacteria in legumes are hampered by a number of objective deficiencies of such preparations, for example, the relatively low resistance of rhizobia to adverse environmental factors. These factors include direct contact of bacteria with aggressive substances, i.e. chemical fungicides used for seed treatment. This paper is the first to report that the rhizobia survival rate depends on the temperature of tank solutions and may differ under the effect of disinfectants based on the same active ingredient. That is, methods of disinfectant manufacture significantly affect its toxicity towards nodule bacteria. Our goal was to determine the effect of treaters, its concentration in the solution, the time the solution was kept and the temperature mode on the number of nodule bacteria of soybean, lupine, pea and lentils that survived in the solution. Bacterial suspensions studied were root nodule bacteria of soybean (Bradyrhizobium japonicum 634b), lupine (Bradyrhizobium lupini 367a), pea (Rhizobium leguminosarum 261b), lentil (Rhizobium leguminosarum 712), and chemical fungicides were Maxim (fludioxonil, 25 g/l; «Syngenta International AG», Switzerland), Protekt, (fludioksonil, 25 g/l; «Agro Expert Group LLC», Russia, «Agro Expert Group Kft.», Hungary), Protekt Forte (fludioxonil, 40 g/l + flutriafol, 30 g/l; «Agro Expert Group LLC», Russia, «Agro Expert Group Kft.», Hungary). Compatibility was determined by preparing tank solutions of biologicals and disinfectants, followed by determining the percentage of rhizobia that survived, depending on the type of disinfectant, its concentration (10 and 20 %), solution holding time (2, 4, 8 hours) and temperature (2-5, 16-18, 27 °C). Our results show that the resistance of nodule bacteria of various leguminous plants to these pesticides differs and decreases among the nodule bacteria of soybean, lupine, pea, lentils. The pesticide toxicity increases in the order Maxim, Protect, and Protect Forte. The presence of rhizobia in the same solution with disinfectants negatively affects the bacteria survival. The longer the mixture is kept, the less rhizobia remain alive. With increasing temperature of the mixture and the concentration of disinfectants in the solution, their toxicity increases. Low temperatures (2-5 °C) significantly increase the survival rate of rhizobia. The disinfectants Maxim and Protect, prepared on the basis of the same active ingredient with the same concentration, differed sharply in toxicity.
Keywords: symbiotic nitrogen fixers, Bradyrhizobium, Rhizobium, biologicals, seed dressing agents, treaters, compatibility and toxicity.
Научные собрания
IV МЕЖДУНАРОДНАЯ НАУЧНО-ПРАКТИЧЕСКАЯ КОНФЕРЕНЦИЯ «ИННОВАЦИОННЫЕ ТЕХНОЛОГИИ В ОБЛАСТИ ГЕНЕТИКИ, СЕЛЕКЦИИ, СЕМЕНОВОДСТВА И РАЗМНОЖЕНИЯ РАСТЕНИЙ»
Организаторами конференции, которая прошла 3-8 сентября 2018 года в НБС-ННЦ РАН (г. Ялта) выступили РАН, Министерство сельского хозяйства РФ, Министерство науки и высшего образования РФ, Министерство сельского хозяйства Республики Крым, Никитский ботанический сад — Национальный научный центр РАН, РГАУ—МСХА им. К.А. Тимирязева, Кубанский государственный аграрный университет им. И.Т. Трубилина. В ее работе Конференция участвовали специалисты из России, Китая, Монголии, Германии, Молдавии, Белоруссии. Обсуждалась концепция стратегического развития семеноводства в России, экологические и генетические основы селекции, проблемы биологически и экологически ориентированного растениеводства. Три рабочие секции конференции были посвящены селекции, генетике и семеноводству полевых растений, защите растений и овощеводству, селекции, семеноводству и размножению садовых и лесных древесных растений. В рамках конференции прошла Школа молодых ученых.
Информация: http://nikitasad.ru/science/o-rabote-konferentsii-po-semenovodstvu/
