CC BY
48
УДК 619:615.3
К ВОПРОСУ ИММОБИЛИЗАЦИИ МЕДВЕДЕЙ
*Малёв А. В. - к.б.н.;**Мельников Н.С.; ***Максудов Г. Ю. - к.б.н.; ****Женихова Н.И. - д.в.н.; Гильмутдинов Р.Я. - д.б.н., профессор; *****Черепанов И.Н.
*МБУК «Казанский зооботсад» **МБУК «Екатеринбургский зоопарк» * * *ГАУ «Московский зоопарк» ****Уральский государственный аграрный университет, г. Екатеринбург Казанская государственная академия ветеринарной медицины имени Н.Э. Баумана *****фонд зоозащиты «Спаси меня», г.Челябинск e-mail: [email protected]
Ключевые слова: медведи, иммобилизация, анестезия, дозировка препаратов. Key words: bears, immobilization, anesthesia, dosage of preparations.
Несмотря на наличие
общепризнанных зарекомендовавших себя схем иммобилизации, особенно при работе с дикими хищными животными различных видов, возникают непредвиденные ситуации, Огромную ответственность накладывает работа с медведями в условиях зоопарка. Большая масса тела этих животных предполагает относительно большой объем затрачиваемых препаратов и соответственно стоимость процедуры иммобилизации. Более того,
законодательство Российской Федерации существенно ограничивает выбор обездвиживающих препаратов, вводимых внутримышечно (некоторые запрещены; другие разрешены, но не прописаны процедуры лицензирования, получения и списания; третьи вследствие сложностей получения и продления лицензии на продажу, периодически исчезают с отечественного рынка). Также нередко исследователь получает информацию о состоянии животного, значимых его физиологических показателях (например, о массе тела) не до иммобилизации, а в процессе осуществления данной процедуры. И, наконец, значительная толщина подкожной жировой клетчатки у представителей медвежьих значительно сужает возможности дистанционной внутримышечной инъекции
иммобилизирующих препаратов. В целом медведи хорошо переносят препараты, аннотированные для кошек и собак, не склонны к гипоксии во время наркоза, эффективно утилизируют метаболиты лекарственных средств за счёт высокой
ферментативной активности печени и значительного жирового депо.
Вышеизложенное побудило нас
рассмотреть эффективность
иммобилизации 2-х видов медведей различными комбинациями препаратов.
Материалы и методы.
Иммобилизация проведена на 23 белых (Ursus тапНтш) и бурых (Ursus агсО) медведях. Препараты вводились животным внутримышечно дистанционно с помощью летающих шприцов, чтобы исключить прямой контакт с опасными хищниками. Для работы использовались смеси обездвиживающих препаратов по двум схемам: 1. медитомидин-тилетамин-золазепам (препараты Домитор и Золетил) [5, 3]. 2. ксилазин- тилетамин-золазепам (препараты Рометар либо Ксила и Золетил) [2]. Первая схема является классической и надёжной. При замене растворителя золетила на домитор можно уменьшить объём вводимой смеси в несколько раз. Это крайне важно при использовании дистанционного инъектора на большом расстоянии, так как чем меньше и легче летающий шприц, тем выше его скорость, а это увеличивает дальность и кучность стрельбы, уменьшает влияние ветра и движения животного, снижает
болезненность инъекции. Также
медетомидин, являясь более селективным альфа-2-блокатором, реже вызывает слюнотечения и рвоту, быстрее начинает действовать, более полно и быстро устраняется антиседаном (Alzane). Смесь ксилазин-тилетамин-золазепам требует большого объёма летающего шприца либо
многократных инъекций, медленнее начинает действовать, дольше выводится из организма, усиливает саливацию и диурез (возможно связанный с увеличения процентного содержания тилетамина, повышающего артериальное давление). При замене дорогостоящего домитора на значительно более дешёвый рометар увеличиваются затраты золетила, но исключается необходимость обязательного использования антиседативного средства для вывода животного из наркоза. Как результат стоимость мероприятия в целом уменьшается.
Рекомендованная для медведей доза (3-4, до 5 мг/кг золетила), вводилась нами, начиная с заведомо малой дозы, и доводилась до оптимальной за 2-5 инъекции. Дозировки, указанные в сводной таблице, являются эмпирическими, найденными для конкретных животного и задач иммобилизации. Разброс полученных цифр указывает на реальные различия устойчивости к препаратам у разных животных, что необходимо учитывать при практической работе. Так, молодые животные, не обладая большими жировыми депо, быстрее засыпают и просыпаются, что позволяет применять меньшие дозировки препаратов для коротких манипуляций, но при длительных иммобилизациях заставляет часто добавлять препарат, доводя суммарную дозу до максимальной.
При многократном применении препаратов общая дозировка повышается, что может быть связанно с активацией ферментов, обезвреживающих метаболиты, и с эмоциональным возбуждением животного, знакомого с этой неприятной процедурой. Глубину анестезии
контролировали по наличию рефлексов. В ряде случаев манипуляции не требовали глубокой и длительной анестезии и сохранённые чихательный и жевательный рефлексы не позволяли установить назальный зонд для оксигенации и датчик
пульсоксиметра, но в этом состоянии с комбинацией с местной анестезией удавалось ушивать раны мягких тканей. Первым признаком пробуждения, по нашим наблюдениям, являлось движение носа и губ, затем учащение дыхания, а уже потом восстановление пальпебрального рефлекса. Сигналом к окончанию стадии, безопасной для работы с животным, является попытка облизнуться, приподнять голову или пошевелить лапой. При необходимости срочного выведения из наркоза животным вводился внутримышечно антиседан в объеме не менее половины от объема препарата домитора или ксилы, который устраняет их седативное действие. Обязательно после проведения
необходимых работ для нейтрализации обездвиживающих препаратов вводили внутримышечно по 2 мл аскорбиновой кислоты на 50 кг живого веса и один из препаратов: атропин, кардиамин, сульфокамфокаин, кофеин (Егоров Д.Н.). Весь процесс проведения анестезии фиксировался в протоколах проведения наркоза, на основании которых сделана сводная таблица 1 проведения иммобилизации медведей, где указаны дозировки вышеперечисленных препаратов.
Представленные в таблице данные помогут в подборе доз перечисленных препаратов индивидуально по конкретному виду медведей. Согласно пульсоксиметрии иммобилизированных животных,
насыщение крови кислородом не опускалось ниже 93 %, а при оксигенации оставалось на уровне около 98 %, что соответствует нормам безопасности (не ниже 83 %) [1, 5].
Электрокардиография при
иммобилизации значимых изменений работы сердца не выявила. На рис. 1 и табл. 2 в качестве примера приводится ЭКГ самки белого медведя во время наркоза с расшифровкой биопотенциалов сердца в синусовых ритмах.
Таблица 1 - Иммобилизация медведей за период 2010-2014 г.г.
3 4 Продолж-сть наркоза, мин. Название и дозировки препаратов
Дата работы Место проведени работы о г н р з о м Масса, кг Пол Золетил, 100 мг/мл Домитор, 1 мг/мл Рометар, 20 мг/мл Атропин 1 мг/мл Кордиамин, 250 мг/мл Антиседан, 5 мг/мл Кофеин, 100 мг/мл
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13
Белый медведь (Ursus тагШтш)
28. 9 350 Самец 90 13 мл 7 мл - - - 3 мл 5 мл
09. 3,7 0,02 0,04 1,43
10 Ростов мг/кг мг/кг мг/кг мг/кг
28. на-Дону 20 150 Самка 80 5 мл 3 мл - - - 2 мл 3 мл
09. 3,3 0,02 0,06 2 мг/кг
10 мг/кг мг/кг мг/кг
01. Щёлково 10 200 Самец 60 6,5 мл 3,5 мл - - - 2,5 мл 2,5 мл
10. 3,25 0,017 0,06 1,25
10 мг/кг мг/кг мг/кг мг/кг
11. 12 350 Самка 7 мл 7 мл - - - 4 мл -
12. 2 0,4 0,06
10 Екате- мг/кг мг/кг мг/кг
28. ринбург 13 350 Самка 6 мл 4 мл - - - - -
06. 1,7 0,011
11 мг/кг мг/кг
01. Казань 1 120 Самка 60 1,8 мл - 9 мл - - 4 мл -
10. 1,5 1,5 0,16
13 мг/кг мг/кг мг/кг
13. Екате- 16 350 Самка 50 5 мл 5 мл - 2,0 6,0 5 мл -
05. ринбург 1,4 0,014 0,07
14 мг/кг мг/кг мг/кг
16. 5 474 Самец 60 20 мл - 25 мл - Сульфо- - -
12. 4,2 1,05 кам-
14 Ижевск мг/кг мг/кг фокаин 8 мл
16. 4 214 Самка 30 5,5 мл - 20 мл - Сульфо- - -
12. 2,57 1,87 кам-
14 мг/кг мг/кг фокаин 6 мл
Бурый медведь (и^ш агсО агсО)
13. 5 180 Самка 120 6,7 мл 2 мл 3 мл - -
09. 3,7 0,011 0,33 2 мл 2 мл
12 Нижний мг/кг мг/кг мг/кг 0,01 2,78
14. Нов- 6 180 Самка 270 5 мл 4 мл 8 мл мг/кг мг/кг 3 мг 2 мл
09. город 2,8 0,022 0,89 0,08 1,1
13 мг/кг мг/кг мг/кг мг/кг мг/кг
29. Совет- 3 250 Самец 40 2,5 мл 2,5 мл 2 мг 2 мл 2 мл -
06. ский 1 0,01 0,01 2 мг/кг 0,04
13 мг/кг мг/кг мг/кг мг/кг
16. Саранск 12 250 Самка 125 3 мл 4 мл - - 2 мл 4 мл 2 мл
09. 1,2 0,016 2 мг/кг 0,08 0,8
13 мг/кг мг/кг мг/кг мг/кг
Продолжение таблицы
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13
09. 05. 14 Казань 6 350 Самец 120 11 мл 3,14 мг/кг 15 мл 0,86 мг/кг Сульфо-камфо-каин 4 мл
26. 06. 14 11 200 Самец 120 8 мл 4 мг/кг 18 мл 1,8 мг/кг 2 мл 2,5 мг/кг
27. 06. 14 Ижевск 5 150 Самец 61 5 мл 3,3 мг/мл 14 мл 2,2 мг/мл Сульфо-камфо-каин 4 мл
27. 06. 14 5 200 Самец 120 6 мл 3 мг/кг 8 мл 0,8 мг/кг
28. 06. 14 >6 250 Самец 120 4 мл 1,6 мг/мл 4 мл 0,016 мг/мл
30. 06. 14 Пермь 20 181,5 Самка 117 6 мл 3,3 мг/мл 4 мл 0,033 мг/кг 1 мл 0,01 мг/кг
30. 06. 14 20 155 Самка 90 5 мл 3,2 мг/мл 3 мл 0,02 мг/кг
Тяньшанский (белокоготной) бурый медведь (итиии агсО isabellinus)
26. 05. 14 Пермь 18 150 Самка 82 4 мл 2,6 мг/кг 5 мл 0,03 мг/кг 1 мл 0,01 мг/кг 4 мл 0,13 мг/кг 2 мл 1,33 мл/кг
16. 06. 14 Кар-пинск 8 150 Самец 150 5 мл 3,3 мг/мл 3 мл 0,2 мг/кг
16. 06. 14 8 150 Самец 120 2,5 мл 1,6 мг/кг 2,5 мл 0,017 мг/кг
18. 08. 14 Екатеринбург 8 150 Самец 75 3 мл 2 мг/кг 3 мл 0,2 мг/кг 2 мл 0,28 мг/кг
Рис. 1 - ЭКГ белой медведицы по кличке Айна, возраст 16 лет
Таблица 2 - ЭКГ белой медведицы по кличке Айна, возраст 16 лет.
ЧСС, уд./м ин. Я-Я макс., мс Я-Я мин., мс Я^ ср., мс Р, мс Р-Я (Р-О), мс 0Я8, мс ОТ, мс ОТс, мс Ось QRS, О
44 1995 828 1352 95 140 134 420 359 49
Заключение. Таким образом, в условиях зоопарка при возможности повторной инокуляции анестетика и контроле глубины анестезии,
индивидуальном подходе к животному, можно безопасно проводить манипуляции с медведями с дозировками анестетиков ниже рекомендованных для полевых работ.
ЛИТЕРАТУРА: 1. Семёнов А.В. Мониторинг при проведении общей анестезии диких животных. Актуальные ветеринарные проблемы в зоопарках. Выпуск 2 / Мат. Международного семинара. Москва: 19-23 ноября 2012 г. // Межвед. сб. науч.-метод. тр. - М.: Московский зоопарк, 2013. - С. 124-131.
2. Чижов М.М. Иммобилизация диких животных. - СПб.: Ленинградский зоопарк,
1992. - 176 c.
3. Artemo J. O., Brunberg S., Ahlqist P. et al. Reversible immobilization and anesthesia of free-raning brown bears (ursus arctos) with medetomidine-tiletamine- zolazepam and atipamezole: A review of 575 captures. In: Proceeding of the Annu Meet Am Assos Zoo Vet, 2001.
4. Caulkett N., Cattet M., Caulcett J. et al. Comparative Physiologic Effects of Telazol, Medetomidine-Ketamine and Medetomidine-Telazol in Captive Polar Bears (Ursus Maritimus) // J. Zoo and Wildl. Med. -1999. - V. 30. - P. 504-509.
5. Cattet M., Caulkett N., Streib K. et al. Cardiopulmonary Response of Anesthetized Polar Bears to Suspension by Net and Sling // J. Wildl Dis, - 1999. -V. 35. - P. 548-556.
К ВОПРОСУ ИММОБИЛИЗАЦИИ МЕДВЕДЕЙ
Малёв А.В., Мельников Н.С., Максудов Г.Ю., Женихова Н.И., Гильмутдинов Р.Я., Черепанов И.Н.
Резюме
Проведено сравнительное изучение эффективности иммобилизации белого и бурого медведей 2 комбинациями препаратов. Всего изучено 23 животных. Показана зависимость эффекта от пола и возраста животных и комбинации препаратов для иммобилизации.
TO THE QUESTION OF THE IMMOBILIZATION OF BEARS
Malyov A.V., Melnikov N.S., Maksudov G.Yu., Zhenikhova N. I., Gilmutdinov R.Ya., Cherepanov I.N.
Summary
Comparative studying of efficiency of an immobilization of white and brown bears is carried out by 2 combinations of preparations. In total 23 animals are studied. Dependence of effect on a floor and age of animals and a combination of preparations for an immobilization is shown.
УДК 619:616.379 - 008.64:636.7
ОСОБЕННОСТИ КЛИНИЧЕСКИХ ПРОЯВЛЕНИЙ И ДИАГНОСТИКИ МЕТЭСТРУСАССОЦИИРОВАННОГО САХАРНОГО ДИАБЕТА
У СОБАК
Мартынов А.Н. - к.в.н.; Турков В.Г. - д.в.н., профессор; Клетикова Л.В. - д.б.н., профессор Ивановская государственная сельскохозяйственная академия имени академика Д.К. Беляева
e-mail: [email protected]
Ключевые слова: собака, метэструсассоциированный сахарный диабет, клинические проявления, диагностика, гипоперфузия тканей, почечная недостаточность, окислительнный стресс, липолиз, глюконеогенез.
Key words: dog, metestrusassotsiiration diabetes, clinical manifestations, diagnosis, tissue hypoperfusion, renal failure, oxidative stress, lipolysis, gluconeogenesis.
