CC BY
60
2. Результаты определения чувствительности микрофлоры секрета молочной железы к антибиотикам
Чувствительность Проба по годам
2015 2016 2017
1 2 3 1 2 3 1 2 3
Гентамицин Карбенициллин Офлоксацин Тетрациклин Тобрамицин Амоксициллин Пиперациллин Эритромицин Ампициллин Доксициклин Клиндамицин Полимиксин Цефуроксим + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + +
Таким образом, при бактериологическом исследовании проб секрета молочной железы крупного рогатого скота установлено, что основную часть патогенной микрофлоры составляют бактерии группы Streptococcus cremoris и Staphylococcus aureus.
В последующем была определена чувствительность микрофлоры к антибиотикам (табл. 2).
Анализируя таблицу 2 за последние три года, установили, что у всех коров положительная динамика была ярко выражена к офлоксацину, но в СПК «Килачевский» его не применяли, отдавая предпочтение препаратам пролонгированного действия.
В заключение можно сделать вывод, что мастит в хозяйстве СПК «Килачевский» Ирбитского района Свердловской области широко распространён среди молочных коров и составляет в среднем 8,33+0,127%. Пик заболеваемости маститом приходится на январь — 9,9% и август — 9,7%, мастит развивается с более частым поражением задней левой доли вымени — 27,4%. При бактериологическом анализе молока установлено доминантное наличие Staphylococcus aureus и Streptococcus cremoris.
Литература
1. Багманов М.А., Юсупова Г.Р. Почему высокоудойные коровы подвержены маститу // Учёные записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана. 2016. Т. 225. № 1. С. 12-13.
2. Баймишев Х.Б., Альтергот В.В., Сеитов М.С. Инновационные технологии воспроизводства крупного рогатого скота в условиях интенсивной технологии производства молока // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2011. № 4 (32). С. 110-113.
3. Глазунов Ю.В. Скрытые патологии молочной железы дойных коров в хозяйствах юга Тюменской области / Ю.В. Глазунов,
A.А. Никонов, А.А. Эргашев [и др.] // Аграрный вестник Урала. 2011. № 12-2 (92). С. 11-13.
4. Рубцов В.И. Профилактика и лечение мастита у коров // Ветеринария. 2006. № 9. С. 32-36.
5. Эффективность профилактических приемов при маститах у коров в Северном Зауралье / О.А. Столбова, Л.А. Глазунова, А.А. Никонов [и др.] // Международный научно-исследовательский журнал. 2017. № 3-3 (57). С. 27-30.
6. Кузнецов В.Д., Коротаева О.А. Кетоз высокопродуктивных коров: терапия и профилактика // Вестник Тюменской государственной сельскохозяйственной академии. 2007. № 1. С. 94-96.
7. Осколкова М.В., Кузьмина Э.В. Этиология мастита и его взаимосвязь с гинекологическими заболеваниями // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2014. № 4 (48). С. 86-88.
8. Система мероприятий по профилактике мастита у коров при машинном доении / В.А. Париков, В.И. Романенко,
B.И. Слободянник [и др.] // Труды Х междунар. симпоз. по машинному доению сельскохозяйственных животных, первичной обработке и переработке молока. М., 2000.
C. 269-272.
9. Столбова О.А., Скосырских Л.Н. Болезни обмена веществ // Международный журнал экспериментального образования. 2016. № 12-1. С. 109.
10. Татаркина Н.И., Пономарева Е.А. Молочная продуктивность коров в период раздоя с использованием ферментных добавок // Кормление сельскохозяйственных животных и кормопроизводство. 2012. № 3. С. 31-34.
11. Защита крупного рогатого скота от патогенов. Методические рекомендации / Г.С. Сивков [и др.]. Тюмень, 2010. 152 с.
Научное обоснование использования пробиотиков у мелких домашних животных
Е.Н. Маслова, д.в.н., ФГБОУ ВО ГАУ Северного Зауралья
В последнее десятилетие отмечаются закономерности развития заболеваний у мелких домашних животных в результате ухудшения экологических факторов окружающей среды, нехватки моциона у большинства питомцев, неграмотной племенной работы и т.д. Эти факторы способствуют возник-
новению и закреплению в генофонде различных патологических состояний [1—4]. Использование пробиотиков в ветеринарии и животноводстве является перспективным направлением, требующим дальнейшего развития. Всемирная организация здравоохранения (ВОЗ) определяет пробиотики как «живые» микроорганизмы, применение которых при введении в организм человека или животного
в достаточных количествах оказывает лечебно-профилактическое воздействие на физические, химические, биологические и иммунные реакции организма хозяина через сенсибилизацию и стабилизацию функций нормальной микрофлоры. Таким образом, при описании любого продукта, либо препарата, который содержит минимальное количество микробактериальных пробиотических культур, следует использовать термин пробиотик. Наиболее часто в пробиотических препаратах используются штаммы Bacillus, Lactobacillus, Bifidobacterium [5, 6].
Цель исследования: изучить эффективность применения пробиотиков в профилактике и лечении заразной патологии мелких домашних животных.
Материал и методы исследования. Научно-исследовательская работа выполнена в период с 2017 по 2018 гг. на кафедре незаразных болезней сельскохозяйственных животных ФГБОУ ВО «Государственный аграрный университет Северного Зауралья», на базе ветеринарных клиник (г. Тюмень). Диагноз на саркоптоидозы ставили на основании клинических признаков и результатов микроскопического исследования соскобов кожи животных с применением общепринятых акарологических методов. Общие анализы крови проводили на гематологическом анализаторе Medonic CA 620. Биохимические показатели крови определяли в сыворотке крови с помощью биохимического анализатора типа СИта MC-15. Для определения скорости оседания эритроцитов (СОЭ) использовали принцип микрометода Панченкова.
С целью изучения эффективности применения пробиотиков при паразитарном отите у собак и кошек были сформированы две группы (контрольная и опытная) из спонтанно зараженных отодектозами животных (по 10 кошек и 10 собак в каждой). У животных опытной группы применяли противопаразитарные препараты в зависимости от породной принадлежности и тяжести заболевания (стронгхолд, ивермек, капли Инспектор) двукратно,
1 раз в 7—10 дней, в дозах согласно инструкции по применению препарата. Животные контрольной группы обрабатывались вышеописанными акарицидами и дополнительно получали препарат Ветом 1.1. в виде свежеприготовленной суспензии перорально, из расчета 50 мг порошка на 1 кг м.ж.,
2 раза в день, курсом 14 дней.
Полученный в процессе всех исследований цифровой материал подвергали статистической обработке на персональном компьютере Pentium IV с использованием программ Microsoft Excel и Microsoft Access.
Результаты исследований. Результаты исследований гематологических показателей у собак опытных и контрольных групп представлены в таблице. В результате проведенных исследований установ-
лено, что после проведенной терапии отодектоза собак и кошек, у животных, дополнительно получавших препарат «Ветом 1.1», уже на третьи сутки отмечено повышение количества эритроцитов, которое к концу опыта составило 7,52+0,16 млн/мм3 (+33,8%). У контрольных собак количество эритроцитов составляло 5,74+0,12 млн/мм3 (+4,17%). Также отмечается повышение уровня гемоглобина у собак опытной группы с 88,8+2,2 до 110,5+4,7 г/л (+12,4%); у собак контрольной группы с 89,6+2,5 до 94,6+2,7 г/л (+5,6%).
Отмечалось падение числа лейкоцитов до 8,78+1,5 тыс. /мм3 у опытных собак (-67,9%) и до 11,44+1,6 тыс. /мм3 у контрольных собак (- 27,4%).
Таким образом, разница в показателях собак из опытной и контрольной группы животных составила: для количества эритроцитов — 29,63; гемоглобина — 6,9%; лейкоцитов — 40,5% от базовых показателей.
Данные таблицы показывают, что при применении пробиотика у собак отмечается достоверное повышение уровня общего белка в сыворотке крови. Так, у животных опытной группы до лечения он составил 57,40+2,33 г/л; после лечения — 66,80+2,16 г/л (+16,38%); у животных контрольной группы до лечения — 58,80+1,75 г/л, после лечения — 61,80+1,75 г/л (+5,1%). Таким образом, уровень общего белка увеличился на 11,28 % по сравнению с контрольной группой животных. Пропорционально отмечается понижение количества альбуминов на 17,24% в опытной группе животных и на 7,2% в контрольной группе животных, а-глобулинов на 11,0 и 6,1%, повышения уровня 0-глобулинов — на 27,8 и 14,2% и у-глобулинов — на 9,6% и 3,8% соответственно.
Уровень глюкозы достоверно повысился до 4,22+0,22 ммоль/л у собак опытной группы и до 4,18+0,18 ммоль/л у собак контрольной группы, с разницей 4,4%.
Наблюдается увеличение количества меди до 22,64+0,06 ммоль/л у собак опытной группы (28,19%), до 21,32+0,07 ммоль/л у собак контрольной группы (8,7%) и магния до 1,29+0,05 моль/л (8,4%) и 1,24+0,05 моль/л (3,3%) соответственно.
В отношение цинка также наблюдается его увеличение. Так, если у животных опытной группы количество цинка в крови находилось на уровне 8,02+0,23 ммоль/л, то у животных контрольной группы — 7,22+0,25 ммоль/л, или 28,1% и 12,8% от фоновых показателей соответственно.
Таким образом, применение пробиотика «Ве-том 1.1» оказывает положительное влияние на гематологические и биохимические показатели крови животных, что свидетельствует об улучшении обменных процессов в их организме, в том числе и при паразитарных инвазиях.
Также были изучены показатели неспецифической резистентности у собак и кошек (рис. 1, 2).
Гематологические показатели собак до и после терапии (X±Sx)
Наименование показателей Показатели крови животных (P<0,05)
опытная группа опытная группа
до терапии через 14 дней после терапии до терапии через 14 дней после терапии
Гемоглобин (г / л) 88,8±2,2 110,5±4,7 89,6±2,5 94,6±2,7
Эритроциты (млн / мм3) 5,62±0,18 7,52±0,16 5,51±0,19 5,74±0,12
Лейкоциты (тыс./ мм3) 14,74±1,4 8,78±1,5 14,58±1,4 11,44±1,6
Тромбоциты (тыс./ мм3) 228,5±43,9 232,80±40,4 237,20±29,2 240,20±29,5
СОЭ (мм / час) 2,70±0,22 1,60±0,42 1,80±0,20 1,50±0,22
Общий белок (г / л) 57,40±2,33 66,80±2,16 58,80±1,75 61,80±1,75
Фракции белка:
- альбумины 47,60±1,15 40,60±1,48 47,80±1,14 44,62±1,14
- глобулины а 10,30±0,14 9,28±0,14 10,46±0,19 9,86±0,19
- глобулины в 21,32±0,15 27,24±0,15 21,10±0,14 24,10±0,14
- глобулины у 19,96±0,35 21,88±0,29 20,64±0,33 21,42±0,33
Глюкоза (мг/%) 3,84±0,24 4,22±0,22 3,96±0,19 4,18±0,18
Магний (моль / л) 1,19±0,04 1,29±0,05 1,20±0,05 1,24±0,05
Медь (ммоль / л) 17,66±0,07 22,64±0,06 19,62±0,07 21,32±0,07
Цинк (мкмоль / л) 6,26±0,20 8,02±0,23 6,40±0,2 7,22±0,25
Фагоцитарная активность лейкоцитов
■ ollt-l III ОЯ Hi-jn П Я I ДО ПН-'ЕРИИ И i
■ (Oil Г] И.п ЬМ .1IIГ [к, ПП ^ IД-,1 Л^'К'И и г:
Бактерицидная активность сыворотки крови » Uli: II' .г : .К I I .'11 1' I I ! - !■ -:-|;'|| -■ КОИ11101I H .III ф/ППч! 11 J ДСН t- 1Ч1КН и IIJ
за го
Фагоцитарная активность лейкоцитов
■ они Hi .it* фуш J ißo -1 еиемн л I
■ КоиГ|Ю.'1 b|l.1^ I I'Vfl|I0 I|Jv НоОоМll^!
Бактерицидная активность сыворотки крови О i-noi TIioii | | iyn Иц| I I 'IДI-'MH i '"If Uli I"
■КфПрольная г hivon j (14день лечення!
Рис. 1 - Показатели неспецифической резистентности у собак (n= 10)
Так, фагоцитарная активность лейкоцитов повышается преимущественно у животных опытной группы и на 14 день лечения составила 67,4% у собак и 66,4% у кошек, что на 11,4% и 10,9% больше в сравнении с показателями контрольных групп, Р<0,05.
Бактерицидная активность сыворотки крови у собак и кошек повышается на протяжении всего периода лечения и составила к концу лечения у животных опытной группы: 61,2% у собак и 61,9% у кошек (12,1% и 11,9% от базовых показателей), Р<0,05.
Принимая во внимание тот факт, что пробио-тики действуют на патогенные микроорганизмы как в результате прямого влияния самих пробио-тиков, так и в результате воздействия клеточных метаболитов на патогенную микрофлору [7, 8], были проведены бактериологические исследования соскобов ушных раковин у опытных и контрольных животных. Результаты исследований показали, что у 2 собак и 1 кошки из контрольной группы животных отмечалось осложнение отитов бактериальной микрофлорой: Stаph. аureus, E. mli. При
Рис. 2 - Показатели неспецифической резистентности у кошек (п=10)
этом в соскобах из ушной раковины у животных опытной группы, получавших дополнительно препарат «Ветом 1.1», бактериальной микрофлоры не обнаружено. Таким образом было доказано, что применение пробиотиков позволяет снизить риск возникновения отитов, осложненных бактериальной микрофлорой.
Выводы
Результаты исследования показали, что применение пробиотиков, на примере препарата «Ветом 1.1», оказывает положительное влияние на гематологические и биохимические показатели крови животных, что свидетельствует об улучшении обменных процессов в их организме, в том числе и при паразитарных инвазиях. При применении препарата «Ветом 1.1» увеличивается количество эритроцитов на 29,63%, гемоглобина — на 6,9%, общего белка — на 11,28%, глюкозы — на 4,4%, меди — на 19,49% и магния — на 5,1%; уменьшается количество лейкоцитов на 40,5%. Вместе с этим у собак и кошек повышается фагоцитарная активность лейкоцитов и бактерицидная активность сыворотки крови.
Литература
1. Васильев P.M. Болезни кожи у собак (диагностика и лечение): дис. ... канд. вет. наук: 16.00.05 / P.M. Васильев; Санкт-Петербургская государственная академия ветеринарной медицины. СПб., 1999. 160-164 с.
2. Маслова Е.Н., Сидорова О.А., Драгич О.А., Борисова К.С. Отиты и дерматиты наружного слухового прохода у мелких домашних животных // Современные проблемы науки и образования. 2015. № 6. С. 61.
3. Краснолобова Е.П. Влияние стресс-факторов на проявления заболеваний у собак и кошек в условиях городской среды // В сборнике: Современные направления развития науки в животноводстве и ветеринарной медицине. Материалы международной научно-практической конференции, посвященной 60-летию кафедры технологии производства и переработки продуктов животноводства и 55-летию кафедры иностранных языков. Тюмень, 2019. С. 126-128.
4. Столбова О.А., Краснолобова Е.П., Заикина Н.А., Ахряпи-на Е.Н. Болезни печени у собак в условиях города Тюмени //
Международный журнал прикладных и фундаментальных исследований. 2016. № 11-2. С. 264-267.
5. Лихачева А.Ю. Современное состояние вопроса таксономии бактерии рода Lactobacillus // Журн. микробиол. 1992. № 9-10. С. 74-78.
6. Погорельский И.П., Чичерин И.Ю., Лундовских И.А., Дармов И.В., Маракулин И.В. Лимфоцитотоксическое действие аутоштаммов гомопробиотических бифидобактерий и лактобактерий // Журнал инфектологии. 2012. Т. 4. № 4. С. 25-31.
7. Марков А.А., Тимохина Т.Х., Белаш К.Д., Семухин Д.М., Маслова Е.Н., Малюгина О.А. Свойства пробиотиков и применение в травматологической практике // Медицинская наука и образование Урала. 2018. Т. 19. № 4 (96). С. 195-198.
8. Багдасарян А.С., Токаев Т.С., Некрасов Е.А., Олейник Е.А. Антибиотикоустойчивость пробиотических культур, входящих в состав синбиотиков. Известия вузов // Пищевая технология. 2011. № 2-3. С. 102-104.
Иммунобиологический статус телят раннего возраста при желудочно-кишечных болезнях
А.Я. Сенько, д.с.-х.н., профессор, Л.Ю. Топурия, д.б.н, профессор, ФГБОУ ВО Оренбургский ГАУ
Важнейшей задачей сельскохозяйственного производства является обеспечение населения страны продуктами животноводства отечественного производства, что напрямую связано с продовольственной безопасностью государства. В реализации этой проблемы большая роль отводится повышению продуктивности животных за счёт профилактики различных болезней и в первую очередь молодняка крупного рогатого скота [1].
Основное место в структуре заболеваний телят занимает желудочно-кишечная патология, которая фиксируется у 50—60% животных, 25—30% из числа заболевших погибает [2, 3].
Массовые желудочно-кишечные болезни телят чаще всего имеют полиэтиологическую природу и протекают в форме смешанных инфекций. Возникновение болезней, их тяжесть и исход связаны с неудовлетворительными условиями содержания и кормления стельных коров, низким качеством молозива. Наибольшую проблему представляет сохранность телят до 15—20-суточного возраста [4].
Цель исследования — изучить иммунобиологический статус телят раннего возраста с желудочно-кишечной патологией.
Материал и методы исследования. Для проведения опытов было сформировано две группы телят красной степной породы 5—7-суточного возраста по 10 гол. в каждой. Телята I гр. были клинически здоровы. II гр. была сформирована из больных животных с признаками расстройства пищеварения. Для оценки иммунного статуса телят в цельной крови и сыворотке определяли бактерицидную, лизоцимную, бета-литическую активность, фагоцитарные свойства нейтрофилов,
количество Т-, В-лимфоцитов и циркулирующих иммунных комплексов [5].
Результаты исследования. Заболевание у телят проявлялось снижением аппетита, угнетённым состоянием, уменьшением перистальтики кишечника, учащённой дефекацией, фекалии имели жидкую консистенцию, серовато-жёлтого цвета. Ранее нами установлено, что причиной желудочно-кишечной патологии является ассоциация микроорганизмов: E. coli; St. aureus, Proteusvulgaris [6].
1. Показатели гуморальных факторов естественной резистентности телят (X±Sx)
Показатель Группа
I II
Бактерицидная активность сыворотки крови, % 34,92± 1,24 29,86± 0,84**
Лизоцимная активность сыворотки крови, мкг/мл 9,74± 0,62 7,42± 0 45***
Бета-литическая активность сыворотки крови, % 8,86± 0,062 12,98± 0,321***
Примечание: **Р<0,01; ***Р<0,001
Лабораторный анализ крови показал, что у больных телят наблюдается значительное угнетение бактерицидной активности сыворотки крови, которая была снижена по сравнению со здоровыми животными на 14,5% (Р<0,01), лизоцимная активность сыворотки крови уменьшилась на 23,9% (Р<0,001). Бета-литическая активность сыворотки крови, напротив, достоверно возросла на 46,5% (Р<0,001) (табл. 1).
Аналогичная закономерность установлена и при изучении клеточных факторов естественной резистентности телят (табл. 2).
Нейтрофилы играют определённую роль в фагоцитозе условно-патогенной микрофлоры,
