CC BY
13аэробной и п2-при анаэробной микробной флоре), представлены в табл.2.
Процент высокочувствительной аэробной микрофлоры был более высоким к гентомицину (79,2±7,7%), левомицитину (67,0±6,9%) и канами-цину (66,0±9,0%) , а анаэробной- к линкомицину (81,6±9,4%), цефозалину (71,7±9,3%) и левомицитину (67,0±6,9%).
Мы в своей практике для профилактики развития гнойно-воспалительных осложнений у больных с открытым переломом нижней челюсти отдавали предпочтение 30% линкомицину, учитывая его фармакологические свойства и на основании проведенных лабораторных тестов на чувствительность микроорганизмов.
Как известно, линкомицин 30% является антибиотиком с остеотропным действием, наиболее активным по отношению к грамположительным грамотрицательным микроорганизмам.
Таким образом, у абсолютного большинства больных с открытым переломом нижней челюсти (95,7%) выявляется аэробная флора. Причем, в основном, в ассоциациях (95,8%). Из аэробной микрофлоры наиболее часто встречались микро-
организмы рода Streptococcus, Staphylococcus aureus, который выявляется в лунке удаленного зуба более чем в два раза чаще, чем в костной ране. При этом выделенные культуры микроорганизмов из линии перелома и лунки удаленных зубов наиболее чувствительными оказались к гентамицину, линкомицину, левомицитину, ана-мицину, цефозалину, цефтриосину.
литература
1. Борисов Л.Б. //Медицинская микробиология, вирусология, иммунология,-М:,2002.-С.141.
2. Боровский Е.В., Леонтьев В.К. Биология полости рта. -М.: Медицина, 1991.-304с.
3. Основы микробиологии, вирусологии, иммунологии: учебник А.А. Воробьева и Ю.С. Кривошеина, Л.С. Быкова. / Под редакцией А.А. Воробьева и Ю.С. Кривошеина М:, Мастерство; Высшая школа, 2001.-224с.
4. Ищенко Н.А. Микрофлора полости рта у курильщиков. //Сб.НИР.-Киев: Здоровья, 1989.-С.36-39.
5. Куттубаева К.Б., Сабирова Т.С., Иманалиева А.Ж., Субанов А.А. Антибактериальная терапия при воспалительных заболеваниях парадонта. /Мат. III Конгресс Ассоциации стоматологов Кыргызской Республики. // Медицинские кадры ХХ1века.-2006.-№2.-С.22-25.
ичегинин эксперименталдык дисбактериоздун электроактивделинген суунун коррекциялык таасири.
корригирующий эффект электроактивированных воды при экспериментальном дисбактериозе
кишечника
Касымов О.Т., Гительман (Ашбах) Д.С., Белов Г.в. Научно-производственное объединение «Профилактическая медицина», Международная высшая медицинская школа, Бишкек, Кыргызстан
Corrective effect guitar activated water by experimental disbacteriosis of bowels
Электроактивированная вода имеет большие перспективы применения в санитарии и клинической медицине [1,2,3]. Ранее нами была показана высокая бактерицидная активность анолита на культуры кишечной палочки и сальмонеллы тифи мурриум [4]. Развивая это направление, было бы интересно изучить действие анолита в моделях - состояний, близких к болезням человека. Известна модель дисбактериоза кишечника у лабораторных животных, вызванная двухнедельным применением пенициллина [5].
Нормальная микрофлора кишечника представляет собой многокомпонентную экологическую систему, сложившуюся эволюционно в результате взаимодействия микроорганизмов и организма - хозяина. По современным представлениям, нормальная микрофлора ЖКТ подразде-
ляется на индигенную и условно-патогенную [6].. Индигенная микрофлора состоит из небольшого числа рядов микроорганизмов, чье присутствие необходимо для нормального функционирования макроорганизма. В микробиоценозе млекопитающих - это, прежде всего, анаэробные микроорганизмы: Bifidum, Lactobacterium и в небольшом количестве ( до 1% от всех остальных) Е.соП с нормальной ферментативной активностью. Последний представитель индигенной микрофлоры отнесен к этой группе на основании обнаружения его в фекалиях здоровых и огромной положительной роли для организма хозяина. Во всех остальных биотопах он рассматривается в группе условно-патогенных бактерий (к которым по существу и относится) и наличие его расценивается как отрицательный признак.
корригирующий эффект электроактивированных воды при экспериментальном..
Таблица 1
Микробиоценоз толстого кишечника крыс под влиянием АНОЛИТА
Микроорганизмы до введения анолита 4 день после введения анолита 14 день после введения анолита |
Bifidum 5,86+0,5 3,15+0,31 4,5 +0,23
Lacctobacterium sp. 10,8+0,62 11,7+0,87 11,5+0,65
E.coli 7,4+0,24 5,7+0,64 5,3+0,71
Индигенные - всего 10,8+0,61 11,72+0,37 11,53+0,72
E.coli (лактоза) 0 6,78+0,2 0
E.coli (гемолиз +) 4,3+0,34 0 2,6+0,68
Streptococcus гр.Д 9,86+0,6 0 7,85+0,37
Streptococ.гр.Д (гемолиз+) 0 0 3,15+0,4
Bacillus sp. 10.8+0,72 11,5+0,64 10,56+0,37
Clostridium sp. 0 0 0
Proteus omibilis 5,76+0,54 5,6+0,42 0
Klebsiellae sp. 12,0+0,63 0 0
Psevdomonae sp. 5,0+0,4 0 0
Общее количество условно патогенных 12,03+0,74 11,55+0,67 10.57+0,68
Индекс дисбактериоза 15,8 0,68 0,11
Представители индигенной микрофлоры участвуют в механизмах защиты организма от экзогенной и эндогенной инфекции, стимулируют работу иммунной системы, синтезируют ферменты и биологически активные вещества, принимая тем самым участие в обменных процессах макроорганизма, выполняют детоксикационную функцию и многие другие.
К группе факультативных бактерий, наличие которых в кишечнике расценивается как необязательное, и положительная роль которых для организма пока неясна, относятся: эпидермальный и сапрофитный стафилококк, энтерококки, другие (кроме Е.соИ) условно-патогенные энтеробак-терии, споровая анаэробная и факультативно-анаэробная микрофлора. Ее количество в норме ограничивается 102-104 кл/гр фекалий, кроме энтерококков, количество которых в норме равно 106-107 кл/гр. Наиболее положительное влияние на функционирование макроорганизма оказывают бифидум и лактобактерии. Они принимают участие в синтезе витаминов и незаменимых аминокислот, предотвращают чрезмерное размножение условно-патогенной микрофлоры. Лактобактерии обладают иммуномодулирующим действием. Е.соП с нормальными ферментативными свойствами участвуют в процессах детоксикации, обмене холестерина и желчных кислот, синтезе витаминов.
Несмотря на относительную устойчивость кишечного микробиоценоза, в нем могут возникать нарушения под действием различных, чаще экзогенных факторов. Состояние микробиоценоза кишечника, характеризующееся снижением количества индигенной микрофлоры и (или) повышением условно-патогенной, называется дисбактериозом.
целью настоящей работы явилось изучение
особенностей бактериостатического действия анолита на индигенную и условно-патогенную флору белых крыс при экспериментальном дис-бактериозе.
Микробиоценоз толстого кишечника был изучен у 47 беспородных половозрелых крыс, весом 200-300 гр. У всех животных был смоделирован алиментарный дисбактериоз кишечника, 10 составили контрольную группу, у 37 микробиоценоз кишечника исследовался через 4 и 14 дней после введения анолита.
Анолит получали на диафрагменном электролизере „Эсперо-1" на основе 0,9% раствора №С1 [7]. Параметры вводимого анолита: ОВП + 700 мВ; рН = 3,8 ед. Анолит вводился внутрижелудочно в количестве 2-3 мл 1 раз в день в течение 4 дней (10-15 мл на 1 кг веса). Параметры и количество анолита были подобраны опытным путем. Содержимое толстого кишечника взвешивали, готовили серию десятикратных разведений до 10-10 в фосфатном буфере, из каждого разведения осуществляли мерный высев на набор сред: эндо, кровяной агар, молочно-солевой агар, среда Сабуро, МРС-4 для лактобактерий, КАБ (для выделения анаэробов). Различные микроорганизмы идентифицировали. Количество микроорганизмов выражалось в 1д от коло-ниеобразующих единиц в 1 гр фекалий (1д /кое /гр). Индекс дисбактериоза рассчитывался как отношение условно-патогенных микроорганизмов к индигенным (в норме = 0,1). Полученные результаты представлены в таблице 1.
У крыс контрольной группы имел место выраженный дисбактериоз. Он выражался в сниженном количестве бифидум и лактобактерий (в норме 11-12 в 1д/кое/гр) и увеличении доли факультативной группы условно-патогенных микроорганизмов. Значительно выше нормы
было содержание клебсиелл, споровой микрофлоры, энтерококков. Все это нашло отражение в индексе дисбактериоза (И.Д = 15,8 при норме И.Д. < 0,1). После 4 дней введения анолита содержание в толстом кишечнике индигенных микроорганизмов повысилось на порядок за счет возрастания количества лактобактерий. Доля условно-патогенных микроорганизмов уменьшалась за счет грамм-отрицательных бактерий. Исчезли клебсиеллы, псевдонады, гафнии, гемолитические кишечные палочки. Хотя появились Е.соИ лактоза-негативные, осталось высоким содержание споровой палочки. В результате этих изменений индекс дисбактериоза почти нормализовался (И.Д. = 0,68).
Повторный анализ через две недели показал, что индигенные микроорганизмы остались почти на том же уровне, количество бифидум повысилось на 1,5 порядка, лактобактерии удерживались на том же уровне.
Количество условно-патогенных микроорганизмов снизилось еще на порядок за счет грамм-отрицательной микрофлоры, по-прежнему в высоком титре высевалась споровая палочка. Содержание энтерококков почти соответствовало норме. Индекс дисбактериоза отражает нормальное состояние микробиоценоза кишечника (И.Д. =0,11).
Из всего ранее изложенного следует, что введение в ЖКТ анолита
снижает содержание условно-патогенных грамм-отрицательных микроорганизмов и увеличивает количество лактобактерий. На споровую грамм-положительную микрофлору анолит действия не оказывает. Многочисленными экспериментами нами было выяснено, что анолит оказывает избирательное антибактериальное действие при определенных параметрах, которые составляли С а.х.< 50г/л, ОВП от плюс 600 мВ до плюс 900 мВ, рН от 4 ед. до 3,5 ед.
При повышении параметров анолита до максимальных, он терял избирательную активность, вырезая всю микрофлору кишечника за исключением споровой грамм-положительной микрофлоры.
Избирательность антибактериального действия анолита при определенных параметрах может быть использована для селективной деконтаминации кишечника при увеличении в фекальной микрофлоре доли условно-патогенных энтеробактерий.
выводы
Анолит имеет целый ряд преимуществ по сравнению с применяемыми для этой цели антибиотиками, так как не существует антибиотиков с достаточно избирательным спектром действия и вырезая условно-патогенную группу бактерий, антибиотик повреждает индигенную флору.
Бактерицидная активность анолита зависит от его параметров, поэтому, зная или моделируя антибактериальное действие анолита на конкретные штаммы микроорганизмов in vitro, можно предсказать бактерицидную активность анолита на объектах in vivo. Избирательная антибактериальная активность анолита в зависимости от его параметров была с успехом использована в клинических условиях.
литература
1. Ашбах Д. С. Живая и мертвая вода - новейшее лекарство современности. СПб: Питер, 2008. -192 с.
2. Бахир В.М. Медико-технические системы и технологии для синтеза электрохимически активированных растворов. - М.. ВНИИИМТ, 1998. -66 с; - ил.
3. Бахир В.М., Задорожний Ю.Г, Леонов Б.И., Паничева С.А., Прилуцкий В.И. Электрохимическая активация: очистка воды и получение полезных растворов. М:ВНИИИМТ; МСС, 2001. - 176 с.
4. Гительман Д. С., БеловГ.В. Эффективность обеззараживающего действия анолита при дезинфекции питьевой воды //Медицина Кыргызстана. 2007. №6. - С.51-53.
5. Пинегин Б.В., Мальцев В.Н., Коршунов В.М. Дисбакте-риоз кишечника. М.: Медицина. 1984. - 234 с.
6. Петровская В.Г., Марко О.П. Микрофлора человека в норме и патологии. М.- 1976. - 189 с.
7. Алехин С.А., Гительбман Д.С. Способ производства антисептика // Патент № 3512 от 10.04.1995, Республика. Узбекистан
