CC BY
3
использовать для приготовления МПЭ эту среду при изучении миграции химических веществ из почвы в растения с целью установления ПДК в почве, гарантирующей накопление пестицидов в выращиваемых растениях в количествах, не превышающих предельно допустимых.
Рекомендуемый нами МПЭ для гигиенических исследований предусматривает проведение лабораторно-вегетационных опытов в течение года (в нескольких вариационных постановках, с изменением климатических параметров и различными тест-растениями) с последующей проверкой и уточнением полученных результатов в натурных условиях в течение вегетационного сезона. Применение МПЭ для получения предварительных результатов о миграции химических веществ из почвы в растения унифицирует метод исследования, значительно его ускоряет (с 3 лет до 1 года) и упрощает методику нормирования пестицидов в почве.
Л'И ТЕРАТУРА. Гончарук Е. И. — В кн.: Материалы научной сессии по проблеме «Гигиена и эпидемиология села». Саратов, 1972, с. 73—78. — Гончарук Е. И., Н а б ш т е й н С. Я , Ц и п р и я н В. И., — «Гиг. и сан.», 1974, № 12, с. 19—23. — Гончарук Е. И., Циприян В. И. Никоненок В. Г. и др. — В кн.- Новейшие вопросы гигиены применения пестицидов. 5-я Всесоюзная научная конференция. Киев, 1975, с. 36—37. — Жу.рбицкий 3. И. Теория и практика вегетационного метода. ¡М., 1968, с. 85—132.
Поступила 12/1X1975 г.
УДК 615.9+612.015.341:668.811
А. И. Владимирская, Т. М. Снитковская, А. А. Вербилов
МЕТ0Д*0ПРЕДЕЛЕНИЯ НЕКОТОРЫХ АЗОПИГМЕНТОВ В ТКАНЯХ ВНУТРЕННИХ ОРГАНОВ ЖИВОТНЫХ
Всесоюзный научно-исследовательский институт гигиены и токсикологии пестицидов, полимерных и пластических масс. Киев
В настоящее время для окрашивания пластмасс предложены некоторые красители из группы азосоединений: 2-хлор-4-нитроанилин-2-нафтол (пигмент алый «Ж»), 3-нитро-4-аминотолуол-2-нафтол (пигмент алый «Н»), 2,5-дихлоранилиназотол ОА (пигмент ярко-красный «4Ж»), азоамин красный— О— азомолО. (пигмент розовый «Ж»). Какие-либо данные литературы о токсичности этих веществ и методах их определения в биологическом материале отсутствуют.
Нашей целью явилась разработка метода определения некоторых азопигментов — алого «Н», алого «Ж», ярко-красного «4Ж» и розового «Ж» в тканях внутренних органов животных с помощью хроматографии в тонком слое.
Для разработки тонкослойно-хроматографического метода необходимо подобрать адсорбент, систему подвижных растворителей и экстрагент, удовлетворительно извлекающий исследуемые препараты из тканей внутренних органов животных.
В качестве адсорбента мы использовали силикагель марки КСК, скрепленный крахмалом. Подвижной фазой служили органические растворители с различной элюирую-
Таблица'
Величины Rf исследуемых пигментов
Величина /? /
Растворитель алый «н» алы.) «Ж» розовый «ж» ярко-красный <4Ж>
Ацетон-гексан (1:1) Ацетон Хлороформ 0,00 0,93 0,45 0,00 0,9 0.7 0,00 0,93 0,2 0,00 0,9 0,48
щей способностью — ацетон, ацетон-гексан (1 : 1) и хлороформ. Из числа испытанных нами подвижных растворителей наилучшим оказался хлороформ.
Величины Я1 исследуемых нами соединений в различных подвижных растворителях приведены в табл. 1.
Экстракцию препаратов из проб биологического материала проводили хлороформом, так как он является хорошим растворителем для исследуемых пигментов.
Данные, характеризующие полноту экстракции пигмента из тканей различных органов, приведены в табл. 2, в качестве примера взят пигмент алый «Н».
Определение пигментов в биологическом материале проводили по следующий схеме. Внутренние органы (мозг, печень, почки, сердце, селезенка, легкие и желудок) взвешивали, тщательно измельчали, заливали 15 — 20 мл хлороформа и выдерживали в течение 1 ч при периодическом встряхивании. Операцию повторяли дважды. Хлороформенные экстракты собирали вместе, сушили безводным сернокислым натрием и упаривали на водяной бане при 80—90°.
С помощью капилляра пробу и стандартный раствор наносили на пластинку со слоем силикагеля, после чего хроматограмму помещали в камеру для разгонки, заливая туда хлороформ. В результате экспериментов на хроматограмме появились красные или желтые пятна, что зависело от определяемого пигмента.
Для очистки тканей внутренних органов от жиров мы применяли колоночную хроматографию. Хроматографическую колонку заполняли слоем окиси алюминия II степени активности. Высота слоя адсорбента 12 см. Упаренный экстракт пробы, содержащий исследуемый азопигмент, наносили на верхний слой адсорбента и затем элюировали из колонки хлороформом. На выходе их хроматографической колонки отбирали 2 пробы по 50 мл, их объединяли и растворитель упаривали на водяной бане. Очищенный от жиров экстракт наносили на хроматографическую пластинку со слоем силикагеля. Чувствительность метода 0,1 мкг в пробе.
Поступила 30/1 1975 г.
УДК ei6-008.827.3-074J543.S44.42
Н. А. Маркина
ОПРЕДЕЛЕНИЕ КОБАЛЬТА В БИОЛОГИЧЕСКИХ МАТЕРИАЛАХ С ПОМОЩЬЮ ХРОМАТОГРАФИИ} НА БУМАГЕ
Московский научно-исследовательский институт гигиены им. Ф. Ф. Эрисмана
Фотометрический метод определения кобальта в биосредах, основанный на образовании окрашенных комплексных соединений с нитрозо-И-солью, получил широкое распространение. Согласно литературным данным, такое определение можно проводить, если на 1 мкг кобальта приходится не более 100 мкг меди, 1000 мкг железа и 50 мкг никеля. В больших количествах железо и особенно медь мешают определению кобальта (В. В. Ковальский и А. Д. Гололобов; Г. Я. Ринькис; Е. П. Аигина и соавт.). В некоторых биологических материалах указанные соотношения значительно сдвинуты в сторону железа и меди. Например, в таком важном органе, как печень, содержится меди больше кобальта в 300 раз и выше (В. Н. Сухарева). Поэтому метод с использованием нитрозо-И-соли, равно
Таблица 2
Полнота экстракции пигмента — алого «Н» из тканей внутренних органов животных
Орган Навеска Пигмент (в мкг) Процент определения
внесено найдено
Мозг 1500 10 10 100
Печень 7800 10 10 100
Почки 1300 10 10 100
Сердце 650 мг 10 10 100
Селезенка 900 10 10 100
Легкие 1200 10 10 100
Желудок 800 10 10
Кровь 1 мл 10 10 100
