CC BY
51
не способствует образованию азосоединения фенола). Затем добавляют 0,2 мл дназотированно-го паранитроанилнна и 0,2 мл 10% раствора гидроокиси натрия. После прибавления каждого реактива пробы тщательно перемешивают. По интенсивности образующегося окрашивания (от светло-желтого до кирпичного тона) судят о количестве ДАФФ в пробах. Определение можно проводить визуально или фотометрически при длине волны 480 нм относительно контроля на реактивы. Отмечено соблюдение закона Бугера — Ламберта — Бера в интервале концентраций ДАФФ 1—30 мкг. Ошибка определения ±2— 4%.
Одновременно готовят стандартную шкалу. В ряд пробирок вносят 0,1, 0,2, 0,4, 0,6, 0,8, 1,0, 1,5, 2,0 и 3,0 мл стандартного раствора (10 мкг ДАФФ в 1 мл), что соответствует 1, 2, 4, 6, 8, 10, 15, 20 и 30 мкг ДАФФ. Во всех пробирках спиртом добавляют объем до 3 мл, затем поступают, как при исследовании проб. Раствор в контрольной пробирке окрашен в светло-зеленый тон.
Концентрацию ДАФФ в анализируемой пробе вычисляют по общепринятой формуле.
Если в рецептуре полимерного изделия наряду
с ДАФФ используется фенол, последний поглощается одновременно в параллельную пробу, в поглотительный прибор с пористой пластинкой № 1. В качестве поглотительного раствора используется 3 мл 0,01 н. раствора гидроокиси натрия. Определение ведут аналогично описанному, но без процесса гидролиза и концентрирования проб выпариванием и дальнейшим спектрофото-метрированием полученных растворов при 490 нм. По разнице концентраций фенола, полученного при гидролизе и без него (в параллельной пробе), вычисляют количество ДАФФ в воздухе.
Литература. Виноградова Л. И. — В кн.: Научно-практическая конф. молодых гигиенистов и санитарных врачей. 12-и. Материалы. М„ 1969, с. 131 — 132. Друян Е. А.— В кн.: Гигиена и токсикология высокомолекулярных соединений и химического сырья, используемых для их синтеза. Л.. 1969, с. 206—207. Зарубин Г. Г., Рубцова И. К., Смирнов М. И. и др. —
Пласт, массы. 1963, № 5, с. 7—10. Калинина Н. И. — В кн.: Вопросы гигиены труда, лроф-патологни и токсикологии при производстве и использовании фосфорорганнческих пластификаторов. М., 1973, с. 101 — 102. Тиниус К. Пластификаторы. М„ 1964, с. 450—451.
Поступила 23.03.82
Обзоры
УДК 614.777:661.185
Ю. В. Новиков, Г. П. Зарубин, М. А. Галиев (Москва)
МЕТОДЫ ОПРЕДЕЛЕНИЯ НЕИОНОГЕННЫХ ПОВЕРХНОСТНО-АКТИВНЫХ ВЕЩЕСТВ В ВОДЕ
Резкое возрастание производства и ассортимента неионогенных поверхностно-активных веществ (НПАВ), использование их во многих отраслях промышленности, сельского хозяйства и в быту приводит к неизбежному попаданию этих веществ в сточные и природные воды, в связи с чем проблема контроля за содержанием НПАВ приобретает большую актуальность.
Определение НПАВ сопряжено с немалыми трудностями, так как, с одной стороны, их молекулы зачастую не содержат характерных функциональных групп, а с другой — они очень неоднородны по молекулярному составу. Кроме того, число типов НПАВ достаточно велико (Ю. М. Дедков и Е. И. Субботина). Для определения НПАВ в сточных и природных водах предложено много методов, основанных на различных физических явлениях и химических реакциях.
Простым в исполнении и нетрудоемким методом определения НПАВ в воде является колориметрический. Метод основан на взаимодей-
ствии оксиэтилированиых веществ с роданоко-бальтатом аммония и образовании комплексного соединения НПАВ — роданокобальта аммония, окрашенного в синий цвет и растворимого в хлороформе (Brown и Hayes). Однако метод оказался применим только для оксиэтилированиых жирных спиртов нормального строения (Hudleston и Allred). Кроме того, данный метод малочувствителен и пригоден лишь для анализа сточных вод при содержании НПАВ более 150 мг/л, получаемые результаты плохо воспроизводятся, калибровочные кривые для веществ с невысокой степенью оксиэтилирования (ОП-7, синтанол ДС-10) имеют точку излома (А. В. Смирнова и соавт.). Считают, что одной из причин этого является неустойчивость комплексного соединения роданокобальтата аммония (И. В. Пятницкий).
С целью получения более устойчивых результатов метод Brown и Hayes был несколько видоизменен. Проводилась предварительная экстракция НПАВ из водного раствора хлороформом с
последующим образованием комплексного соединения НПАВ — роданокобальтат аммония, была увеличена концентрация реагента. Метод стал более чувствительным, градуировочные кривые не имеют точек излома (А. В. Смирнова и соавт.). Указании о чувствительности авторы не дают.
Рекомендован метод нефелометрического оп-и ределения НПАВ с нодомеркуриатом калия, основанный на реакции в кислой среде НПАВ с нодомеркуриатом и образовании осадка, пригодного для нефелометрического измерения. Не изменяя объема пробы, можно определять от 0,2 до 3 мг/л НПАВ. Однако определению мешает присутствие многих веществ и воспроизводимость результатов невысока (Ю. Ю. Лурье и П. С. Антипова).
Количественное определение НПАВ может быть выполнено с помощью кремневольфрамо-вой (Steele и Berger; Shaffer и Critchfield; Schônfeldt, 1955), фосфорномолибденовой (Steele и Berger; Stevenson) и железистосинеродистой (Schunfeldt, 1955) кислот, образующих с не-ионогенными соединениями нерастворимые комплексы в присутствии катионов тяжелых метал-лов (барий или цинк). Механизм этих реакций не выяснен.
Колориметрическое определение НПАВ с фос-форовольфраматом основано на осаждении НПАВ из раствора в виде комплексного соединения бария, фосфоровольфрамат-ионов и НПАВ. После отделения избыточного количества жидкости в осадке колориметрическим способом определяют вольфрам, добавлением гидрохинона в среде серной кислоты. Колориметрический метод с фосфорновольфрамовой кислотой применим для анализа сточных и природных вод с содержанием неноногенных веществ не менее 2,5 мг/л. Метод требует много времени и достаточно сложен (Ю. Ю. Лурье и П. С. Антипова).
С. Н. Зуевой и соавт. рекомендован фототур-бидиметрический метод определения НПАВ, основанный на образовании сложных комплексов йода, активированного ВаС12, с НПАВ. В результате реакции возникает помутнение раствора, интенсивность которого пропорциональна концентрации. Определению мешают анионоак-тивные поверхностно-активные вещества (ПАВ) и другие вещества. По предлагаемому 3. И. Бух-штабом и соавт. методу НПАВ, находящиеся в сточной воде, осаждают ферроцианидом в виде нерастворимого в воде комплекса. Осадок отфильтровывают и разлагают щелочью. Неионо-генное вещество переходит в раствор, и его определяют фототурбидиметрнчески. Метод позволяет определять от 1 до 500 мг/л НПАВ.
В работе В. А. Смиренной описан метод определения неноногенных ПАВ, основанный на взаимодействии неноногенного вещества с йодом в кислой среде в присутствии хлористого бария.
Содержание НПАВ в растворе определяется с помощью градуировочной кривой, построенной на основании измерения оптической плотности растворов с известной концентрацией неноногенного вещества. Чувствительность метода — 0,4 мг/л. При анализе сильно загрязненных вод результаты оказываются только ориентировочными, а при содержании сульфатов в воде более 100 мг/л определить неионогенные вещества невозможно из-за выпадающего осадка сульфатов.
Разработана методика фотоколорнметриче-ского определения малых концентраций неноногенных моющих веществ. Мешающее влияние механических ■ примесей и окрашенных органических веществ устраняется фильтрацией пробы, обработкой осадка этиловым спиртом и пропусканием фильтрата через сильноосновную смолу АВ-17 (Г. Я. Коган и Л. Н. Сычева).
Для определения в водах НПАВ, производных алкильных эфиров полноксиэтилена как веществ, активных в отношении пикрата калия, предложен экстракционно-фотометрический метод, позволяющий определять НПАВ при их содержании 0,01 — 1 мг/л (Favretto и соавт.). Описан также метод определения 0,1—1,0 мг/л ок-сиэтилированных алкилфенолов, содержащих 3,3—21,5 оксиэтильной группы, в сточных водах. Метод основан на взаимодействии НПАВ с пн-кратом натрия, экстрагировании 1,2-дихлорэта-ном полученного комплекса и измерении поглощения последнего при 378 нм (Favretto и Tunis; Stancher и соавт.).
Рекомендовано извлекать НПАВ бутанолом из бикарбонатного щелочного раствора, остаток после выпаривания растворителя растворяют в метаноле и воздухе, затем центрифугируют. Определение заканчивают спектрофотометрически при А. = 405 нм (Wickbold, 1966).
Выделение НПАВ из проб воды возможно путем пеноотделения. Через пробу воды продувают воздух, пузырьки воздуха проходят через бензольный слой и захватывают НПАВ. Эти соединения обрабатывают роданокобальтатом, с которым они образуют комплексные соединения. Последние разлагают и выделившийся роданид определяют фотометрически. В работе Lovell и Sebba описан флотационный метод определения НПАВ.
Международная стандартизация методов контроля за содержанием ПАВ в водной среде, действующая в рамках ЕЭС и ОЕСД, коснулась пока лишь анионных ПАВ. Для неноногенных и катионоактивных ПАВ разработка стандартных методов контроля продолжается. Недавно Американская ассоциация производителей мыла и синтетических моющих средств предложила в качестве официального аналитический метод определения НПАВ в любой водной среде, разработанный Wickbold (1971, 1972). Данный метод в немецкой (German Federal Law Gazette, part 1, Bonn, 23rd August 1975, page 1), французской
(Determination of the Biodegradability of Non-ionic Surfactants, T. 73-270. L'Association Française de Normalisation, Paris, 1974) и английской (Standing Technical Committee on Synthetic Detergents, Supplement to 8th Progress Report, HMSO, London, 1966) модификациях в последние годы нашел широкое применение в зарубежной практике и утвержден во многих странах в качестве официального метода определения НПАВ в природных водах и оценки биохимического распада этих веществ (Macdonald и Anderson; Boyer и соавт.). Метод Wickbold заключается в концентрировании и отделении НПАВ от мешающих примесей путем вспенивания и выдувания НПАВ из воды в слой этилаце-тата, выпаривания растворителя, растворения остатка НПАВ в воде и метаноле, осаждении реактивом Драгендорфа, отделении осадка, растворении его в растворе тетрата аммония и количественном определении НПАВ косвенно по количеству соосадившегося висмута потенцио-метрическим титрованием раствором пирроли-диндитиокарбомината натрия (Wickbold, 1971; 1972). Данный метод имеет преимущества перед другими способами определения НПАВ, которые заключаются в лучшей избирательности и чувствительности. Однако препятствием для его внедрения в отечественную практику является использование реактива пирролидиндитио-карбомнната натрия, который нашей промышленностью не выпускается. В связи с этим предложено использовать в методе Wickbold реактив диэтилдитиокарбоминат натрия (Э. А. Поляк и Г. А. Нудель), а также применять фотометрический йодидный метод для определения соосадившегося с НПАВ висмута. При этом в методику внесены и другие изменения, а именно: осадок растворяют в диметилформамиде, в котором растворен иодистый калий, а определение проводят в среде ацетона (В. К. Акимов и соавт.). Необходимо отметить, что иодидный метод определения имеет невысокую чувствительность, что отражается на точности определения НПАВ. Вот почему для определения висмута, соосадившегося с НПАВ при осаждении их реактивом Драгендорфа, предложено использовать реактив кси-леновый оранжевый. Обнаружено, что операция выделения НПАВ из воды пенной флотацией может быть успешно заменена простой экстракцией смесью хлороформа и этилацетата.
Метод проверен при определении неонола, фепоксола, синтанолов ДТ-7, АЛМ-7, АЦС-12, синтамидов 5, С-6 и др. В случае анализа сточных вод определению мешают присутствующие в воде белки и пептоны. Данным способом можно определить с достаточной точностью более 50 мкг НПАВ в пробе анализируемой воды (Н. А. Лукиных и соавт.; Л. А. Христианова и соавт.).
Имеется ряд других модификаций метода Wickbold. Так, для упрощения и ускорения ана-
лиза рекомендовано применять в конечной фазе колориметрическое определение, основанное на методе, описанном West и Coll для определения нона висмута по УФ-абсорбции соединения эти-лендиаминтетрауксусной кислоты (Macdonald и Anderson).
В работе Р. К. Чернова и соавт. рекомендован спектрофотометрический метод определения неионогенных ПАВ, основанный на способности НПАВ образовывать окрашенные комплексы в присутствии системы Ме-хроматозур S. Анионные ПАВ не мешают определению. Мешающие катионоактивные ПАВ удаляют прибавлением сульфанола или другого анионоактнвного ПАВ, образующийся осадок отфильтровывают. Содержание НПАВ определяют по калибровочному графику. С помощью метода можно определять ОП-Ю (1,4—36 мкг/мл), синтанол ДС-10 (2— 40 мкг/мл), синтамид-10 (8—48 мкг/мл), ОС-20 (2—28 мкг/мл), С-10 (1,8—32 мкг/мл).
Для определения НПАВ часто используют и хроматографические способы. Так, высокомолекулярные продукты можно выделить препаративной колоночной хроматографией на силика-геле (Corkill и соавт.). Применяют также распределительную и адсорбционную хроматографию (Papariello; Voogt). Для определения окси-этилированных НПАВ описаны методы тонкослойной хроматографии (ТСХ), а также изучено поведение при ТСХ ряда неионогенных ПАВ (Brüschweiler и соавт.). Данный метод предложен В. И. Кофановым и Н. А. Клименко для разделения и идентификации оксиэтилированных моноэфиров жирных спиртов.
В литературе имеются указания на возможность определения НПАВ с применением ТСХ в хлороформенном экстракте (Б. И. Дорогова и соавт.). Имеются данные о возможности определения оксиэтилированных алкилфенолов и оксиэтилированных спиртов без предварительной обработки методом канальной ТСХ на пластинках «Мерк-254». Чувствительность метода 5 мг/л (Groeti'H Petronio).
Описано разделение НПАВ методом ТСХ: тонкий слой силикагеля, смесь этилацетата с уксусной кислотой в качестве подвижного растворителя, обнаружение с помощью реактива Драгендорфа (Reed).
Для анализа малых количеств НПАВ в сточных водах и других отходах предложено их экстрагировать специальной смесью органических растворителей. В экстракте определяют содержание НПАВ по методу Wickbold. Осадок, полученный при этом после действия реактива Драгендорфа, фракционируют методом ТСХ на пластинках «Мерк» и отдельные фракции исследуют методом ИК-спектроскопии. При этом ПАВ отдаляются от других примесей, в частности от гуминовых кислот (Hellmann).
Kosarac и соавт. описаны методы определения НПАВ в сточных водах, основанные на измере-
нии полярографического максимума ртути в присутствии 0,05—5 мг/л ПАВ, а также силы тока при применении переключателя Калоусека в области концентрации от 0,1 до 0,7 мг/л ПАВ.
Следовые количества ПАВ (1 мкг) определяют выдуванием последних из растворов, выделением методом ТСХ и идентификацией по ИК-спектрам (Kynkel и соавт.).
Для определения НПАВ в водных растворах широкого диапазона концентраций рекомендован метод, основанный на взаимодействии окси-этилатов с фосфорномолибденовой кислотой и рентгеновской спектрометрии полученного комплекса.
Для определения малых концентраций НПАВ рекомендуется применять и атомно-абсорбцион-ную спектрофотометрию (Crisp и соавт.). Анализ основан на образовании в присутствии ВаС12 малорастворимого комплекса между НПАВ и фосфорномолибденовой кислотой. С помощью атомно-абсорбционной спектрофотометрии оценивают содержание молибдена в избытке фосфорномолибденовой кислоты и вычисляют концентрацию НПАВ. Чувствительность определения 0,02 мг/л.
Имеются указания на возможность определения НПАВ методом потенциометрического титрования с поляризованным индикаторным электродом, сочетающим преимущества гетерополи-кнелот с достоинствами метода потенциометрического титрования (Ю. Я. Винников и Л. А. Ко-старева).
Petts и Sliney автоматизировали метод определения НПАВ в воде. Пробу помещали в автоматический пробоотборник и оттуда подавали насосом в стандартный стеклянный автоанализатор, где и происходило образование комплексов и экстрагирование хлороформом. Разделение растворителя и водных слоев происходило в фазовом сепараторе, после чего слой хлороформа, содержащий комплекс, передавался в 50-миллиметровую кювету в детекторе, настроенном для спектрофотометрических измерений на длине волны 620 нм. Предел чувствительности анализа был 0,5 мг/л. Большое преимущество этой системы состоит в том, что она может часами работать без присмотра. Предложено одновременное определение суммы ПАВ—синтанола, синтамида (неионогенные) и сульфонола (анио-ноактивное) полярографическим методом. Чувствительность метода 0,1 мг/л (В. Н. Павлов и соавт.).
В заключение следует отметить, что каждый из перечисленных способов определения НПАВ в воде обладает определенными недостатками или целым комплексом таковых, иногда в различных сочетаниях. Одни трудоемки в выполнении, другие малочувствительны, третьи недостаточно экспрессивны, четвертые плохо воспроизводимы, а некоторые и малодоступны. В связи с этим необходимо дальнейшее совершенствование
методов определения НПАВ в воде с целью упрощения, повышения чувствительности, точности и т. д.
Литература. Акимов В. К.— Заводская лабор., 1979, № 2. с. 113—115.
Бухштаб 3. И., Мэн-Сян-Кан, Лекойда Е. П. и др. — Там же, 1979, № 7, с. 602—603.
Винников Ю. Я., Костарева Л. А. — Ж. аналит. химии,
1980, № 3, с. 547—550.
Дедков Ю. М„ Субботина Е. И.— Заводская лабор., 1977, № 12, с. 1428—1432.
Дорогова Б. И., Лурье Ю. Ю., Дедков Ю. М. Методы анализа природных и сточных вод. М., 1977, с. 232.
Зуева С. Н., Садова Г. Ф., Лаппо Т. В. — В кн.: Гидрохимия Урала. Свердловск, 1975, т. 5, с. 82—85.
Коган Г. Я., Сычева Л. Н.— Экспресс-ннформ. Серия: охрана окружающей среды и очистка промышленных выбросов, 1981, вып. 7, с. 1—3.
Кофанов В. И., Клименко Н. А.—Заводская лабор., 1977, № 6, с. 668—670.
Методические рекомендации определения биораспада анионных и неионогенных ПАВ./Лукиных Н. А., Гецн-на Г. И., Удальцова Н. И. и др. М., 1980, с. 12—18.
Лурье Ю. Ю., Антипова П. С. — Заводская лабор., 1967, № 1, с. 1374—1376.
Павлов В. Н., Казнина H. Н., Зябкина Н. В. — Гиг. и сан.,
1981, № 6, с. 49—50.
Поляк Э. А., Нудель Г. А. — Ж. аналит. химии, 1981, № 6, с. 1155.
Пятницкий И. В. Аналитическая химия кобальта. М., 1965, с. 16—42.
Смиренная В. А,— Гиг. и сан., 1971, № 10, с. 75.
Смирнова А. В., Плотникова Г. И., Корецкий А. Ф.— Заводская лабор., 1980, № 7, с. 599—600.
Христианова Л. А., Удальцова Н. И., Солдатова С. С.— В кн.: ПАВ и сырье для них. Щебекино, 1979, с. 12—13.
Чернова Р. К-, Лобачгва А. Л., Лобачева И. В. — В кн.: Всесоюзная конф. по аналитической химии органических соединений. 4-я. М., 1977, с. 15.
Boyer S. L. et al. — Environm. Sei. Technol., 1977. v. 11, p. 1167—1171.
Brown E. G., Hayes T. /. — Analyst, 1955, v. 80, p. 755.
Böschweiler H., Sieber V., Weishaupt H. — Tenside, 1980, Bd 17, S. 126—129.
Burger K. — Z. analyt. Chem., 1963, Bd 196, S. 259—298.
Chlebicki ].. Garncarz W. — Chem. analvt., 1979, v. 24, p. 675—681.
Corkill J. M., Godman J. F., Ottewill R. H.— Trans. Faraday Soc., 1961, v. 57, p. 1627—1636.
Crisp P. T., Eckert I. M., Gibson N. A. — Anal. chim. Acta, 1979, v. 104, p. 93—98.
Favretto L„ Stancher В., Tunis F. — Analyst, 1980, v. 105, p. 833—840.
Favretto L., Tunis F. — Ibid., 1976, v. 101, p. 198—202.
Gallotti L. — Laniera, 1980, v. 94, p. 279—286.
Groeti A., Petronio B. M. — Riv. ital. Sostanze Grasse, 1957, v. 52, p. 165—166.
Hellmann H. — Fresenius Z. analyt. Chem., 1980, Bd 300, S. 44—47.
Hudleston R. L„ Allred R. C. — J. Am. Oil. chem. Soc., 1965, v. 42, p. 983.
Koppe P.. Pittag C. — Gas. u. Wasserfach, 1966, Bd 38, S. 1926.
Kosarac Z., Zutic V., Cosovic V.—Tenside, 1976, Bd 13, S. 260—265.
Kynkel £., Peitscher G., Espeter К. — Ibid., 1977, Bd 14. S. 199_202.
Lovèll V. M., Sebba F. — Analyt. Chem., 1966, v. 38, p. 1926.
Macdonald A. M. G.. Anderson D. M. W. — Anal, chim Acta, 1977, v. 93, p. 341—344.
Petts K. №.. Sliney /. — Water. Res., 1981, v. 15, p. 129— 132.
Schönfeldt N. — Nature, 1953, v. 172, p. 820—826.
Schonfeldt N. — J. Am. Oil chem. Cos., 1955, v. 32, p. 77— 79.
Shaffer B„ Critchfield F. — Analyt. Chem., 1947, v. 19, p. 32.
Stancher B.. Tunis F., Vavretlo L. — J. Chromatogr., 1977, v. 131, p. 309—316.
Steele A. B„ Berger L. D. — Soap Chem. Spec., 1956, v. 32, N 2, p. 48.
УДК «16-099:546.815/
Важной задачей профилактического питания при воздействии профессиональных вредностей является испытание различных питательных веществ на него. В последнее время особое внимание уделяется изучению действия различных комбинаций витаминов и микроэлементов. Ан-тиоксиданты, в том числе и токоферол, все более утверждаются в клинической практике и геронтологии (К- С. Петровский). Однако вопрос о возможности использовать их в качестве профилактического средства при ряде интоксикаций выяснен недостаточно.
Литературные данные о значении поступления токоферола в организм при отравлении свинцом весьма ограниченны. Bartlett и соавт. сообщили, что витамин Е не изменяет содержания свинца в крови и ДАЛК в моче. В экспериментах Le-vander и соавт. было установлено, что уровень ряда показателей при свинцовой интоксикации не зависит от недостаточности витамина Е. Эти же авторы в других экспериментах при затравке животных свинцом наблюдали уменьшение кислотной и осмотической резистентности и фильтрующей способности эритроцитов, которое было более выраженным при дефиците витамина Е (Levander и соавт.). В опытах in vitro С. Рибаров и соавт. показали зависимость гемолитического действия свинца от содержания ан-тиоксидантов, в частности токоферола в модельном растворе.
Целью настоящей работы было изучить влияние поступления витамина Е с пищей на некоторые гематологические показатели при свинцовой интоксикации.
Опыты проводили на 48 самцах морских свинок с исходной массой 450±5 г; животных разделили на 6 групп (группы 1-я, 3-я и 5-я являлись контрольными, 2-я, 4-я и 6-я — опытными).
Stevenson D. В. — Analyst, 1954, v. 79, р. 504. West Р. W„ Coli Я.— Analyt. Chem., 1955, v. 27, р. 1221 Wickbohl R. — Von Wasser, 1966, Bd 33, S. 229. Wickbold R. — Haus Techn. Vortgsveröff., 1972, Bd 283, g 23_30
Wickbold R. — Tenside, 1971, Bd 8, S. 61. Wickbold R. — Ibid., 1972, Bd 9, S. 173.
Поступила 23.03.82
Животные 1-й н 2-й групп содержались в условиях дефицита (отсутствия) витамина Е, 3-й и 4-й — его нормального поступления, 5-й и 6-й — повышенного.
Для точного контроля количества вводимого витамина Е и устранения побочных эффектов от других введенных с пищей антиоксидантов животные в ходе эксперимента получали синтетические пищевые рационы, составлявшиеся по рецептуре Института питания АМН СССР (В. Б. Спиричев и соавт.), модифицированной нами: казеин, облученный УФ-лучами, — 22%, крахмал — 20%, сахароза — 40%, этилолеат — 5%, этиловый эфир льняного масла — 5%. фильтровальная бумага — 3%, солевая смесь — 4 %, смесь водорастворимых витаминов — 0,1 %. В связи с тем что в качестве экспериментальных животных использовались морские свинки, в смесь витаминов добавляли аскорбиновую кислоту — по 15 мг на каждое животное ежесуточно. В рационе морских свинок первых 2 групп токоферола практически не было; в пище животных 3-й и 4-й групп он содержался в количестве 60 мг на 1 кг пищи, 5-й и 6-й — 160 мг. После 25-суточной адаптации к пищевым рационам животным опытных групп при помощи зонда на протяжении 15 сут вводили per os ацетат свинца в дозе 20 мг/кг массы. В пробах крови стандартными методами определяли количество гемоглобина, число эритроцитов, ретикулоцитов, лейкоцитов, эритроцитов с базофильной зернистостью и осмотическую резистентность эритроцитов. Содержание свинца в крови оценивалось на атомно-абсорбционном спектрофотометре «Perkin-Elmer» — 400.
Полученные данные обрабатывали методом вариационного (критерий Стьюдента — Фишера) и непараметрического анализа (критерий Кру-
За рубежом
.819)4185.243.41-07:616.16
Б. Стефанов, С. Рибаров, Р. Кайнакчиева, #. Георгиева, И. Бенчев
ВЛИЯНИЕ ТОКОФЕРОЛА НА НЕКОТОРЫЕ ГЕМАТОЛОГИЧЕСКИЕ ПОКАЗАТЕЛИ ПРИ ИНТОКСИКАЦИИ СВИНЦОМ
Медицинская академия — Высший медицинский институт, г. Плевен
