CC BY
53
DOI:10.31718/2077-1096.18.4.132 УДК 611.84:612.4:599.323
Каценко А.Л., Шерстюк О.А., Устенко Р.Л., Свинцицкая Н.Л., Пилюгин А.В. МОРФОЛОГИЯ СЛЕЗНЫХ И ГАРДЕРОВОЙ ЖЕЛЕЗЫ ЛАБОРАТОРНЫХ КРЫС
Украинская медицинская стоматологическая академия, г. Полтава
Слезный аппарат грызунов, в особенности крыс, является сравнительно хорошо изученным объектом, история изучения которого наиболее полно представлена в работах Левенталя и Кульчицкого (1894,1911г.). Параллельно во времени добывались данные о строении слезных желез у человека. Особенно подробно, как у человека, так и у крысы, были описаны пути отведения слезы от глаза в носослезный канал, возрастные изменения секреторного эпителия слезных желез крыс, больших слезных желез человека (пальпебральная и орбитальная доли). Напротив, слезообразую-щая и слезовыделительная части слезного аппарата человека (система концевых отделов и выводных протоков железы) являются одним из малоизученных органных микрокомплексов. Целью нашей научной работы является изучение морфофункциональной характеристики путей слезо-отведения при нормальном функционировании слезных желез. Крысы имеют две парные слезные железы. Одна из них, более скромных размеров - интраорбитальная (инфраорбитальная), более крупная - экзорбитальная. Протоки этих желез, прежде чем открыться общим отверстием в конъюнктивальный мешок в наружном углу глаза, сливаются вместе. Обе слезные железы крыс происходят из одного эмбрионального зачатка, выполняют одну и ту же функцию и поэтому имеют весьма сходное гистологическое строение. Кроме того, обе демонстрируют сходный спектр возрастных изменений своей морфологии. Гпазницы крыс в своих пределах имеют еще одно железистое образование - это так называемые железы Гардера. Они вырабатывают секрет богатый липидами и порфиринами. Данные железы у человека отсутствуют, а по другим сведениям - находятся в зачаточном состоянии. Изменения в слезных железах крыс, а также в железах Гардера могут служить моделью заболеваний слезного аппарата человека. Для такой экстраполяции считаем необходимым изучить черты пространственной организации системы выводных протоков и их концевых отделов в синтопическом единстве с гемомикроциркуляторным руслом в слезных железах у лабораторных крыс и человека. Также провести сравнительный морфологический и стереоморфологический анализ полученных данных и сформулировать положение о закономерностях в структуре слезных желез лабораторных крыс и человека.
Ключевые слова: слезная железа, железа Гардера, порфирины, выводной проток, гемомикроциркуляторное русло, стереоморфологический анализ.
Слезный аппарат грызунов, в особенности крыс, является сравнительно хорошо изученным объектом, история изучения которого наиболее полно представлена в работах Левенталя и Кульчицкого (1894,1911г.). Уже в то время была получена подробная информация о сравнительной анатомии, гистологии, онтогенезе, возрастных изменениях слезных желез у животных разного пола.
Параллельно во времени добывались данные о строении слезных желез у человека. Особенно подробно, как у человека, так и у крысы, были описаны пути отведения слезы от глаза в носослезный канал, возрастные изменения секреторного эпителия слезных желез крыс, больших слезных желез человека (пальпебральная и орбитальная доли). Напротив, до настоящего времени, слезообразующая и слезовыдели-тельная части слезного аппарата человека (система концевых отделов и выводных протоков железы) являются одним из малоизученных органных микрокомплексов [2;9;11 ;27].
Вместе с тем в последние два десятилетия вновь значительно вырос интерес к изучению морфологии слезных желез человека и проведению экспериментальных исследований структуры желез у лабораторных животных, что связано с участившимися случаями диагностирования в практике офтальмологии синдрома "сухого глаза" у сравнительно молодых людей
[14;15;17]. Одной из современных причин этого является длительная работа за компьютером. Ранее этот синдром был характерным в основном для пожилых людей (синдром старческого сухого глаза) и связан с процессами "старения" слезного аппарата человека. «Синдром сухого глаза» безусловно представляет на сегодняшний день острую проблему современной морфологии, патоморфологии и офтальмологии [12;26]. В связи с этим, появляются работы, посвященные моделированию таких патологических состояний слезного аппарата на лабораторных животных [20], для чего в экспериментах наиболее часто используются лабораторные беспородные крысы.
Удивительно также то, что при наличии огромного количества работ, посвященных экспериментальным исследованиям слезных желез на лабораторных животных и человеке, не опубликованы сравнительные и обобщающие данные, посвященные особенностям и закономерностям системы их выводных протоков. В частности, это касается вопросов их стерео-морфологии, а также синтопии экскреторных протоков с различными звеньями гемомикро-циркуляторного русла (ГМЦР). Редким исключением из этого являются работы, появившиеся в последнее время, посвященные изучению слезных желез человека с точки зрения стереомор-фологии при их нормальном функционировании
[6;10;18;22;23].
Знание нормального морфологического и функционального состояния того или иного органа интересно и важно с общебиологической точки зрения, но также и в патоморфологии при постановке правильного диагноза. В этой связи необходимо отметить, что при злокачественных новообразованиях слёзной железы, как у животных, так и у человека, прогноз крайне неблагоприятен - часто наблюдаются рецидивы, прорастание в соседние структуры, гематогенное метастазирование в отдалённые органы. В связи с этим, своевременная качественная пато-морфологическая диагностика злокачественных новообразований слёзной железы, основанная на обширных, все время обновляемых знаниях ее морфологической нормы, является еще одной из актуальных проблем медицины и биологии.
Поэтому, целью нашей научной работы является изучение морфофункциональной характеристики путей слезоотведения при нормальном функционировании слезных желез, представляющие у крыс и человека эпителиальные разветвленные трубки от их концевых расширений до главного (одного или нескольких) выводных протоков с целью сравнения и установления общебиологических и стереоморфологиче-ских закономерностей их структуры [7], которые в определенной степени, должны оказывать влияние на продвижение секрета по разветвлениям экскреторных протоков.
Прежде чем рассматривать современные научные данные о слезных железах и других железистых образованиях орбиты у крыс, считаем необходимым коротко изложить устоявшиеся во времени научные представления об их нормальной морфологии, поскольку эти данные детализованы в основном в старой литературе и труднодоступны современному исследователю.
Давно известно, что грызуны, в том числе крысы, имеют две парные слезные железы. Одна из них, более скромных размеров - интраор-битальная (инфраорбитальная), более крупная - экзорбитальная. Последняя расположена вне глазницы вентральнее и чуть впереди от слухового прохода. Протоки этих желез, прежде чем открыться общим отверстием в конъюнктиваль-ный мешок в наружном углу глаза, сливаются вместе [4]. Обе слезные железы крыс происходят из одного эмбрионального зачатка, выполняют одну и ту же функцию и поэтому имеют весьма сходное гистологическое строение по типу серозных тубуло-альвеолярных желез [8]. Кроме того, обе демонстрируют сходный спектр возрастных изменений своей морфологии [25].
Необходимо напомнить, что подавляющее большинство исследователей из двух названных слезных желез крыс традиционно выбирали в качестве объекта изучения экзорбитальную слезную железу в силу ее более крупных размеров и удобного расположения, способствующего
легкому забору биопсийного материала для морфологического исследования. Эта железа из-за своей локализации (в удалении от глазницы и недалеко от околоушной слюнной железы) известна в научной литературе под следующими названиями: железа внеглазничная, экзорби-тальная, экстраорбитальная, наружная орбитальная, glandula praepatotideus и др. Называют ее также по имени исследователя, одним из первых описавшего эту железу у крыс и некоторых других животных (Loewenthal, 1900), поэтому в англоязычной литературе она иногда фигурирует как железа Левенталя (Loewenthal gland), хотя приоритет ее открытия оспаривался в свое время Н.К. Кульчицким [1]. Внеглазничная слезная железа - gl. lacrimalis exorbitalis - светло-красноватого цвета, расположена на латеральной поверхности морды крысы каудальнее жевательной мышцы. Каудовентрально примыкает к околоушной железе и лежит дорсолатераль-нее околоушного протока. Железа имеет свой собственный проток, идущий ростродорсально над внутриглазничной слезной железой и объединяющийся с ее протоком. В дорсолатераль-ной области глаза он открывается в конъюнктиву. Основные связанные с возрастом изменения в экзорбитальной слезной железе крыс происходят после наступления полового созревания и являются одними из самых ярких постнатальных трансформаций, видимых на светооптическом уровне у этих животных в норме. Такие изменения в той или иной степени возникают у всех лабораторных крыс и свойственны животным самых разных линий [13;15;19]. Заметные возрастные изменения встречаются в железах лабораторных, но не диких крыс; вероятно, развитие трансформаций связано с определенным генотипом лабораторных животных. Все изменения, как в слезных железах крыс, так и человека, в зависимости от компартмента, где они локализованы, можно разделить на паренхиматозные (происходящие в ее ацинусах и протоках) и стромальные (происходящие в соединительнотканном интерстиции железы).
Внутриглазничная слезная железа - gl. lacrimalis intraorbitalis - менее крупная, темно-коричневого цвета, расположена сверху и снаружи глазного яблока у латерального угла глаза. Выводные канальцы - ductuli excretorii - соединяют слезную железу с медиальным углом между верхним и нижним веком [24]. Сюда поступает секрет слезной железы - слезная жидкость. Наиболее достоверные данные свидетельствуют о том, что несмотря на то, что данные железы находятся в разных местах, их наиболее крупные по диаметру коллекторные выводные протоки чаще всего сливаются и открываются в конъюнктивальный мешок общим протоком в одном месте, а именно в области наружного угла глазницы. Выделяющаяся по протокам слеза представляет собой прозрачную бесцветную жидкость, постоянно смачивающую роговицу и
конъюнктиву и является продукцией секреции обеих слезных желез и некоторых других. Отток слезы осуществляется через носослезный проток - d. nasolacrimalis в носовую полость.
Необходимо также сказать, что глазницы крыс в своих пределах имеют еще одно железистое образование - это так называемые железы Гардера. Они вырабатывают секрет богатый ли-пидами и порфиринами [1;4]. Данные железы у человека отсутствуют, а по другим сведениям -находятся в зачаточном состоянии.
Гардерова железа была впервые описана швейцарским врачом Джоном Гардером в 1694 году. Эта железа имеется у всех позвоночных, которые обладают мигательной перепонкой или третьим веком. Особенно велика она у копытных и грызунов. Данная железа располагается во внутреннем углу глазной орбиты и окружает зрительный нерв. Гардерова железа содержит фоторецепторы и может обладать чувствительностью к свету. Но. в отличие от глаза, железа не воспринимает изображение, а только чувствует свет, и может оказывать влияние на механизм регуляции работы эпифиза мозга. Гарде-рова железа относится к экзокринным железам. Ее секрет обволакивает глаз и стекает в нос вместе со слезой по носослезным каналам. Во время умывания крысы могут смазывать выделившийся секрет и распределять его лапами вокруг носа и глаз. Секрет гардеровой железы содержит в себе мелатонин и порфирин. Также гардерова железа производит множество липи-дов, которые служат для смазывания глаза и мигательной перепонки.
Какова же роль порфирина и что это за субстанция? Порфирин представляет собой органическое соединение, молекула которого включает в себя четыре пиррольных кольца. Пиррол - это ароматический пятичленный азотистый ге-тероцикл (С4Н^). Порфирины образуют большую группу органических соединений, встречающихся повсеместно в живом мире. Отличительной особенностью порфиринов является их способность связывать металлы. Четыре атома азота в центре молекулы порфирина могут захватывать и удерживать ионы металлов, таких как магний, железо, цинк, никель, кобальт, медь, серебро. В зависимости от того, какой именно металл входит в состав молекулы, порфирины имеют разные свойства и названия. Так, если в центре молекулы находится атом железа, то порфирин называется ферропорфи-рином или гемом. Гемоглобин, молекула, входящая в состав эритроцитов крови и способная связывать кислород, имеет в своем составе четыре таких гемма. Атом железа, имеющийся в этих группах, как раз и связывает кислород.
Молекула хлорофилла также представляет собой порфирин, в центре которого находится ион магния, например, витамин В12 - это молекула порфирина с ионом кобальта в центре.
Таким образом, порфирины являются чрез-
вычайно важной группой органических веществ, которые встречаются у большинства видов животных и растений, и выполняют разнообразные функции.
Для исследователей, работающих с крысами, наибольший интерес представляет только один из порфиринов, находящийся в секрете гарде-ровой железы, который можно заметить вокруг глаз и носа у крыс. Эти секреты по виду напоминают кровь и потому могут быть неверно истолкованы исследователями, недостаточно знакомыми с этими животными. Выделение небольшого количества порфирина является нормальным, в то время как его повышенные количества могут свидетельствовать о нарушениях в организме, таких как стресс, болезнь или неполноценное питание.
Порфирин, производимый гардеровой железой крыс, представляет собой в основном про-топорфирин, не имеющий центрального иона металла. Порфирин накапливается внутри железы [16], его выделение увеличивается с возрастом, у более старших крыс порфирина вырабатывается больше, чем у молодых. Однако в возрасте около двух лет количество выделяемого порфирина начинает сокращаться [19]. Необходимо сказать, что в настоящее время функции порфирина, выделяемого гардеровой железой крыс, изучены достаточно слабо, как, впрочем, и морфология самой железы. Возможно, порфи-рин имеет функцию защиты от света, так при помещении крыс на свет количество вырабатываемого порфирина возрастает [13]. Порфирин также может регулировать активность определенных видов энзимов внутри гардеровой железы. Когда гардерова железа крыс начинает производить повышенное количество порфирина, тогда слезы, содержащие порфирин, вытекают из глаз и засыхают вокруг них, образуя темно-красную корку. Сухой порфирин в ультрафиолетовом свете имеет розовый цвет. Секрет также попадает из глаз в нос и может вытекать из ноздрей, засыхая вокруг них. Крысы могут размазывать высохший порфирин при умывании, в результате чего появляются красные пятна на лапах и морде зверьков. Выделение большого количества порфирина, как мы уже говорили, указывает на наличие в организме скрытых проблем. Сильный стресс, такой как, например, защемление частей тела, лишение сна, воды, постоянная боль, нахождение в зоне действия электромагнитных полей также приводят к усиленному выделению порфирина. Время начала выделения порфирина после воздействия стрессового фактора различно. Например, крысы с защемленными конечностями могут начинать выделять порфирин через 3-40 минут. И чем крупнее крыса, тем быстрее начинается выделение порфирина. В рассматриваемом случае секрет продолжает выделяться и примерно около двух часов после освобождения животного [3].
Повышенное выделение порфирина также может быть связано с различными болезнями: микоплазмозом, дифтерией, сальмонеллезом и другими. Конечно же, это не полный список причин, которые могут приводить к повышенному выделению порфирина, но чаще всего это все-таки является неспецифической реакцией на стресс, боль, болезни и неправильное питание.
Слезные железы крыс, согласно литературным данным, резко отличаются от желез Гарде-ра по своему гистологическому строению и типу секрета. Выводные протоки данных желез находятся в противоположных углах глаза крысы. Установлено, что гардерова железа и слезные железы крыс развиваются из разных эмбриологических источников [3]. Интересным, однако, является тот факт, что с возрастом паренхима и строма слезных желез крыс претерпевает изменения, заключающиеся в трансформации паренхимы, в частности ее ацинусов в ацинусы, похожие на ацинусы желез Гардера. Данная трасформация структуры слезных желез получила название «гардеризация». Необходимо сказать, что данная трансформация структуры практически не описана исследователями. Кроме того, с возрастом у крыс происходит изменение формы эпителиальных экскреторных протоков, исчезновение их концевых расширений и придание им формы трубок. Данные морфологические преобразования формы выводных протоков получили в морфологии название «дукту-ляризация». В тоже время в строме слезных желез крыс с процессами их старения наблюдаются явления схожие с явлениями, происходящими в железах людей пожилого возраста, а именно: лимфоцитарная инфильтрация и фиброз, обуславливающие при старении слезного аппарата человека синдром «сухого глаза».
Трансформация паренхимы включает в себя также морфологическую дисплазию - цитомега-лию, кариомегалию, клеточный и ядерный полиморфизм концевых отделов слезной железы крыс. Все эти трансформации носят гормоноза-висимый характер и проявляются, в зависимости от пола животного, чаще встречаясь у самцов. На финальных стадиях возрастных изменений ткань слезной железы самцов морфологически симулирует неоплазму, представляя собой уникальный случай изолированного проявления неопластической морфологии без прочих свойств опухолевой ткани. Это позволяет рассматривать слезные железы крыс как интересный, нетривиальный объект для изучения тканевой и клеточной атипии.
В строме желез, как уже упоминалось, у крыс с возрастом в слезных железах наблюдается процесс сходный с процессом старения желез у человека, обуславливающим патогенез «сухого глаза». В этой связи данные изменения в слезных железах крыс, а также в железах гардера преимущественно у самцов, могут служить моделью заболеваний слезного аппарата глаза
человека. Было бы интересным выяснить, каковы допустимые на самом деле границы такой экстраполяции. Для этого, по нашему мнению, необходимо изучить и установить общебиологические и специфические черты пространственной организации системы выводных протоков и их концевых отделов в синтопическом единстве с гемомикроциркуляторным руслом в слезных железах у лабораторных крыс и человека, для чего необходимо выявить закономерности трехмерной (3D) организации выводных протоков в железах крыс и человека в норме, а также осуществить морфометрическое исследование железистых компонентов и звеньев ГМЦР. Провести сравнительный морфологический и стерео-морфологический анализ полученных данных на примере слезных желез крыс и человека и, опираясь на данные литературы, сформулировать положение о закономерностях и различиях в структуре слезных желез лабораторных крыс и человека увязав их с механизмом секретообра-зования и секретовыделения.
References
1. Akayevskiy AI, Yudichev YUF, Seleznev SB. Anatomiya domashnikh zhivotnykh [Anatomy of domestic animals]. M.: Akvarium-Print, 2009. 638 p. (Russian)
2. Sherstyuk OA, Pilyugin AV, Deinega TF. et al. Anatomicheskiye i stereomorfologicheskiye osobennosti sleznykh i malykh slyunnykh zhelez cheloveka [Anatomical and stereomorphological features of the human lacrimal and small salivary glands]. Poltava, 2017. 148 p. (Russian)
3. Bodyak ND. Garderova zheleza - model' dlya izucheniya later-al'nogo ekzotsitoza [Harderian gland - a model for the study of the lateral exocytosis]. XIY Conference on Electron Microscopy. Cher-nogolovka. M.: ICAN. 1992. p. 92. (Russian)
4. Lebedev AV, Chervanev VA, Troyanovskaya LP. Veterinarnaya oftal'mologiya [Veterinary Ophthalmology]. Moscow: Kolos, 2004. 200 p. (Russian)
5. Mamardashvili NZh. Sintez porfirinov na osnove dipirrolilmetanov [Synthesis of porphyrins based on dipyrrolylmethanes]. Successes of Chemistry. 2000;69 (4):307-323. (Russian)
6. Sherstyuk OO, Svintsyts'ka NL, inventors; Higher State Educational Institution "Ukrainian Medical Stomatological Academy", assignee. Method of study of human lupus. Ukraine patent 45222. 2009.10.26. (Ukrainian).
7. Ustenko RL, Sherstyuk OA, Svintsitskaya NL, et al. Stereomorfolo-hycheskyy podkhod k yzuchenyyu mykroanatomycheskykh struktur prostaty cheloveka [Stereomorphological approach to the study of microanatomic structures of the human prostate] Bulletin of Biology and Medicine. 2013; 2 (101): 213-218. (Russian)
8. Ham A, Kormak D. Gistologiya [Histology]. MG: Mir, 1983. V.2. P. 25-35. (Russian)
9. Sherstyuk OO, Bezkorovayna IM, Kononov BS, et al. Mikroskopichna budova orbital'noyi chastky sliznoyi zalozy lyudyny zriloho viku [Microscopic structure of the orbital lacrimal gland of a mature person]. Visnyk problem biolohiyi i medytsyny. 2016;4(133):318-320.(Ukrainian)
10. Sherstyuk OA, Svyntsytskaya NL, Pylyuhyn AV. Morfolohycheskaya kharakterystyka vyvodnykh protokov sleznoy zhelezy [Morphological characteristics of the excretory ducts of the lacrimal gland]. Svit medytsyny ta biolohiyi. 2009;3:188-190. (Russian)
11. Sherstyuk OA, Svyntsytskaya NL, Pylyuhyn AV. Skorochuval'ni elementy vyvidnykh protok sl'ozovoyi zalozy lyudyny [Reducing elements of the outflow ducts of the human's lupus]. Visnyk problem biolohiyi i medytsyny. 2009;4:140-142. (Ukrainian)
12. Sherstyuk OA, Svyntsytskaya NL, Deynega TF, et al. Sovremennyye predstavleniya o morfologii i funktsii bol'shikh i malykh sleznykh zhelez cheloveka [Modern concepts about the morphology and function of human large and small lacrimal glands]. Svit meditsini ta biologn. 2009;4:171-175. (Russian)
13. Batista, T.M., Tomiyoshi, L.M., Dias, A.C., et al., Age-dependent changes in rat lacrimal gland antioxidant and vesicular related protein expression profiles, Mol. Vis. 2012;18:194-202.
14. Barabino S. Animal models of dry eye, Arch. Soc. Esp. Oftalmol., 2005; 80(12):695-696.
15. Chen C-Y, Wu K, MacVeigh M, Pidgeon M, Schechter J, Hamm-Alvarez SF. Rab3d Knockout Mouse Lacrimal Glands Exhibit
16.
17.
18.
19.
20.
Secretory Vesicles with Increased Vesicle Diameter and Aberrant Morphology. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2006;47:195-8. El-Fadaly AB, El-Shaarawy EA, Rizk AA, Nasralla MM, Shuaib DM. Age-related alterations in the lacrimal gland of adult albino rat: a light and electron microscopic study. Ann Anat. 2014; 196: 336-351. Hamid M, Akhter N, Muzaffar S, Hussain T. Age-Related Histological Study of Human Lacrimal Glands. J.R.M.C. 2015;19:74-77
Hryn VH, Sherstiuk OO, Piliuhin AV, et al. Multilayer plastic reconstruction in the three-dimensional study of the human lacrimal gland. Svit medytsyny ta biolohiyi. 2018; 1 (63): 113-116. Gancharova OS, Manskikh VN. Age-Related Changes in the Rat Lacrimal Gland: Impressive Morphology and Enigmatic Nature. Russian Journal of Developmental Biology. 2014; 45(5): 235-242. Kawashima M, Kawakita T, Okada N, et al. Calorie restriction: a new therapeutic intervention for age-related dry eye disease in rats. Biochem Biophys. Res. Comm. 2010; 397(4): 724-728.
21. Menaka R, Puri G. Role of Lacrimal Gland in Tear Production in Different Animal Species. A Review. Int. J. Livest. Res. 2015; 3: 4042.
22. Obata H, Tsuru T. Age-Related Change of Myoepithelial Cells in Human Lacrimal Gland. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2006; 47: 1946.
23.
24.
25.
26.
27.
Obata H. Anatomy and histopathology of the human lacrimal gland Cornea. 2006; Dec; 25 (10 Suppl 1) : 82-89.
Paulsen F, Langer W, Hoffmann W, Berry M. Human lacrimal gland mucins. Cell Tissue Res. 2004; 316(2):167-77. Tsybul'kin AG, Gorskaya TV, Allyamova LM, et al. The initial stages of development of salivary and lacrimal glands of the white rat, Fundam. Issled., 2011 ; 9(3): 550-552.
Schwartz M, D'Aversa G, Bloomenstein M, Walt J, Satram-Hoang S. Ocular Co-Morbidity Burden of the Dry Eye Patient. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2008; 49: 5321.
Svintsytska NL, Hryn VH. Morfofunctional structure of the skull: study guide. Poltava, 2016. 172 p.
Реферат
МОРФОЛОГ1Я СЛ1ЗНИХ I ГАРДЕРОВО1 ЗАЛОЗИ ЛАБОРАТОРНИХ ЩУР1В Каценко А.Л., Шерстюк О.О., Устенко Р.Л., Свшцицька Н.Л., Птюпн А.В.
Ключовi слова: ^зна залоза, Гардерова залоза, порфiрини, вивщна протока, гемо1^кроциркуляторне русло, стереоморфолопчний аналiз.
Сл1зний апарат гризушв, особливо щур1в, е пор1вняно добре вивченим об'ектом, ютор1я вивчення якого найбтьш повно представлена в роботах Левенталя i Кульчицького (1894,1911р.). Паралельно в час здобувалися вщомосп про будову ^зних залоз у людини. Особливо детально, як у людини, так i у щура, були описан шляхи вщведення сльози вщ очного яблука в носо^зний канал, вiковi змши секреторного ештелш ^зних залоз щурiв, великих ^зних залоз людини (пальпебральна i орб^альна частки). Навпаки, сльозоутворююча i сльозовидтьна частини ^зного апарату людини (система кш-цевих вщд^в i вивщних проток залози) е одним з маловивчених органних мiкрокомплексiв. Метою нашоТ науковоТ роботи е вивчення морфо-функцюнальноТ характеристики шляхiв сльозовщведення при нормальному функцюнуванш ^зних залоз. Щури мають двi пары с^зы залози. Одна з них, бтьш скромних розмiрiв - штраорб^альна (iнфраорбiтальна), бiльш велика - екзорб^альна. Протоки цих залоз, перш ыж вiдкритися загальним отвором в кон'юнктивальний мшок в зовнiшньому кутi ока, зли-ваються разом. oбидвi с^зы залози щурiв походять з одного ембрюнального зачатка, виконують одну i ту ж функцiю, i тому мають досить схожу пстолопчну будову. ^м того, обидвi демонструють подiб-ний спектр вiкових змiн своеТ морфологiТ. Очнi ямки щурiв в своТ'х межах мають ще одне залозисте утворення - це, так зваш, Гардеровi залози. Вони виробляють секрет багатий на лтщи i порфiрини. Данi залози у людини вщсутш, а згiдно iнших ведомостей знаходяться в зародковому станi. Змши в слн зних залозах щурiв, а також в Гардерових залозах можуть слугувати моделлю захворювань ^зного апарату людини. Для такоТ екстраполяцп вважаемо за необхiдне вивчити риси просторовоТ органiзацiТ системи вивiдних проток та Тх кiнцевих вiддiлiв в синтошчнш едностi з гемомiкроциркуляторним руслом в ^зних залозах лабораторних щурiв i людини. Також провести порiвняльний морфологiчний i стереоморфологiчний аналiз отриманих даних i сформулювати положення про закономiрностi в струк-турi слiзних залоз лабораторних щурiв i людини.
Summary
MORPHOLOGY OF LACRIMAL GLANDS AND HARDERIAN GLAND IN LABORATORY RATS Katsenko A.L., Sherstyuk O.A., Ustenko R.L., Svintsytska N.L., Piliuhin A.V.
Key words: lacrimal gland, Harderian gland, porphyrines, excretory duct, hemomicrocirculatory bed, stereomorphological analysis.
Lacrimal apparatus of laboratory rodents and, in particular, rats has been comparatively well studied. The history of its research was presented in works by Levental and Kulchitskyi (1894, 1911.). The structure of human's lacrimal glands has being studied and completed. Much attention was paid to the drainage of tears from the lacrimal sac to nasolacrimal canal in the humans and rats, age-related changes of secretory epithelium in lacrimal glands of rats, detailed study of the major lacrimal glands in humans (palpebral and orbital lobes). Otherwise, tear-producing and tear-secreting parts of human lacrimal apparatus are understudied organ microcomplexes. This research paper descrides the morphological and functional peculiarities of tear secretion ducts under normal functioning of lacrimal glands.Rats have two paired lacrimal glands. One of glands, smaller in size, is intraorbital (infraorbital) and another, larger, is exoorbital one. Exoorbital gland is larger than intraorbital one.
Ducts of these glands join before opening through common duct into conjunctival sac in the external corner of the eye. Both lacrimal glands of rats originate from common embryonic germ and perform the same function and thus, are of the similar histological structure. Moreover, they demonstrate similar spectrum of age-related changes in the morphology. Orbits of rats whithin their boundaries form one more glandular formation, Harderian glands. They release the secretion, rich in lipids and porphyrines. Some scientists report that there no glands like those in humans, but others support the idea that they are in their germinal state. Changes in rats' lacrimal glands and in Harderian glands can serve as models for simulating diseases of
human lacrimal apparatus. This modeling requires in-depth study of spatial organization of the system of excretory ducts and their terminal excretory ducts in syntopic unity with hemomicrocirculatory bed of lacrimal glands in lab rats and humans. It is also important to carry out comparative morphological and stereomor-phological analysis of data received, and to describe the peculiarities of the structure of lacrimal glands in lab rats and person.
D0l:10.31718/2077-1096.18.4.137
УДК 616.37-006:616.367-002
Флатов М. С., Довгань Р.С., Макаренко О. М.
ЗМ1НИ М1КРОБ1ОМУ ПРИ ОБТУРАЦП ЖОВЧНИХ ШЛЯХ1В
ВНАСЛ1ДОК ПРОГРЕСУЮЧОГО РОСТУ ПУХЛИНИ П1ДШЛУНКОВО1 ЗАЛОЗИ
Нацюнальний медичний уыверситет iм.О.О.Богомольця, м. Кшв
У статтi представлений огляд лтератури з метою узагальнення сучасних знань про мкробом, зокрема, його змни при канцерогенезi п'дшлунково'У залози та наступних ускладненнях. Зроблено висновки, що патогеннi бактер'УУ впливають на цей процес, актив'зуючи в'дпов'дн'! рецептори та збергаючи запалення, асо^йоване iз виникненням раку пдшлунковоУ залози. При обструкцИ пухли-ною жовчних шлях'т виявлено, що на метабол'зм органзму можуть впливати мiкробнi модиф'кацИ жовчних кислот, як ведуть до змни сигнал'зування через рецептори жовчних кислот, i також р'зн'! змни складу мiкробiому. Керування кишково'У мiкробiоти за допомогою проботиюв дозволяе змiнити метабол'зм жовчних кислот за рахунок FXR та GPBAR1 сигнал'зування. Дослiдження показали, що обтура^я жовчних шляхiв, яка блокуе надходження жовчi в кишечник веде до п/'двищеного росту ба-ктерiй i транслокацИ бактерш до тонкоУ кишки. Доведено, що патогенн мiкроорганiзми здатн дi-яти як канцерогеннi агенти псля нфкування п'дшлунково'У залози. Результати досл'джень показали, що мкробна рiзноманiтнiсть кишечника значно знижуеться при раку п'дшлунково'У залози i ця пухлина характеризуеться ункальним мiкробним профлем. Зокрема, мiкробнi змни при раку пд-шлунковоУ залози характеризувались збльшенням клькох представник'т, таких як Veillonella, Klebsiella i Selenomonas, та LPS-продукуючих бактерй, включаючи Prevotella, Hallella та Enterobacter. Збльшення клькостi бактерй, що продукують ЛПС, пдтверджують важливу пато-генетичну роль дисбактерозу в посередництвi хронiчного запалення. Окислювальне ушкодження, активуючи шлях NF-kB, сприяють синтезу i секрецИ прозапальних цитокiнiв. Таким чином, тривале хронiчне запалення та окислювальнi ушкодження беруть участь у розвитку раку п'дшлунково'У залози. Тому, важливим е пошук нових напрямюв впливу на даний патолог'чний стан, в тому числi i шляхом використання проботиюв. Саме ц препарати здатн змнювати мкробом, (ре)презентуючи бактер'УУ, асоц/'йован/' зi зниженим канцерогенезом п'дшлунково'У залози.
Ключов1 слова: рак, глдшлункова залоза, м1кробюм, жовчн кислоти, пробютики
Рак пщшлунковоТ залози (ПЗ) мае надзвичай- бтьшосп па^енпв основною метою лкування но агресивний i дуже несприятливий прогноз. залишаеться палiативне лкування та докладан-Лише 25% пухлин може бути хiрургiчно видале- ня зусиль щодо подовження життя i максимально в момент постановки дiагнозу. Близько 95% ного покращення його якост [2]. Обструк^я жов-пухлин е аденокарциномами з залозистих, про- човивщних проток внаслщок злоякюного проце-токових або ацинарних кл^ин екзокринноТ час- су е викликом i у дiагностицi, i в лкуванш па^ен-тини ПЗ [1]. Аденокарцинома протоки пщшлун- ^в. У близько 70% хворих на рак пщшлунковоТ' ковоТ залози - надзвичайно злоякюне утворення, залози обструк^я виявляеться рашше, ыж вста-що приводить до летальних наслщш. Хiрургiчне новлюеться основний дiагноз [3]. Даний симптом лкування залишаеться единим видом лкування часто слугуе першою ознакою хвороби - класич-з потенцшно сприятливим прогнозом. На жаль, ний прояв безболюно'Т жовтяниц при аденокар-через шзне виявлення захворювання, лише 15- циномi протоки пщшлунковоТ' залози. Але вш 20% па^ен^в можуть стати кандидатами на хь може виникати i впродовж прогресування пухли-рурпчне втручання, але прогнози у цьому випад- ни шсля встановлення вщповщного дiагнозу. Ль ку невтшш нав^ь шсля повноТ резекцп ПЗ. кування обструкцп е загально показаним для по-П'ятирiчне виживання шсля панкреатодуоденек- легшення симптомiв захворювання i покращення томи коливаеться мiж 25-30% у разi вщсутносп прогнозу щодо смертность [4] метастазiв i 10% у разi ураження репональних У представленому оглядi розглядаеться лiмфовузлiв. З шшого боку, досягнення радюло- вплив обструкци жовчовивщних шляхiв внаслн гiТ покращили можливост виявлення раку пiд- док Т'х компресiТ пухлиною головки пщшлунковоТ шлунковоТ залози на раннiх стадiях, дозволяючи залози на змiни, що вщбуваються у мiкробiомi здiйснювати бтьш радикальнi хiрургiчнi втру- людини.
чання у па^ен^в, коли вони е виправданими. У Рак пщшлунковоТ залози е одним iз найбтьш
