CC BY
14
УДК 619:616.5
ЛЕЧЕНИЕ РАН У КРОЛИКОВ С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ АТРАВМАТИЧЕСКОЙ ПОВЯЗКИ НА ОСНОВЕ МИКРОКАПСУЛИРОВАННОГО АСД-2Ф
СЕИН ОБ.,
доктор биологических наук, профессор, профессор кафедры хирургии и терапии, ФГБОУ ВО Курская ГСХА, тел. 53-15-55.
КОЛОМИЙЦЕВ С.М.,
кандидат ветеринарных наук, доцент, заведующий кафедрой хирургии и терапии, ФГБОУ ВО Курская ГСХА, тел., 53-35-25.
ВАНИНА Н.В.,
кандидат ветеринарных наук, доцент кафедры хирургии и терапии, ФГБОУ ВО Курская ГСХА, тел. 53-35-25.
Реферат. В статье описывается способ изготовления атравматической повязки для лечения ран у животных разработанный авторами (Патент РФ №208783.-2022 г.). Повязка включает два слоя из хлопкового волокна нетканой природы. На первой слой повязки, предварительно обработанный 0,1-0,2%-ным раствором риванола и 2-3%- ным раствором тримикаина с последующим высушиванием, наносился микрокапсулированный антисептик - стимулятор Дорогова второй фракции. В качестве оболочки микрокапсул был использован каппа-каррагинан полученный по оригинальной технологии (Патент РФ №2543632.-2013 г.). Второй наружный слой повязки, покрывающий слой микрокапсул антисептика-стимулятора, включал пергаментную бумагу и нетканое полотно. Слои повязки между собой по периметру склеивались, в результате лекарственный препарат фиксировался между двумя слоями повязки. На раневой поверхности повязку закрепляли коллодием. При контакте внутреннего слоя повязки с раной оболочка из каппа-каррагинана переходила в гелеобразное состояние, что обеспечивало выход препарата АСД-2ф и его контакт с раневой поверхностью. Образование гелеобразной массы после распада кап-па-каррагинановой оболочки предотвращало высыхание раневой поверхности и прилипание повязки к ране, создавая тем самым её атравматичность. Использование повязки на экспериментальных животных подтвердило её эффективность при инфицированных ранах. У кроликов раны быстро очищались от некротических масс, процессы грануляции и эпителизаций проявлялись более активно по сравнению с животными контрольной группы, у которых раны лечили с использованием линимента Вишневского.
Ключевые слова: рана, атравматическая повязка, кролики, антисептик-стимулятор Дорогова-2ф, альгинат натрия, микрокапсулы, риванол, тримикаин.
TREATMENT OF WOUNDS IN RABBITS USING ATRAUMATIC BANDAGE BASED ON MICROCAPSULATED ASD-2F
SEIN O.B.,
Doctor of Biological Sciences, Professor, Professor of the Department of Surgery and Therapy, Kursk State Agricultural Academy, tel. 53-15-55.
KOLOMIYTSEV S.M.,
Candidate of Veterinary Sciences, Associate Professor, Head of the Department of Surgery and Therapy, Kursk State Agricultural Academy, tel., 53-35-25.
VANINA N.V.,
Candidate of Veterinary Sciences, Associate Professor of the Department of Surgery and Therapy, Kursk State Agricultural Academy, tel. 53-35-25.
Essay. The article describes a method for manufacturing an atraumatic dressing for the treatment of wounds in animals developed by the authors (RF Patent No. 208783.-2022). The bandage includes two layers of non-woven cotton fiber. On the first layer of the dressing, previously treated with a 0.1-0.2% solution of rivanol and a 2-3% solution of trimikain, followed by drying, a microencapsulated antiseptic - Dorogov's stimulator of the second fraction was applied. Kappa-carrageenan obtained according to the original technology (RF Patent No. 2543632.-2013) was used as the shell of microcapsules. The second outer layer of the bandage, covering the layer of microcapsules of the antiseptic-stimulant, included parchment paper and non-woven fabric. The layers
of the bandage were glued together along the perimeter, as a result, the drug was fixed between the two layers of the bandage. On the wound surface, the dressing was fixed with collodion. When the inner layer of the dressing came into contact with the wound, the kappa-carrageenan shell turned into a gel-like state, which ensured the release of the ASD-2f preparation and its contact with the wound surface. The formation of a gel-like mass after the disintegration of the kappa-carrageenan shell prevented the drying of the wound surface and the adherence of the dressing to the wound, thereby making it atraumatic. The use of the bandage on experimental animals confirmed its effectiveness in infected wounds. In rabbits, the wounds were quickly cleared of necrotic masses, the processes of granulation and epithelialization were more active compared to animals of the control group, in which the wounds were treated using Vishnevsky's liniment.
Keywords: wound, atraumatic dressing, rabbits, Dorogov-2f antiseptic stimulator, sodium alginate, microcapsules, rivanol, trimikain.
Введение. В настоящее время для лечения ран у животных используются различные лекарственные препараты, которые зарекомендовали себя с положительной стороны. К таким препаратам можно отнести диоксоль, левосин, левомеколь, используемые в виде мазей и спреев и оказывающие антибактериальное и противовоспалительное действие, и способствующие очистке ран [1-3]. В то же время указанные препараты обладают сла-бостимулирующими и репаративным свойствами, плохо удерживаются на ране животного и требуют обязательного бинтования.
Существуют способы лечения ран у животных с использованием лекарственных препаратов в виде присыпок, которые наносятся на предварительно обработанные раны. При использовании присыпок также необходимо бинтование, что повышает трудоёмкость и затраты на лечение больных животных [4, 5].
Учитывая вышеизложенное, целью наших исследований являлось изготовление повязки для животных, обладающей антибактериальными и атравматическими свойствами.
Материал и методы исследований. Атравма-тическую повязку изготавливали по ранее разработанному нами способу (Патент РФ № 208783. -2022 г. Авт. Сеин О.Б. и др.). Повязка состояла из двух слоев. Первый слой, контактирующий непосредственно с раневой поверхностью, предварительно обрабатывался 0,2%-ным раствором риванола и 3%-ным раствором тримикаина и высушивался в термостате при 37°С. Второй слой, покрывающий повязку сверху, состоял из пергаментной бумаги и нетканого полотна.
На первый слой повязки наносили лекарственный препарат, представляющий собой АСД-2ф микрокапсулированный в оболочку из каппа-каррагинана (Патент РФ №2543632. -2018 г. Авт. Сеин О.Б. и др.). Для этого микрокапсулы равномерно распределяли по всей поверхности первого (рабочего) слоя повязки и сверху покрывали вторым слоем. Края повязки по периметру свободные от препарата склеивали клеем БФ-6. В результате лекарственный препарат упаковывался между двумя слоями повязки (рисунок 1).
Рисунок 1 - Повязка атравматическая зафиксированная на раневой поверхности у подопытного кролика
Изготовленная повязка обладала атравматично-стью за счёт каппа-каррагинана, формирующего оболочку микрокапсул. Во время контакта с раневой поверхностью микрокапсулы переходили в гелеоб-разное состояние и их содержимое (АСД-2ф) поступало в окружающую среду. При этом образовавшаяся гелеобразная масса предотвращала прилипание повязки к раневой поверхности и таким образом обеспечивала её атравматичность.
Экспериментальную проверку терапевтической эффектиности изготовленной повязки проводили на 2 группах беспородных кроликов 4-месячного возраста по 5 голов в каждой группе.
Кроликам наносили плоскостные кожно-мышечные раны в области спины. С этой целью у животных обеих групп удаляли шёрстный покров, обрабатывали операционное поле 5-%-ной настойкой йода и воспроизводили раны площадью 2х2 см с использованием целлулоидного трафарета и скальпирования тканей. При этом удаляли кожу и делали разрез мышечной ткани. Кровотечение останавливали тампонированием и наложением тугой повязки. Инфицирование ран проводили по методу А.В. Вар-дапяна (2004).
Для лечения ран у кроликов первой контрольной группы использовали линимент бальзамический
Вишневского. У кроликов второй опытной группы раны лечили с применением разработанной повязки. Интенсивность заживления ран оценивали по состоянию раневой поверхности, краев раны, образованию грануляционной ткани. Площадь заживления ран определяли с использованием целлулоидных пластин и миллиметровой бумаги. Процент уменьшения раневой поверхности за день по отношению к предыдущему результату учитывали по формуле:
% = ^ЛИОО^Ч ,
где г - дни;
8 - площадь раневой поверхности при предыдущем исследовании;
81 - площадь раны в настоящий момент.
Площадь ран у подопытных кроликов определяли до лечения, на 6 и 12 дни после начала лечения. В процессе проведения эксперимента у кроликов брали кровь для общего гематологического анализа. Полученные данные подвергались биометрической обработке с использованием ПЭВМ.
Результаты исследований. При осмотре ран на 3 день после начала лечения у кроликов обеих групп отмечались все признаки воспалительного процесса: отёчность, гиперемия кожных покровов, повышенная местная температура. У кроликов контрольной группы по сравнению с опытными животными данные симптомы задерживались и регистрировались на 5-6 дни.
Первые признаки образования грануляционной ткани у кроликов, подвергавшихся лечению отмечались в среднем на 5 день. При этом грануляция у кроликов первой группы была мелкозернистой и
бледного цвета. В то же время у кроликов опытной
группы грануляция имела крупнозернистую структуру.
На 5 день лечения площадь ран у кроликов контрольной группы уменьшилась и в среднем составляла 355,7 мм2. На 12 день лечения площадь ран уменьшалась до 114,4 мм2. Полное заживление ран у кроликов контрольной группы происходило в среднем на 20 день. Интенсивность заживления ран у кроликов опытной группы была более выраженной: на 5 день лечения площадь раневой поверхности составляла в среднем 340,0 мм2; на 12 день - 55,3 мм2. Полное заживление ран у кроликов опытной группы происходило в среднем на 16 день (рисунок 2).
Гематологические исследования показали, что до начала лечения у кроликов обеих групп отмечалось повышение СОЭ и увеличение общего количество лейкоцитов. В лейкограмме у всех животных регистрировалось повышение палочкоя-дерных нейтрофилов и моноцитов. Содержание других форм лейкоцитов находилось в пределах физиологических границ. На 12 день лечения СОЭ у всех кроликов, включённых в эксперимент нормализовалась, повысился гематокрит, увеличилось содержание в крови эритроцитов и гемоглобина. В лейкограмме увеличилось содержание сегментоя-дерных нейтрофилов. В то же время анализ показателей таблиц 1 и 2 свидетельствует о том, что у кроликов опытной группы нормализация гематологических показателей проходила на более интенсивном уровне по сравнению с контрольными животными.
а) б)
Рисунок 2 - Состояние раневой поверхности у подопытного кролика до начала лечения (а) и на 12 день лечения (б) с использованием разработанной повязки
Таблица 1 - Общие гематологические показатели у кроликов контрольной и опытной групп
Показатели Время исследования, дн.
до лечения на 12 день лечения
СОЭ, мм/час 4,40±0,27 2,04±0,33^
4,60±0,21 2,00±0,28*^
Гематокрит, % 35,5±2,4 38,8±2,6
36,3±2,0 40,5±2,0
Эритроциты, •1012/л 5,11±0,47 6,05±0,45
5,20±0,51 6,54±0,40
Лейкоциты, ^109/л 12,0±0,86 8,38±0,47^
11,8±0,7 7,70±0,Г
Гемоглобин, г/л 104,9±3,11 110,0±3,04
105,7±3,00 115,0±3,76
Примечание: в числителе контрольная группа, в знаменателе - опытная группа; * - при р<0,05 по сравнению с показателями контрольной группы; • - при р<0,05 по сравнению с показателями полученными до лечения
Таблица 2 - Лейкограмма у кроликов контрольной и опытной групп
Показатели
Время исследования, дн.
до лечения
на 12 день лечения
Б
2,5±0,30 2,2±0,23
2,1±0,37 2,0±0,29
Э
5,0±0,46 4,60,53
4,6±0,36 3,1±0,25*
П
17,3±2,01
16,9±2,56
8,8±0,31'
6,7±0,30*^
С
19,6±2,15 22,7±2,18
29,9±2,76^ 34,7±2,03^
Л
48,7±4,46 47,8±3,94
51,0±3,86 50,5±4,00
Мон.
6,9±0,30 5,8±0,27
3,6±0,26^ 3,0±0,31*
Примечание: в числителе контрольная группа, в знаменателе опытная группа; * - при р<0,05 по сравнению с показателями контрольной группы; • - при р<0,05 по сравнению с показателями полученными до лечения
Заключение. Проведённые исследования показали, что разработанная повязка обладает терапевтической эффективностью за счёт компонентов входящих в её состав. В частности, тримикаин оказывает обезболивающее, а риванол - антимикробное действие. После контакта с раневой поверхностью эти препараты выходят из сухого состояния и оказывают положительное влияние на раневой процесс.
Важной особенностью разработанной повязки является использование в качестве действующего вещества АСД -2ф. Данный препарат тканевой природы обладает широким спектром биологической активности, оказывает антисептическое действие, стимулирует активность ретикуло-эндотелиальной системы, нормализует трофику и регенерацию повреждённых тканей.
Используемый в качестве оболочки микрокапсул каппа-каррагинан относится к природным полисахаридам, содержащимся в красных морских
водорослях. При его контакте с водой каррагинан переходит в гелеобразное состояние. Данный полисахарид относится к безвредным веществам, его используют в пищевой промышленности, в области тканевой инженерии, регенеративной медицины (покрытия ран) и доставки лекарственных веществ. После контакта с раневой поверхностью оболочка из каппа-каррагинана разрушается и содержимое микрокапсул (АСД-2ф) выходит на раневую поверхность, оказывая терапевтическое действие.
Таким образом апробация разработанный повязки свидетельствует о том, что она проста и удобна в применении, имеет высокую сорбцион-ную активность, не прилипает к поверхности раны за счёт гелеобразного слоя, тем самым обеспечивает атравматичность перевязок и дозированное поступление лекарственного вещества в рану. Повязку можно использовать при лечении ран как у продуктивных, так и мелких домашних животных.
Список использованных источников
1. Кузнецов Г.С. Хирургические болезни животных в хозяйствах промышленного типа. - Л.: Колос, 1980. -114 с.
2. Веремей Э.И., Лакисов В.М., Лукъяновский В.А. Общая хирургия ветеринарной медицины. -Минск: Ураджай, 2000. - 526 с.
3. Плахотин М.В., Есютин А.В., Белов А.Д. Общая ветеринарная хирургия. - М.: Колос, 1981. -415 с.
4. Молоканов В.А., Барашкин М.И., Безгин А.Н. Особенности раневого процесса у крупного рогатого скота. - Челябинск, 2004. - 260 с.
5. К вопросу о лечении животных с открытыми механическими повреждениями / А.И. Околелова, И.А. Родин, Е.В. Кузьминова и др. // Ветеринария Кубани. - 2017. - №3. - С. 12-14.
6. Патент РФ №208783. - 2022 г. Атравматическая повязка для лечения ран у животных. Авторы Се-ин О.Б., Кролевец А.А., Сеин Д.О., Григорьев Д.А.
7. Патент РФ №2543632. - 2013 г. Способ получения инкапсулированного антисептика-стимулятора А.В. Дорогова (АСД 2 фракция). Авторы Сеин О.Б., Наумов М.М., Быковская Е.Е., Кролевец А.А., Бога-чёв И.А.
Spisok ispolzovannyx istochnikov
1. Kuzneczov G.S. Xirurgicheskie bolezni zhivotny'x v xozyajstvax promy'shlennogo tipa. - L.: Kolos, 1980. -114 s.
2. Veremej E.I., Lakisov V.M., Luk'yanovskij V.A. Obshhaya xirurgiya veterinarnoj mediciny'. - Minsk: Uradzhaj, 2000. - 526 s.
3. Plaxotin M.V., Esyutin A.V., Belov A.D. Obshhaya veterinarnaya xirurgiya. - M.: Kolos, 1981. -415s.
4. Molokanov V.A., Barashkin M.I., Bezgin A.N. Osobennosti ranevogo processa u krupnogo rogatogo skota. - Chelyabinsk, 2004. - 260 s.
5. K voprosu o lechenii zhivotny'x s otkry'ty'mi mexanicheskimi povrezhdeniyami / A.I. Okolelova, I.A. Rodin, E.V. Kuz'minova i dr. // Veterinariya Kubani. - 2017. - №3. - S.12-14.
6. Patent RF №208783. - 2022 g. Atravmaticheskaya povyazka dlya lecheniya ran u zhivotny'x. Av-tory' Sein O.B., Krolevecz A.A., Sein D.O., Grigor'ev D.A.
7. Patent RF №2543632. - 2013 g. Sposob polucheniya inkapsulirovannogo antiseptika-stimulyatora A.V. Dorogova (ASD 2 frakciya). Avtory' Sein O.B., Naumov M.M., By'kovskaya E.E., Krolevecz A.A., Bogachyov I.A.
