CC BY
36
Результаты исследования сыворотки крови цыплят 2-й и 3-й групп
Титр антител к вирусам № группы До вакцинации Срок после вакцинации, мес
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12
ИБК* 2 3 1:390 1:425 1:9856 1:411 1:10100 1:360 1:10050 1:380 1:9434 1:365 1:8903 1:320 1:8519 1:319 1:84001:7125 1:280 1:298 1:6236 1:290 1:4259 1:283 1:4023 1:250 1:3578 1:270
НБ, 1од2 2 3 3,4 3,6 10,3 3,4 10,1 3,3 10,0 2,8 9,9 2,8 9,9 2,8 9,4 3,0 9,1 3,0 8,9 2,8 8,6 3,0 8,6 2,0 8,5 2,1 8,3 1,8
ССЯ-76, 1од2 2 3 0 0 8,1 0 9,7 0 10,9 0 9,9 0 9,8 0 9,2 0 9,2 0 9,1 0 9,0 0 8,8 0 8,6 0 8,5 0
Примечание. * Приведены максимальные разведения сывороток, давших положительную реакцию в ИФА.
Проведенные испытания показали, что вакцина «АВИ-ВАК ИБК+НБ+ССЯ-76» нереактогеина и все ее компоненты обладают высокой антигенной активностью, создавая у привитых птиц напряженный иммунитет продолжительностью 12 мес. (срок наблюдения).
SUMMARY
A.B. Teruchanov, S.V. Pankratov, T.V. Utkina. The results of trial the inactivated emulsion vaccine «Avivak IB + ND + EDS-76». The trials of inactivated vaccine «Avivak IB + ND + EDS-76» show that it is not reactogenic and all it's components have a high antigenic activity. The vaccine provides protective immunity in poultry which last out at least 12 monthes.
• В ПЦР исследовали 2 изолята вируса инфекционного ларинготрахеита кур. Один оказался идентичным известному типу возбудителя, циркулирующему в Ирландии, а другой представлял собой реассортант последнего и применяемого в этой стране вакцинного штамма агента |Creelanj.L.. Calvert V.M.. Graham D.A., McCullough S.J. Rapid detection and characterization from field cases of infectious laryngotracheitis virus by real-time polymerase chain reaction and restriction fragment length polymorphism. Avian Pathol. 2006, 35, 2, 173-179].
• Мутантный штамм вируса индукционного ларинготрахеита кур, лишенный гена гликопротеина G, полностью атте-нуируется. Введение в его ДНК упомянутого гена ведет к реверсии патогенное™ [Devlin J.M., Browning G.F., Hartley С.А. et al. Glycoprotein G is a virulence factor in infectious laryngotracheitis virus. Gen Virol, 2006, 87, 2839-2847].
• Изоляты вируса инфекционного ларинготрахеита, выделенные на неблагополучных фермах, по результатам тестирования в ПЦР разделили на 5 групп, ни одна из которых не была идентична вакцинным штаммам, применяемым в Австралии [Kirkpatrick N.C., Mahmoudian A., O'Rourke D„ Noonuohammadia A.H. Differentiation of infectious laryngotracheitis virus isolates by restriction fragment length polymorphic analysis of polymerase chain reaction products amplified from multiple genes. Avian Dis. 2006. 50. 1, 28-34].
• С помощью ПЦР установили, что утята могут заражаться цирковирусом птиц в возрасте 1...12 мес, но в максимальной степени они восприимчивы к этому агенту в 5 мес |Scott F. Е.. Beckett A.N.J., McKillen A. et al. Diagnosis of duck circovirus infections by conventional and real-time polymerase chain reaction tests. Avian Pathol, 2005. 34, 6, 495-500].
• До недавнего времени у домашней птицы и диких пернатых регистрировали инфекцию только коронавируса типа 3 (типичный представитель — вирус инфекционного бронхита). В экспериментальных условиях установили, что корона-вирус КРС, относящийся к типу 2, может вызывать энтерит у ИНДЮШек |Cavanagh D.Coronaviruses in poultry and other birds. Avian Pathology, 2005. 34, 6. 439-448].
0 КАЛЕЙДОСКОП
^ • 11-летний мониторинг большого количества птицеводческих хозяйств США показал, что в них, несмотря на проводимую вакцинацию, циркулируют штаммы вируса инфекционного бронхита, создавая постоянный риск вспышки заболевания IJackwood М- Hilt W„ Lee D.A. et al. Data from ! 1 years of molecular typing infectious bronchitis virus field isolates. Avian Dis. 2005. 49. 4, 614-6181-
• Разработан ускоренный гемагглютинационный метод обнаружения вируса инфекционного бронхита кур в аллан-тоисной жидкости. При исследовании патологического материала, обработанного нейраминидазой, чувствительность теста составляет 100% [MomayezR., Gharahkhani P. Toroghi R.. Pourba-khsh S.A. Detection of infectious bronchitis virus in allantioc fluid bv rapid hemagglutination test. Arch of Razi Inst, 2005, 59, 47—54|.
• В Египте с успехом испытали 3-валентную вакцину против болезни Ньюкасла, инфекционного бронхита и синдрома снижения яйценоскости [Rofail N.B., TolbaS.K., Hassan Е.А. et al. Preparation and field application of inactivated trivalent vaccine against Newcastle, infectious bronchitis and egg drop syndrome diseases. Vet Med J Giza, 2005, 53, 3, 809-817].
• При одновременной иммунизации птицы против болезни Ньюкасла и пневмовироза антительный ответ к возбудителю первой из названных болезней усиливается, а к пнев-мовирусу — ингибируется IGanapathy К., Cargill P., Montiel Е„ Jones R.C. Interaction between live avian pneumovirus and Newcastle disease virus vaccines in specific pathogen free chickens. Avian Pathol, 2005, 34. 4, 297—302].
• Вакцина из штамма Комаров вируса болезни Ньюкасла в большей степени предотвращает снижение яичной продуктивности у кур в неблагополучных по данному вирозу хозяйствах, чем вакцина из штамма ЛаСота IBalasubramaniam А..
Saravanan S., Sukumar S. Comparison of haemagglutinins and haemagglutination inhibition titres between Lasota and Komarov strains of Newcastle disease virus. IndJ Poultry Sci, 2005, 40, 1, 105-108].
• В ряде птицеводческих хозяйств Польши гибель гусят от вирусного энетрита гусей достигает 48 %. Подкожное вве-
денис суточным утятам сыворотки крови рсконвалесцентов в 30...40 раз снижает ЭТОТ показатель [GawelA., Mazurkiewicz М., Samorek-Salamonowicz Е. et al. Efektywnoibc surowicy gesi ozdrowieccyw w immunoprofilaktyce choroby Derzsyego. Medycyna Weterynaryjna, 2005. 61. 11. 1245—1249|.
• В Китае выделили новый тип вируса гепатита уток | Ying Н.Х., Shuang C.S.. Qin G.C. et al. Dynamic changes of biochemical indexes of ducklings infected with new type duck hepatitis virus. Chin J Vet Sri. 2005.. 25, 6. 628 6311.
• Селекция птицы с геномным локусом. определяющим резистентность к болезни Марека, в ближайшем будущем может стать одним из основных способов борьбы с этим ОПаСНЫМ вирозом [McElroyJ.P., Dekkers J.C.M., FultonJ.E. et al. Microsatellite markers associated with resistance to Marek's disease in commercial layer chickens. Poultry Sci, 2005, 84, 11. 1678- 1688|.
• При испытаниях ПЦР для диагностики болезни Гамбо-ро отметили высокую корреляцию показаний данного теста с результатами реакции иммунодиффузии и гистологического исследования |KuskM„ Kabell S„ Jorgensen PH., Handberg K.J. Differentiation of five strains of infectious bursal disease virus: development of a strain-specific multiplex PCR. Vet Microb. 2005. 109, 3/4. 159-167).
• Причиной массовой гибели диких гусей в Китае в 2005 г. стал реассортантный штамм высокопатогененного вируса гриппа H5N1. 627-й аминокислотой в продукте его гена РВ2 был лизин, как у циркулирующего среди людей штамма А/Н К/483/97. Это генетическое изменение, по всей видимости, стало причиной повышенной патогенности вируса для ДИКИХ водоплавующих птиц [Zhou Ji-Y„ Hui-Gang Shen, Hong-Xun Chen et al. Characterization of a highly pathogenic H5N1 influenza virus derived from bar-headed geese in China. J Gen Virol. 2006, 87, 1823-1833].
• Иммунизация вакцинным штаммом вируса гриппа, содержащим чужеродную нейраминидазу, не только эффективна, но позволяет легко дифференцировать привитую птицу от естественно инфицированной [Cattoü G., Milani А., Bettini F. Development and validation of an anti-N3 indirect immunofluorescent antibody test to be used as a companion diagnostic test in the framework of a «DIVA» vaccination strategy for avian influenza infections in poultry. Avian Path. 2006. 35, 2. 154-159].
• Дефектные интерферирующие частицы вируса гриппа типа А защищают привитых ими мышей от вирулентных и в значительно меньшей степени от авирулентных штаммов агента |DimmockN.J., Marriott А.С. In vivo antiviral activity: defective interfering virus protects better against virulent Influenza A virus than avirulent virus. J Gen Virol. 2006, 87. 1259-1265].
• В птицеводческих хозяйствах Мексики наиболее распространен серовар В-1 Avibacterium (Haemophilus) pa raga-llinarum. Поэтому для профилактики заразного насморка там применяют поливалентные вакцины из серотипов А, В и С
| Fernández R.P., Colindres H.L.. Velasquez Q.E. et al. Protection conferred by bivalent and trivalent infectious coryza bacterins against prevalent serovars of Avibacterium (Haemophilus) paragallinarum in Mexico. Avian Dis, 2005, 49, 4, 585-587].
• ПЦР позволяет выявлять в патологическом материале S. pullorum и с высокой точностью идентифицировать серотипы этой сальмонеллы. Предполагается, что в ближайшем будущем данный тест заменит серотипирование и биохимическую идентификацию возбудителя [DesaiA.R., Shah D.H., Shringi S. et al. An allele-specific PCR assay for the rapid and serotype-specific detection of Salmonella Pullorum. Avian Dis, 2005, 49, 4, 558-561].
• Описана вспышка колибактериоза, сопровождавшаяся развитием у 26...58-недельных кур острых или хронических сальпингита и перитонита. Штамм возбудителя обнаружили в неблагополучном хозяйстве у большого количества кур-несушек [Jordan F.T.W., Williams N.J.. Wattret A., Jones Т. Observations on salpingitis, peritonitis and salpingoperitonitis in a layer breeder flock. Vet Rec, 2005, 157, 19, 573-577].
• Or 7,,.18-недельных индюшек, страдавших тифлитом, изолировали спирохету В. pilosicoli. Ранее эту бактерию никогда не обнаруживали в слепой кишке данного вида птиц [Shivaprasad H.L., Duhamel G.E. Cecal spirochetosis caused by Brachvspira pilosicoli in commercial turkeys. Avian Diseases, 2005, 49, 4, 609—613].
• В Австралии уровень инфицированное™ кур кишечными спирохетами (В. intermedia, В. pilosicoli, В. innocens, В. murdochii, В. pulli) достигает 40 %. Эти инфекции сопровождаются диареей И снижением ЯИЧНОЙ продуктивности ¡Stephens С.Р., Hampson D.J. Intestinal spirochete infections of chickens: a review of disease associations, epidemiology and control. Anim Health Res Rev, 2001, 2,1,83-92].
• Венгерские исследователи установили, что кишечная спирохета В. alvinipulli вызывает у гусей фибронекротичес-КИЙ тифлит [Nemes C.S., GI6vits R., Dobos-Kov6cs М. et al. Typhlocolitis associated with spirochaetes in goose flocks. Avian Pathology, 2006, 35, 1. 4 — 11].
• Пероральная дача суспензии бактериофага 4...10-днев-ным бройлерам предотвращает колонизацию кишечника Campylobacter jejuni |WagenaarJ.A„ Bergen M.A.P., van Mueller M.A. et al. Phage therapy reduces Campylobacter jejuni colonization in broilers. Vet Micr, 2005, 109, 3/4, 275-283].
• Лактобактерии L. animalis и L. fermentum предотвращают прикрепление сальмонелл (S. gallinarum, S. pullorum и S. enteritidis) к клеткам кишечника кур |GusilsC„ RossR., Draksler D. et al. Tous Inhibitory Effects of Chick Lactobacilli on Enteropathogenic Salmonella. J Anim Vet Adv, 2006, 5, 2, 126-131].
• Офлоксацин быстрее абсорбируется, шире распределяется и быстрее элиминируется из организма бройлеров, чем другие фгорхинолоны [Kalaiselvi L, Sriranjani D„ Ramesh S. et al. Pharmacokinetics of ofloxacin in broiler chicken. J Vet Pharm Therap, 2006. 29, 185-189].
• Эффективным способом борьбы с инфекционным эн-терогеиатитом (гистомонозом) индюшек служит антгель-минтная обработка птицы против инвазии Heterakis gallinarum, с яйцами которых возбудитель болезни рассеивается В окружающей среде I Duffy C.F., Sims M.D., Pow er R.F. Evaluation of dietary Natustat™ for control of Histomonas meleagridis in male turkeys on infected litter. Avian Dis, 2005, 49, 3, 423-425].
• От страусов изолировали новый вид криптоспори-ДИЙ — С. baileyi [Meireles M.V., Soares R.M., dos Santos M M., Gennari S.M. Biological studies and molecular characterization of a Cryptosporidium isolate from ostriches (Stnithio camelus). J Parasitol, 2006. 92, 3. 623-626].
• Кишечный криитосноридиоз индюшек клинически проявляется диареей и угнетением. Поражается в основном средняя и дистальные части тонкого отдела кишечника
|Gharagozlou M.J., Dezfoulian О.. Rahbari S. et al. Intestinal crvptosporidiosis in turkeys in Iran. J Vet Med A Physiol Pathol Clin Med, 2006, 53, 6, 282-285].
• Разработан новый модифицированный метод подсчета ооцистов кокцидий в фекалиях птицы. На его проведение уходит в 9 раз меньше времени, чем на стандартный метод МакМастера (Haug A., Williams R.B., Larsen S. McMaster technique and a new rapid method. Counting coccidial oocysts in chicken faeces: a comparative study of a standard. Vet Parasitol, 2006, 136, 3-4, 233-242].
РВЖ СХЖ .N»4-2006
