CC BY
11
УДК 619:616.5
ИСПОЛЬЗОВАНИЕ АТРАВМАТИЧЕСКОЙ ПОВЯЗКИ ДЛЯ ЛЕЧЕНИЯ РАН У ЖИВОТНЫХ
СЕИН ОБ.,
доктор биологических наук, профессор кафедры хирургии и терапии, ФГБОУ ВО Курская ГСХА. тел. 53-15-55.
КОЛОМИЙЦЕВ СМ.,
кандидат ветеринарных наук, доцент, заведующий кафедрой кафедры хирургии и терапии, ФГБОУ ВО Курская ГСХА. тел. 53-15-55.
СОБОЛЕВА В.М.,
аспирант кафедры хирургии и терапии, ФГБОУ ВО Курская ГСХА. тел.53-15-55.
Реферат. Описывается способ изготовления атравматической повязки для лечения ран разработанный авторами у животных (Патент РФ №206168. - 2022 г.) и результаты её апробации в производственных условиях. Разработанная повязка состоит из двух слоёв хлопкового полотна нетканой природы. Первый внутренний слой, прилегающий к раневой поверхности, предварительно обрабатывается с последующим высушиванием 0,1-0,2%-ным раствором риванола и 2-3%-ным раствором тримикаина. На этот слой наносится микрокапсулированный в натрий карбоксиметилцеллюлозную оболочку антисептик-стимулятор Дорогова второй фракции (АСД-2ф), который получали по ранее разработанному нами способу (Патент РФ № 2576239. - 2016 г.). Второй наружный слой повязки, покрывающий слой микрокапсул АСД-2ф, включает пергаментную бумагу и нетканое полотно. Оба слоя повязки склеивались между собой по периметру. Для чего на свободные от лекарственного препарата края повязки наносится клеевая масса. Таким образом, микрокапсулированный препарат «упаковывается», и фиксируется между слоями повязки. До применения повязку хранят в целлофановом пакете при комнатной температуре. На раневой поверхности повязку закрепляют путём бинтования или клеем БФ. При контакте рабочего слоя повязки с раневой поверхностью оболочка микрокапсул, состоящая из кабоксилметигцеллюлды, переходит в гелеобразное состояние, что предотвращает «прилипание» повязки к ране, обеспечивая таким образом её атравмати-чесность. В процессе гелеобразования содержимое микрокапсул освобождается и оказывает рано-заживляющее действие. Апробация повязки на разных видах домашних животных (собаки, овцы, крупный рогатый скот) подтвердила её эффективность. У больных животных раны быстро очищались от гнойно-некротических масс, ускорялись процессы появления первых грануляций и эпите-лизации. Атравматическая повязка рекомендуется к применению в практике ветеринарной медицины.
Ключевые слова: атравматическая повязка, рана, антисептик - стимулятор Дорогова -2ф, кар-боксиметилцеллюлоза, микрокапсулы, риванол, тримикаин, кролики.
USING ATRAUMATIC BANDAGE FOR TREATMENT WOUNDS IN ANIMALS
SEIN O.B.,
Doctor of Biological Sciences, Professor of the Department of Surgery and Therapy, Kursk State Agricultural Academy. tel. 53-15-55.
KOLOMIYTSEV S.M.,
Candidate of Veterinary Sciences, Associate Professor, Head of the Department of Surgery and Therapy, Kursk State Agricultural Academy. tel. 53-15-55.
SOBOLEVA V.M.,
postgraduate student of the Department of Surgery and Therapy, Kursk State Agricultural Academy tel.53-15-55.
Essay. A method for manufacturing an atraumatic dressing for the treatment of wounds developed by the authors in animals (RF Patent No. 206168. - 2022) and the results of its approbation in production conditions are described. The developed bandage consists of two layers of non-woven cotton fabric. The first inner layer, adjacent to the wound surface, is pre-treated, followed by drying with a 0.1-0.2% rivanol solution and a 2-3% trimikain solution. On this layer is applied microencapsulated in a sodium carboxymethylcellulose shell antiseptic-stimulator Dorogov of the second fraction (ASD-2f), which was obtained according to a method previously developed by us (RF Patent No. 2576239. - 2016). The second outer layer of the dressing, covering the layer of ASD-2f microcapsules, includes parchment paper and non-woven fabric. Both layers of the dressing were glued together along the perimeter. Why is an adhesive mass applied to the edges of the dressing free from the drug. Thus, the microencapsulated preparation is "packed" and fixed between the layers of the dressing. Before use, the bandage is stored in a plastic bag at room temperature. On the wound surface, the bandage is fixed by bandaging or with BF glue. Upon contact of the working layer of the dressing with the wound surface, the shell of microcapsules, consisting of caboxyl methylcellulose, passes into a gel-like state, which prevents the dressing from "adhering" to the wound, thus ensuring its atraumaticity. In the process of gelation, the contents of the microcapsules are released and have a wound healing effect. Approbation of the dressing on different types of domestic animals (dogs, sheep, cattle) confirmed its effectiveness. In sick animals, the wounds were quickly cleared of puru-lent-necrotic masses, the processes of the appearance of the first granulations and epithelialization were accelerated. Atraumatic dressing is recommended for use in the practice of veterinary medicine.
Keywords: atraumatic dressing, wound, antiseptic - Dorogov's stimulator -2f, carboxymethylcellulose, microcapsules, rivanol, trimikain, rabbits.
Введение. Рана - это повреждение отдельных частей тела, которое сопровождается нарушением целостности анатомических структур. Ранение обычно характеризуется такими признаками как кровотечение, болевая реакция, расхождение краёв раны. В зависимости от того присутствует ли в ране гнойный инфекционный процесс она может быть инфицированной, кон-таминированной (без признаков нагноения) или асептической полученной в результате хирургического «чистого» вмешательства [1, 2, 3].
Многие раны у животных заживают естественным путём. В то же время встречаются раны, требующие неотложного вмешательства. К таким ранам можно отнести обширные по площади и инфицированные раны.
Известно, что процесс очищения ран от некротических тканей, загрязнений и их заживление у животных разных видов происходит неодинаково. У плотоядных и лошадей раны заживают с гнойно-ферментативным очищением, сопровождающимся гнойноэкссудативными явлениями, протекающими при выраженной гидратации [4].У крупного рогатого скота и свиней заживление ран происходит по гнойно-секвестрационному типу. В этом случае в ране накапливается большое количество фибринозного экссудата, который вместе с некротическими тканями формирует фибринозноткане-вую массу, выполняющую роль биологической пробки, защищающей рану от микробного загрязнения [5,7]. Секвестрационное очищение
ран бывает у птиц и грызунов. При таком заживлении быстро образуется фибринозный сгусток. Нити фибрина пронизывают мёртвые ткани и образуют плотную массу, которая высыхая превращается в фибринозно-тканевый струп. В последствии струп секвестрируется (отделяется) от повреждённой ткани и грануляционная ткань заполняет раневые дефекты и выталкивает секвестрирующийся струп [7].
Исходя из указанных типов заживления ран у животных должна складываться и специфичность их лечения. Поэтому при создании раневых повязок необходимо учитывать тип раны и фазу её заживления.
Цель и задачи исследования. Целью настоящих исследований являлась разработка повязки обладающей атравматичностью и антимикробной активностью, а также проведение её апробации в производственных условиях.
Материал и методы исследований. Изготовление атравматической повязки проводили в условиях научно-исследовательской лаборатории кафедры хирургии и терапии Курской государственной сельскохозяйственной академии имени И.И. Иванова. Апробировали повязку на разных видах животных в условиях ветеринарных клиник г. Курска и г. Орла.
Экспериментальная часть работы состояла из двух этапов. Во время первого этапа была изготовлена атравматическая повязка с использованием разработанного авторами способа (Патент РФ №206168. - 2022 г.). Второй этап
работы был посвящён апробации повязки на кроликах породы советская шиншилла 6-месячного возраста с массой тела 3,8-4,0 кг. С этой целью было сформировано две группы по 5 кроликов в каждой.
Всем кроликам, включённым в эксперимент, наносили плоскостные кожно-мышечные раны в области холки. Для этого у кроликов выстригали и выбривали шёрстный покров. Затем обрабатывали операционное поле 70%-ным этиловым спиртом и 5%-ным йодным раствором. Нанесённые раны имели одинаковую площадь (20х20мм). Для этого использовали целлулоидный трафарет, который прикладывали к подготовленному месту на теле животного и после местной анестезии скальпелем создавали искусственную рану путём удаления кожных лоскутов и дополнительного разреза мышечной ткани. Кровотечение останавливали плотной повязкой. Инфицирование ран осуществляли смесью почвы и навоза по методу А.В. Вардапян (2004).
У кроликов 1 контрольной группы лечение ран осуществляли с использованием линимента бальзамического (по Вишневскому). Кроликов 2 опытной группы лечили с применением разработанной атравматической повязки.
Для оценки заживления ран осуществляли регулярный осмотр, при котором учитывали состояние раневой поверхности, краёв раны и образование грануляционной ткани.
Методом планиметрии с использованием целлулоидных пластин и миллиметровой бумаги определяли площадь заживления ран. При
л /
этом процент заживления ран за сутки устанавливали по формуле:
S - Sn»100 , S•t
где S - площадь раны при предыдущем измерении;
Sn - площадь раны в период измерения; t - количество дней между измерениями.
Процент уменьшения площади ран за время лечения устанавливали по формуле: 100 - ^100^), где S - площадь раны до лечения; Sn - площадь раны в период измерения.
Определяли площадь ран у подопытных животных до лечения, на 6 и 12 дни после начала лечения.
В ходе проведения эксперимента у всех кроликов брали кровь, которой определяли общие гематологические показатели (скорость оседания эритроцитов, гематокрит, содержание эритроцитов, лейкоцитов и гемоглобина) с использованием общепринятых методик и автаматиче-ского анализатора.
Полученный во время исследований цифровой материал подвергали биометрической обработке (П.Ф. Рокицкий, 1973) с применением прикладных программ и персонального компьютера.
Результаты исследований. Для изготовления атравматической повязки использовали хлопковое полотно нетканой природы. Повязка включала два слоя (рисунок 1).
V* о » « о о^ЛД^мС « Ч * 6 I' <Г ¿'И 1Л£5>,
Рисунок 1 - Схема атравматической повязки для лечения ран у животных (обозначения по тексту)
Первый (внутренний) слой 1, обращённый непосредственно к поверхности раны, предварительно пропитывался 0,2%-ным раствором риванола и 3%-ным раствором тримикаина с последующим высушиванием при 37 С. Затем на этот слой наносился лекарственный препарат 2 представляющий собой микрокапсули-рованный антисептик - стимулятор Дорогова второй фракции (АСД-2ф), полученный по разработанному нами способу (Патент РФ №2576239. - 2021г.). Принцип данного способа заключается в том, что в качестве оболочки микрокапсул использовали натрий карбокси-метилцеллюлозу, а в качестве ядра - АСД-2ф. Для этого антисептик-стимулятор Дорогова 2-ф диспергировали в карбоксиметилцеллюлозу в бензоле в присутствии поверхностного активного вещества Е472с. После осаждения сформировавшихся микрокапсул ацетонетри-лом их отделяли на фильтре Шотта под вакуумом и высушивали при 35-38°С.
Второй (верхний) слой повязки 3 состоял из тонкой плёнки целлофана или пергаментной бумаги и нетканого полотна. Данный слой покрывал микрокапсулы АСД-2ф. Свободные от препарата края полотна 4 по периметру склеивались клеем БФ-6. Таким образом микрокапсулы находились между верхним и нижним слоями повязки. Атравматичность повязки обеспечивалась натрий карбоксиметилцел-люлозой, которая во время контакта с влажной поверхностью раны переходит в гелеоб-разное состояние, что предотвращает «прилипание» повязки к раневой поверхности и тем самым создаёт её атравматичность.
При контакте микрокапсул с влажной раной оболочки разрушаются и их содержимое оказывает терапевтическое действие, ускоряя ранозаживляющий процесс, который обусловлен антисептиком-стимулятором Дорогова нормализующим трофику и активизирующим регенерацию повреждённых тканей. При этом антисептик-стимулятор оказывает антисептическое и противовоспалительное действие.
Используемая в качестве оболочки микрокапсул натрий карбоксиметилцеллюлоза является безвредным веществом, она широко применяется для стабилизации формообразующих веществ. Тримикаин и риванол после контакта повязки с раневой поверхностью выходят из сухого состояния и оказывают терапевтическое действие на раневой процесс. При этом тримикаин, как анестезирующий препарат, связывается с рецепторами и нарушает процессы деполяризации, тем самым
блокирует проведение нервного импульса. Риванол оказывает выраженное антимикробное действие, он не токсичен и хорошо адсорбируется клетками раневой поверхности.
При осмотре ран до начала лечения и на 3 сутки после нанесения травмы у кроликов как контрольной, так и опытной групп наблюдались все признаки воспалительного процесса. В частности регистрировалась отёчность и гиперемия кожи вокруг раны. Местная температура кожи вокруг раны была повышенной.
На 4 день после начала лечения гиперемия кожи и воспалительный отёк у животных опытной группы уменьшились. У кроликов контрольной группы данные изменения отмечались на пятый день.
Грануляционная ткань в ранах кроликов опытной группы появлялась на 3 -4 день. У контрольных животных активный её рост регистрировался на 4-5 день. При использовании атравматической повязки грануляция была крупнозернистой и имела красный цвет. При использовании повязки с линиментом бальзамическим грануляция была мелкозернистой, бледной окраски, встречались небольшие кровотечения.
К началу активной эпителизации площадь ран у кроликов опытной группы сократилось в среднем на 59% и составляла 166,3±3,8 мм2. У кроликов контрольной группы в этот период средняя площадь раны составляла 248,7±6,9 мм . На 11 день лечения средняя площадь ран у животных опытной группы составляла 51,0±2,0 мм2. Полное заживление раневой поверхности регистрировали на 14-15 день.
У кроликов, подвергавшихся лечению с использованием повязки с линиментом бальзамическим, заживление ран отмечалось в среднем на 19 день.
Во время лечения ран у контрольных и опытных животных отмечались характерные изменения со стороны изучаемых гематологических показателей. Так, до начала лечения исследуемые компоненты крови отражали наличие воспалительного процесса. В частности у кроликов обеих групп регистрировалась повышенная СОЭ (4,5-4,7 мм/час) и умеренный лейкоцитоз (11,0-11,7*109/л). На 12 день лечения указанные компоненты крови нормализовались. У кроликов контрольной группы СОЭ составляла 2,1±0,37 мм/час, а содержание лейкоцитов - 8,1±0,59*109/л. У кроликов опытной группы данные показатели соответственно составляли 1,8±0,31 мм/час и
Примечание: в числителе контрольная группа, в знаменателе - опытная группа; *-при р<0,05 по сравнению с показателями контрольной группой; »-при р<0,05 по сравнению с показателями полученными до лечения
Таблица 2 - Лейкограмма у кроликов при лечении ран с использованием атравматической повязки
Таблица 1 - Общие гематологические показатели у кроликов при лечении ран с использованием атравматической повязки_
Показатели Время исследования, дней
до лечения на 12 день лечения
СОЭ, мм/час 4,5±0,30 2,1±0,37"
4,7±0,25 1,8±0,3Г
Гематокрит, % 36,0±2,7 39,7±3,0
35,4±2,0 41,0±2,2"
Эритроциты,»10 /л 5,2±0,56 5,9±0,47
5,7±0,69 6,6±0,54
Лейкоциты, *109/л 11,7±0,78 8,1±0,59"
11,0±0,69 7,8±0,60'
Гемоглобин, г/л 105,5±3,04 109,5±3,10
106,4±3,17 114,0±4,05
Показатели Время исследования, дней
до лечения на 12 день лечения
Б 2,1±0,34 2,0±0,40
2,7±0,26 2,2±0,33
Э 4,5±0,51 4,1±0,49
4,7±0,60 3,0±0,35'
П 15,3±2,44 9,0±0,71
16,6±1,98 6,1±0,54*'
С 21,6±2,91 31,3±2,06'
24,4±2,08 35,0±2,17"
Л 51,0±3,20 50,5±3,11
45,6±3,11 50,2±4,76
Мон. 5,5±0,30 3,1±0,40'
6,0±0,46 3,5±0,37'
Примечание: в числителе контрольная группа, в знаменателе опытная группа; *-при р<0,05 по сравнению с показателями контрольной группы; •- при р<0,05 по сравнению с показателями полученными до лечения.
Существенные изменения отмечались со стороны содержания отдельных форм лейкоцитов. При постановке кроликов на эксперимент в их крови наблюдался «сдвиг ядра влево», характерный для воспалительного процесса, который сопровождался перераспределением палочкоядерных нейрофилов в сторону увеличения (15,3-16,6%). В то же время после лечения кроликов содержание палочкоя-дерных клеток нормализовалось и на 12 день в крови кроликов контрольной группы достигало 9,0±0,71%, а у кроликов опытной группы -6,1±0,54. Выявленные изменения со стороны
данной группы нейтрофилов имели достоверный характер (р<0,05). Что касается других форм лейкоцитов, то на 12 день лечения они находились в пределах физиологических параметров характерных для здоровых кроликов.
Заключение. Результаты апробации разработанной повязки свидетельствуют о том, что она ускоряет заживление инфицированных ран у животных и обладает атравматиче-скими свойствами. Данную повязку можно рекомендовать к широкому применению в практике ветеринарной медицины.
Список использованных источников
1. Кузнецов Г.С. Хирургические болезни животных в хозяйствах промышленного типа. - Л.: Колос, 1980. - 114 с.
2. Авроров В.Н. Травматизм и его профилактика // Общая ветеринарная хирургия. - СПб.: Лань, 2000.
3. Веремей Э.И., Лакисов В.М., Лукьяновский В.А. Общая хирургия ветеринарной медицины. - Минск: Ураджай, 2000. - 526 с.
4. Плахотин М.В., Есютин А.В., Белов А.Д. Общая ветеринарная хирургия. - М.: Колос, 1981. - 415 с.
5. Молоканов В.А., Барашкин М.И., Безин А.Н. Особенности раневого процесса у крупного рогатого скота. - Челябинск, 2004. - 260 с.
6. К вопросу о лечении животных с открытыми механическими повреждениями / А.И. Око-лелова, И.А. Родин, Е.В. Кузьминова и др. // Ветеринария Кубани. - 2017. - №3. - С.12-14.
7. Калашник И.А. Хирургическая обработка ран. Практикум по общей и частной ветеринарной хирургии. - М.: Агропромиздат, 1990.
8. Патент РФ №206168. - 2021 г. Повязка атравматическая для лечения ран у животных. Авторы Сеин О.Б., Кролевец А.А., Сеин Д.О.
9. Патент РФ №2576239. - 2016 г. Способ получения нанокапсул антисептика стимулятора Дорогова (АСД) 2 фракция. Авторы Кролевец А.А., Сеин О.Б., Богачёв И.А.
10. Рокицкий П.Ф. Биометрическая статистика Минск. - Всшая школа, 1973. - 320 с.
Spisok ispoFzovanny'x istochnikov
1. Kuzneczov G.S. Xirurgicheskie bolezni zhivotny'x v xozyajstvax promy'shlennogo tipa. - L.: Kolos, 1980. - 114 s.
2. Avrorov V.N. Travmatizm i ego profilaktika // Obshhaya veterinarnaya xirurgiya. - SPb.: Lan', 2000.
3. Veremej E'.I., Lakisov V.M., Luk'yanovskij V.A. Obshhaya xirurgiya veterinarnoj mediciny'. -Minsk: Uradzhaj, 2000. - 526 s.
4. Plaxotin M.V., Esyutin A.V., Belov A.D. Obshhaya veterinarnaya xirurgiya. - M.: Kolos, 1981. - 415 s.
5. Molokanov V.A., Barashkin M.I., Bezin A.N. Osobennosti ranevogo processa u krupnogo rogatogo skota. - Chelyabinsk, 2004. - 260 s.
6. K voprosu o lechenii zhivotny'x s otkry'ty'mi mexanicheskimi povrezhdeniyami / A.I. Okolelova, I.A. Rodin, E.V. Kuz'minova i dr. // Veterinariya Kubani. - 2017. - №3. - S.12-14.
7. Kalashnik I.A. Xirurgicheskaya obrabotka ran. Praktikum po obshhej i chastnoj veterinar-noj xirurgii. - M.: Agropromizdat, 1990.
8. Patent RF №206168. - 2021 g. Povyazka atravmaticheskaya dlya lecheniya ran u zhivotny'x. Av-tory' Sein O.B., Krolevecz A.A., Sein D.O.
9. Patent RF №2576239. - 2016 g. Sposob polucheniya nanokapsul antiseptika stimulyatora Dorogova (ASD) 2 frakciya. Avtory' Krolevecz A.A., Sein O.B., Bogachyov I.A.
10. Rokiczkij P.F. Biometricheskaya statistika Minsk. - Vsshaya shkola, 1973. - 320 s.
