CC BY
52
МОРФОЛОГИЧЕСКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА ОСТЕОИНТЕГРАЦИИ ДЕНТАЛЬНЫХ ИМПЛАНТАТОВ
Остапович Алексей Андреевич, кандидат медицинских наук, доцент кафедры ортопедической стоматологии Белорусского государственного медицинского университета, Минск
Ивашенко Сергей Владимирович, доктор медицинских наук, профессор кафедры ортопедической стоматологии Белорусского государственного медицинского университета, Минск Гузов Сергей Андреевич, кандидат медицинских наук, доцент кафедры патологической анатомии Белорусского государственного медицинского университета, Минск
Беззубик Сергей Дмитриевич, кандидат медицинских наук, Республиканский научно-практический центр «Неврологии и нейрохирургии», Минск, Беларусь
Клименко Владислав Владимирович, хирург-стоматолог, челюстно-лицевой хирург ООО «ТИРИСАН», Минск, Беларусь Гамзелева Татьяна Вадимовна, научный сотрудник Института порошковой металлургии им. академика О.В. Романа, Минск, Беларусь
Aliaksei Astapovich, PhD, Associate Professor of the Department of Prosthetic Dentistry of the Belarusian State Medical University, Minsk Sergei Ivashenka, MD, Professor of the Department of Prosthetic Dentistry of the Belarusian State Medical University, Minsk Sergei Guzov, PhD, Associate Professor of the Department of Pathological Anatomy of the Belarusian State Medical University, Minsk Sergei Bezzubik, PhD, State Centre of Neurology and Neurosurgery of Health Ministry of Republic of Belarus, Minsk
Vladislav Klimenko, maxillofacial surgeon, Minsk, Belarus Tatiana Gamzeleva, State Scientific Institution «Powder Metallurgy Institute», Minsk, Belarus Morphological characteristics of osseointegration of dental implants
Резюме. Изучены морфологические аспекты остеоинтеграции дентальных имплантатов.
Материалы и методы. Экспериментальным животным (кроликам породы шиншилла) сбоку от центральных резцов нижней челюсти устанавливали винтовой дентальный имплантат 3х5 мм из титана GRADE4 с пассивной резьбой и гладкой поверхностью. После окончания эксперимента их выводили из опыта под наркозом на 10-е, 30-е, 45-е, 60-е и 90-е сутки. Для гистологического исследования брали фрагмент нижней челюсти опытных животных с дентальным имплантатом. Изучали препараты на световом микроскопе Leica DMD 110 c выводом изображения на монитор персонального компьютера. Исследование структуры недекальцинированных шлифов поперечного сечения образцов дентальных имплантатов в костной ткани проводили на аттестованном сканирующем электронном микроскопе высокого разрешения«Mira»фирмы«Tescan»(Чехия).
Результаты. На 10-е сутки после операции дентальной имплантации дентальный имплантат окружен некротически измененными тканями. Активное формирование молодой костной ткани начинается через месяц после операции дентальной имплантации. Дентальные имплантаты на 30-е сутки после их установки покрыты пленкой из преостеобластов. Скапливаясь, преостеобласты преобразуются в остеобласты, которые созревают к 45-м суткам после операции дентальной имплантации. Остеоинтеграция дентального имплантата завершается к 90-м суткам образованием тонкой соединительнотканной оболочки на поверхности дентального имплантата, которая соединяется с компактной костной тканью вокруг дентального имплантата множественными костными балочками. Ключевые слова: дентальная имплантация, костная ткань, остеоинтеграция.
Современная стоматология. — 2020. — №4. — С. 50-55. Summary. The morphological aspects of osseointegration of dental implants have been studied.
Materials and methods. A 3x5 mm GRADE4 titanium screw dental implant wtth a passive thread and a smooth surface were placed in the experimental animals (Shinshilla) in lower jaw. After the end of the experiment, they were removed from the experiment under anesthesia on days 10,30,45,60 and 90. A fragments of the lower jaw of experimental animals with a dental implant were taken for histological examination. The preparations were studied using a Leica DMD 110 light microscope with an image display on a personal computer monitor. The study of the structure of non-calcified thin sections of the cross-section of samples of dental implants in the bone tissue were carried out on high-resolution scanning electron microscope "Mira" from 'Tescan" (Czech Repubiic).
Results. On the 10th day after the dental implantation, the dental implant is surrounded by necrotic altered tissues. The active formation of young bone tissue begins one month after the dental implantation. Dental implants on the 30th day after their installation are covered with a film of preosteoblasts. Accumulating, preosteoblasts are transformed no osteoblasts, which mature by the 45th day after the dental implantation operation. Osseointegration of the dental implant ends by the 90th day with the formation of a thin connective tissue sheath on the surface of the dental implant, which connects to the compact bone tissue around the dental implant by multiple bone trabeculae. Keywords: dental implantation,bone tissue, osseointegration. Sovremennaya stomatologiya. — 2020. — N4. — P. 50—55.
Применение дентальных имплантатов для опоры съемных и несъемных ортопедических конструкций активно развивается в стоматологии.
Накоплен большой экспериментальный и клинический опыт установки дентальных имплантатов, разработаны теории остеоинтеграции. Установлено, что для
успешного функционирования дентального имплантата в костной ткани должны завершиться процессы регенерации. Наиболее благоприятным итогом регенерации
является контактный остеогенез, при котором последовательно происходят процессы остеокондукции, формирования молодой костной ткани и ее и структурная перестройка. Это получило название остеоинтеграции [1, 4, 11, 13].
Этап остеокондукции является наиболее значимым в процессе остеоинтеграции. Во время операции дентальной имплантации создается ложе для имплан-тата, неизбежно нарушается целостность костной ткани, что приводит к кровотечению. Развивается реакция первичного гемостаза. Ввиду незначительности повреждения, особенностей строения капилляров костной ткани и применения анестетиков с вазоконстрикторами при операции дентальной имплантации не происходит быстрого формирования кровяного сгустка и у врача-стоматолога-хирурга остается время для проведения всех необходимых манипуляций по установке дентального имплантата [2, 3, 6, 7]. Образуется пленка из тромбоцитов, эритроцитов и лейкоцитов, которые заполняют пространство между витальной костной тканью и поверхностью дентального имплантата. Тромбоциты, обладая отрицательным электрическим зарядом (-), устремляются к поврежденной поверхности костной ткани, которая приобретает положительный заряд (+). С участием рецепторов они прикрепляются к фактору Виллебранда, коллагену, фибронектину в зоне повреждения. Также белок тромбоцитов имеет активные центры, которые связываются с другими активизированными тромбоцитами и коллагеном. Таким образом, тромбоциты связываются между собой и с участком поврежденной кости [7]. Происходит процесс адгезии и формирования кровяного сгустка, который в течение последующих 10-15 минут уплотняется на поверхности поврежденной костной ткани и уменьшается в объеме до 10% от первоначального размера. В последующем тромбин, образовавшийся из тромбоцитов, инициирует создание фи-бриновых нитей, которые в дальнейшем преобразуются в коллагеновые волокна, на которых будет отстраиваться молодая костная ткань [7, 10, 11].
Следующий этап остеоинтеграции дентального имплантата - формирование молодой костной ткани, который начинается с активизации остеокластов, активно резорбирующих поврежденные и нежизнеспособные участки костной ткани в зоне ее повреждения. В результате минерализированная составляющая костного матрикса вокруг дентального имплантата попадает в кровоток. Витальная органическая составляющая в виде коллагеновых волокон и клеток костной ткани остается [11]. В этот момент гистологически дентальный имплантат находится внутри коллагенового органического матрикса. По мере снижения концентрации медиаторов воспаления остеокласты перестают резорбировать поврежденную костную ткань, а остеобласты наоборот активизируют свою функцию. Постепенно происходит образование молодой костной ткани (чем ближе к поверхности дентального имплантата, тем лучше) [2]. По литературным данным, сроки формирования молодой костной ткани составляют до 45 суток, ее созревание продолжается в среднем еще 15-20 суток [4].
В последующем происходит структурная перестройка костной ткани вокруг дентального имплантата. Нормализуются обменные процессы, минерализация и плотность костной ткани. В зависимости от типа и строения структурная перестройка костной ткани завершается к 90-120-м суткам после дентальной имплантации [4].
Понимание процессов остеоинтеграции позволило обосновать сроки изготовления постоянной ортопедической конструкции с опорой на дентальных имплантатах. Нагружать дентальные имплантаты рекомендуется не ранее чем через три-четыре месяца после их установки [4, 12]. Концепция непосредственной нагрузки дентальных имплантатов предполагает нагрузку дентального имплантата через временную ортопедическую конструкцию с последующей ее заменой на постоянную после завершения процессов остеоинтеграции. При этом необходимо строго учитывать состояние костной ткани, тип кости, наличие парафункций [4]. Для сокращения сроков нагрузки
дентальных имплантатов перспективным представляется разработка методик локального повышения качества костной ткани и улучшения остеоинтеграции дентальных имплантатов для сокращения сроков их нагрузки [11]. На наш взгляд, перспективным представляется магнито-форез ретаболила и глюконата кальция. Проведенные исследования показали эффективность предлагаемого метода. Получены данные, свидетельствующие о более быстром образовании молодой костной ткани на поверхности дентального имплантата при сравнении с процессом в контрольной группе животных. Описание процесса остеоинтеграции дентальных имплантатов в контрольной группе животных также представляет научный интерес.
Цель исследования - изучить морфологические аспекты остеоинтеграции дентальных имплантатов.
Материалы и методы
Эксперимент проведен на 18 кроликах породы шиншилла, самцах, статистически не различающихся по весу и возрасту. Животные разделены на 6 групп, по 3 кролика в каждой. В первой группе изучали морфологическую картину процесса остеоинтеграции в 1-е сутки после операции дентальной имплантации, во второй - на 10-е сутки, в третьей - на 30-е, в четвертой - на 45-е, в пятой - на 60-е и в шестой - на 90-е сутки.
Всем животным под наркозом тиопентала натрия проводили разрез слизистой оболочки нижней челюсти сбоку от центральных резцов, обеспечивали оперативный доступ к альвеолярному отростку челюсти. Используя физиодиспенсер с низкой скоростью вращения (800-1500 об/мин) и интенсивным орошением зоны препарирования физиологическим охлаждающим раствором пилотным сверлом задавали направление для сверления ложа дентального имплан-тата. Сверлом соответствующего диаметра создавали ложе для дентального имплан-тата. Устанавливали зарегистрированный винтовой дентальный имплантат фирмы ООО «Верлайн», 3х5 мм из титана GRADE4 с пассивной резьбой и гладкой поверхностью. Устанавливали заглушку внутрикост-ной части имплантата, края раны ушивали
шовным материалом. Для профилактики воспалительных гнойных осложнений животным однократно внутримышечно вводили 1 200 000 единиц бициллин-3.
Животные находились на стандартном рационе вивария. После окончания эксперимента их выводили из опыта под наркозом на 10-е, 30-е, 45-е, 60-е и 90-е сутки.
Для гистологического исследования брали фрагмент нижней челюсти опытных животных с дентальным имплантатом, наружной и внутренней компактной пластинкой и губчатым веществом фиксировали в 10% растворе формалина. В течение 72 часов декальцинировали в 7% растворе азотной кислоты. Извлекали дентальный имплантат. Исследуемый материал проводили через спирты восходящей концентрации (30-96°) и заливали в целлоидин. Срезы приготавливали в достаточном количестве на ультратоме LKB-III, окрашивали гематоксилином и эозином, по Ван-Гизону и методом MSB. Изучали препараты на световом микроскопе Leica DMD 110 c выводом изображения на монитор персонального компьютера.
Исследование структуры недекальци-нированных шлифов поперечного сечения образцов дентальных имплантатов в костной ткани проводили на аттестованном сканирующем электронном микроскопе высокого разрешения «Mira» фирмы «Tescan» (Чехия) с микрорентгеноспек-тральным анализатором фирмы «Oxford Instruments Analytical» (Великобритания) при увеличении в 200, 500, 1000 раз и более. Для получения изображения состояния костной ткани вокруг дентальных
Рис. 1. 10 суток после операции дентальной имплантации. Некротический детрит, распадающиеся мелкие костные балки. Окраска гематоксилином и эозином. Увеличение х100
имплантатов фрагменты нижней челюсти опытных животных с дентальным имплантатом, компактной пластинкой и губчатым веществом, фиксировали в 10% растворе формалина. Алмазными дисками шлифовали фрагменты костной ткани вместе с дентальным имплантатом до получения плоской поверхности, обильно промывали дистиллированной водой. После высушивания в вакууме на поверхность образцов наносили токопроводящее золотое напыление. В сканирующем электронном микроскопе (СЭМ) исследуемая поверхность облучалась тонкосфокусированным электронным пучком, который, отражаясь от напыления, регистрировался датчиками, преобразующими данные в графическое изображение. Результаты исследования Морфологическое описание Через 10 суток после операции дентальной имплантации костные балки по краю имплантата разрушенные, неровные. Определялась узкая полоска некротически измененных тканей в виде бесструктурного детрита, среди которого выявлялись костные пластинки с примесью сегментоядерных лейкоцитов (рис. 1). В прилежащих костных балках ядра остео-цитов пикнотичны, сморщены, с лизисом хроматина, нередко отмечался распад ядер. Основное вещество костных балок с выраженным накоплением белков -отмечалась метахромазия, которая заключалась в приобретении ярко-красного, даже малинового цвета. В норме основное вещество нежно-голубого цвета. В прилежащих зонах отмечалось расширение Га-версовых каналов, венозное полнокровие
Рис. 2. 30 суток после операции дентальной имплантации. Молодая соединительная ткань, содержащая единичную костную балку. Окраска гематоксилином и эозином. Увеличение х40
с обильными геморрагиями. Межбалочная соединительная ткань рыхлая, отечная с обильными геморрагиями и некротическим детритом ближе к имплантационному каналу и остатками костных балок.
Через 30 суток после операции дентальной имплантации вокруг импланта-ционного канала определялась молодая соединительная ткань в виде полоски. В толщине выявлялись единичные тонкие костные пластинки (рис. 2). Соединительная ткань рыхлая, содержала мелкие сосуды (остатки грануляционной ткани). При окраске на плазменные белки (окраска по MSB) отмечалась значительная эози-нофилия основного вещества костных балок. В костной ткани на некотором удалении от имплантационного канала отмечалась заметная метахромазия как проявление накопления плазменных белков. Здесь же виднелись нежные новообразованные костные балки.
Гистологическая картина через 45 суток после операции дентальной имплантации отличалась от предыдущего случая незначительно. Имплантационный канал окружала преимущественно рыхлая волокнистая соединительная ткань с признаками отека и полнокровия. В жировой ткани появились вновь сформированные незрелые костные балочки, очажки скопления сегментоядерных лейкоцитов. Вновь сформированные костные балки мелкие, бессосудистые, поверхность слоистая, наблюдали пролиферацию остеоида и повышенное количество сосудов (рис. 3).
Через 60 суток после операции дентальной имплантации вокруг им-
Рис. 3. 45 суток после операции дентальной имплантации. Единичные костные балки среди жировой ткани. Окраска гематоксилином и эозином. Увеличение х100
Рис. 4. 60 суток после операции дентальной имплантации. Разрастание костных балок в жировой ткани. Окраска гематоксилином и эозином. Увеличение х40
Рис. 6. Недекальцинированный шлиф дентального имплантата. 10 суток после операции дентальной имплантации. Дентальный имплантат отделен от кости прослойкой из грануляционной ткани. Увеличение х200
плантационного канала определялась преимущественно рыхлая волокнистая соединительная ткань с признаками отека и полнокровия, наличием единичных полиморфноядерных лейкоцитов. Преобладали преимущественно зрелые костные балки богатые сосудами, с наличием круговых колец вокруг сосудов, хорошо видна слоистость, встречались единичные незрелые костные балки (рис. 4).
Через 90 суток после операции дентальной имплантации вокруг имплан-тационного канала определялась относительно тонкая соединительнотканная капсула, содержащая тонкую костную пластинку (рис. 5). Далее следовала соединительная ткань и предшествующая костная ткань, в которой отмечалось
Рис. 5. 90 суток после операции дентальной имплантации. Стенка имплантационного канала сформирована узкой полоской соединительной ткани, за которой расположены грубые костные балки с расширенными 1авер-совыми каналами. Окраска гематоксилином и эозином. Увеличение х40
Рис. 7. Недекальцинированный шлиф дентального имплантата. 10 суток после операции дентальной имплантации. Некротическая ткань на поверхности дентального имплантата. Увеличение х500
расширение Гаверсовых каналов, дистрофические изменения остеоцитов. Сохранялась эозинофилия основного вещества костных балок предшествующей кости, но менее выражена по сравнению с предыдущими сроками. Отек и воспалительные явления отсутствовали.
Описание структуры недекальциниро-ванных шлифов дентальных имплантатов в костной ткани
Непосредственно после операции дентальной имплантации дентальный имплантат погружен в кость. Надкостница, компактная пластинка и губчатое вещество костной ткани плотно и равномерно на всем протяжении прилегали к поверхности дентального имплантата. При увеличении в 5000 раз видно, что между
дентальным имплантатом и поврежденной костной тканью сформировался кровяной сгусток из различимых тромбоцитов, эритроцитов, находящихся в сети разнонаправленных нитей фибрина. Эритроциты в кровяном сгустке между дентальным имплантатом и костной тканью распределялись равномерно, а распределение тромбоцитов неоднородное. Заметно их скопление ближе к поврежденной костной ткани в отличие от поверхности дентального имплантата.
Через 10 суток после операции имплантации дентальный имплантат погружен в кость, в которой различались компактная пластинка и губчатая часть. Дентальный имплантат отделен от кости прослойкой из ткани с низкой дифферен-цировкой клеток, местами некротичными. Видимая прослойка неравномерная по ширине и неоднородная по всей длине. Верхушка дентального имплантата также отдалена от организованной костной ткани. Поверхность самого имплантата выполнена покрыта тонкой пленкой из низкодифференцируемых клеток (рис. 6). При увеличении в 500 раз видно, что пленка имела бугристую поверхность, равномерно, без интервалов покрывала контуры дентального имплантата (рис. 7).
Через 30 суток после имплантации дентальный имплантат также полностью погружен в кость. Расстояние между дентальным имплантатом и организованной костной тканью уменьшилось по сравнению с предыдущим опытом. Это пространство заполнено преостеобласта-ми: округлыми или овальными тельцами, длинной около 3 мкм [8, 9]. Некоторые из этих телец большего размера и находились в лакунах с четкими ровными контурами, повторяющими очертания телец. Поверхность дентального имплан-тата равномерно и на всем протяжении покрыта пленкой из преостеобластов, которые в некоторых местах образовывали скопления в виде шариков около 5-10 мкм. В других местах определялись единичные молодые остеобласты: округлые или овальные образования величиной от 10 до 20 мкм без отростков (рис. 8).
Через 45 суток после операции имплантации анатомическая картина отличается
Рис. 8. Недекальцинированный шлиф дентального имплантата. 30 суток после операции дентальной имплантации. Скопление преостеобластов между дентальным им-плантатом и витальной костью, единичный молодой остеобласт. Увеличение х10000
Рис. 9. Недекальцинированный шлиф дентального имплантата. 45 суток после операции дентальной имплантации. Отростки, направленные к поверхности дентального имплантата. Увеличение х3000
Рис. 11. Недекальцинированный шлиф дентального имплантата. 90 суток после операции дентальной имплантации. Сформированы тонкая компактная кость на поверхности дентального имплантата, трабекулярная кость с выраженными утолщенными балками и широкими межбалочными пространствами. Увеличение х500
от предыдущего опыта незначительно. Периимплантатная щель уменьшилась в размерах. Костная ткань равномерно на всем протяжении прилегала к поверхности дентального имплантата. Между витками резьбы имплантата появлялась костная ткань, по краям которой наблюдались множественные отростки различной длины, направленные к поверхности дентального имплантата (рис. 9). Заметно увеличилось количество зрелых остеобластов: угловатых или пентагональных образований, от 20
Рис. 12. Недекальцинированный шлиф дентального имплантата. 90 суток после операции дентальной имплантации. Соединительная ткань на поверхности дентального имплантата и ее соединение с костью тонкими костными балочками. Увеличение х10 000
до 25 мкм с небольшими шиповидными отростками.
Через 60 суток после имплантации дентальный имплантат находился в организованной кости, в которой различались компактная и губчатая части с выраженными трабекулами. Костная ткань равномерно прилегала к поверхности дентального имплантата на всем протяжении. Верхушка имплантата также равномерно контактировала с губчатой частью кости. При увеличении в 500 раз видно прорастание костной ткани между
Рис. 10. Недекальцинированный шлиф дентального имплантата. 60 суток после операции дентальной имплантации. Прорастание костной ткани между витками дентального имплантата на некотором отдалении от его поверхности. Увеличение х500
витками дентального имплантата. При этом сформировавшаяся костная ткань находилась на некотором отдалении от поверхности дентального имплантата, состояла из тонких множественных балочек, образующих закругления и своеобразные каверны (рис. 10).
Через 90 суток после операции имплантации дентальный имплантат равномерно покрыт тонкой организованной компактной костной тканью. Витки дентального имплантата также окружены слоем тонкой компактной костной ткани. Глубже прослеживалась сформированная трабекулярная кость с выраженными утолщенными балками и широкими межбалочными пространствами (рис. 11). При увеличении в 10 000 раз видно, что на поверхности дентального имплантата образовалась тонкая соединительнотканная капсула, которая соединяется с костной тканью многочисленными костными балочками в виде песочных часов. Их узкая часть находилась посередине, основания с одной стороны исходили из костной ткани, с другой стороны прикреплялись к надкостнице (рис. 12).
Заключение
Процесс остеоинтеграции дентальных имплантатов состоит из остеокондукции, формирования молодой костной ткани и ее структурной перестройки.
На 10-е сутки после операции дентальной имплантации дентальный имплантат окружен некротически измененными тканями. Активное формирование молодой костной ткани начинается через месяц после операции дентальной имплантации. Дентальные имплантаты на 30-е сутки ЛИТЕРАТУРА
1. Мирсаева Ф.З. Дентальная имплантология: Учебное пособие / Сост. Ф.З. Мирсаева, М.Б. Убайдуллаев, А.Б. Вяткина, С.Ш. Фаткуллина; Под ред. проф. Ф.З. Мирсаевой. - Уфа: Изд-во ГБОУ ВПО БГМУ Минздрава России, 2015. - 124 с.
2. Османова З.Х., Салихова А.А. Возможные послеоперационные осложнения при использовании дентальных имплантатов // Бюллетень медицинских интернет-конференций. - 2018. - Т.8, №7. - С.267.
3. Параскевич В.Л. Биология кости // Современная стоматология. -1999. - №2. - С.3-9.
4. Параскевич В.Л. Дентальная имплантология: основы теории и практики. -М.: МИА, 2006. - 399 с.
5. Параскевич В.Л., Опанасюк И.В., Каленчук В.В. Особенности кровоснабжения боковых отделов верхней челюсти и проблемы гемостаза при выполнении «классической» методики синус-лифтинга // Стоматологический журнал. -2007. - Т.8, №3. - С.276-278.
6. Перловская В.В., Лавренчик А.И., Страшинский А.С. Кровотечения. Методы остановки кровотечения:_Методические рекомендации. - Иркутск, 2015. - 33 с.
7. Питкевич Э.С. Система гемостаза: физиология, патофизиология и медикаментозная коррекция: Учебно-методическое пособие [и др.]. - Гомель: УО «Гомельский государственный медицинский университет», 2007. - 44 с.
8. Смирнов А.В., Румянцев А.Ш. Строение и функции костной ткани в норме и при патологии. Сообщение I // Нефрология. - 2014. - Т.18, №6. - С.9-25.
9. Смирнов А.В., Румянцев А.Ш. Строение и функции костной ткани в норме и при патологии. Сообщение II // Нефрология. - 2015. - Т.19, №1. - С.8-17.
10. Стуклова Н.И. Физиология и патология гемостаза: Учебное пособие / Под ред. Н.И. Стуклова. - М.: ГЭОТАР-Медиа, 2016. - 112 с.
11. Garcia-Gareta E., Coathup M.J., Blunn G.W. Osteoinduction of bone grafting materials for bone repair and regeneration // Bone. - 2015. - Vol.8. Review.
12. Pilipchuk S.P., Plonka A.B., Monje A., Taut A.D., Lanis A., Kang B., Giannobile W.V. Tissue engineering for bone regeneration and osseointegration in the oral cavity // Dent Mater. - 2015. - Vol.31, N4. - P.317-338.
13. Santoro F, Baldoni M., Simion M., Vanden Bogaerde L. Osteointegration: surgical principles // Attual. Dent. - 1988. - Vol.40, N4. - P.8-10.
REFERENCES
1. Mirsayeva FZ. Dental'naya implantologiya: Uchebnoye posobiye [Dental Implan-tology: Textbook] Sost. (FZ. Mirsayeva, M.B. Ubaydullayev, A.B. Vyatkina, S.SH. Fatkullina; Pod red. prof. FZ. Mirsayevoy. Ufa: Izd-vo GBOU VPO BGMU Minzdrava Rossii, 2015, 124 p. (in Russian)
2. Osmanova Z.Kh., Salikhova A.A. Vozmozhnyye posleoperatsionnyye oslozh-neniya pri ispol'zovanii dental'nykh implantatov [Possible postoperative complications
Адрес для корреспонденции Кафедра ортопедической стоматологии Белорусский государственный медицинский университет г. Минск, ул. Сухая, 28 220004, Республика Беларусь тел.: + 375 17 200-54-72
Остапович Алексей Андреевич, e-mail: ortopedstom@bsmu.by
зованием тонкой соединительнотканной оболочки на поверхности дентального имплантата, которая соединяется с новообразованной тонкой компактной костной тканью вокруг дентального имплантата множественными костными балочками.
when using dental implants]. Byulleten'meditsinskikh internet-konferentsiy, 2018, vol.8, no.7, p.267. (in Russian)
3. Paraskevich V.L. Biologiya kosti [Bone biology]. Sovremennaya stomatologiya, 1999, no.2, pp.3-9. (in Russian)
4. Paraskevich VL. Dental'naya implantologiya: osnovy teoriiipraktiki[Dental Im-plantology: Foundations of Theory and Practice]. M.: MIA, 2006, 399 p. (in Russian)
5. Paraskevich VL., Opanasyuk I.V, Kalenchuk VV. Osobennosti krovosnabzheniya bokovykh otdelov verkhney chelyusti i problemy gemostaza pri vypolnenii «klas-sicheskoy» metodiki sinus-liftinga [Features of the blood supply to the lateral sections of the upper jaw and the problem of hemostasis when performing the "classical" technique of sinus lifting]. Stomatologicheskiyzhurnal, 2007, vol.8, no.3, pp.276-278. (in Russian)
6. Perlovskaya VV., Lavrenchik A.I., Strashinskiy A.S. Krovotecheniya. Metody ostanovki krovotecheniya: Metodicheskiye rekomendatsii [Methods for stopping bleeding: Methodical recommendations]. Irkutsk, 2015, 33 p. (in Russian)
7. Pitkevich E.S. Sistema gemostaza: fziologiya, patofiziologiya i medikamentoznaya korrektsiya: Uchebno-metodicheskoye posobiye [The hemostasis system: physiology, pathophysiology and drug correction: teaching aid]. Gomel': UO «Gomel'skiy gosudarstvennyy meditsinskiy universitet», 2007, 44 p. (in Russian)
8. Smirnov A.V., Rumyantsev A.Sh. Stroyeniye i funktsii kostnoy tkani v norme i pri patologii. Soobshcheniye I [The structure and function of bone tissue in health and disease. Message I]. Nefrologiya, 2014, vol.18, no.6, pp.9-25. (in Russian)
9. Smirnov A.V., Rumyantsev A.SH. Stroyeniye i funktsii kostnoy tkani v norme i pri patologii. Soobshcheniye II [The structure and function of bone tissue in health and disease. Communication II]. Nefrologiya, 2015, vol.19, no.1, pp.8-17. (in Russian)
10. Stuklova N.I. Fiziologiya i patologiya gemostaza: Uchebnoye posobiye [Physiology and pathology of hemostasis: Textbook]. M.: GEOTAR-Media, 2016, 112 p. (in Russian)
11. Garcia-Gareta E., Coathup M.J., Blunn G.W. Osteoinduction of bone grafting materials for bone repair and regeneration. Bone, 2015, vol.8. Review.
12. Pilipchuk S.P., Plonka A.B., Monje A., Taut A.D., Lanis A., Kang B., Giannobile W.V. Tissue engineering for bone regeneration and osseointegration in the oral cavity. Dent Mater, 2015, vol.31, no.4, pp.317-338.
13. Santoro F, Baldoni M., Simion M., Vanden Bogaerde L. Osteointegration: surgical principles. Attual Dent, 1988, vol.40, no.4, pp.8-10.
Конфликт интересов
Согласно заявлению авторов, конфликт интересов отсутствует.
Поступила 21.08.2020 Принята в печать 16.10.2020
Address for correspondence
Department of Orthopedic Dentistry
Belarusian State Medical University
28, Sukhaya street, Minsk
220004, Republic of Belarus
phone: + 375 17 200-54-72
Aliaksei Astapovich, e-mail: ortopedstom@bsmu.by
Не забудьте подписаться на I полугодие 2021 г.
I fckp
Подписные индексы в каталоге РУП «Белпочта»,«БелСоюзПечать»: 75038 и 750382, дополнительно для студентов стоматологических факультетов медицинских вузов - 75055 В странах СНГ и Балтии: 75038.
Внимание! Теперь можно, не выходя из дома, подписаться на бумажную версию журнала «Современная стоматология» на сайте БелПочты https://belpost.by/onlinesubscription/items
Подписка на электронную версию журнала «Современная стоматология» на сайте www.mednovosti.by
СТОМАТОЛОГИИ
устог
после их установки покрыты пленкой из преостеобластов. Скапливаясь, преостео-бласты преобразуются в остеобласты, которые созревают к 45-м суткам после операции дентальной имплантации.
Остеоинтеграция дентального имплантата завершается к 90-м суткам обра-
