CC BY
78
§ Фф
Ветеринария -И#
НЕКОТОРЫЕ ПОКАЗАТЕЛИ СОСТОЯНИЯ ОРГАНИЗМА КРОЛИКОВ
625003, г. Тюмень, ул. Республики, д. 7;
тел. 8(3452)62-57-19; e-mail: IBVM.veterinarya@yandex.ru, cherrinat@rambler.ru
Н. А. ЧЕРЕМЕНИНА, кандидат биологических наук, доцент,
С. А. ВЕРЕМЕЕВА,
кандидат ветеринарных наук, доцент,
К. А. СИДОРОВА,
доктор биологических наук, профессор,
К. С. ЕСЕНБАЕВА,
кандидат сельскохозяйственных наук, доцент, Тюменская ГСХА
Ключевые слова: кролик, моча, кровь, органы брюшной полости, печень, сосуды брюшной аорты, желудок, артерии.
Keywords: rabbit, urine, blood, organs of abdominal cavity, liver, vessels of the abdominal aorta, the stomach, the arteries.
Все большее внимание уделяется изысканию и совершенствованию средств, направленных на повышение защитных сил организма, включая комплексные препараты различного происхождения в качестве стимулятора роста, приобретения специфического и неспецифического иммунитета.
В настоящее время разработаны и рекомендованы нормы применения кормовых добавок в животноводстве, птицеводстве, но в кролиководстве исследований по использованию кормовых добавок не проводилось. В связи с этим изучение влияния «Сел-Плекс» на состояние организма кроликов является актуальным.
Материалы и методы исследований.
Исследования проводились на базе кролиководческого комплекса ЗАО «Рощинский» Тюменского района Тюменской области, а также в условиях кафедры анатомии и физиологии Тюменской ГСХА.
При постановке научно-хозяйственного опыта были отобраны кролики в возрасте 2 мес. калифорнийской породы. Формирование опытной и контрольной групп проводилось по принципу параналогов с учетом возраста, происхождения, живой массы и состояния здоровья. В период проведения исследований хозяйство было благополучно по инфекционным и инвазионным заболеваниям.
Цель исследований.
Изучение состояния некоторых показателей организма кроликов при использовании кормовых добавок в составе гранулированного комбикорма в условиях Северного Зауралья.
Результаты исследований.
Исследования мочи — неотъемлемая часть в комплексе методов исследования функциональных показателей организма. Состав мочи изменяется в зависимости от состава корма, количества принятой жидкости, состояния животного. Моча образуется в результате сложной работы почек. На интенсивность мочео-бразования влияют различные факторы. Моча — конечный продукт работы почек. Это результат ультрафильтрации крови в почечных клубочках, транспортных процессов концентрации и разведения мочи, синтеза почкой биологически активных веществ и ее метаболической функции [5].
При исследовании мочи опытной группы существенных изменений не обнаружили. Цвет мочи желтый, прозрачный. Запах специфический, свойственный данному виду животного. Относительная плотность мочи у
54
кроликов опытной группы на 9,3 % ниже по сравнению с контрольной группой. Цвет мочи в контрольной группе животных варьирует от желтого до темно-желтого.
Химическое исследование включает определенные реакции, реакция рН, обнаружение и определение белка, глюкозы, уробилинов, кетоновых тел, билирубина.
Концентрация свободных Н+-ионов — показатель истиной реакции мочи, т. е. активной кислотности (рН). У исследуемых групп животных отклонений рН от нормы не выявлено, т. к. данный вид животного относится к группе травоядных и моча у них щелочной реакции, что и подтверждается проведенным экспресс-тестом.
Появление белка в моче может быть почечного или внепочечного происхождения, причем ренальная проте-инурия может быть функциональной и органической природы. Физиологическая протеинурия обычно кратковременна и проявляется после переохлаждения, перегревания, стрессов. При проведенных нами исследованиях в моче изучаемых групп не было обнаружено содержания белка в исследуемой жидкости.
Определение глюкозы основано на ферментативной реакции, реакция зависит от рН и присутствия кетоновых тел. Присутствие восстанавливающих веществ, которые могут проявляться в исследуемой моче, такие как аскорбиновая кислота, не приводят к ложноотрицательному результату. В моче исследуемых групп мы получили отрицательный результат.
Кетоновые тела не имеют почечного порога и выделяются с мочой в степени, пропорциональной нарастанию концентрации их в крови. Анализ проведенных исследований на наличие кетоновых тел в моче исследуемых групп показал отрицательный результат.
Тест на билирубин основан на соединении билирубина со стабильной солью диазония в кислой среде с образованием красно-фиолетового окрашивания. Цвет индикатора в образце мочи у животных контрольной группы изменяется до фиолетового, причем интенсивность нарастала соответственно концентрации билирубина.
При проведенных нами исследованиях химического состава мочи у животных опытной группы получена отрицательная реакция на перечисленные показатели. Некоторые показатели мочи в контрольной группе превышали норму, так билирубин составил 17,2 мкмоль/л и уробилиноген — 23,8 мкмоль/л.
www. m-avu. narod. ru
Ветеринария "И
Таблица 1
Диаметр артериальных сосудов кроликов, M ± s
Группа
Артерия Контрольная (n = 17) Опытная (n = 17)
Чревная 3,05 ± 0,02 3,23 ± 0,01 (р = 0,007)*
Печеночная 1,34 ± 0,02 1,36 ± 0,02 (р = 0,86)
Левая желудочная 2,33 ± 0,01 2,38 ± 0,01 (р = 0,004)*
Правая желудочная 1,16 ± 0,02 1,28 ± 0,02 (р = 0,006)*
Селезеночная 1,44 ± 0,01 1,56 ± 0,02 (р = 0,005)*
Рисунок
Ангиограмма некоторых сосудов брюшной аорты кролика
По данным авторов И. П. Кондрахина, А. В. Архипова, уробилиновые тела являются дериватами билирубина. Увеличение его концентрации в моче — признак нарушения печеночной функции. Уробилинурия связана с увеличением распада эритроцитов и гемоглобина [4].
В связи с этим определение билирубина в сыворотке крови имеет клинико-физиологическое значение. Билирубин — желчный пигмент, образуется в клетках ретикулоэндотелиальной системы печени и селезенке при распаде гемоглобина, миоглобина, цитохромов. Билирубин плохо растворим в воде, поэтому в свободном виде не может присутствовать в плазме крови. Его связывает альбумин, в результате билирубин не фильтруется в клубочках почек. В клетках печени происходит конъюгация билирубина с глюкуроновой кислотой, образуется прямой билирубин, который растворяется в воде, он выделяется в желчные протоки. В желчных капиллярных ходах и желчном пузыре билирубин теряет глюку-роновую кислоту, превращаясь в мезобилирубин и уро-билиноген. Бактерии в кишечнике переводят мезобилирубин в стеркобилиноген, который всасывается в кровь и выделяется почками, основная его часть окисляется в стеркобилин и выделяется с калом. Небольшое количество билирубина поступает из печеночных клеток в кровь. В результате в сыворотке крови содержится билирубин, связанный с глюкуроновой кислотой [1, 2, 3, 6].
По результатам наших данных, показатель общего билирубина в сыворотке крови опытной группы кроликов достоверно ниже на 52,11 % по сравнению с контрольной группой. Повышение уровня содержания билирубина в крови как несвязанного (свободного), так и связанного (конъюгированного) билирубина, отмечают при различных функциональных нарушениях печени.
На основании полученных показателей мочи, крови возникла необходимость гистологических исследований печени.
При гистологическом исследовании тканей печени кроликов опытной группы мы не выявили структурных изменений, что нельзя сказать о контрольной группе кроликов, у которых выявлена зернистая и жировая дистрофия гепатоцитов, очаговая пролиферация соединительной тканей печени, микронекротические очаги в печеночных дольках.
Висцеральные ветви брюшной аорты являются основными источниками васкуляризации органов брюшной полости, в частности, печени и желудка (рис. 1). шшш.т-ауи. пагоб. ги
Чревная артерия (arteria coeliaca) — крупный сосуд, у контрольной группы животных имеет диаметр 3,05 ± 0,002 мм, у опытной группы животных — 3,23 ± 0,01 мм, отходящий от брюшной аорты, служит источником васкуляризации желудка. У кролика чревная артерия отходит от вентральной стенки брюшной аорты на уровне 1-2 поясничного позвонка, и после отхождения печеночной артерии делится на левую желудочную и сравнительно длинную селезеночную артерию (рис. 1).
Печеночная артерия (arteria heрatica), у контрольной группы животных имеет диаметр 1,34 ± 0,02 мм, у опытной группы животных — 1,36 ± 0,02 мм, отходит первой ветвью от чревной артерии, она проходит вначале над правой долей поджелудочной железы, далее в печеночно-двенадцатиперстной связке, где у кролика отдает печеночные ветви и правую желудочную артерию, диаметр которой у контрольной группы животных 1,16 ± 0,02 мм, у опытной группы животных — 1,28 ± 0,02 мм (табл. 1).
Желудочно-двенадцатиперстная артерия (arteria gastro-duodenalis) является продолжением печеночной артерии. Позади пилоруса у кролика она делится на правую желудочно-сальниковую артерию, которая, проходя справа на большую кривизну желудка, васкуляризирует желудок и большой сальник.
Левая желудочная артерия (arteria gastrica sinistra), наиболее крупная из всех, имеет диаметр у контрольной группы животных 2,33 ± 0,01 мм; у опытной группы животных — 2,38 ± 0,01 мм, предназначена для васкуляризации желудка. В толще малого сальника она у кролика направляется влево к желудку и, не достигнув малой кривизны, отдает одну-две пищеводные ветви, после чего делится, на несколько ветвей, васкуляри-зирующих стенки желудка вдоль малой кривизны до пилоруса.
Селезеночная артерия (arteria lienalis) у контрольной группы животных диаметр которой составляет 1,44 ±
0,01 мм; а у опытной группы животных — 1,56 ± 0,02 мм. Далее, разделившись на две, направляется к большой кривизне желудка, как левая желудочно-сальниковая артерия, и к вентральному полюсу селезенки, от которой отходят ветви к большому сальнику.
На основании полученных данных можно заключить, что:
• кормовая добавка «Сел-Плекс» оказывает положительное влияние на физико-химические свойства мочи, т. к. все полученные показатели были в пределах физиологической нормы, это свидетельство того, что «Сел-Плекс» не оказал отрицательного воздействия на функциональное состояние почек;
• «Сел-Плекс» оказывает положительное влияние на морфофункциональное состояние печени, что проявляется выраженным дольчатым строением, сохранностью
%%ф
_____________________________Ветеринария -И*
паренхиматозных структур печени, о чем также свиде- левая желудочная артерия, ветви печеночной и селе-тельствуют биохимические показатели крови; зеночной артерий, которые у животных опытной группы
• основным источником васкуляризации печени и (с применением кормовой добавки «Сел-Плекс») имели желудка кроликов является ветви чревной артерии: более крупный диаметр.
Литература
1. Волкова О. В., Шахламов В. А., Миронов А. А. Атлас сканирующей электронной микроскопии клеток, тканей, органов. М. : Медицина, 1987. 464 с.
2. Афанасьев Ю. И. [и др.]. Гистология. 5-е изд., перераб. и доп. М. : Медицина, 2002. 744 с.
3. Луговская С. А. [и др.]. Лабораторная гематология. М. : Юнимед-пресс, 2002. 115 с.
4. Методы ветеринарной клинической лабораторной диагностики : справочник / под. ред. И. П. Кондрахина. М. : КолоС, 2004. 520 с.
5. Миронова И. И., Романова Л. А. Атлас осадков мочи. М. ; Тверь : Триада, 2007. 171 с.
6. Скопичев В. Г., Шумилов Б. В. Морфология и физиология животных. СПб. : Лань, 2004. 416 с.
ХАРАКТЕРИСТИКА БИОСТИМУЛЯТОРОВ «ПРЕБИОСТИМ» И «БИОСТИМУЛЬГИН-СВЧ» ПО ТЕХНОЛОГИЧЕСКИМ, ФИЗИКО-ХИМИЧЕСКИМ И БИОЛОГИЧЕСКИМ СВОЙСТВАМ
Е. И. ШУРМАНОВА,
кандидат ветеринарных наук, доцент,
Н. Г. КУРОЧКИНА,
кандидат ветеринарных наук, доцент,
Н Н СЕМЕНОВА 620075, г. Екатеринбург, ул. К. Либкнехта, д. 42;
у тел.89527270976;
кандидат ветеринарных наук, доцент, Уральская ГСХА e-mail: kng9@maN.ru
Ключевые слова: препараты из плаценты, «Биостимульгин-СВЧ», «Пребиостим», коровы.
Keywords: drugs from the placenta, «Biostimulgin-microwave», «Prebiostim», cow.
Известно, что после родов в организме коров происходят значительные физиологические изменения в иммунной системе, выражающиеся в склонности к иммунодефицитам и обуславливающие повышенную чувствительность организма самок к действию инфекционных агентов [1, 2]. Снижение функционального состояния иммунной системы и развитие иммунодефицитов является одним из звеньев патогенеза акушерской патологии [3, 4], поэтому перспективным направлением повышения эффективности профилактики и лечения патологии родов и послеродового периода является использование иммуномодуляторов.
В связи с этим важной задачей ветеринарной науки остается изыскание, отбор и фармакологическое изучение новых средств с иммуномодулирующим действием. Плацента и внеплацентарные оболочки плода — уникальное сырье для изготовления лекарственных средств. Препараты, полученные из плаценты, характеризуются высоким уровнем гормонов и биологически активных веществ, которые находятся в сбалансированном соотношении [5]. Несмотря на многочисленные разработки, еще сохраняются резервы повышения биологической активности и лечебно-профилактической эффективности биогенных препаратов, например, за счет более полного сохранения и извлечения биологически активных компонентов ткани и степени разрушения биологического субстрата [6].
Цель, материал и методика исследований.
Целью нашей работы была сравнительная оценка биостимуляторов из плаценты «Биостимульгин-СВЧ» и
56
«Пребиостим» по технологическим, физико-химическим и биологическим свойствам.
Технология изготовления «Биостимульгин-СВЧ» и «Пребиостим» разработаны и запатентованы в Уральской ГСХА [7, 8]. Сырьем для изготовления «Биостимульгина-СВЧ» служили плодные оболочки здоровых коров, полученные после физиологических родов и не имеющие патологических изменений тканей, для изготовления «Пребиостима» использовали плодные оболочки 4-5-месячных плодов крупного рогатого скота.
Для обоснования возможности практического применения данных биостимуляторов нами в предыдущих исследованиях были охарактеризованы иммунотропные свойства препарата «Пребиостим». Для этого было изучено его влияние на первичный гуморальный иммунный ответ, на клеточный иммунный ответ и на фагоцитоз [9].
Первичный гуморальный иммунный ответ оценивали по числу антителообразующих клеток (АОК) в селезенке мышей, иммунизированных эритроцитами барана. Установлено, что введение «Пребиостима» приводило к статистически значимому, но небольшому снижению количества АОК в пересчете на 106 ядросодержащих клеток селезенки. Общее количество АОК во всей селезенке уменьшалось несущественно, что свидетельствует об отсутствии у препарата цитотоксического действия.
Для характеристики влияния препарата на клеточные иммунные реакции использовали феномен повышенной чувствительности замедленного типа (ПЧЗТ) к эритроцитам барана. В наших исследованиях выраженность
www. m-avu. narod. ru
